Métodos de desinfección o.i.e

CAPÍTULO 1.1.5.

MÉTODOS PARA LA DESINFECCIÓN DE LOS
ESTABLECIMIENTOS DE ACUICULTURA

A. MÉTODOS PARA LA DESINFECCIÓN DE PISCIFACTORÍAS

1. PRINCIPIOS GENERALES
La elección de los procedimientos de desinfección depende del tamaño, el tipo y la naturaleza de los
materiales y sitios que hay que desinfectar. Con la excepción de la piel del personal y los huevos, que se
deben desinfectar con productos no corrosivos, las superficies a desinfectar constan de tejidos o
materiales entretejidos (vestidos, redes), superficies duras (plástico, cemento) o materiales permeables
(tierra, grava). La desinfección es más difícil en el caso de las superficies permeables y requiere más
tiempo. En el cuadro 1 se indican los ingredientes más comunes y los métodos a utilizar en función de
esos criterios.

El uso de productos químicos conlleva la implementación de medidas para proteger al personal y a los
animales de cultivo y mitigar los efectos medioambientales. En primer lugar, es necesario proteger la
piel y los ojos del contacto con sustancias peligrosas utilizando vestimenta impermeable, botas,
protección ocular y un sombrero. El aparato respiratorio debe protegerse con una máscara y el
operador no debe tocar alimento alguno sin haberse lavado a conciencia las manos. Finalmente, los
productos deben almacenarse de forma que no represente ningún peligro directo o indirecto para la
vida del animal/pez o para la vida humana o el medioambiente.

El material debe limpiarse a fondo antes de su desinfección. El material orgánico generado/eliminado
durante el proceso de limpieza, como el fango de un estanque, etc., debe eliminarse de una forma
adecuada que impida la propagación de enfermedades por dicho material y de forma segura para el
medio ambiente..

Lo ideal es que se establezcan procedimientos regulados para el uso de desinfectantes en acuicultura.
Un esquema para la aprobación debe tomar en consideración el efecto de la desinfección contra los
patógenos diana, así como las propiedades toxicológicas y eco-toxicológicas de los productos.

Después de la desinfección o eliminación, el criadero debe reabastecerse de fuentes libres de la
enfermedad

Cuadro 1. Desinfección y método de uso

Procesos Indicaciones Método de uso * Comentarios
Físicos
Desecación, luz Patógenos de los peces Secar durante 3 meses a una El período de secado puede
solar en el fango de los fondos temperatura media de 18°C reducirse mediante el uso de un
desinfectante químico
Calor seco Patógenos de los peces Lanzallamas,
sobre superficies de soplete
cemento, piedra, hierro,
cerámica
Calor húmedo Patógenos de los peces Vapor a 100°C o más durante e 5
en las cisternas de los minutos
vehículos de transporte

Manual de pruebas de diagnóstico para los animales acuáticos 2006 54

Capítulo 1.1.5. — Métodos para la desinfección de los establecimientos de acuicultura

Cuadro 1 (continuación). Desinfección y método de uso

Rayos ultravioleta Virus y bacterias 10 mJ/cm2 Dosis letal mínima
UV-C (254 nm)
Físicos
Rayos ultravioleta Necrosis pancreática 125−200 mJ/cm2
UV-C (254 nm) infecciosa (NPI) y
nodavirus (VNN/VER8)
en el agua
Químicos
Ácido acético Anemia infecciosa del 0.04–0.13%
salmón (AIS)
Amonios Virus, bacterias, manos, 0.1–1 g/litro durante Resistente al virus de la NPI
cuaternarios superficies de plástico 1–15 minutos
Cala Patógenos de los peces 0,5 kg/m2 durante 4 semanas Reemplazar en estanques con
sobre base de tierra seca agua o vacíos desinfectados
manteniendo los afluentes a pH
<8,5
Hipoclorito Bacterias y virus sobre 30 mg disponibles de cloro/litre. Puede neutralizarse con
cálcicoa cualquier superficie Dejar que inactive durante varios tiosulfato sódico.
limpia y en el agua días, o neutralizar con tiosulfato Ver las recomendaciones
Na después de 3 horas especiales
Cianamida de Esporas en fondos de 3000 kg/ha sobre superficies
calcioa barro secas; dejar en contacto durante
1 mes
Cloramina T Destruye la AIS 1% durante 5 minutos
Cloramina T Destruye la NPI 1% durante 30 minutos
Dióxido de cloro AIS 100 ppm durante 5 minutos En agua de baja carga orgánica
Ácido fórmico Ensila los restos de peces pH <4 después de al menos Destruye los patógenos
24 horas bacteriales de los peces y la
AIS, pero no la NPI
Formalina Patógenos de los peces Liberado desde sustancias Resistente a los Nodavirus
en instalaciones formogénicas, generalmente
precintadas trieximetileno. Seguir las
instrucciones
Peróxido de Virus de la AIS 0.02–0.06%
hidrógeno
Yodo (yodóforos) Bacterias y virus en redes, 200 mg de yodo/litro durante Ver recomendaciones
botas y vestimenta unos segundos especiales
Yodo (yodóforos) Manos superficies lisas >200 mg de yodo/litro unos
pocos segundos
Ozono Esterilización del agua, 0.2−1 mg/litro durante Costoso y muy tóxico para
patógenos de los peces 3 minutos peces y humanos
Ozone en agua de Superficies, equipos 0.5–1 mg/litro de TRO9 durante
mar 30–60 minutos
Compuestos de Virus de la NPI 1% durante 1 minuto
peróxido, v.g.
Virkon
Ácido peracético Virus de la AIS 0.08–0.25%
Hidróxido de Patógenos de los peces Mezcla: El desinfectante más activo
sodioa sobre superficies Hidróxido de sodio, 100 g Ca(OH)2 mancha las superficies
resistentes con grietas Teepol®, 10 g tratadas; Teepol® es un agente
Hidróxido de calcio, 500 g tensioactivo.
Agua, 10 litros
Spray, 1 litro/10 m2
Dejar durante 48 horas

8 Necrosis nerviosa vírica /Encefalopatía y retinopatía víricas
9 TRO: Oxidante residual total



Cuadro 1 (continuación). Desinfección y método de uso

Químicos
Hipoclorito Bacterias y virus sobre 30 mg de cloro/litro disponible.
sódicoa cualquier superficie Dejar que inactive durante unos
limpia y en el agua pocos días o neutralizar con
tiosulfato Na después de 3 horas
Hipoclorito Redes, botas y vestimenta De 200 mg a 1 g de cloro/litre
sódicoa disponible durante varios
minutos. Dejar que inactive unos
pocos días o neutralizar con
tiosulfato Na después de 3 horas
Hipoclorito Manos Lavar con agua limpia o
sódicoa neutralizar con tiosulfato

a Peligroso − Véanse las precauciones indicadas en las recomendaciones generales
* Las concentraciones indicadas son las de la sustancia activa. NB: Los productos químicos deben ser aprobados
para el uso prescrito de acuerdo con las especificaciones del fabricante.

2. NEUTRALIZACIÓN DE HALÓGENOS

El cloro y el yodo son muy tóxicos para los animales acuáticos y, a fin de evitar accidentes graves
debido a una manipulación errónea, se recomienda neutralizar estos productos con tiosulfato de sodio
– cinco moles de tiosulfato neutralizan cuatro moles de cloro. Las proporciones moleculares son las
mismas para el yodo.

Por lo tanto, para inactivar el cloro, la cantidad de tiosulfato usada debe ser 2.85 veces la cantidad de
cloro (expresada en gramos):

Número de gramos de tiosulfato = 2.85 × número de gramos de cloro.

Para el yodo, la cantidad de tiosulfato debe ser 0.78 veces la cantidad de yodo expresada en gramos:

Número de gramos de tiosulfato = 0.78 × número de gramos de yodo.

También es posible preparar una solución de tiosulfato al 1% por peso, en cuyo caso los volúmenes
son los siguientes (en ml):

1. para el cloro:

28.5 × [número de litros de la solución desinfectante × concentración de mg/litro] / 100

2. para el yodo:

Hay que multiplicar por 7.8 en vez de por 28.5.

B. MÉTODOS PARA LA DESINFECCIÓN DE CRIADEROS DE MOLUSCOS

1. PRINCIPIO GENERALES

Los principios generales relativos a la desinfección de los criaderos de moluscos (criaderos,
instalaciones) conllevan la aplicación de tratamientos químicos en concentraciones suficientes, y
durante periodos suficientes, para matar todos los organismos patógenos que, en caso contrario
podrían acceder a los sistemas de agua que los rodean. Como la toxicidad propia de los desinfectantes
impide un uso seguro en aguas abiertas o en sistemas de agua abiertos, la desinfección sólo se puede
aplicar de forma razonable a los criaderos y a las instalaciones donde se encuentran los tanques, y,

56 Manual de pruebas de diagnóstico para los animales acuáticos 2006


como norma, deben neutralizarse todos los desinfectantes antes de su vertido en el medio ambiental
que las rodea. Además, como los criaderos de moluscos están ubicados en agua marina, también deben
eliminarse con cuidado los compuestos que se forman durante la desinfección del agua marina
(oxidantes residuales).

Se considera que no es práctica la desinfección de los huevos y fases larvarias para la mayoría de los
sistemas de moluscos. Además hay poca información sobre procedimientos específicos de desinfección
para los patógenos de los moluscos (i.e. Marteilia spp., Haplosporidium spp., Bonamia spp., Perkinsus
spp., iridovirus y niveles patógenos de los microbios marinos) o el agua marina. Por tanto, los
desinfectantes y las concentraciones dependen de los patógenos de que se trate y de la esterilización del
agua marina. Pueden considerarse tres fases en la desinfección de los criaderos:

a) pre-tratamiento del agua entrante, v.g. filtros (1,0 y 0,22 µm) o desinfección química (véase la
sección B.2.) = protección de las existencias de moluscos;

b) tratamiento dentro de las instalaciones (especialmente los sistemas de reciclado) = protección de
las existencias de moluscos;

c) tratamiento del agua entrante = protección del entorno.

2. DESINFECTANTES* − TUBERÍAS Y TANQUES

Se recomienda encarecidamente la desinfección de las tuberías y los tanques; la frecuencia de la
desinfección variará de acuerdo con el volumen de producción de existencias de moluscos. Las
concentraciones grandes de moluscos deberían ser sometidas a rotación entre tanques desinfectados
tan a menudo como resulte práctico, y/o mantenerse en agua marina que haya sido desinfectada con
ozono (véase la sección B.3.a) o con cloro (véase la sección B.3.b) y, a continuación, neutralizada.
Debería colocarse en tanques previamente desinfectados cada nuevo lote de moluscos introducido en
la instalación.

Puesto que la presencia de materia orgánica reducirá el poder de desinfección de la mayoría de los
desinfectantes, se recomienda el filtrado del agua entrante (véase la sección B.1.a). Además, deben
limpiarse concienzudamente todas las superficies antes de la desinfección. El detergente utilizado debe
ser compatible con el desinfectante y uno y otro deben ser compatibles con la superficie tratada (v.g.
las soluciones yodóforas son, por lo común, acídicas, por lo que no se pueden utilizar con sobre el
cemento, que es alcalino). Debe asegurarse que los desechos resultantes del lavado son desinfectados
antes de su eliminación. Es preciso cubrir por completo las superficies, v.g., usando un aspersor o
empapador de de alta presión. Se ha de llevar ropa protectora adecuada mientras se trabaja con
cualquier desinfectante (véase la sección A.1).

También se recomienda el secado (diario) al aire o el secado con calor de las tuberías, tanques y otro
equipamiento (v.g. bombonas para el cultivo de algas), además de la desinfección de todas sus
superficies, (especialmente en los casos de brotes de enfermedades de etiología desconocida).

a) El cloro normalmente se aplica como hipoclorito sódico (Chlorox®, la lejía casera, etc.). Se llenan
todas las tuberías con 50 mg de cloro/litro (= 50 partes por millón [ppm]). Se deja expuesto un
tiempo de al menos 30 minutos antes de aclarar con agua marina limpia. Esa solución es efectiva
contra la mayoría de los agentes microbianos y los protozoos labirintúlidos. El agua marina
clorada debe neutralizarse antes de antes de liberarla desde la instalación en que se encuentra. Se
consigue una neutralización óptima filtrándola con carbón vegetal activo (elimina el exceso de
cloro y cloraminas). También pueden usarse agentes reductores como el tiosulfato de sodio o la
aireación (que no eliminan las cloraminas tóxicas).

* Está comprobado que los productos especificados son satisfactorios para los fines indicados; eso no implica que otros
productos no puedan ser igualmente satisfactorios.



b) Los yodóforos se aplican, por lo general, como soluciones alcalinas (Wescodyne®, Betadine®) a
200–250 mg de yodo/litro (ppm) con un tiempo de contacto de al menos 10 minutos.

NOTA: Los yodóforos no son efectivos contra ciertos protozoos en suspensión, v.g. más de 1000 mg
de yodo/litro es tolerado por Labyrinthuloides haliotidis del abulón. Los yodóforos pueden ser efectivos
contra los parásitos protozoos tras un secado al aire o con calor de las superficies de los tanques y de
las tuberías.

3. DESINFECTANTES − AGUA EFLUENTE

a) Se ha usado con éxito el ozono para el control del contenido microbiano del agua efluente de las
instalaciones de cuarentena.. Los componentes residuales, que se forman como resultado de la
interacción del ozono con el agua marina (oxidantes residuales), a niveles de 0,08–1,0 mg/litro se
consideran suficientes para reducir de forma significativa los microbios vivos (sobre todo
bacterias).

NOTA: La existencia de una cantidad de ozono residual en agua marina es problemática debido a
la formación rápida y continua de productos oxidantes en el agua marina. Los residuos formados
por el ozono y el agua marina (hipobromito, bromina o ácido hipobromoso) son tóxicos para las
larvas de la ostra (y posiblemente para las larvas de otros moluscos) y deberían eliminarse
utilizando un filtro de carbón vegetal antes de circular a través/fuera de la instalación de
moluscos. Para lograr una esterilización completa, , v.g. para cuarentena, puede que se necesite un
tratamiento del agua marina con UV tras la ozonización.

b) El cloro administrado como hipoclorito sódico a una concentración de 25 mg de cloro/litro es
efectivo contra ciertos protozoos (L. haliotidis); sin embargo, se recomiendan 50 mg de cloro/litro
para la esterilización microbiana completa (como en el caso de las tuberías y tanques – véase
sección B.2.a). Se pueden usar concentraciones más altas bajo ciertas condiciones (v.g. la
cuarentena); sin embargo, dichas concentraciones requieren un tratamiento de neutralización
proporcionalmente mayor y sistemas de escape para humos tóxicos que se producen.

c) Los yodóforos no son tan efectivos para eliminar los protozoos como los dos tratamientos
mencionados anteriormente.

4. DESINFECTANTES − VESTIMENTA Y EQUIPO

Se limpian las superficies con detergente y desinfectantes antes de la desinfección propiamente dicha.

a) Se pueden usar yodóforos (v.g. Wescodyne®, Betadine®) a 200–250 mg de yodo/litro para un
pediluvio. NOTA: Los yodóforos tiñen la ropa.

b) El cloro (solución de lejía casera con 50 mg de cloro/litro) también es efectivo para pediluvios o
para el lavado del equipo.

c) El hidróxido de sodio (1% de NaOH + 0,1% de Teepol® u potro detergente) proporciona un
pediluvio efectivo para las botas de goma. NOTA: No usar con calzado/botas de calle.

5. RECOMENDACIONES ESPECIALES

a) El cloro y el ozono producen compuestos oxidantes residuales de larga permanencia en el agua
marina. El agua marina con una salinidad 35 partes por mil (ppt) contiene 60 ppm de iones de
bromuro, que produce hipobromito en presencia de ozono. El agua marina artificial desinfectada,
a la misma salinidad, produce bromina y ácido hipobromoso. Como estos y otros compuestos
residuales son tóxicos para las ostras en fase larvaria (y posiblemente también para otros
moluscos), debe pasarse el agua marina por un filtro de carbón vegetal antes de usarse con larvas
de moluscos vivas.



Los protocolos alternativos para la neutralización de halógenos incluyen el tratamiento con
tiosulfato de sodio o potasio (véase la sección A.2).

b) Deben controlarse periódicamente los oxidantes residuales, especialmente en los lugares en los
que hay fluctuación de la temperatura. Como no se puede medir con precisión el ozono residual
del agua marina, deben establecerse protocolos de control alternativos, como un bucle de
realimentación.

Debe haber sistemas de escape de humos para eliminar los humos tóxicos (producidos durante la
desinfección) de áreas de trabajo cerradas. Para la eliminación de los humos tóxicos debe
cumplirse la normativa local relativa a la atmósfera.

c) Pueden utilizarse las siguientes prácticas de manejo para la reducción de la proliferación de
patógenos oportunistas dentro de un criadero de moluscos o de una instalación de
mantenimiento:

i) se han de mantener existencias de algas y cultivos libres de patógenos;

ii) se utiliza un filtrado de agua adecuado, desinfección regular de los tanques, tuberías y equipo,
baños de pies y cambios de agua;

iii) se aíslan las existencias infectadas y el equipo asociado al primer indicio de enfermedad;

iv) se elimina la existencia infectada y se esteriliza el equipo;

v) se identifica la fuente de infección en la instalación de mantenimiento para evitar infecciones
adicionales (existencias de algas, sistema de agua entrante, reproductores, existencia de
larvas).

C. MÉTODOS DE DESINFECCIÓN PARA CRIADEROS DE CRUSTÁCEOS

1. PRINCIPIOS GENERALES

La elección del método de desinfección a utilizar en un criadero de crustáceos depende de muchos
factores, entre los que se encuentran: la razón o razones de la desinfección, tanto si se trata de una
instalación con reproductores, o criadero de engorde; y también depende del tipo de criadero de
engorde. Puesto que los camarones peneidos son hospedadores de todas las enfermedades de los
crustáceos excepto una actualmente incluida en la lista del Código de animales acuáticos, en la presente
sección, se ocupará del camarón peneido.

2. RAZÓN/RAZONES DE LA DESINFECCIÓN

La desinfección es una herramienta común en el manejo de las enfermedades en la producción de
camarones. Puede usarse como práctica rutinaria en programas de bioseguridad diseñados para excluir
enfermedades específicas, así como una medida sanitaria rutinaria empleada para reducir la incidencia
dentro de los criaderos, o puede utilizarse como parte de los esfuerzos para la erradicación de
enfermedades. El motivo específico de la desinfección será determinante en la estrategia de
desinfección utilizada y la forma en que ésta se aplica.

3. OCURRENCIA DE ENFERMEDADES DE LA LISTA OFICIAL

Cuando una enfermedad de la lista de la OIE, o una enfermedad emergente de importancia que no
figura en esa lista ocurre por primera vez en un criadero concreto (i.e. en una instalación de
cuarentena), o dentro de una región o país que se cree que previamente han estado libres de esa
enfermedad, puede ser aconsejable, o incluso necesario, erradicar la enfermedad despoblando la



instalación y llevando a cabo una desinfección concienzuda de toda o de parte de la instalación. En
algunas situaciones puede ser necesario dejar inactiva una instalación durante un periodo definido de
tiempo (véase el capítulo 1.7.1, Directrices para el cultivo rotatorio en acuicultura en el Código de animales
acuáticos).

4. PREVENCIÓN DE LA EXTENSIÓN DE LA ENFERMEDAD A POBLACIONES SILVESTRES

El vertido directo de poblaciones enfermas de camarones vivos (en cualquier fase de vida; i.e. huevos
fertilizados o sin fertilizar, larvas, postlarvas, juveniles o adultos) o productos de desecho provenientes
de los mismos (i.e. desechos de la planta procesadora tales como conchas, trozos de camarones rotos,
etc.) en aguas receptoras (i.e. arroyos, ríos, estuarios, bahías, áreas del litoral) constituye una práctica
peligrosa que facilita la propagación de la enfermedad desde las poblaciones de cultivo a las existencias
de crustáceos silvestres o a los criaderos cercanos en los que se usa el mismo suministro de agua, y eso
no debería permitirse. Con existencias de cultivo, cuando se toma la decisión de eliminar una población
(i.e. que se está cultivando en un tanque de piscifactoría o en un estanque de crecimiento) debido a la
presencia de la enfermedad (o a una pobre actuación de cultivo que puede deberse a una enfermedad
no diagnosticada), La existencia de un tanque o estanque debería recogerse y/o sacrificarse de forma
humanitaria en el tanque o estanque. Debe desinfectarse el agua del tanque o estanque (véanse la
subsecciones específicas que tratan de la desinfección de tanques y estanques en la sección 5) antes del
vaciado. El tanque o estanque vacío debe desinfectarse antes de la repoblación.

5. SANEAMIENTO RUTINARIO Y BIOSEGURIDAD

Muchos criaderos de crustáceos, especialmente los destinados al cultivo del camarón peneido, emplean
medidas que incluyen una serie de métodos de desinfección para la prevención y control de la
enfermedad. Tales medidas pueden formar parte de un programa de bioseguridad rutinario que puede
haberse diseñado para la exclusión de enfermedades específicas y o constituir medidas de exclusión de
pestes y enfermedades.

5.1. Desinfectantes

La siguiente lista contiene los desinfectantes recomendados para usarse en criaderos de (el
régimen de los desinfectantes adecuados para cada aplicación específica se discuten en la
subsección correspondiente):
– cloro (a hipoclorito cálcico, HTH™ o una solución con lejía que contenga suficiente
concentración de hipoclorito);
– gas formaldehído (de paraformaldehído sublimado o reacción concentrada de permanganato
de formalina /potasio);
– yodo (del que contienen los yodóforos);
– cal (como óxido de calcio o hidróxido de calcio);
– luz UV (de la luz solar natural);
– ozono;
– vapor;
– agua caliente (60ºC);
– ácidos concentrados;
– desecación;
– detergentes (para limpieza general, teniendo algunos productos un cierto grado de poder
desinfectante).



5.2. Criaderos y cultivo de reproductores/instalaciones de mantenimiento

Prácticamente en todos los criaderos de camarón peneido e instalaciones de cría/mantenimiento
de reproductores se usa agua marina que ha sido desinfectada para eliminar posibles patógenos,
insectos nocivos y agentes portadores de enfermedades por vía de filtrado mecánico, irradiación
con UV y/o desinfección química. Esta se puede realizar mediante filtrado pasivo del agua
originaria (i.e. mediante el uso de pozos de agua marina o puntos de los pozos) o mediante
filtración mecánica con bombas de alta presión y una gama de mecanismos y tamaños de los
poros para la filtración del agua. En algunas instalaciones se usa la filtración junto con la
desinfección con luz UV del agua originaria, mientras que en otras se utilizan métodos de
desinfección química, mediante cloración y descloración de grandes dosis de ozono y la
subsiguiente eliminación de oxidantes residuales. Es típico que la desinfección química del agua
original requiera la utilización de uno o más reservorios de almacenamiento en los que el agua se
trata y se desintoxica antes de su uso en el criadero de camarón o la instalación con los
reproductores. Hay numerosos manuales disponibles que se ocupan de los detalles relativos al
diseño y manejo del cultivo del camarón, y en los que se ofrecen detalles sobre la desinfección del
agua original.

a) Desinfección de los huevos y larvas en los criaderos de camarón peneido
Ciertas enfermedades víricas del camarón peneido (i.e. la Baculovirosis esférica, la
Baculovirosis tetraédrica, las infecciones por Pavovirus hepatopancreático) se transmiten por
contaminación fecal de los huevos depositados. Estas enfermedades, y las infecciones debidas
a algunos otros virus de los camarones, tales como el virus de las manchas blancas, y ciertos
agentes fúngicos y bacterianos de enfermedades pueden eliminarse o ver reducida su
incidencia mediante el uso rutinario de protocolos de desinfección cuando se utilizan para
desinfectar la superficie de los huevos y/o los nauplios recién incubados. A continuación se
ofrece un método ampliamente utilizado:

Para huevos fertilizados10

Se recogen los huevos fertilizados. Se lavan con agua marina durante 1–2 minutos. Se
sumergen totalmente los huevos en 100 ppm (partes por millón) de formalina durante
1 minuto. Se sumergen totalmente los huevos en yodóforo (0,1 ppm de yodo) durante 1
minuto. Se lava en agua marina corriente durante 3–5 minutos. Se transfieren a los tanques de
cría de larva desinfectados.

Para nauplios11

Usando la respuesta fototáxica a la luz, se recogen los nauplios con redes o con cedazo. Se
lavan con agua marina corriente durante 1–2 minutos. Se sumergen los nauplios en 400 ppm
de formalina durante 30–60 segundos. Se sumergen completamente los nauplios en yodóforo
(0,1 ppm de yodo) durante 1 minuto. Se aclara con agua de mar corriente durante 3–
5 minutos. Se transfiere a tanques de cría de larvas desinfectados.

b) Desinfección de los tanques, equipo, tuberías, aireadores de piedra, etc..
Para el saneamiento rutinario, los tanques de incubación de huevos y los de los reproductores
(i.e. tanques para la maduración de los reproductores, el apareamiento el desove, la cría de
larvas, los viveros interiores) deben limpiarse, desinfectarse y secarse entre uso y uso. Los
tanques utilizados para los fines antes expuestos en criaderos de crustáceos (especialmente los
camarones) son normalmente tanques prefabricados de fibra de vidrio, o se construyen con
cemento y madera, y recubiertos o pintados con material de resina (v.g. resina epoxy o resina y
fibra de vidrio) o recubiertos con forros de plástico fabricados para ese fin. Tras recolectar la

10 Los huevos fertilizados son más sensibles a la formalina que los nauplios.
11 Los nauplios son mucho más fáciles de recoger que los huevos fertilizados en los criaderos



existencia del tanque, deben eliminarse todos los objetos sueltos y los restos orgánicos de
tamaño grande, tales como algas, heces, y restos alimenticios. Cuando se trate de tanques de
tamaño relativamente pequeño, es aconsejable, tras la recolección de la existencia, llenar el
tanque completamente, sumergir todo el equipo que no tenga poros y sea resistente a la
corrosión (i.e. tuberías de aire, piedras aireadoras, tubos verticales, pantallas, recipientes de
muestreo, etc.) en el tanque y añadir, a continuación hipoclorito cálcico para obtener un
mínimo de 200 ppm de cloro libre. Se deja que éste actúe toda la noche. Transcurrido un
tiempo conveniente de empapado con el cloro, se puede vaciar el tanque y lavarlo con agua
dulce. Antes de drenar el sistema, se debe desclorar el agua tratada (véase la subsección
específica sobre cloración en la presente sección), salvo que se cuente con sistemas adecuados
de colección y tratamiento de efluentes. Después de lavar el tanque se le deja que seque por
completo. Si los tanques son grandes, se debe hacer una limpieza inicial del mismo para
eliminar los restos sueltos y luego una desinfección con una solución concentrada
(~1.600 ppm de cloro) de hipoclorito de calcio. Se deja reposar varias horas el contenido del
tanque y luego se lava, se llena y se vacía. Luego se frotan las superficies hasta que queden
limpias de cualquier resto. Tras la desinfección con cloro, tanto los tanques pequeños como
los grandes deben lavarse con agua limpia, luego se llenan y vacían para asegurarse de que no
quedan restos de cloro antes de repoblar el tanque para otra cosecha.

5.3. Desinfección de los estanques de crecimiento

Una vez efectuada la recogida rutinaria de la cosecha de un estanque de engorde (o de un tanque
grande o canal utilizados para el engorde de una cosecha), debe inspeccionarse el fondo del
estanque (o tanque). Deben tratarse o eliminarse los depósitos grandes de restos orgánicos. Eso es
fácil cuando se trata de tanques forrados, canales, o estanques (i.e. vaciando y limpiando con una
manguera de presión), pero representa un problema cuando se trata de estanques grandes con
fondo de tierra. Se aplican muchos métodos para la desinfección y tratamiento del fondo de los
estanques entre cosecha y cosecha. Esos métodos se describen detalladamente en varios manuales
de acuicultura del camarón, y aquí nos limitaremos a listar brevemente algunos de ellos sin entrar
en muchos detalles:

a) Cloración
Este desinfectante puede usarse para el tratamiento rutinario de los estanques entre cosechas o
cuando el objetivo es erradicar la enfermedad. Después de vaciar el estanque, se retiran (y
eliminan [véase la subsección sobre eliminación de cadáveres en la sección C.6]) tantos
animales del sistema como sea posible (esto puede resultar difícil en sistemas en los que no
sería práctica la eliminación de grandes cantidades de camarones muertos). Se rellena
parcialmente el estanque (o se llena totalmente si es preciso), se interrumpe la adición de agua
nueva, se interrumpe el vaciado del agua saliente, y se retira cualquier fuente interna o externa
de aireamiento o cualquier medio de aireamiento que pudiera corroerse. Luego se distribuye
una cantidad suficiente de hipoclorito cálcico granulado (como Olin HTH™) a fin de
proporcionar una concentración de cloro residual libre de, como mínimo, 10 ppm dentro de
todo el sistema de agua. (NB: La persona o personas que aplican el cloro deben llevar
indumentaria externa impermeable para protegerse al piel, una máscara contra el cloro
homologada y gafas o máscara facial para proteger los ojos.) Se redistribuye hipoclorito cálcico
adicional con la frecuencia necesaria para mantener una concentración residual a 10 ppm. Deja
que el sistema se asiente durante un mínimo de 24–48 horas (sobre todo si se aplica a sistemas
grandes) a esa concentración mínima de cloro. El cloro matará todas los camarones y la
mayoría, si no todos, de los organismos que ocupan la columna de agua o residentes en el
estanque. Una vez que se ha tratado con cloro el estanque durante el tiempo mínimo necesario
y antes de vaciar el agua, se neutraliza el cloro ya sea de forma pasiva por exposición a la luz
solar y al aire durante aproximadamente 48 horas (sin añadir más cloro) ya sea añadiendo
tiosulfato de sodio en una proporción de cinco (5) moléculas de tiosulfato de sodio por cada
cuatro (4) moléculas de cloro (o de forma que el peso del tiosulfato de sodio sea 2.85 veces
mayor que el peso del cloro del agua; ver el ejemplo siguiente).



Tamaño del Profundidad Volumen Dosis de Cloro HTH Tiosulfato
estanque media cloro necesario (65% de Cl activo) necesario
1 hectárea 1m 10.000 m3 10 ppm 100 kg 154 kg 285 kg

Debería comprobarse de forma periódica la presencia de cloro residual; no debe vaciarse el
agua hasta que alcance 0 ppm. Una vez verificado que el nivel de cloro es 0 ppm, el agua del
sistema puede descargar al sistema de salida del agua del criadero. En algunos sistemas de
cultivo, más concretamente en los canales, tanques y pequeños estanques recubiertos (i.e.
aquellos sistemas en los que la mayor parte de los camarones no se eliminaron antes de la
desinfección), deben recogerse los camarones muertos para su adecuada eliminación (ver el
apartado sobre eliminación de animales muertos en la sección C.6).

b) Encalamiento
La cal, en forma de óxido de calcio y de hidróxido de calcio, debe aplicarse en suelo muy
húmedo en una proporción de 5.000 kg/ha o 1.500 kg/ha, respectivamente. Ha de procurarse
extender la cal de modo uniforme por la superficie del suelo. Se mantiene el estanque encalado
durante al menos una semana, o hasta que el suelo se haya secado y esté quebradizo con
grietas de unos 10–20 cm de una profundidad. Se puede añadir más cal después de roturarlo
(ver más adelante) en una proporción del 50% de la cantidad normalmente prescrita. Se debe
dejar que se seque el estanque durante al menos una semana, dependiendo del tiempo
atmosférico.

c) Secado y roturado
Tanto si un estanque es tratado con cloro o encalamiento o se deja que se seque sin
tratamiento como si no, el roturado se usa comúnmente para tratar el fondo del estanque a fin
de reducir su contenido orgánico, mejorar el reciclado de los nutrientes, el pH de los
tampones, eliminar los insectos nocivos y lograr la desinfección mediante una combinación de
degradación microbiana, exposición a la luz solar, aireamiento y desecación. En algunas
regiones, el secado y roturado del fondo de los estanques secos sólo se puede realizar durante
la estación seca. Cuando es posible secar el estanque, debería dejarse que el estanque se seque
hasta que la superficie del fondo se agriete hasta una profundidad de unos 10 cm. Una vez
alcanzado ese nivel de sequedad, debe roturarse el suelo hasta una profundidad de unos 20 cm
con un arado, labrador, rastra de discos, escarificador de dientes u otra herramienta agrícola
similar. Los estanques así tratados deben mantenerse en ese estado durante al menos una
semana antes de volver a llenarlos y repoblarles.

5.4. Desinfección del agua originaria

Como varias de las enfermedades de los camarones de la lista del Código de animales acuáticos, al igual
que otras varias enfermedades importantes, pueden introducirse en los criaderos de camarones
por medio del agua originaria entrante cuando ésta contiene vectores o portadores (i.e. cangrejos
marinos o larvas de camarones silvestres infectados), la mayoría de los criaderos operan con
planes de bioseguridad que incluyen normas para la desinfección del agua entrante. Eso se puede
lograr por diversos medios que pueden incluir la combinación de una o varias de las siguientes
estrategias:

a) Filtración del agua entrante – el agua se bombea a un canal de suministro/sedimentación
donde pasa en primer lugar por unas tramas gruesas de barras para eliminar animales
acuáticos y restos de gran tamaño. Luego se pasa el agua por una serie de tamices cada vez
más finos, y el filtrado final se hace pasando el agua por un tamiz de saco de malla fina (150–
250 µm) antes de ser introducida en un estanque de cultivo o en un reservorio de
almacenamiento.

b) En vez de usar redes de malla, algunos criaderos colocan estructuras de filtrado en el sistema
de canales de suministro. Dentro de esas estructuras, hay una serie de compartimentos que se



llenan con matrices de filtros, comenzando con grava gruesa para una primera eliminación de
animales acuáticos y restos de gran tamaño, una sección intermedia con una matriz más fina
de de arena y gravilla y la sección final, que contiene arena fina.

c) La cloración y descloración – se bombea el agua original a un canal de suministro o
directamente a los estanques de cultivo o reservorios (con o sin filtrado) y se trata con
suficiente cloro para eliminar cualquier vector o portador potencial del agua original.

d) ‘Intercambio de agua reducido o intercambio “cero”: En algunos criaderos se utilizan el
aireamiento y re-circulación de agua suplementarios en estanques de cultivo y dentro de los
sistemas de suministro y vaciado del criadero a fin de simplificar los requisitos relativos al
agua original. Esto reduce el volumen de agua original que se ha de desinfectar antes de su
uso y también reduce la pérdida de nutrientes en criaderos con agua efluente.

6. ERRADICACIÓN DE ENFERMEDADES Y LIMPIEZA COMPLETA DE LA INSTALACIÓN

Esta acción puede se necesaria para el control de las enfermedades cuando en un lugar ocurren
enfermedades importantes que son intratables y en los que existe la opción de erradicarlas. El
diagnóstico confirmativo de una enfermedad registrada en la lista o de una enfermedad emergente
importante, aunque no listada, que ocurre por primera vez en un criadero concreto, en un lugar
concreto (i.e. en una instalación de cuarentena), o dentro de una región o país de los que se creía que
estaban libres de esa enfermedad, constituyen eventos indicativos de que puede ser aconsejable o
necesario erradicar la enfermedad despoblando la instalación afectada y realizando una desinfección
exhaustiva de toda la instalación o de parte de la misma.

El cultivo rotatorio en la instalación afectada durante un periodo de tiempo definido puede ser
aconsejable en algunas situaciones (véase el capítulo 1.7.1, Directrices para el cultivo rotatorio en
acuicultura en el Código de animales acuáticos).

Se pueden realizar los siguientes pasos/acciones para lograr la erradicación de una enfermedad
mediante la limpieza completa de una instalación (LCI):

6.1. Despoblación de todas las existencias de camarones vivos de una instalación afectada

a) Se interrumpe la repoblación de la instalación.

b) Recolectar y vender (en caso de que esté permitido) las existencias comercializables en los
circuitos comerciales normales. En algunas circunstancias puede ser aconsejable cocinar el
producto antes de su comercialización. La cocción al vapor en agua hirviendo matará o
inactivará todos los agentes conocidos de la enfermedad de los camarones.

c) Cuando se trata de existencias no comercializables, caben las siguientes opciones para su
eliminación tras la recolección:

i) Incineración: se queman los camarones recogidos en una incineradora que esté
homologada (si es necesario) por el gobierno. Las limitaciones de este procedimiento
son inherentes a la eliminación de los camarones. Es decir, los camarones contienen
gran cantidad de agua y, por tanto, este procedimiento puede sólo puede aplicarse con
pequeñas cantidades de camarones o con cantidades mayores si los camarones se han
secado antes de la incineración.

ii) Soterramiento: aunque esta técnica debería aplicarse en un número mayor de casos, aún
tiene sus limitaciones. Se deben colocar los camarones en un hoyo de suficiente
profundidad para que quepan todos, con 50 cm adicionales para el relleno que ha de
cubrir los camarones. El hoyo debe estar a cierta distancia de la instalación sometida a
LCI (limpieza completa de la instalación) TCU y a una distancia similar de cualquier otra



instalación de cultivo de camarones. El agua del drenaje de la zona del hoyo no
desembocará en el acuífero desde el cual se bombea el agua original al lugar de limpieza
completa (o cualquier lugar de cultivo de camarones) o en la zona (estuario o playa)
desde la que procede el agua original. Una vez seleccionado el lugar adecuado, se puede
proceder al soterramiento. El fondo del hoyo debe cubrirse con óxido de calcio (cal
viva) en una proporción de aproximadamente 500 g/m2 (5.000 kg/ha) o con hidróxido
de calcio (cal rebajada o hidratada) en una proporción de unos 150 g/m2 (1.500 kg/ha).
Los camarones deben colocarse dentro del hoyo en capas de unos 10 cm de espesor,
cubriendo cada capa con cal rebajada o con cal viva en cantidad suficiente para cubrir
por completo la capa de camarones (equivalente a más o menos 33–100% del peso de
los camarones). El hoyo completo, incluyendo la capa superior de camarones debe
cubrirse con un mínimo de 50 cm de tierra de relleno. En algunos lugares, debe
consultarse a los funcionarios locales de medioambiente, sanidad pública y zonificación
antes de cavar los hoyos para el soterramiento de los camarones.

6.2. Desinfección de tanques y estanques de cultivo

Para los métodos de desinfección, véase el apartado correspondiente de la sección C.5.

6.3. Procedimientos de limpieza de los componentes de una instalación distintos de las áreas
de cultivo

Para que la LCII sea efectiva, puede ser necesaria una desinfección de la instalación completa
después de que se hayan recolectado o eliminado los camarones de alguna otra forma. Tras la
despoblación de la instalación, debe identificarse a cualquier portador animado o inanimado del
agente de la enfermedad para su eliminación o para la desinfección exhaustiva de la instalación. Es
fácil comprender el movimiento de los agentes patógenos entre los camarones vivos o los
numerosos camarones muertos, lo que no puede decirse de su movimiento por la vía de los
componentes inanimados. De ahí que todas las áreas, unidades, subunidades o componentes que
se contaminan o son potencialmente contaminables deben someterse a un proceso de limpieza y
desinfección. Consúltese la lista de desinfectantes y los correspondientes métodos de aplicación
en el cuadro 1 de la sección A y la sección C.5.1.

a) Edificios
El régimen de desinfección debe ser específico para cada edificio y depende del patrón de uso
del mismo.

i) Edificios de oficinas: lo más frecuente es que por estos edificios transiten a pie las
personas que han estado en edificios o áreas de cultivo contaminadas. Por esa razón, los
principales focos de atención deberán ser los suelos y las unidades de almacenamiento en
frío del edificio Deben limpiarse los suelos de forma exhaustiva (si no son porosos) con
detergentes estandarizados y soluciones de limpieza, y a continuación secarse de forma
concienzuda. Si los suelos tienen alfombras, deberían de aspirarse y limpiarse con un
detergente adecuado para las alfombras, o limpiarse al vapor. Todas las demás áreas de
estos edificios, como paredes, lavabos, mesas, neveras, congeladores, etc., deben
examinarse para ver si hay materiales contaminantes (i.e. camarones congelados en los
congeladores) y cualquiera de esos elementos y su contenedor deben limpiarse y
eliminarse siguiendo pautas sanitarias.

ii) Edificios de cultivo: debe suponerse que estos edificios han estado en contacto directo
con agentes causales de enfermedades y, por tanto, habrá de tratárseles de forma diferente
a la empleada con los edificios de oficinas. El régimen de desinfección de estos edificios
consta de dos fases. En la primera, debe barrerse y/o aspirarse a fondo el edificio para
eliminar la mayor cantidad posible de desechos tanto orgánicos como inorgánicos. En la
segunda fase se aplica el tratamiento con cloro. Debe aplicarse una solución de cloro
(~1600 ppm) rociando todas las superficies a prueba de corrosión por el cloro. Las



superficies que no deban clorarse, se pasa una esponja con solución yodófora de, como
mínimo, 200 ppm de yodo libre. Luego se las cubre con plástico u otro material
protector. Las superficies del suelo pueden clorarse con una solución de cloro de
200 ppm, suficiente para que las superficies se empapen hasta una profundidad de 5 cm.
Se las deja en ese estado durante un mínimo de 48 horas. Si alguna de las superficies
rociadas es susceptible a la corrosión por cloro, se lava con agua dulce tras las 48 horas de
tratamiento.

Para los edificios en los que la desinfección con cloro no resulta práctica, puede
considerarse la fumigación con gas formaldehído. Después de una limpieza general se
puede iniciar la fumigación de un edificio que se pueda sellar. El proceso completo, desde
la primera fumigación hasta que el edificio puede ocuparse de nuevo debe durar un
mínimo de 36–60 horas. Debe sellarse bien el edificio durante la fumigación, de forma
que el gas no pueda escapar por ningún medio tras la fumigación. Si es posible, debe
cortarse el fluido eléctrico del edificio. Para la desinfección con gas formaldehído, debe
haber una atmósfera de 18°C con una humedad relativa alta (preferiblemente saturada, i.e.
los suelos mojados, etc.). Para preparar el gas formaldehído, se añaden 17.5 g de
permanganato potásico a cada 35 ml de formalina al 100% (una solución acuosa al 37–
39% de gas formaldehído) por cada 2.83 m3 (100 pies3) de espacio. Lo ideal sería que
cada compartimiento del edificio tuviese su propia fuente de gas formaldehído para
asegurarse de que todas las áreas del edificio se tratan de modo uniforme. Deben pesarse
por separado las cantidades adecuadas de cada compuesto (permanganato potásico y
formalina); la formalina debe colocarse en un recipiente que no sea de plástico, con un
volumen 10 veces superior al volumen combinado del permanganato potásico y la
formalina juntos. (La persona que realice la fumigación con gas formaldehído debe llevar
vestimenta externa impermeable para protegerse la piel y una máscara para gas
formaldehído homologada y unas gafas o una pantalla facial para protección de los ojos.)
Deben colocarse los recipientes con las cantidades adecuadas de los dos reactivos en el
suelo, en el centro de la habitación y sobre una esterilla protectora (de plástico)
desechable. En ese momento no deben mezclarse aún la formalina y el permanganato
potásico. Cuando todas las habitaciones tengan las cantidades adecuadas de cada uno de
los dos componentes, se haya sellado herméticamente el edificio y se haya acondicionado
convenientemente la atmósfera, puede iniciarse la fumigación. Debe hacerse la mezcla de
los dos componentes de forma rápida y cuidadosa, ya que la reacción se produce de
forma inmediata y en cierto modo violenta a medida que se emite el gas formaldehído.
Comenzando por la habitación más alejada de la salida al exterior, se añade el
permanganato a la formalina y hace los mismos en la siguiente habitación. Cuando se
haya terminado con todas las habitaciones se cierra con llave la puerta exterior y se sella
con cinta desde el exterior. Se deja que el edificio permanezca en esas condiciones
durante un mínimo de 12 horas. Transcurrido ese tiempo, se deja que el edificio se ventile
con aire limpio durante 24–48 horas. Cuando se permita el acceso de la gente al edificio,
no debe haber olor a formaldehído.

Una forma alternativa de generar gas formaldehído es la sublimación de
paraformaldehído en polvo. Por cada 2.83 m3 (100 pies3) de espacio, deben usarse unos
28 g de paraformaldehído. Se puede sublimar colocándolo en una sartén eléctrica, que, a
su vez, se coloca en alto. Este procedimiento es algo más peligroso, porque el
formaldehído es inflamable y una chispa producida por la sartén puede, en teoría,
encender el gas. Para el uso del paraformaldehído, deben seguirse los mismos
procedimientos indicados anteriormente para la mezcla de la formalina y el permanganato
y para la ventilación, etc..

iii) Edificios de procesamiento: estos edificios se suelen construir para permitir una
desinfección rutinaria. Los procedimientos seguidos en la operación rutinaria de tales
edificios son adecuados para la limpieza completa de las instalaciones (LCI), siempre que
también se desinfecten y se sequen a fondo el edificio, sus habitaciones de frío y sus



congeladores. Si se estima conveniente, puede aplicarse la fumigación con gas
formaldehído a fin de asegurar la destrucción de los agentes patógenos pertinentes.

iv) Otros edificios: edificios como almacenes de alimentos, mantenimiento, cuartos de
herramientas, etc, deben tratarse de forma similar al edificio de oficinas. Debe ponerse
especial cuidado en la eliminación de de todos los desechos de tamaño grande, que suelen
encontrarse en abundancia dentro de esos edificios. Las superficies potencialmente
contaminadas de tales edificios deben rociarse con cloro y dejarse en ese estado 24–
48 horas. A continuación deben lavarse con agua dulce. Todo el equipo, que no deberá
exponerse a la acción corrosiva del cloro, será retirado antes del rociado, y se desinfectará
con 200 ppm de yodóforo mediante el tipo de desinfección utilizada con superficies. Tras
su desinfección, el equipo puede introducirse de nuevo en el edificio. Otra opción para
este tipo de edificios es la fumigación con gas formaldehído.

b) Equipamiento y sistemas de soporte para el cultivo
Se trata de unidades operativas de la instalación de cultivo de camarones que pueden estar
alojadas en un edificio.

i) Sistemas Artemia: todas las unidades y tanques de descapsulación y eclosión de los quistes
de Artemia deben tratarse de la misma forma que los demás tanques. Deben limpiarse los
desechos de tamaño grande de los tanques, luego deben llenarse completamente de agua
limpia e hipoclorito cálcico para lograr una concentración final de 200 ppm (de Cl2 libre).
Dejar que la cloración continúe durante 24–48 horas. Se puede clorar la parte exterior de
esos tanques mediante rociado (1.600 ppm de cloro). Los tanques tratados pueden
descolorarse luego con tiosulfato de sodio, vaciarse, lavarse con agua dulce dejando que
se sequen durante un mínimo de una semana. Pueden retenerse los recipientes cerrados
de quistes de Artemia de la instalación. No obstante, su superficie debe desinfectarse con
cloro (200 ppm) o yodóforo (200 ppm).

ii) Sistemas de algas: los recipientes, tanques, estufas y habitaciones utilizadas para producir
algas para la alimentación de formas larvarias de los camarones pueden manejarse y
desinfectarse de modo casi idéntico al empleado para otros sistemas de tanques. La única
diferencia importante es que debe asegurarse de que se han lavado todos los residuos de
cloro de las unidades antes de volverlas a usar. En el caso de los tubos, frascos,
bombonas y recipientes para cultivo de algas, puede usarse una combinación de lavado
con ácido (10% HCl) y esterilización al vapor en lugar de la desinfección con cloro o con
yodóforos.

No es posible la desinfección de cultivos existentes de algas vivas. La utilización de la
desinfección está claramente fuera de lugar; cualquier compuesto que matara al agente de
la enfermedad acabaría igualmente con las algas. De ahí que sólo existan dos formas de
minimizar la probabilidad de que el agente patógeno este presente en las existencias de
cultivo.

– Dilución: todos los cultivos stock pueden clonarse a partir de las propias existencias.
Cada cultivo debe diluirse ya sea por diluciones seriadas (para caldo de cultivos) o
veteado para colonias individuales (cultivos en agar). Todas las diluciones se deben
hacer empleando técnicas estrictamente asépticas, autoclavando adecuadamente
todos los medios. El paso desde los cultivos stock no debe ocurrir hasta que la
habitación para cultivo de algas haya sido desinfectada según los procedimientos
referidos anteriormente para los edificios. Una vez que un cultivo se haya diluido y
clonado por cualquiera de esos métodos hasta el punto en que sólo permanece una
célula del cultivo original, es insignificante el riesgo de que el agente de la
enfermedad (de los camarones) pueda estar presente



– Nuevos cultivos stock: Si se desechan los cultivos stock existentes como parte de
una LCI, deben comprarse nuevas existencias en los laboratorios suministradores de
algas, u obtenerse de otras fuentes en las que no es probable la existencia de
contaminación por el agente causal de la enfermedad (de los camarones), como es el
caso de las fuentes en las que las especies deseadas son aisladas de las poblaciones
silvestres de algas. Los nuevos stocks de cultivo no deben proceder de una
instalación que también cultive camarones y pueda estar contaminada con los
agentes de la enfermedad de los camarones.

iii) Equipamiento de los criaderos: las redes, jábegas, mangueras de aire porosas, etc., que son
relativamente baratas y fáciles de obtener deben desecharse y eliminarse de las
instalaciones durante la LCI en lugar de desinfectarlas, puesto que no son fáciles de
desinfectar y el cloro puede dañarlas y acortar su vida útil.

El equipo no desechable, como las mangueras flexibles de plástico de gran tamaño, las
bombas y tubos, tanques de transferencia, jaulas, jaulas de cosecha, mesas de cosecha,
discos Secchi, menaje de vidrio del laboratorio, etc., debe empaparse con cloro en
soluciones de 200 ppm durante 24–48 horas. La mejor forma de hacerlo es colocar esos
objetos en los tanques llenos con soluciones de cloro de 200 ppm. Deben sumergirse
totalmente todos los elementos (poniendo los objetos más pesados sobre los que tienden
a flotar). Un buen truco es colocar todo lo que esté suelto o pueda desatarse de su punto
de atadura (excepto lo que se vaya a desechar), en la solución de cloro de 200 ppm de los
correspondientes tanques.

En el caso de elementos similares asociados con los estanques, aquellos deben colocarse
en series especiales de tanques colocados junto a los respectivos estanques. Esos tanques
deben llenarse con soluciones cloradas de 200 ppm. Después de la cloración, esos
elementos deben dejarse secar quedando expuestos a esterilización natural por UV (luz
solar). Se les debe dar la vuelta al menos una vez para exponer todas las superficies de los
elementos a la luz solar directa.

Las herramientas y la maquinaria, como tractores, camiones, generadores de luz portátiles
y fijos, etc., deben limpiarse concienzudamente con soluciones de limpieza estándar.
Debe retirarse de esos elementos cualquier resto de lodo, alimento para camarones, etc. A
continuación, la desinfección de superficies que han podido contaminarse durante su uso
normal, debe complementarse con un lavado a base de una solución yodófora (a una
concentración de 200 ppm) o con limpieza al vapor.

Las pequeñas herramientas e instrumentos, como las básculas y balanzas, instrumentos de
prueba, pequeñas herramientas eléctricas, etc., deben limpiarse cuidadosamente con una
esponja empapada con solución de cloro de 200 ppm si son de plástico inerte, o con
200 ppm de yodóforo si son de otros materiales. Luego se deberían colocar de nuevo en
sus respectivos edificios durante la fumigación con formaldehído. El equipo electrónico
de prueba de alta precisión no debe someterse a fumigación, sobre todo si la probabilidad
de que se haya contaminado en alguna ocasión es muy pequeña.

iv) Tuberías de “agua nueva”: todas las tuberías de agua nueva que se hallan dentro de los
edificios, especialmente las que están cerradas por un extremo o terminan con varias
ramificaciones deben rellenarse con una solución de cloro de al menos 200 ppm. La
solución de cloro debe mantenerse dentro de la tunberías durante un mínimo de 24–
48 horas, y a continuación deben lavarse las tuberías con agua limpia. Las tuberías
también pueden desinfectarse recirculando en ellas agua caliente (>60ºC) durante varias
horas.



v) Uniformes, botas, etc.: todos los elementos de la indumentaria de los empleados se deben
o bien desechar o bien lavar a fondo y desinfectar. En el caso de la vestimenta, como los
monos, un lavado con lejía de cloro es suficiente, especialmente si se acompaña de secado
al sol. Otros elementos, como botas, guantes, y cualquier otro elemento que no forme
parte de la indumentaria pueden empaparse sin problema con una solución de cloro a
200 ppm. A continuación se lavan con agua dulce. Estos elementos deberían encontrarse
dentro de los correspondientes edificios en el momento de la fumigación con
formaldehído.

vi) Elementos relacionados con la alimentación: todos los elementos utilizados para la
alimentación, como piensos preparados, alimentos frescos (i.e. calamares, lombrices
acuáticas rojas cortadas, Artemia congelada, moluscos bivalvos, etc.) deben retirarse de la
instalación remplazándolos con nuevos alimentos procedentes de fuentes que se sabe que
no están contaminadas con agentes causales de enfermedades de camarones

7. REPOBLACIÓN DE CRIADEROS DESINFECTADOS

Después de una LCI, la repoblación de las instalaciones desinfectadas de los criaderos se debe realizar
con existencias que se sabe que están libres de las enfermedades que aparecen en la lista del Código de
animales acuáticos o de otras enfermedades emergentes o importantes.

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