4. Características generales
eucariotas
multinucleados
pared con quitina o celulosa
cuerpo filamentoso
sin clorofila, heterótrofos
se alimentan por absorción
se reproducen sexual y/o asexualmente por esporas
nivel de parasitismo
temperatura: 0° - 35°C
pH: alrededor de 6
5. leveduriforme
Talo plasmodial Poro simple y compuesto
micelial
Hifas: septadas o cenocíticas
Micelio: flojo o compacto
haustorio,rizoide,
apresorio,esclerocio,
Modificaciones estroma,rizomorfo
de las hifas cuerpos de fructificación
6. Estructuras vegetativas Modificaciones de las hifas
hifas
plasmodio
poro compuesto
formación de la fíbula
Galli,F. 1998. Fitopatología.
7. 1. sexual
Estructura básica de reproducción: espora
2. asexual
1. plasmogamia: N + N, Cuerpos de fructificación
cariogamia: 2N
meiosis: N cleistotecio
peritecio
apotecio
ascostroma
8. Micelio Esclerocios
Stuteville,D.L.;Erwin,D.C. 1990. Compendium of alfalfa diseases.
14. Conidióforos, conidios
Conidios
Alexopoulos,C.J.;Mims,C.W.;Blackwell,M.
1996. Introductory micoloy
Barnett,H.L.;Hunter,B.B. 1998. Illustrated genera o Imperfect fungi .
15. Sinema, esporodoquio, acérvulos y picnidios
esporodoquio
conidióforo sinema
acérvulo picnidio
Bergamin Filho,A.;Kimati, H.;Amorin,L. 1995.Manual de Fitopatologia .
16. Mecanismos de variabilidad en los hongos
Variabilidad de los caracteres patogénicos: virulencia
reacción a diferentes cultivares
rango de hospedantes
mutación
reproducción sexual
Procesos involucrados
reproducción parasexual
herencia citoplasmática
Mutación
Cambio abrupto en el material genético de una célula que
es transmitido hereditariamente a la progenie.
17. Mecanismo natural o provocado artificialmente
Nivel de importancia
La magnitud depende del patógeno y del ambiente
Reproducción sexual
Segregación y recombinación de genes durante la división
meiótica del cigoto.
Hibridación
18. Reproducción parasexual
n+ n 2n n
n
con micelio haploide (n)
Descendencia con micelio diploide (2n)
con micelio heterocariótico (n + n)
19. Herencia citoplasmática
Es la adquisición por parte del patógeno a través de herencia
extracromosómica, de la capacidad de efectuar un proceso
fisiológico que antes no podía.
Capacidad de tolerar sustancias que le eran tóxicas
Usar nuevos sustratos para su crecimiento
Cambiar su virulencia
21. Síntomas asociados con excesivo crecimiento y distorsión de
partes de plantas:
Otros síntomas
22. Micelio, conidióforos, conidios, esclerotos, cuerpos fructíferos
(picnidios, acérvulos, peritecios, etc.), esporas
A simple vista, con lupa de mano (8 - 20X), con microscopio.
24. Grupos taxonómicos
ra
OOMYCETES Hongos
o
sp
inferiores
oo
ZIGOMYCETES
-z
ra
a
spor
po
no
os
la
- ap
Principales O o ra
Clases Zy gosp
as
con asidi
co
sp
idi
or
b
os-
ASCOMYCETES
a
mi
Hongos
cel
osp
io
superiores
o ra
est
DEUTEROMYCETES
s
éri
l
BASIDIOMYCETES
25. Principales características de los grupos taxonómicos
“Hongos” Inferiores
micelio cenocítico
celulosa en la pared celular
Clase: Oomycetes
Reproducción asexual: zoosporas (en zoosporangios)
Reproducción sexual: oosporas (espora de resistencia)
Clasificación: - esporangióforos
- esporangios
Principales géneros: Pythium, Phytophthora,
Plasmopara, Peronospora, Albugo.
26. Ciclo de vida de Pythium sp.
Bergamin Filho,A.;Kimati,H.;Amorim,L.1995.
27. Ciclo de vida de Phytium debaryanum
Alexopoulos,C.J.;Mims,C.W.;Blackwell.M. 1996.
29. Esporangióforos y esporangios, en la Familia
Peronosporaceae.
Reproducción sexual de la Clase
Oomycetes.
Bergamin Filho,A.;Kimati,H.;Amorim,L.1995.
30. Clase: Zygomycetes
Reproducción asexual: aplanosporas en esporangios
Reproducción sexual: zygospora(espora de resistencia)
Clasificación: - ubicación de los rizoides
Principales géneros: Rhizopus y Mucor
Bergamin Filho,A.;Kimati,H.;Amorim,L.1995
31. Pudrición húmeda en zapallo Butternut por Rhizopus sp.
Facultad de Agronomía - EEFAS- Clínica de diagnóstico
32. Ciclo de Rhizopus stolonifer
Alexopoulos,C.J.;Mims,C.W.;Blackwell.M. 1996
33. Grupo: Basidiomycetes
Reproducción sexual: basidiosporas
Reproducción asexual: esporas exógenas o
micelio estéril
- tipo de basidio
Clasificación:
- tipo de esporas
Principales géneros: Ustilago, Tilletia, Urocystis,
Puccinia, Uromyces, Phakopsora, Heterobasidium.
34. Formación de los basidios y basidiosporas
Bergamin Filho,A.;Kimati,H.;Amorim,L.1995
35. Basidios típicos de las clases:
(A) Holobasidiomycetes, (BC) Phragmobasidiomycetes,
(D) Teliomycetes.
Bergamin Filho,A.;Kimati,H.;Amorim,L.1995
37. Ciclo de las royas
Alexopoulos,C.J.;Mims,C.W.;Blackwell.M. 1996
38. Ciclo de los carbones voladores del trigo y la cebada:
Ustilago tritici y Ustilago nuda respectivamente.
Agrios, G.N. 1997
39. Ciclo de los descomponedores de madera
Agrios, G.N. 1985.
40. Otras enfermedades producidas por
Basidiomycetes
Podredumbre de la raíz de los árboles
frutales y forestales Armillaria
mellea
Descomposiciones y pudriciones de la
madera
Polyporus, Heterobasidium, Inonotus,
Phellinus, Ganoderma, Pleurotus.
41. ¿ Son todos hongos ?
Pseudohongos
1. Reino : PROTOZOA
Clase: Myxomycota
Plasmodiophoromycota
2. Reino: CHROMISTA
Clase: Oomycetes
43. Micelio, conidióforos, conidios, esclerotos, cuerpos fructíferos
(picnidios, acérvulos, peritecios, etc.), esporas
A simple vista, con lupa de mano (8 - 20X), con microscopio.
44. 1. Observación de síntomas y
signo
2. Identificación del hongo
3. Comprobación de la patogenicidad
del organismo identificado
45. datos de campo
cuantificación
8X - 20X
observación
búsqueda bibliográfica por hospedero
hipótesis de posible problema
prueba de hipótesis
verificación
40, 100,400X
46. SEVERIDAD DE DAÑO FOLIAR
Cassanello,M.E.;Franco,J. y Mendoza,R. 1987.
47. Signo natural
muestra Signo provocado
Claves
Tests de patogenicidad analíticas;
Resultado: hongo nuevo
monografías
Bibliografía consultada
descripciones de la especie
Resultado: Venturia inaequalis (Spilocaea pomi)
Siembra en medio
de cultivo
49. Parásitos obligados
Inoculación en material vegetal vivo
Parásitos facultativos Cultivo en medios sintéticos,
Saprófitos facultativos repicado, cultivos puros
diluciones, medios selectivos, trampas, etc.
50. Formas reproductivas (esporas sexuales y/o asexuales)
y también somáticas (micelio, esclerotos) que le permiten su
diseminación en el espacio y en el tiempo, capaz de penetrar
al hospedante y causarle una lesión.
52. corrientes de aire, gotas de
lluvia,insectos,otros vectores,
En el espacio hombre
53. e
Tubo germinativo, apresorio,
Germinación haustorio,hifas de penetración,etc.
Penetración activa Penetración pasiva
54. e
a nivel de flores
en las yemas
heridas Localización:: endoparásitos
estrés ectoparásitos
sistémicos
/ /
Inoculación
Patogénesis Incubación
Infección
55. Germinación y penetración de Erysiphe graminis
Esporulación
conidios
conidióforo
micelio
haustorios
mesófilo
Kresoxim-metil:La naturaleza creó el modelo para este nuevo
fungicida. 1996. BASF.27pp.
56. Germinación y penetración de Spilocaea pomi
Conidio
Germinación y penetración
esporulación
crecimiento de hifa,
formación de estroma
estroma
Flint: Mesostemic power, mastered by Novartis.Technical Data.1998. 42pp.
58. Patógeno
Identificación y clasificación
Ciclo biológico
Evaluación de sus fuentes de inóculo
Mejoramiento del drenaje del suelo
Adecuada distancia entre filas y plantas
Limpieza del terreno
Eliminación del rastrojo o restos de poda
59. Planta hospedante
Grado de susceptibilidad
Rango de hospedantes
fecha de siembra
producción de heridas
elección del lugar
control de malezas
rotaciones
variedades resistentes
60. Medio ambiente
Temperatura, luz, humedad
Sistemas de alarma
Planta hospedante: parámetros ambientales fuera
del rango óptimo
Prevenir penetración
Actuando inmediatamente luego de la penetración
!!!!!!!!!!!!!!
62. Micelio, conidióforos, conidios, esclerotos, cuerpos fructíferos
(picnidios, acérvulos, peritecios, etc.), esporas
A simple vista, con lupa de mano (8 - 20X), con microscopio.
63. 1. Observación de síntomas y signo
2. Identificación del hongo
3. Comprobación de la patogenicidad del organismo
identificado
64. datos de campo
8X - 20X
cuantificación
observación
búsqueda bibliográfica por hospedero
hipótesis de posible problema
prueba de hipótesis
verificación
40, 100,400X
65. Signo natural
muestra Signo provocado
Claves
Tests de patogenicidad analíticas;
Resultado: hongo nuevo
monografías
descripciones de la especie
Resultado: Spilocaea pomi
Siembra en medio
de cultivo
67. Parásitos obligados Inoculación en material vegetal vivo
Parásitos facultativos Cultivo en medios sintéticos,
Saprófitos facultativos repicado, cultivos puros
diluciones, medios selectivos, trampas, etc.
69. Formas reproductivas (esporas sexuales y/o vegetativas)
y también somáticas (micelio, esclerotos) que le permiten su
diseminación en el espacio y en el tiempo, capaz de penetrar
al hospedante y causarle una lesión.
70. corrientes de aire, gotas de
lluvia,insectos,otros vectores,
En el espacio hombre
71. e
Germinación Tubo germinativo, apresorio, haustorio ,hifas
de penetración,etc.
Penetración activa Penetración pasiva
Localización : endoparásitos
• a nivel de flores
ectoparásitos
• en las yemas
Inoculación
• heridas Patogénesis Incubación
• estrés Infección
72. Germinación y penetración de Erysiphe graminis
Esporulación
conidios
conidióforo
micelio
haustorio
mesófilo
Kresoxim-metil:La naturaleza creó el modelo para este nuevo fungicida.
1996.BASF.27pp.
73. Stroby: El nuevo fungicida universal para el manzano.1997.BASF.21pp.
74. Germinación y penetración de Spilocaea pomi
Conidio
esporulación Germinación y penetración
crecimiento de hifa,
formación de estroma
estroma
Flint: Mesostemic power, mastered by Novartis.Technical Data.1998. 42pp.
75. Germinación y penetración de Puccinia recondita en trigo
epidermis
uredosporo
Tubo
germinativo
apresorio micelio
haustorio
mesófilo
Kresoxim-metil:La naturaleza creó el modelo para este nuevo
fungicida.
76. Germinación de Erysiphe graminis
Flint: Mesostemic power, mastered by Novartis.Technical Data.1998. 42pp.
77. Desarrollo de la enfermedad
Stroby:el fungicida naturalmente eficiente.1999.BASF. 14pp
79. Identificación y clasificación
Patógeno Ciclo biológico
Evaluación de sus fuentes de inóculo
Mejoramiento del drenaje del suelo
Adecuada distancia entre filas y plantas
Limpieza del terreno
Eliminación del rastrojo o restos de poda
80. Planta hospedante
Grado de susceptibilidad
Planta hospedante
Rango de hospedantes
fecha de siembra producción de heridas
elección del lugar control de malezas
rotaciones
variedades resistentes
81. Medio ambiente
Temperatura, luz, humedad
Sistemas de alarma
Planta hospedante: parámetros ambientales fuera del rango
óptimo
Prevenir penetración
Actuando inmediatamente luego de la penetración
82. Bibliografía consultada
Agrios, G.N. 1997. Planth pathology. Academic Press. 635pp.
Alexopoulos,C.J.;Mims,C.W.;Blackwell,M. 1996. Introductory Mycology.4th.
Ed. Wiley,New York. 868pp .
Barnett,H.L.;Hunter,B.B. 1998. Illustrated Genera o Imperfect Fungi.APS
Press. St. Paul, Minneseta. 218pp.
Bergamin Filho,A.;Kimati, H.;Amorin,L. 1995. Manual de Fitopatologia.Vol.1.
Principios e conceitos. 3a. Ed. AgroCeres. Sao Paulo, Brasil. 919pp
Galli, F. 1978. Manual de fitopatología. Ed. Agronómica Ceres .San Pablo,
Brasil., 373pp.