Exposición sobre la transferencia de embriones en bovinos

1. TRANSFERENCIA DE
EMBRIONES EN
BOVINOS
LEONARDO
MARTINEZ
NOVENO A
MVZ
2020

2. CONCEPTO
• Es una técnica que consiste en recoger los embriones de una hembra donante
y transferirlos al útero de unas hembras receptoras, en las que se completara
la gestación.

3. SELECCIÓN DE DONANTES
• Se realiza con base en las características genotípicas que expresen el mejor
fenotipo de las hembras en un ambiente determinado

4. CRITERIOS DE SELECCIÓN DE
DONADORAS
• Estado sanitario de la donante y la explotación.
• Características genéticas de importancia económica.
• Ciclos estrales regulares.
• Sin problemas patológicos, en especial las patologías reproductivas y
las asociadas al postparto.
• Sin enfermedades de trasmisión genética
• Entre 3 y 10 años de edad, dependiendo de la raza y tipo de explotación.

5. SELECCIÓN DE RECEPTORAS
La receptora es el complemento fundamental y determinante para el éxito del
programa de transferencia embrionario.
Características de la receptora ideal
• Si es cruzada, que tenga menos del 75% de encaste cebuino, y que posea
cruza con línea lechera, temperamento tranquilo y evidente amplitud pélvica.
• Talla media a grande.
• Que haya parido sin dificultad y destetado la cría de buen tamaño y peso.
• Joven y libre de enfermedades infectocontagiosas (Arriaga, 2010).

6. SUPEROVULACIÓN DE LA DONADORA
La superovulación consiste en la estimulación hormonal de la donante para la
formación y desarrollo de varios folículos y su ovulación en ambos ovarios en
un momento previamente fijado.

7. Factores que influyen en la
superovulación
• RAZA

8. EDAD

9. CATEGORÍA
NOVILLAS VACAS

10. ESTADO NUTRICIONALY CONDICION
CORPORAL

11. ESTACIONALIDAD

12. TRATAMIENTO DE SUPEROVULACIÓN
CON FSH
Y PGF

13. DONANTEY RECEPTORA

14. COLECCIÓN DE EMBRIONES
• Sonda para catéter
• Catéter de silicona
• Filtro de colección de embriones
• Dilatador cervical
• Líquido de colección (medio)
• Una llave de dos o tres vías
• Jeringa de embriones

15. RECOLECCIÓN DE EMBRIONES
• METODO QUIRURJICO
• METODO NO QUIRURJICO
• METODO CIRCUITO CERRADO
• METODO CIRCUITO ABIERTO

16. CIRCUITOCERRADO
La recolección en
circuito cerrado se
puede practicar con
catéteres de tres vías
que permiten un flujo
continuo, o con
catéteres de dos vías,
que requieren un flujo
discontinuo.

17. CIRCUITOABIERTO
Se deben practicar
alrededor de 15 o 20
lavados. Esta forma de
recolección no requiere
utilizar válvulas ni
uniones en el catéter

18. BUSQUEDA IDENTIFICACIÓNY
CLASIFICACION DE EMBRIONES

19. BUSQUEDA
• Es necesario dejar reposar al medio utilizado en el lavado uterino en un
embudo separador, durante 35 min como mínimo, para que los embriones
vayan al fondo.
• Separamos mediante sifonaje con un tubito de silicón estéril, del medio
depositado en el embudo separador, hasta dejar los últimos 50 ml.

20. • El remanente que dejamos en el embudo separador lo movemos suavemente
y lo aspiramos dentro de una jeringuilla mediante una pipeta de infusión
uterina y lo depositamos en una placa de Petri (100 x 15 mm).
• La placa con el medio se debe observar en un microscopio esteroscópico en
cuya base se pueda colocar una rejilla con cuadrículas del tamaño de un
campo de microscopio.

21. • Los embriones a medida que son localizados se extraen con un catéter
plástico calibre 20 unido a una jeringuilla de 1 mL y depositados en una
pequeña placa de Petri (35 x 15 mm) conteniendo medio de cultivo.

22. IDENTIFICACIÓN DE LOS EMBRIONES
• Los embriones se identifican de acuerdo al desarrollo morfológico, por
ejemplo de 8 células, 16 células por lo que reciben diferentes nombres
• Mórula, mórula compacta, Blastocisto temprano, blastocisto, blastocisto
expandido, blastocisto eclosionado

23. CLASIFICACIÓN DE LOS EMBRIONES
• Forma del embrión.
• Color y textura de la masa celular.
• Número y compactación de los blastómeros.
• Diferencia de tamaño entre los blastómeros.
• Tamaño del espacio perivitelino.
• Presencia de blastómeros sueltos, degenerados o detritus celulares.
• Presencia, número y tamaño de vesículas(indican degeneración).
• Apariencia de la zona pelúcida.(fracturas etc.).

24. De acuerdo a las pautas anteriores se
clasifican en:
1.Excelente: embrión ideal. esferico, simetrico, con celulas de color tamaño y
forma ideal.
2.Bueno: pequeñas imperfecciones como algunos blastómeros sueltos, tamaño
irregular o algunas vesículas.
3.Regular: problemas más definidos, incluyendo presencia de blastómeros
sueltos, vesiculaciones o algunas células degeneradas
4.Malo: problemas severos. numerosos blastómeros sueltos, células
degeneradas, células de distinto tamaño, numerosas vesículas

26. CONGELACIÓN METODOTRADICIONAL
• Los crioprotectores (CP) utilizados en estos métodos son normalmente
permeables, los más frecuentemente utilizados son: glicerol y etilenglicol
• Un protocolo típico de descongelación incluye mantener las pajuelas durante
5 a 10 segundos en el aire (lo que evita que se rompa la zona pelúcida) y
luego sumergirlas en agua a 25-37ºC hasta que el hielo este completamente
derretido en aproximadamente 30 segundos.

27. VENTAJAS
• Transporte de razas con facilidad.
• Permite que una hembra en particular produzca muchas crías en un año.
• Mejoramiento genético, cada una de estas crías tiene la gran posibilidad de
llevar los rasgos superiores de la madre, tales como la capacidad de
aumentar de peso, tamaño e incluso de producir más leche.
• Control de enfermedades
• Creación de bancos de gametos provenientes de animales seleccionados
por excelencia productiva y/o adaptabilidad.
• Determinación y selección del sexo de embriones

28. DESVENTAJAS
• Bajo rendimiento, el porcentaje de ovocitos capaces de transformarse en
embriones transferibles se encuentra estancado entre el 30 y 40%.
• Existe una escasa resistencia a la criopreservación, dificultando su conservación
a largo plazo.
• Complejidad tanto del método como del material empleado en la T. E. requieren
una meticulosidad y pulcritud por parte del personal.
• Tiene un elevado precio tanto por el material empleado como por el personal
técnico que la debe efectuar (Peláez, 2011).
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