Practica fisiología vegetal Tema: Auxinas

1. DEPARTAMENTO DE INVESTIGACION Y ENSEÑANZA DE ZOOTECNIA
FISIOLOGIA VEGETAL
PRACTICA DE LABORATORIO # 9:
M.C. Ofelia Hernández Ordoñez
PRESENTAN: EQUIPO #1
Albores Trujillo Dalia Rubí
Astudillo Morales Brayan
De La Cruz Santiago Arturo
Domingo Gómez Cayetano
Gómez Vicente Abdiel Alonso

3.  OBJETIVOS:
 Determinar cual de las concentraciones de ANA promueven la formación
de raíces y brotes en estacas de sauce lloron.

4. INTRODUCCION:
BIOSINTESIS:
 La biosíntesis (o anabolismo) es una de las dos partes en que se divide el
metabolismo y requiere de energía. Se diferencia del catabolismo (la otra
parte del metabolismo) que no requiere energía.
 Proceso encargado de la síntesis o bioformación de moléculas orgánicas
(biomoléculas) más complejas a partir de otras más sencillas o de los
nutrientes, con requerimiento de energía (reacciones endergónicas).
(Melo, 2007).
 Las plantas usan dos rutas biosintéticas para producir IAA, una
dependiente del triptófano (Trp) y otra independiente de él.

5.  TRANSPORTE:
 El ápice de los tallos es sin duda el tejido por excelencia donde se
sintetiza IAA y de donde se puede establecer un gradiente de la hormona
hasta la base.
 El transporte polar de IAA es por medio de un mecanismo dependiente de
energía. Ocurre en forma basipétala en tallos y en raíces, aunque en éstas
últimas puede ocurrir en ambos sentidos, en forma acropétala en el
cilindro central y basipétala en la epidermis. La mayor parte de auxinas
que se produce en hojas maduras viaja al resto de la planta en forma
pasiva y apolar a través del floema. Las auxinas aplicadas exógenamente
sobre las hojas pueden penetrar en los elementos cribosos después de
ser absorbidas, pero luego se transportan al parénquima vascular (Ljung
et al. 2002).

6.  TRANSPORTE:
 Una vez en el tejido receptor, el transporte de auxinas ocurre a través de
las células en forma polar, activa, unidireccional e implicando consumo
energético. Siendo las auxinas ácidos débiles que se encuentran
generalmente protonadas en el pH relativamente bajo del apoplasto, de
acuerdo al modelo quimiosmótico, un gradiente de pH entre la pared
celular (pH ~5) y el citoplasma (pH ~7) facilitaría la entrada de la forma
reducida de IAA a través de la membrana citoplasmática (Lomax et al.
1995).

7.  EFECTOS FISIOLÓGICOS DE LAS AUXINAS
 Mientras las auxinas estimulan el crecimiento de los tallos y coleoptilos,
inhiben el crecimiento de la raíz primaria, pero estimulan la formación de
raíces secundarias. La concentración óptima para el promover elongación
de tallos es entre 10-6 y 10-5 M, sin embargo, en raíces esta
concentración es muy alta y retarda su crecimiento. Las auxinas además
promueven la biosíntesis de la hormona etileno que inhibe el crecimiento
radicular. Niveles menores a 10-9 M de IAA serían capaces de inducir
crecimiento de raíz, pero no ocurriría a niveles normales endógeno más
altos.

8.  USOS DE AUXINAS EN LA AGRICULTURA:
 Regulación de tropismos. Controlar los tropismos. curvaturas, giros o
inclinaciones.
 Dominancia apical. La distribución en gradiente de auxina desde el ápice
primario hacia la base de la planta reprime el desarrollo de brotes axilares
laterales a lo largo del tallo, manteniendo así lo que se denomina como
dominancia apical (Thimann 1977).
 Abscisión de órganos. Las auxinas tienen un efecto general negativo
sobre la abscisión de los órganos, retardando especialmente la caída de
hojas, flores y frutos jóvenes.
 Desarrollo de flores y frutos. La aplicación de auxina en forma exógena
induce el desarrollo floral en varias especies. Asimismo, auxina contribuye
con el crecimiento normal de frutos.
 Diferenciación vascular. Las auxinas controlan la división celular en el
cambium donde ocurre la diferenciación de las células que darán origen a
los elementos de floema y xilema.

11.  MATERIALES Y METODOS:
 ANA 5,10,20 y 30 mg/L
 Estacas de sauce
 Vaso de precipitado
 Navaja
 A) se proporcionaran estacas de sauce
 B) se usaran 5 estacas por concentración de ANA y un testigo
 C)inmediatamente después se ponen en contacto con las diferentes
concentraciones en 10mL de solución.
 D) el tiempo de inmersión es de 24 horas.
 E)retirar la solución de ANA o agregar agua suficiente para mantener vivas
las estacas por un periodo de 10-15 días.
 F)la observación del número y longitud de las raíces se hará a los 15 días
después de iniciada la práctica.

12. Materiales
Dominancia apical
 Plántulas
 AIA 1 g/l en lanolina
Actividad de Herbicidas
 6 macetas
 Plantas de maíz, frijol y varias malezas
 50,500 y1000 ppm de herbicidas
 Aspersores manuales

13. Enraizamiento de estacas
 Se harán 6 estacas de 10 cm de longitud.
 Se usarán 5 estacas para concentración de ANA y testigo.
 Inmediatamente después se ponen en contacto con las diferentes
concentraciones en 10 ml de solución.
 El tiempo de inmersión dependerá de la capacidad de absorción de las
estacas.
 Una vez absorbidos los 10 ml de solución, agregar agua suficiente para
mantener vivas las estacas por un periodo de 10 a 15 días.
 La observación del número y longitud de las raíces se hará a los 15 días
después de iniciada la práctica.

14. Actividad de herbicidas
 Rotule cada maceta con el tratamiento correspondiente (equipo, grupo,
especialidad).
1.- testigo 2.- 50 ppm 3.-
500 ppm 4.-1000 ppm
 Cuando as plantas alcancen de 15 a 20 cm de altura, aplique por
aspersión solución de 2, 4 – D a cada tratamiento.
 Deberá estar al pendiente de su material y regar según sea necesario.
 Hacer observaciones de quemaduras, marchitamiento y deformaciones
después de 24 horas y al cabo de 2 a 5 días.

15. Dominancia apical
 Se requieren plántulas de frijol con la primera hoja trifoliada totalmente
expandida o con un desarrollo similar al chícharo. Retire el ápice de dos
plantas y aplique lanolina con y sin AIA. Deje una tercera planta como
testigo sin cortar el ápice. Permita que se desarrollen las plantas y al cabo
de un tiempo verifique el tamaño de las yemas laterales.

16.  BIBLIOGRAFIA:
 Garay, A., de la Paz, M., García, B., Álvarez, E. & Gutiérrez, C.. (2014). LA
HOMEOSTASIS DE LAS AUXINAS Y SU IMPORTANCIA EN EL
DESARROLLO DE ARABIDOPSIS THALIANA*. Abril 22, 2017, de Centro
de Biología Molecular Severo Ochoa Sitio web:
http://www.scielo.org.mx/pdf/reb/v33nla3.pdf
 Lucas, E.. (2003). Auxinas. Recatado abril 23, 2017, de RevistaCiencias
Sitio web:
http://www.revistaciencias.com/publicaciones/EpyyluEZElUZVjSbQL.php
 Melo Ruiz Virginia, Oscar Cuamatzi. (2007). Bioquímica de los procesos
metabólicos. 2017, de Editorial Reverte S. A., Sitio web:
http://www.salud180.com/salud-z/biosintesis.