Ecografia en bovinos y otras especies evaluacion seminal
1. Universidad Nacional de Loja.
Facultad de la Agricultura y de Recursos Naturales Renovables.
Carrera de Medicina Veterinaria y Zootecnia.
Materia de Biotecnologías de la Reproducción.
TEMA: ECOGRAFIA Y EVALUACION SEMINAL.
POR: JONATHAN VASQUEZ LEON.
Docente: Dr. Manuel Quezada Padilla.
2. • La ecografía permite comprender y
evaluar la dinámica folicular.
• Valorar el estado uterino.
• Monitorizar el desarrollo embrionario-
fetal.
• Tiene una clara ventaja sobre la
palpación rectal.
• Inocua tanto para el animal como
para el operador.
Diagnostico diferencial de un quiste ovárico y uno folicular, diagnostico de preñez precoz.
Detección de viabilidad del embrión. Determinación del sexo fetal. Son algunos de las patologías
que podemos diagnosticar con ayuda del Ecógrafo.
3. Fundamentos básicos.
La máquina de ultrasonidos o ecógrafo utilizan ondas de sonido de alta frecuencia, cuya magnitud de medida es el
megahertz (MHz), para producir imágenes de órganos internos y de tejidos blandos.
• Ultrasonido.
• Onda sonora
• Onda
• Frecuencia
• Longitud de onda.
• Velocidad.
Según la composición de la imagen que se
obtenga con el ecógrafo se podrán distinguir
tres patrones ecográficos:
Hiperecogénico o hiperecoico
Hipoecogénico o hipoecoico
Anecogénicos
4. • Un transductor o sonda emite
ondas que se reflejan de vuelta al
transductor, son enviadas a través
de la sonda del ecógrafo en donde
son analizadas y convertidas en
una imagen en una escala de
grises
T. Sensorial.
T. Convexo.
T. Lineal
La elección del equipo debe estar basada en
las aplicaciones previstas, por ejemplo en el
ganado vacuno para un trabajo de campo
rutinario sería de elección un ecógrafo
portátil con batería recargable, liviano y de
poco tamaño.
La sonda idónea es la transrectal debido a
su diseño estanco al agua y porque se
puede emplear tanto por vía transrectal
externa por lo que es más versátil,
5. Cuidado y manejo.
• En primer lugar el equipo debe
estar apagado para realizar las
conexiones o cuando se quiera
cambiar un transductor.
• Cuando se realizan estudios
transrectales, es recomendable
proteger la sonda con un guante,
como lo que se usan para
palpación rectal, aplicar el gel
sobre la zona de los cristales.
Al terminar el equipo debe ser limpiado con
un trapo limpio y húmedo y solo se puede
lavar con agua la sonda desde el transductor
hasta el control remoto.
6. Aplicaciones dentro de la reproducción.
Su aplicación ha venido a confirmar o desmentir las apreciaciones hechas con el tacto rectal, se ha sumado al
subjetivo del sentido del tacto, el más objetivo sentido de la vista para conseguir un diagnostico mas certero.
Diagnostico de patologias del aparato
reproductor
Estudio de la viabilidad embrionaria
Estudio de ovario y útero durante el
ciclo estral y gestación
Diagnóstico precoz de la gestación
Determinacion Precoz del sexo fetal
Guía para punción y aspiración
folicular y colecta de ovocitos
Evaluación Ginecológica de donantes
y receptoras de embriones Determinación del inicio de la
superovulación de donantes
Estimación de la respuesta
Superovulatoria
Estudio del momento de aplicación de agentes
luteoliticos para sincronizar celo
Determinación de tasa de ovulación
para el servicio
Determinación de anormalidades
fetales en el bovino
7. Ventajas y desventajas.
Maximiza la efectividad
de los tratamientos,
especialmente los de
sincronización de celos
Es sencilla y no
invasiva, es decir que
en la mayoría de los
casos no sea necesaria
la sedación del animal
Se pueden diagnosticar
alteraciones
patológicas, observar
folículos y cuerpos
lúteos
Proporciona imágenes
en movimiento de las
estructuras, pudiendo
diferenciar distintos
tipos de tejidos
Es una técnica segura
para el animal como
para los operarios que
la utilizan.
La inversión económica es
costosa
Coste de mantenimiento del
equipo, ya que requiere de
un servicio de
mantenimiento específico
Utilizando algunas de forma
inadecuada podemos perder
información diagnóstica, lo
que conlleva a un posible
problema
El usuario requiere de un
entrenamiento para operar
el equipo e interpretar la
imagen geográfica.
8. Ecografía transrectal en bovinos y otras especies.
• A diferencia de la yegua, el examen transrectal
en vacas es más difícil por la anatomía
topográfica de los órganos genitales, lo que crea
un estrecho contacto entre el transductor y las
partes del tracto genital.
• Utilizado para la evaluación reproductiva de la
yegua, así como parte integral de la
evaluación ultrasonográfica. Si durante la
palpación transrectal, la mano del operador es
forzada a salir por respuesta a los
movimientos peristálticos del recto de la
yegua, se debe esperar unos segundos y no
poner resistencia.
• La ecografía reproductiva transrectal en los
pequeños rumiantes (ovejas y cabras) sólo
es posible mediante un vástago o
adaptador rígido para el transductor
(penetration device), mientras que en las
cerdas puede utilizarse el mismo vástago o
también puede hacerse por manipulación
transrectal.
9. Evaluación del semen.
Permite predecir la fertilidad y capacidad fecundante del futuro semental y evaluar el semen durante los procesos de criopreservación, el análisis
de rutina es basado en la evaluación macroscópica-física del eyaculado, y en la evaluación por microscopía de los espermatozoides
Parámetros Macroscópicos Descripción.
Volumen Aportado por las vesículas seminales y glándulas prostáticas, con un pequeño aporte de las glándulas bulbouretrales y el
epidídimo. Es esencial para obtener el número total de espermatozoides y células no espermáticas en el eyaculado. Se expresa
en (ml) y su lectura se hace por medio de un tubo colector
Color Depende del contenido de riboflavina, siendo normalmente desde blanquecino marfil hasta amarillento. Una coloración
rojiza, indica la mezcla con sangre fresca; si el color es pardo, indica la presencia de sangre más vieja.
Olor Las muestras de semen recolectadas higiénicamente, de toros sanos y fértiles, tienen un débil olor sui géneris
Aspecto Se relaciona directamente con el volumen de eyaculado y del número de espermatozoides/mm3, por lo que frente a grandes
volúmenes podrá presentar un aspecto menos opaco o viceversa. Normalmente el semen tiene aspecto opalescente y opaco
Concentracion El rango varía de 150 a 300 x 10 6 /ml, con una concentración total de 1 – 20 billones de espermatozoides en cada
eyaculado.
Vitalidad Mide el número de espermatozoides vivos y se expresa como el porcentaje de células muertas. Para medir la vitalidad de una
muestra de semen, se utilizan colorantes vitales, tales como el colorante eosina-nigrosina
pH Se evalúa extrayendo una gota de semen del tubo y colocándola sobre una tira indicadora de pH. Se considera un pH normal,
entre 6,8 - 7
10. Evaluación seminal.
Parametros
microscópicos.
Descripción
Morfologia Se colocan 30 ul de semen diluido sobre un portaobjetos y se lo tiñe con
una solución de Giemsa. Se deja incubar por 4 horas cn el colorante. Se
visualizan los espermatozoides de color violáceo y en caso de tener su
acrosoma tienen color violáceo intenso. Tambien se evalua por medio de
contraste.
Motilidad Se coloca una gota de semen en portaobjetos atemperado. La escala que
se toma es de 1 a 5 evaluando como 1 al semen que no presenta ondas y
5 cuando las ondas se mueven rápidamente formando remolinos.
Vigor Se tiene en cuenta la velocidad con la que estos espermatozoides
atraviesan el campo. La escala que se utiliza es de 0 a 4 evaluando como
0 los espermatozoides inmóviles y como 4 los que avanzan rápidamente
por e campo.
11. Congelación y descongelacion del semen.
• El semen se ve afectado de manera
importante por la velocidad de
descongelación primordialmente en la
sobrevivencia de los espermios que
han sido sometidos a congelación,
esta velocidad de descongelación
depende del tamaño y forma del
recipiente en que se envasó el semen,
de su composición, del medio de
descongelación, de la temperatura
utilizada y del tiempo que se
mantenga a dicha temperatura
• El semen que ha sido
previamente diluido debe
atravesar un periodo de
equilibrio a 4°C, por
aproximadamente 2-4 horas.
Después de la dilución se
sigue con la identificación,
llenado y sellado de las
pajuelas, a temperatura
ambiente o a 4°C, de modo
manual o computarizado