Manual de Toma de muestra de Laboratorio Clinico_3 (1).pdf

Código: DOC – LAB 5
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Laboratorio
Clínico
SERVICIO DE SALUD METROPOLITANO
OCCIDENTE
HOSPITAL SAN JUAN DE DIOS-CDT
Manual de Toma de muestra de Laboratorio
Clínico Vigencia: Abril 2014

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4. Responsabilidades:
Responsable
Actividad
Médico
Oficial
Administrativo
Tecnólogo
Médico
Personal de
salud
encargado
Auxiliar
de
Servicio
Recepción
Lab. Clínico
Indicación de
la muestra
E I I I I I
Elaboración
orden de
examen
E I I I I I
Ingreso orden
al SIL
I E – C I – C I – E I I
Preparación
toma de
muestra
I I – E I – C I – E I I
Toma de
muestras
I I I – C E I I
Transporte de
muestras
I I I – C I E I
Recepción de
muestras
I I I – C I I E – C
Aceptación o
rechazo I I I - C I I E - C
C: Controla E: Ejecuta I: Informado
5. Definiciones:
5.1 Bioseguridad: Conjunto de medidas para proteger la salud humana y el ambiente
frente a diferentes riesgos.
5.2 Hemólisis: Liberación de la hemoglobina contenida en el glóbulo rojo o hematíe a
consecuencia de una alteración de la pared del glóbulo o cuando el glóbulo esta
distendido por la acción de una solución hipotónica.
5.3 Flebotomía: Insición de un vaso sanguíneo para la obtención de sangre.
5.4 Flebotomista: Personal de salud capacitado para la obtención de muestras
sanguíneas.

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6. Desarrollo:
6.1 Flujo de procesos:
6.1.1 Diagrama del procedimiento en la Unidad de Toma de Muestras (Ver Flujograma 1):
• La atención de los pacientes se realiza a través de la ventanilla de la Unidad de Toma
de Muestras, tanto como para dar hora como para recibir a los pacientes citados.
• El paciente citado debe entregar su orden de examen en ventanilla y esperar su
llamado que se realizara desde la puerta de ingreso.
• La orden debe ser ingresada al sistema informático del Laboratorio (SIL) donde se
generan etiquetas con la identificación del paciente, (Código de barras) las que se
colocan en los tubos o envases de las muestras.
• Una vez llamado el paciente, se procede a explicarle el procedimiento.
• Realizar toma la muestra, quedando registrado el nombre del operador que lo atendió.
• Finalmente informar al usuario donde retirar el resultado del examen, se despide y se
le indica la ruta.
• Las muestras obtenidas se clasifican según tipo de examen y se colocan en el carro
de transporte.
• Estas muestras son transportadas según requisitos.
• Se entregan en la recepción del Laboratorio donde queda registrada su aceptación en
una planilla de trabajo diaria.
6.1.2 Escala de preferencia en la atención a los pacientes ambulatorios:
Para poder optimizar los recursos y dar una respuesta oportuna se atienden los
pacientes de acuerdo a una prioridad, la cual se establece a continuación:
• Pacientes Transplantados: que están en control post trasplante y que son atendidos el
mismo día.
• Pacientes en TAC: con tratamiento anticoagulante y que serán atendidos el mismo día.
• Pacientes pediátricos con exámenes de niveles plasmáticos de drogas.
• Pacientes de Hemato-oncologia
• Pacientes Insulinodependientes
• Exámenes de cortisol y PTGO: Exámenes que deben tomarse la primera muestra a las
08:00 hrs.
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6.2 Bioseguridad:
• Disponer de los materiales necesarios en un área de trabajo limpia y adecuada
• Lavado de las manos.
• Usar mascarillas para toma de muestras de alto riesgo (Ej. Virus respiratorios) o en
caso de que el paciente tosa constantemente.
• El personal debe estar vacunado contra virus Hepatitis B e Influenza.
• Usar precauciones estándar mínimas con todo paciente. Toda muestra es
potencialmente patógenas
• Si el paciente tose con frecuencia, el personal debe colocarse mascarilla
• Tomar precauciones al manipular las agujas y lancetas. Después de su uso descartar
inmediatamente en contenedor para material cortopunzante. No recapsular agujas.
• Si hay derrame de sangre en el mesón de toma de muestra, limpiar con Hipoclorito de
sodio al 0,1%
6.3 Factores pre-analíticos que afectan las pruebas:
Es importante tener presente que existen muchos factores que pueden afectar el
resultado de las pruebas de laboratorio, algunos de los cuales pueden ser evitados con
una adecuada orientación al paciente y una correcta técnica de extracción sanguínea. A
continuación enumeraremos algunos de estos factores y las recomendaciones al respecto.
6.3.1 Interferencias:
• La ansiedad y la tensión mental o física puede afectar los niveles de muchos
componentes sanguíneos. Tal es el caso de las concentraciones de Prolactina,
Cortisol, Catecolamina, Aldosterona y Renina. También puede elevar el recuento de
leucocitos.
• Los ejercicios físicos vigorosos 3 días previos a la toma de la muestra pueden alterar
los niveles de CK, LDH, AST, potasio, glucosa, lactato, prolactina y cortisol.
• El ritmo diurno de algunos fluidos corporales muestran fluctuaciones durante el día,
por ejemplo, los niveles de cortisol son altos en la mañana, pero decrecen en la tarde.
Los niveles de hierro tienden a caer durante el día.
• La situación dietética del paciente puede ser importante para ciertas pruebas. Tal es el
caso de las variaciones en la concentración de lípidos después de una comida
grasosa. El suero sanguíneo muestra una apariencia lechosa debido a la presencia de
triglicéridos y quilomicrones. Estos sueros hiperlipidémicos influyen en las mediciones,
por lo que se recomienda tomar la muestra después de un periodo de ayuno,
usualmente de toda la noche.
• La ingestión de etanol induce cambios en la composición de los lípidos corporales. De
particular interés son las enzimas hepáticas, como la fosfatasa alcalina,
transaminasas, gama glutamil transferasa y otros componentes como la glucosa,
triglicéridos, uratos y lactato.

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• El fumar puede producir variaciones en los resultados de algunos componentes como
la lipasa, amilasa, colesterol, glucosa e igualmente afecta la absorción gástrica en la
prueba de tolerancia a la glucosa.
• La cirugía y la inyección intramuscular provoca un aumento en la concentración de
creatinquinasa.
• La exploración rectal o la manipulación prostática, puede causar un aumento en la
concentración del antígeno prostático específico.
• Los anticonceptivos orales afectan la actividad estrogénica y conducen al aumento de
muchas proteínas como la tiroxina, cortisol y las hormonas sexuales.
• Medicamentos como barbitúrico y fenitoína, inducen enzimas hepáticas con valores
elevados.
• Evitar extraer sangre de una zona previamente puncionada para administrar un
tratamiento intravenoso, ya que las concentraciones de muchos compuestos pueden
resultar erróneamente altos o bajos.
• Evitar provocar hemólisis durante el proceso de extracción o llenado de los tubos, lo
cual afectará algunas pruebas relevantes. La hemólisis puede ocurrir también por
exceso de residuos del alcohol utilizado durante la desinfección del sitio a puncionar.
• Evitar puncionar en un área con hematoma, fístulas, quemaduras, escoriaciones de la
piel, cicatrices.
• Verificar las condiciones de ayuno para las pruebas que lo requieran.
• Las pruebas seriadas como curvas de tolerancia, post-prandial, post-ejercicios, etc.
deben monitorearse en el tiempo adecuado.
• Rotular los tubos con la hora de toma de la muestra en el caso de pruebas seriadas.
• Es recomendable preguntar al paciente si existen restricciones para la flebotomía
(Mastectomía, etc.).
• Los tubos con anticoagulante deben invertirse suavemente y colocarlos en posición
vertical, para evitar el contacto prolongado con la tapa del tubo.
• Los separadores de suero se utilizan para separar el suero libre del coágulo de
sangre. Estos pueden ser de gel de silicón, poliéster o perlas de vidrio. En algunos
casos debido a problemas en la centrifugación y a altas temperaturas, pueden quedar
gotas de gel dentro del suero. Se ha demostrado que estas gotas de gel pueden
interferir con algunas mediciones. Es conocido que la progesterona se reduce
apreciablemente cuando se almacena sobre gel por varios días.
• Igualmente ocurre con la lidocaína, fenobarbital, fenitoína y carbamazepina.
• Algunas hormonas polipeptídicas de bajo peso molecular, como la ACTH, glucagón,
gastrina y otras hormonas intestinales, se destruyen rápidamente por enzimas
presentes en la sangre. Por lo que es necesario centrifugar la muestra a baja
temperatura, 10 minutos después de la toma y almacenar el suero o plasma
inmediatamente a –20 C.
• Aquellos tubos con anticoagulantes deben ser llenados exactamente hasta la marca,
cualquiera sea el método que se utilice para extraer la sangre, para evitar que la
concentración del anticoagulante sea demasiada alta, tal que afecte el sistema de
medición.

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6.3.2 Datos en la orden de solicitud del examen:
Todas las muestras deben ir acompañadas de una solicitud debidamente formulada.
La solicitud debe contener la siguiente información:
• Identificación completa del paciente:
- Nombre completo (Dos nombre, dos apellidos).
- Sexo.
- Número de cédula de Identidad.
- Edad o fecha de nacimiento.
- Procedencia.
- Sala y número de cama en caso de pacientes hospitalizados.
• Datos del profesional solicitante (Nombre completo y/o código).
• Pruebas que se solicitan.
• Consentimiento informado cuando sea necesario (Ej. VIH).
• Incluir información clínica de utilidad (Diagnóstico, ingestión de fármacos, restricciones
especiales, etc.).
• Fecha de orden.
6.3.3 Características del paciente:
• La primera impresión y las observaciones inmediatas pueden ser útiles para el técnico
o profesional que tome la muestra, permitiéndole establecer el tipo de paciente, el sitio
de la punción y las precauciones necesarias a considerar durante el procedimiento.
• La comunicación afectiva es determinante en la relación con el paciente. Hablar con el
paciente. Explicar el procedimiento a seguir.
• La identificación correcta del paciente es obligatoria. En caso de pacientes
hospitalizados verificar la información con brazalete de identificación. En pacientes
ambulatorios corroborar la identidad solicitando siempre la cedula de identidad.
• Observar si el paciente está sudoroso, agitado, sedado o es agresivo, arrogante,
conflictivo.
• Evitar cualquier discusión con el paciente. De ser así, llamar al Jefe de Toma de
Muestras o enfermera encargada del sector. Tratar de calmar y comprender al
paciente, sin embargo, usted siempre tiene la opción de no atender un paciente
agresivo que pueda causar lesión a usted o a sí mismo. Comunicar de ésta situación a
la persona encargada de la Toma de Muestras o de la Unidad o Servicio clínico.
• En todo momento mantener la ética y confidencialidad del paciente y sus exámenes.
Los Códigos de ética de los trabajadores de la salud, prohíben estrictamente que los
aspectos de salud del paciente sean divulgados con propósitos no profesionales.
• En la Unidad de Toma de muestras no se debe dar preferencia a la atención de
funcionarios, el horario destinado para la atención de funcionarios es de lunes a
viernes de 07:30 a 08:00 hrs.

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6.4 Preparación del equipo:
Antes de iniciar el procedimiento debe contar todos
los implementos necesarios disponebles.
6.4.1 Tubos de colección:
Los tubos están predeterminados para llenarse con un determinado volumen de
sangre por vacío. La tapa de goma está codificada por color, de acuerdo a su uso y sus
aditivos:
Tubo tapa roja
Uso: Química, inmunología, banco de sangre, derivados.
Aditivo: Ninguno.
Tubo tapa amarilla
Uso: Hormonas, niveles plasmáticos, marcadores tumorales.
Aditivo: Gel – Separador.
Tubo tapa lila
Uso: Hematología, biología molecular, líquidos biológicos, hemoglobina glicosilada.
Aditivo: Anticoagulante EDTA.
Tubo tapa celeste
Uso: Pruebas de Coagulación.
Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.2%.
Tubo tapa negra
Uso: VHS.
Aditivo: Anticoagulante Citrato de sodio 3.8%.
Tubo tapa gris
Uso: Glicemia.
Aditivo: Anticoagulante Fluoruro de sódio.
Tubos tapa verde
Uso: Pruebas Bioquímicas, Electrolitos Plasmáticos, marcadores virales.
Aditivo: Heparina de Litio.

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6.4.2 Insumos necesarios:
• Agujas: Están numeradas dependiendo de su calibre. Para colección de sangre se
utilizan agujas de diámetro 21G (0.8 mm) x 1”. Para lactantes y punciones de vías
venosas difíciles se utilizan mariposas de distintos calibres.
• Jeringas de 3, 5, 10 y 20 cc
• Adaptador para tubos al vacío.
• Ligadura: Recomendable de 2 tamaños para adultos y niños.
• Alcohol al 70%.
• Algodón.
• Guantes de procedimientos
• Curita o venda adhesiva.
• Frascos para hemocultivos.
• Tubos de exámenes.
• Sondas.
• Frascos tapa rosca para muestras de orina.
• Cajas para baciloscopías.
• Frascos para exámenes parasicológicos y laminas para test de Graham.
• Tórulas con medio de transporte para muestras microbiológicas
6.5 Procedimiento de punción venosa:
Las muestras deben tomarse correctamente y bajo las condiciones más favorables
para evitar errores en sus resultados. Esto incluye la absoluta identificación del paciente,
elección del sitio de punción y el volumen a colectar. El paciente debe estar en una
posición cómoda.
6.5.1 Selección del sitio a punción:
• Evitar áreas con presencia de hematoma (s), fístulas, quemaduras, escoriaciones de la
piel o cicatrices.
• Evitar tomar muestra del brazo del mismo lado donde se ha realizado una
mastectomía reciente.

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Palpación
• Antes de proceder a puncionar, escoger la vena mas apropiada.
• Colocar la ligadura de 6 a 7 cm. por arriba del sitio seleccionado. Tener presente no mantener
la ligadura por más de 3 minutos, para evitar la hemoconcentración.
• Las venas más utilizadas para la venopunción, están localizadas en el área antecubital. Entre
éstas tenemos:
a) Vena Cubital: Es la más larga y gruesa de todas y es la
preferida por bordear la musculatura del brazo.
b) Vena Cefálica: Tiene iguales características de la anterior, pero
es un poco menos gruesa.
c) Vena Basílica: Es más pequeña que las anteriores. Esta vena
está cerca de la arteria braquial, por lo que su punción es
riesgosa y su área es más sensible y dolorosa para el paciente.
Palpar con la punta de los dedos, tratando de seguir el
rastro de las venas. En ocasiones si no visualiza la
vena, puede forzar la sangre dentro de la vena a
través de un suave masaje de abajo hacia arriba.

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Asepsia del sitio de punción
Una vez que se ha decidido por la vena a puncionar,
realizar asepsia de la zona con alcohol al 70% utilizando
algodón y con movimientos circulares del interior al
exterior. Debe tener presente que una vez realizada la
descontaminación, no debe volver a tocar el área de
punción una vez realizada la asepsia de la zona a
puncionar.
6.5.2 Procedimiento de punción venosa:
• El brazo del paciente debe estar preferiblemente en posición cómoda horizontalmente.
• Con la ligadura en posición, haga que el paciente cierre y abra el puño de 3 a 5 veces
para bombear mejor la sangre, y luego que indicar mantener el puño cerrado.
• Si se trata de un niño, es recomendable colocar 2 dedos de la mano, debajo del codo
del paciente, para evitar que doble el brazo durante la extracción.
Extracción con jeringa
• Cuando vaya a proceder a realizar la extracción con jeringa,
tener presente el calibre a utilizar y el tamaño de la jeringa
según el volumen a extraer.
• Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º sobre
la superficie de la vena escogida y atravesar la piel con un
movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la vena.
• Apretar firmemente la jeringa, tirar el émbolo con un
movimiento continuo y suave para extraer la sangre hasta el
volumen requerido. Evite presionar fuertemente la aguja
durante la extracción.
• Aflojar la ligadura para que la sangre fluya mejor y remueva
la aguja del brazo con movimiento suave, cubrir con tórula
sin apretar el área de la punción mientras se retira la aguja.
• Presionar el algodón sobre el sitio de punción aplicando una
presión adecuada y no excesiva para evitar la formación de
hematoma.
• Llenar los tubos en su orden.
• Desechar la aguja en caja para eliminar material
cortopunzante.

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• Colocar un parche curita o un algodón con venda adhesiva en
el sitio de la punción.
Extracción con sistema de extracción al vacío
• Colocar la punta de la aguja en un ángulo de 15 a 30º
sobre la superficie de la vena escogida y atravesar la piel
con un movimiento firme y seguro, hasta el lumen de la
vena.
• Llenar los tubos en el orden correspondiente.
• Aflojar la ligadura y presione el algodón sobre el sitio de la
punción aplicando una presión adecuada y no excesiva
para evitar la formación de hematoma.
6.6 Problemas durante la extracción venosa:
Diversos problemas pueden surgir durante la colección de sangre venosa esto
pudiera conllevar a no obtenerse sangre o su colección sea incompleta.
Colocación correcta de la aguja: Coloque la aguja con el bisel hacia arriba
Cambio en la posición de la aguja. Movimiento de retroceso que la saca del
lumen venoso.
Movimiento hacia delante que atraviesa la vena.

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Movimiento de la aguja, tal que el bisel de la aguja quede contra la pared de la
vena, afectando la entrada de la sangre.
Colapso de la vena: En estos casos, afloje el torniquete para incrementar el flujo
sanguíneo, remueva la aguja ligeramente y vuelva a redireccionarla.
Formación de hematoma: Si se forma un hematoma bajo la piel adyacente al sitio
de la punción, afloje la ligadura y retire la aguja. Aplique presión firmemente
sobre el hematoma.
Sangre arterial: Pudiera suceder que se atraviese una arteria, en estos casos la
sangre se observa de un color rojo brillante. Retire la aguja y aplique presión por 5
minutos
6.7 Medidas de prevención de formación de hematomas y hemólisis:
6.7.1 Como prevenir los hematomas:
• Puncionar solamente la pared superior de la vena.
• Retirar la ligadura antes de remover la aguja.
• Escoger las venas superficiales mayores.
• Aplicar presión sobre el sitio de la punción.
6.7.2 Como prevenir la hemólisis:
La hemólisis de una muestra sanguínea puede ocurrir por diversas razones entre las
que se encuentran:
• Trauma con una aguja de calibre muy pequeño.
• Contaminación con agentes antisépticos.
• Agitación violenta o excesiva de los tubos.
• Tiempo de demora en ser analizadas las muestras o en ser separado el coágulo de
sangre.
• Presión excesiva para mejorar el flujo sanguíneo.
• En tubos no llenados al vacío, puede ocurrir hemólisis al llenarlos haciendo una fuerte
presión sobre el émbolo.

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Los componentes más afectados son aquellos cuya concentración es más alta
intracelularmente que en el plasma, por ejemplo, ión potasio, fosfato, deshidrogenasa
láctica, aspartato aminotransferasa, hierro sérico, etc. Además, la hemólisis afecta la
medición instrumental de diferentes componentes sanguíneos.
La hemólisis puede ser prevenida tomando en cuenta los siguientes elementos:
• Mezcle los tubos con aditivos anticoagulantes lentamente por 5 a 10 veces,
inmediatamente después de ser llenado el tubo.
• Acerque el bisel de la aguja a la pared interna del tubo, para evitar el choque fuerte de
la sangre contra el fondo del tubo.
• Esté seguro que el sitio de la punción esté seco del antiséptico.
• Evite una punción traumática.
• Evite la agitación vigorosa de los tubos.
• Evite el calentamiento de los tubos.
6.8 Causas de la Hemoconcentración:
• Aplicación prolongada de la ligadura. La presión hidrostática causa que algo de agua y
elementos filtrables escapen al espacio extracelular. Esto tiene efectos también sobre
el empaque celular.
• Masaje vigoroso del sitio a puncionar.
• Esclerosis u obstrucción venosa.
6.9 La punción capilar:
La sangre de la punción capilar es una mezcla de sangre arteriolar y venosa, más
que de capilar. La obtención de sangre por punción capilar es particularmente útil en las
siguientes circunstancias:
• Punción venosa es peligrosa para el paciente.
• No se puede acceder las venas recomendadas.
• Las venas se están utilizando para administrar medicamentos.
• El volumen de sangre requerido no justifica una extracción venosa.
Estas circunstancias se aplican a:
• Neonatos.
• Lactantes.
• Niños.
• Adultos con quemaduras severas.
• En pacientes muy obesos.
• En caso de terapias intravenosas.
La punción cutánea se puede llevar a cabo en:
• La superficie más lateral o más medial de la planta del pie.
• La superficie medial plantar del dedo gordo del pie.
• La superficie lateral del dedo medio o anular, preferiblemente.

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• El lóbulo de la oreja, evitando la mejilla.
6.9.1 Sitios para punción:
Sitio recomendado para punción capilar.
Punción capilar con porta-lanceta
6.9.2 Procedimiento de la punción capilar:
• Una vez escogido el sitio de la punción, dar un ligero masaje al área para concentrar la
sangre.
• Limpiar el sitio con de punción con alcohol al 70%.
• Con una mano sostener el dedo o área a puncionar y con la otra sostener la lanceta.
• Realizar la punción con la lanceta, realizando un movimiento rápido, firme y profundo.
• Después de puncionar, descartar la primera gota de sangre, que contiene líquido
tisular, limpiándolo con el algodón.
• Presionar el dedo para hacer salir la sangre, procurando que sea de manera
ininterrumpida.
• Una vez tomada la muestra, sellar los tubos capilares con sellador o los microtubos
con su tapa.
• Los microtubos y capilares con anticoagulantes deben ser invertidos suavemente por
lo menos 10 veces para evitar su coagulación.
• Colocar algodón sobre el sitio puncionado haciendo presión para detener el
sangramiento.
6.9.3 Consideraciones adicionales de la punción capilar:
• La mala circulación causa modificaciones en la concentración de ciertos componentes
sanguíneos, por ejemplo el ión potasio y del fosfato, debido a la contaminación con
líquido tisular causada por la presión que se aplica para obtener la muestra.
• Al escoger el sitio de la punción, evite hacerlo en dedos con quemaduras,
escoriaciones o cianóticos.

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6.9.4 Colección en Neonatos:
• El pie del neonato es el sitio apropiado para colectar la muestra sanguínea por punción
capilar.
• Es recomendable realizar previa limpieza del pie con una gasa tibia para incrementar
el flujo sanguíneo.
• En el siguiente diagrama se ilustra en la zona achurada los sitios de punción
recomendados.
• Limpiar el área seleccionada con alcohol al 70%.
• Mantener firmemente el pie del neonato para evitar cualquier movimiento.
• Usando una lanceta estéril realizar la punción con movimiento rápido, firme y profundo.
• Limpiar con el algodón la primera gota obtenida. Utilizar una ligera presión para
obtener las gotas de sangre requeridas. No haga presión excesiva o masajes, que
puedan provocar que la sangre se diluya con líquido tisular.
• Llenar los microtubos requeridos.
• Al terminar mantener presión sobre el sitio de la punción con gasa o algodón para
parar el sangramiento.
• Desechar la lanceta en la caja para material cortopunzante.
6.10 Orden de llenado de los tubos:
La obtención de muestras debe mantener un orden de llenado de los tubos para
evitar errores en la fase pre analítica. El orden recomendado es el siguiente:
1º Frasco de hemocultivo, si corresponde.
2º Tubos para pruebas de coagulación (Tapa celeste).
3º Tubos que contienen aditivos especiales para evitar la coagulación de la muestra:
- Tubo con heparina (Tapa verde).
- Tubo con EDTA (Tapa lila)
- Tubo con Fluoruro de sodio (Tapa gris).
4º Por ultimo los tubos sin aditivos (Tubos de tapa roja para pruebas químicas y de
serologia).
Nota: Los tubos con aditivos deben ser rápida y completamente mezclados.

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6.11 Etiquetado o rotulación:
1.-Etiquetado de los tubos debe realizarse inmediatamente posterior a la extracción
sanguínea pegando la etiqueta de código de barra correspondiente a cada tubo. Es
incorrecto etiquetar los tubos previamente a la punción. Una muestra del etiquetado de
los tubos puede ser el siguiente:
2.-Rotulación de los tubos debe realizarse previo a la punción del paciente indicando en el
tubo el nombre completo y la procedencia
6.12 Cuidados del paciente posterior a la extracción:
• Una vez realizada la extracción, asegurarse que el paciente se encuentra apto para
levantarse de la silla y retirarse, ya que algunos pacientes pueden descompensarse.
• Para evitar caídas observar al paciente y preguntar si está bien antes de indicarle que
se retire.
• Si un paciente presenta alguna descompensación hemodinámica o convulsión seguir
el procedimiento de alerta y organización de la atención de emergencia (Ver protocolo
institucional).
6.13 Conservación y transporte de la muestra:
Una vez que se haya colectado la muestra sanguínea, ésta debe ser llevada pronto al
laboratorio para su procesamiento. Algunas pruebas exigen que el suero sea separado
cuanto antes del coágulo sanguíneo, para evitar alteraciones en la composición o niveles
de algunos metabolitos.
Al momento de entregar la muestra en recepción esta debe ser acompañada por su
correspondiente orden de solicitud de examen. Los requisitos de conservación y
transporte de cada muestra se detallan en Anexo N° 1

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6.14 Instrucciones al paciente con exámenes que requieren preparación especial:
Espermiograma
Recomendaciones previas al examen:
• La abstinencia sexual previa deberá ser de 3 días (No menos de 2 días ni más de 5 días). La
muestra debe ser obtenida por masturbación.
• La fecha de la última relación sexual DEBE SER…………………………
• Usted deberá concurrir a la toma de muestras, el día…………… a las…………hrs.
• Presentar la orden en la ventanilla y esperar a que lo llamen.
Instrucciones día del examen:
La toma de muestra se realiza en el baño privado de la toma de muestra, donde le
entregarán un frasco a 37 ºC identificado con su nombre, donde usted deberá depositar el semen
obtenido. Se debe recolectar toda la muestra sin eliminar ninguna gota y avisar de inmediato al
técnico que lo atendió, una vez terminado el procedimiento.
Urocultivo y orina completa en hombres
• Tipo de muestra: Orina
• Idealmente utilizar la primera orina de la mañana.
• Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital:
- Lávese las manos con agua y jabón. Retraiga la piel del prepucio, y limpie con una mota de
algodón empapado en agua con jabón la cabeza del pene.
- Enjuague directamente con agua, o con motas de algodón empapadas en agua eliminando
todo el jabón. Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina.
Procedimiento:
• Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado sin tocar los bordes.
• Mantenga el prepucio retraído durante todo el procedimiento.
• Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño.
• Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco.
• Elimine la última parte del chorro de orina en el baño.
• El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa.
• Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
• Tape cuidadosamente el frasco y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre.
• Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas
de su obtención.
IMPORTANTE: Horario de entrega de muestras: Lunes a Viernes de 8.00 a 10:00 hrs.
Urocultivo y orina completa en mujeres
• Tipo de muestra: Orina
• Idealmente utilizar la primera orina de la mañana.
• Antes de tomar la muestra, realizar aseo de la zona genital:
- Lávese las manos con agua y jabón.
- Separando los labios genitales, lavar la vulva con una mota de algodón empapada en agua
con jabón, arrastrando siempre de delante hacia atrás.

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- Enjuagar cuidadosamente con bastante agua para eliminar los restos de jabón.
- Después del aseo, tomar inmediatamente la muestra de orina.
Procedimiento:
• Abra cuidadosamente el frasco que se le ha entregado, sin tocar los bordes.
• Comience a orinar y elimine el primer chorro de orina en el baño.
• Recolecte el segundo chorro de orina en el frasco, llenando hasta la mitad del frasco. Elimine
la última parte del chorro de orina en el baño.
• El frasco debe sujetarse para que no tome contacto con su pierna o ropa.
• Los dedos no deben tocar el borde del frasco ni su superficie interior.
• Tape cuidadosamente el frasco, y compruebe que quede bien cerrado. Colóquele su nombre.
• Trasladar la muestra al Laboratorio dentro de una bolsa plástica con hielo, antes de dos horas
de su obtención.
Coprocultivo
• Tipo de muestra: Deposición
• En medio de transporte - gelatina (Cary-Blair)
• El tubo con el medio de transporte deberá permanecer refrigerado (4ºC) hasta el momento de
la obtención de la muestra.
• Recolectar la deposición en un recipiente limpio. Si no es posible obtener deposición al
momento de obtener la muestra, introducir cuidadosamente la tórula estéril +/- 2 cms. a través
del esfínter anal, girar suavemente la tórula y retírela. Puede utilizarse deposición desde el
pañal, siempre que sea recién emitida.
• Introduzca la tórula con la deposición en el tubo con el medio de transporte, cuidando que el
algodón quede dentro del gel y cierre herméticamente el tubo con la tapa.
• Llevar lo antes posible al Laboratorio, puede permanecer a temperatura ambiente en el medio
de transporte hasta 24 horas.
Leucocitos fecales
• Tipo de muestra: Deposición fresca.
• Procedimiento:
- Obtener la muestra por eliminación espontánea.
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada
al laboratorio, rodeada en hielo, antes de dos horas de su obtención.
- Cantidad mínima requerida: Media a una cucharadita de té.
Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos):
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que

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contenga el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha
entregado por el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de
hielo.
- La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención.
Esteatocrito
• Procedimiento:
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio. Debe ser trasladada
Recolección de muestra de deposición de pañal: (para niños o ancianos)
- Sacar con la espátula de madera, la deposición más superficial y abundante que contenga
el pañal, ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
- Sacar mínimo un tercio de la espátula y depositarla en frasco de boca ancha entregado por
el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo.
Rotavirus
• Procedimiento:
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio, debe ser trasladada
el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
el laboratorio. Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo.

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Hemorragia oculta
• Procedimiento:
- Depositar la muestra en un frasco limpio entregado por el Laboratorio; debe ser trasladada
el pañal; ojalá recién emitida para evitar sea absorbida por el pañal.
el laboratorio.
- Taparlo y meterlo en una bolsa plástica, con cubos de hielo.
La muestra debe ser trasladada al Laboratorio antes de dos horas de su obtención.
Orina de 24 horas
Usted debe juntar toda la orina emitida durante 24 horas.
Procedimiento:
• El día previo al examen, a las 7:00 hrs., debe vaciar la vejiga orinando a fondo y botar esa
orina.
• De ahí en adelante debe juntar toda la orina de cada micción en el envase, durante las 24
horas hasta las 7:00 de la mañana siguiente. NO ELIMINAR NINGUNA ORINA DEL DIA DE
RECOLECCION.
• Toda la orina recolectada durante el período completo debe guardarse refrigerada y llevarla
antes de 2 horas al laboratorio. Durante el período de recolección de la orina, usted debe
ingerir 1 y 1/2 litros de agua (agua de la llave), salvo que su médico tratante disponga lo
contrario. Le solicitamos no mezclar la orina con papel higiénico, deposiciones o flujo
menstrual. Si hay presencia de este último, la recolección de orina debe realizarse una vez
finalizado el período menstrual. Si necesita obrar debe orinar primero y luego obrar.
COLOCAR SU NOMBRE EN EL ENVASE.
Prueba de tolerancia a la glucosa
Preparación del paciente:
• El día del examen debe estar en ayunas (última comida a las 20:00 del día anterior)
• Debe traer el jugo exprimido de dos limones en un frasco.
• El examen se demora dos horas, por lo tanto debe presentar su orden en ventanilla antes de
la 9.00 hrs.

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• Debe venir acompañado de un familiar
Procedimiento:
• Se le tomará una muestra de sangre basal en ayunas.
• Luego deberá ingerir en 5 minutos, una solución de glucosa con limón disuelta en agua.
• A continuación deberá esperar, en reposo, dos horas para tomar la segunda muestra de
sangre. Al término del proceso debe avisar si se siente mal por la sobrecarga de glucosa
ingerida.
Parasitológico
Tipo de Muestra: Deposición
Procedimiento:
• El paciente debe defecar en un recipiente limpio y seco, sin mezclar con orina. Si es lactante,
tomar del pañal la muestra recién emitida.
• Coloque una porción del tamaño de una nuez dentro del frasco y mezcle con el líquido que
contiene, hasta obtener una emulsión homogénea utilizando una paleta de madera. Las
muestras deben obtenerse día por medio hasta completar las tres. En caso de no poder
obtener las muestras día por medio, puede traerlas cuando complete la última muestra.
• Si observa algún gusano, debe colocarlo en un frasco limpio con agua de la llave. Dejar las
muestras a temperatura ambiente en un lugar fresco o en refrigerador a 4ºC.
IMPORTANTE: Identificar las muestras y NO DEJAR LOS FRASCOS AL ALCANCE DE LOS
NIÑOS PUES EL LÍQUIDO ES TOXICO.
Test de Graham
Instrucciones previas al procedimiento:
La aplicación de esta técnica debe ser efectuada por una persona que no sea el paciente. No se
deben aplicar pomadas o polvos-talco en la región anal durante la noche anterior.
La toma de muestra se debe efectuar a primera hora de la mañana SIN ASEO PREVIO. NO ES
DEPOSICION.
Procedimiento.
Desprenda de la placa de vidrio la tira de papel celofán (scotch transparente).
Aplique varias veces la tira de papel celofán, por el lado engomado, en todos los alrededores
del ano.
Pegue el scotch bien estirado en la placa de vidrio. No poner el nombre en el scotch.
Si detecta "pidulle", colóquelo entre el scotch y la placa de vidrio.
Cada día, envuelva en un papel aparte la placa de vidrio usada, y guárdela en el sobre
correspondiente, hasta completar los cinco.
Escriba el nombre, los dos apellidos y la edad del paciente. Y entréguela finalmente en la
recepción de la toma de muestra.

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Test de sudor
Preparación del paciente:
• El día citado debe traer lo siguiente:
- Una mamadera
- Leche, te o café (dependiendo de la edad)
- Carné de identidad
- Orden de examen timbrada en recaudación
- Una muda de ropa
• El examen se realiza en el brazo del paciente, (no se pincha), primero se estimula la
producción del Sudor, luego se recolecta este sudor en un capilar, para finalmente leer la
concentración de sal que existe en la muestra. Se demora de 30 – 60 minutos según la
condición del paciente.
Se puede solicitar repetir este examen de acuerdo al criterio médico.
Baciloscopía.
Procedimiento:
• Enjuagar la boca con agua.
• Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal.
• Depositar la muestra en frasco boca ancha limpio entregado por la Unida de Toma de
Muestra.
• Rotular el frasco con el nombre del paciente.
• Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra.
• Se debe repetir el procedimiento en días consecutivos hasta completar tres muestras,
enviándolas cada día a la Unidad de Toma de Muestra.
Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de las 10:00 AM.
Expectoración
Procedimiento:
• Enjuagar la boca con agua.
• Obtener el esputo tras una expectoración profunda, preferentemente matinal.
• Depositar la muestra en frasco boca ancha estéril entregado por la Unida de Toma de
Muestra.
• Rotular el frasco con el nombre del paciente.
• Transportar la muestra a temperatura ambiente a la Unidad de Toma de Muestra antes de dos
horas de emitida.
Nota: Entregar la muestra en ventanilla antes de las 10:00 AM.

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Urocultivo y orina completa en niños.
Debe presentarse el día _______________ a las 08:00 hrs. en la Unidad de Toma de Muestras y
traer lo siguiente:
• 2 pañales de tela o toallas.
• Una mamadera con agua azucarada o jugo.
El día que se tomará el examen no colocar talco ni pomadas en la zona genital.
6.15 Criterios de rechazo:
6.15.1 Muestras mal identificadas:
• Falta de identificación del paciente.
• Discrepancia entre identificación de orden médica y rotulación de la muestra.
• Falta de identificación del tipo de muestra.
• Falta de identificación en la orden médica del tipo de estudio solicitado.
• Falta de la orden de examen.
• Examen no se realiza en este Laboratorio
6.15.2 Muestras no adecuadas para procesamiento:
• Muestra en tubo erróneo.
• Muestra mal colectada.
• Muestra a una temperatura inadecuada.
• Muestra enviada en medio de transporte no adecuado.
• Muestra que requiere medio de transporte enviada sin el medio de transporte
necesario.
• Muestra enviada en envase no adecuado.
• Muestras derramadas.
• Muestras inadecuadas para el tipo de estudio solicitado.
• Muestras contaminadas o en descomposición visible.
6.16 Características generales del traslado de las muestras:
Las muestras deben ser transportadas en contenedores especiales con tapa y en gradillas
que impidan su derrame según tipo de muestra.
Aquellos que requieren cadena de frío deben transportarse con unidades refrigerantes en
cooler.
El personal encargado debe estar capacitado en el transporte de material biológico y debe
utilizar guantes.

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7. Flujograma: Procesos de Toma de Muestras.
Procesos operativos
Procesos de Apoyo
* Se entregara a cada paciente ambulatorio comprobante de toma de muestra que incluye fecha de entrega del resultado.
No conformidades
Gestión de
Personal
Indicadores Acciones
correctivas
Acciones
Preventivas
Auditorias
P
A
C
I
E
N
T
E
L
A
B
O
R
A
T
O
R
I
O
RECEPCIÓN de
ÓRDENES de
EXAMEN
Generación de etiquetas
Llamado del paciente
Toma de muestra
Clasificación de Muestras
Traslado y
entrega a
Recepción del
Laboratorio
Recurso
Humano
Abastecimiento Mantención
de equipos
Planta física Sistemas
informáticos
Aseo y
lavado
Bioseguridad Control de
documentos
Paciente
ambulatorio
Paciente
hospitalizado

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Manual de Toma de muestra de
Laboratorio Clínico Vigencia: Abril 2014
8. Indicadores y método de evaluación:
Indicador Porcentaje de muestras rechazadas según registro
Formula Nº de muestras rechazadas X 100
Nº total de muestras recibidas
Umbral de
cumplimiento
Excelente : 0 – 4 %
Aceptable: 5 – 8 %
Critico : 9 – 100 %
Evaluación Trimestral
Revisión de planilla de registro de rechazo de muestras de la recepción de
Laboratorio.
Indicador Porcentaje de gases arteriales y venosos transportados según instructivo
institucional
Formula Nº de gases arteriales y venosos transportados en cadena de frío / Nº total de
gases arteriales y venosos recibidos X 100.
Umbral de
cumplimiento
Excelente : 100 – 98%
Aceptable: 97 – 90%
Critico : 89 – 0%
Evaluación Trimestral
Revisión de planilla de registros de gases arteriales y venosos que se reciben en
Laboratorio de Urgencia con cadena de frío.
9. Distribución del documento:
8.1 Unidad de Calidad y Seguridad del paciente.
8.2 Laboratorio Clínico.
8.3 Policlínicos de toma de muestra.
8.4 Unidades y Servicios clínicos.

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10. Referencias bibliográficas:
• América Latina. Editores: M.L.Castillo de Sánchez y M.E.Fonseca Yerena en
colaboración con COLABIOCLI. Editorial Médica Panamericana.
• California Phlebotomy Training.
http://www.parsons.umaryland.edu/~vguy/phleb.htm
• Center for Phlebotomy Education. http://www.scpt.com/PhlebotomyViews.html
• Garza D and Becan-McBride K. Phlebotomy Handbook, 2nd Ed. Norwalk,
Connecticut: Appleton and Lange: 1989.
• Medstat Utah http://www.medstat.med.utah.edu/webpath/tutorial/PHLEB/PHLEB.html
• Mejoría Continua de la Calidad. Guía para los laboratorios clínicos de National
Committee for Clinical Laboratory Standards. Procedures for the Collection of
Diagnostic Blood Specimens by Skin Puncture. Document H4-A3. Vol. 11 No. 11,
1991.
• National Committee for Clinical Laboratory Standards; Procedures for the
Collection of Diagnostic Blood Specimens by Venipuncture, 3rd Ed. Document H3-
A3. Vol. 11 No. 10, 1991.
• Phelan, S. Phlebotomy Techniques: A Laboratory Workbook. Chicago, Ill.:
American Society of Clinical Pathologists: 1993.
• University of Iowa Hospital and Clinics, Pediatric Phlebotomy Training Manual.
1994.
• University of Iowa Hospital and Clinics, Phlebotomy Training Manual. 1994.
• Virtual Hospital: CLIA . Pre-Analytical Factors Affecting Laboratory,
http://www.vh.org/Providers/CME/CLIA/Phlebotomy/Phlebotomy.html
• Virtual Phlebotomy: A Computer Aided Course of Instruction.
http://www.phlebotomy.com
• W.G Guder, S. Narayanan, H. Wisser, B. Zawta, “simples from the patient to the
laboratory”, 3rd Ed. Wiley-VCH, 2003
11. Anexos:
11.1 Conservación y transporte de muestras.
11.2 Orden de examen.
11.3 Registro planilla de flebotomista.
11.4 Registro de rechazo de muestras.
11.5 Registro recepción de muestras de laboratorio clínico.
11.6 Registro de actividades diarias de toma de muestras.

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Anexo 1: Conservación y transporte de muestras.
EXAMENES MUESTRA REQUISITOS ENVASE TRASLADO Y CONSERVACIÓN LUGAR PROCESO FONO OBSERV. RESULTADOS
ADA (Adenosindeaminasa) Liquidos Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml Envio rápido T°
.amb Química 242003 7 días
ACIDO LACTICO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo Lila, 5 ml sin ligadura Envio rápido, cadena frio Química 242003 En el día
ACIDO URICO (Uricemia) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
ACIDO URICO (Uricosuria) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco / Bidón T. amb Química 242003 En el día
ACIDO VALPROICO Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
ADENOCORTICOTROFINA (ACTH) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 días
ALDOSTERONA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 días
ALBUMINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
ALFAFETOPROTEINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 2 días
AMILASA (sangre) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
AMILASURIA (orina) Orina Orina aislada o 24 hrs. Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio T. amb Química 242003 En el día
AMONIO (sangre) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml Envío rápido, cadena de frio Química 242003 En el día
ANDROSTENIDIONA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 días
ANTIGENEMIA CMV (Citomegalovirus) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb J.J. AGUIRRE 9788522 Carta Resg. SDA 24 a 72 horas
APE Total (PSA Total) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 2 días
Ac.ANCA (anti PR3 - anti MPO) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
Ac. ANTICITRULINA (CCP) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
Ac.ANTI - DNA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIENDOMISIO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIMITOCONDRIALES Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIMUSCULO LISO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC. ANTINUCL. SCREEN, ANA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTINUCL. IFI Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTICENTROMERO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTICARDIOLIPINA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTIPEROXIDASA (TPO) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTITRANSGLUTAMINASA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTITIROGLOBULINA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTITIROIDEOS Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTI ENA Screen(Ro-La-Scl-Sm-Jo1) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
AC.ANTI ENA Perfil(Ro-La-Scl-Sm-Jo1) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
BANDAS OLIGOCLONALES (Lectroforésis) LCR Sin ayuno Tubo tapa Roja, 2ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
BHCG CUALITATIVA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
BHCG CUANTITATIVA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
BETA 2 MICROGLOBULINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
BILIRRUBINA (total, directa e indirecta) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
BICARBONATO EN SANGRE Sangre Venosa Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Envío rápido, cadena de frio Química 242003 En el día
CALCIO (Calcemia, Ca) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CALCIO IONICO (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Jeringa o tubo hep. de litio Envío rápido, cadena de frio Química 242003 En el día
CALCIURIA (calcio en orina) Orina Aislada o de 24 hrs Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio T. amb Química 242003 En el día
CARBAMAZEPINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 244550 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
CARIOGRAMA (Sangre) Sangre Venosa Sin ayuno Jeringa con heparina de litio, 5 mL T. amb U.CATOLICA 3543000 Resguardo SDA 1 a 2 semanas
CARIOGRAMA EN LÍQ. AMNIÓTICO L.Amniótico Sin ayuno 2 jeringas s/anticoagulante 10 mL c/u T. amb U.CATOLICA 3543000 Resguardo SDA 1 a 2 semanas
CEA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
Ca 125 Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
CELULAS INCLUSION CMV Muestra Orina Sin Ayuno Frasco En cadena frio Orina 242042 En el día
CETONEMIA (cetonas en sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde T. amb Quimica 242003 En el día
CETONURIA (cetonas en orina) Muestra Orina Orina aislada Frasco Esteril o Bidón T. amb Orina 242042 En el día
CICLOSPORINA Basal (Co) Sangre Venosa Sin dosis matinal Tubo tapa Lila , 5 ml En cadena frio Química 242003 24 horas
CICLOSPORINA Post carga ( Co 2 ) Sangre Venosa 2 hrs post Dosis Tubo tapa Lila , 5 ml En cadena frio Química 242003 48 horas
INSTRUCTIVO TOMA DE MUESTRAS EXAMENES LABORATORIO CLINICO HSJD

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CITOLÓGICO DE LAVADO BRONCOALV. LBA Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
CISTICERCOSIS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
CD 4 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb J.J. AGUIRRE 9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs 10 días
CARGA VIRAL VIH Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 6 ml Cadena de frio J.J. AGUIRRE 9788522 Martes y Jueves hasta 10:30 hrs 10 días
CHAGAS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
CHAGAS PCR Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml Cadena de frio ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
CITOMEGALOVIRUS (IgG-IgM) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 7 días
CK TOTAL Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CK MB Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CLEARENCE CREATININA 202003 En el día
CREATININA(sangre) Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
CREATININA (orina) Muestra Orina Orina aislada o de 24 hrs. Frasco o Bidón T. amb Química 242003 En el día
COLESTEROL Sangre Venosa Ayuno Estricto 12 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
COLESTEROL HDL- LDL Sangre Venosa Ayuno Estricto 12 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
COMPLEMENTO C3 - C4 Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 7 dias
COLINESTERASA Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa verde, 5 ml Envío rápido, T. amb Química 242003 En el día
CORTISOL PLASMATICO AM - PM Sangre Venosa Sin Ayuno a las 8 y 16 hrs Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
CORTISOL LIBRE URINARIO Orina Orina de 24 hrs Bidón T. amb H.F.BULNES 281580 Diuresis medida 3 a 4 días
DHEA (Dehidroepiandrosterona) Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
DIMERO D Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Celeste Cadena de frio Coagulación 242003 Previo aviso a Lab. Coagulación En el día
ELISA TP (Treponema) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Serologia 242332 24 horas
EOSINOFILOS URINARIOS Orina Sin Ayuno Frasco T. amb Hematología 241999 En el día
ESPERMIOGRAMA Semen 3 Días abstinencia sexual Frasco Estéril Envío rápido, 37 °
C Lab. Koch 242122 Previo aviso a Laborato rio 24 horas
ESTEATOCRITO Deposición Régimen sin grasas Frasco pesado en lab. T. amb Química 242003 24 horas
ESTRADIOL (17-Beta Estradiol) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
ELECTROLITOS, Na,K,Cl (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
ELECTROLITOS (orina) Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco estéril/bidón solic. Laboratorio T. amb Química 242003 En el día
EFP(electroforesis proteínas) SANGRE Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
EFP(electroforesis proteínas) ORINA Muestra Orina Orina de24 hrs Bidón T. amb Inmunología 242332 Diuresis medida 1 a 7 dias
EFP(electroforesis proteínas) LCR LCR Sin ayuno Tubo tapa Roja, 2ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 días
FACTOR REUMATOIDEO Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
FERRITINA Sangre Venosa Ayuno de 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 202003 En el día
FENITOINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
FENOBARBITAL Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Última dosis (hora), peso, talla 2 días
FIBRINOGENO Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Celeste Cadena de frio Coagulación 242003 En el día
FIERRO Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
FOSFATASA ALCALINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
FOSFORO (plasma) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
FOSFORO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco estéril/Bidónsolic. Lab T. amb Quimica 242003 En el día
FSH (Hormona foliculo estimulante) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
FTA-ABS / MHA TP Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días
GASES ARTERIALES Sangre Arterial Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Envío rápido, cadena frío Quimica 242003 En el día
GASES VENOSOS Sangre Venosa Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Envío rápido, cadena frío Quimica 242003 En el día
GENOTIPO VIH -1 Sangre Venosa Sin Ayuno Tupo tapa Lila,5 ml T. amb., Envío antes 2 hrs. J.J. AGUIRRE 9788522Formulario especial, Carta Resg. SDA 1 mes
GGT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GLUCOSA (plasma) Sangre Venosa Ayuno estricto 8 hrs. Tubo tapa Gris, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GLUCOSA (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco o Bidón T. amb Orina 242003 En el día
GLUCOSA POST PRANDIAL Sangre Venosa 2 hrs post Desayuno liviano Tubo tapa Gris, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GLOBULINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
GOT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
MEDICION SIMULTANEA DE CREATININA EN SANGRE Y EN ORINA. Debe consignarse el PESO y TALLA del paciente Orina

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GPT Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
HEMATOCRITO Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
HEMOGLOBINA GLICOSILADA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio Hematología 241999 1 a 4 días
HEMOGLOBINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
HEMOGRAMA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
HEMOSIDERINA Médula Osea Sin Ayuno Laminas identificadas T. amb Hematología 241999 7 dias
HEPATITIS B Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Serología 242332 1 día
HEPATITIS C Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Serología 242332 1 día
HIDATIDOSIS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 8 a 15 días
HLA-B 27 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 12 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 10 días
HLA-B 5701 (Protocolo) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 5 ml T. amb U.CATOLICA 3543000 Formulario Especial 10 días
HTLV 1 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 10 días
HORMONA CRECIMIENTO (HGH,GH,HC) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 3 a 4 dias
INMUNOGLOBULINAS (A,G,M,E) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Química 242003 1 a 7 dias
INDICE PROTEINURIA/CREATININURIA Muestra Orina Orina aislada Frasco T. amb Orina 242003 En el día
INDICE MICROALBUMINURIA/CREATININU. Muestra Orina Orina aislada Frasco T. amb Orina 242042 En el día
INDICE ALBUMINA/GLOBULINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
IGF 1 (Somatomedina) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
IGFBP 3 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
INMUNOFIJACIÓN (IFIX)sangre Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
INMUNOFIJACIÓN (IFIX)orina Orina Orina de 24 hrs Bidón T. amb Inmunología 242332 1 a 7 dias
INSULINA Sangre Venosa Ayuno 12 hrs Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
INSULINA, Curva de Sangre Venosa Post ingesta glucosa Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 Identif. 1 y 2°muestra En el día
LAMOTRIGINAS Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb I.NEUROCIR 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 horas
LDH Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 242003 En el día
LH (Hormona Luteinizante) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
LIPASA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ CEFALO RAQ. quimico LCR Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 1 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ CEFALO RAQ. citológico LCR Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 1 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. AMNIOTICO quimico Liq.Amniótico Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ. AMNIOTICO citológico Liq.Amniótico Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. ASCITICO quimico Liq.Ascitico Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ. ASCITICO citológico Liq.Ascitico Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQUIEO PLEURAL químico Liq.Pleural Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ.PLEURAL citológico Liq.Pleural Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. PERICARDICO quimico Liq.Pericardico Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ. PERICARDICO citológico Liq.Pericardico Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ.PERITONEAL quimico Liq.Peritoneal Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
LIQ.PERITONEAL citológico Liq.Peritoneal Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LIQ. ARTICULAR (Sinovial) Liq.Articular(sinovial) Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Química 202003 Sólo glucosa En el día
LIQ. ARTICULAR (Sinovial) Citologico Liq.Articular(sinovial) Sin Ayuno Tubo tapa Lila,5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
LITIO Sangre venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb CRS 242676
MAGNESIO (sangre) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
MAGNESIO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco estéril/Bidónsolic. Lab T. amb Quimica 242003 En el día
MICROALBUMINURIA Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco / Bidón T. amb Orina 202042 En el día
MIELOGRAMA Médula Osea Sin Ayuno Láminas identicadas T. amb Hemato-Onco 241999 7 días
NITROGENO UREICO (sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
NITROGENO UREICO (orina) Muestra Orina Aislada o de 24 hrs Frasco/Bidón T. amb Quimica 242003 En el día
OXCARBAMAZEPINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb I.NEUROCIR 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 horas
ORINA COMPLETA Muestra Orina Sin Ayuno Frasco cadena de frio Orina 242042 En el día

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OSMOLALIDAD (plasma) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
OSMOLALIDAD (orina) Orina Orina Aislada Frasco T. amb Quimica 242003 En el día
PAUL BUNELL, MONOTEST Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
PCR COXIELA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio ISP 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días
PCR H1N1 Sec.nasofaringea Sin Ayuno Tubo con PBS cadena de frio Biol. Molecular 242332 1 día
PCR HPV (Virus Papiloma Humano) M. Endocervical Sin Ayuno Tubo con PBS cadena de frio Biol. Molecular 242332 Autorización Doctor Ginecología 1 a 7 días
PCR HERPES 1 y 2 (LCR) LCR Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 1 ml cadena de frio Biol. Molecular 242332 1 a 4 días
PCR HERPER 1 y 2 (Sangre) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa lila, 5 ml cadena de frio Biol. Molecular 242004 1 a 7 días
PCR TRASLOCACIÓN 15:17 (LPM) Med. Osea o S.V. Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio Biol. Molecular 242332 2 semanas
PCR TRASLOCACIÓN 9:22 (LMC) Med. Osea o S.V. Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio Biol. Molecular 242332 2 semanas
PCR VIRUS EPSTEIN BARR Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml cadena de frio J.J. AGUIRRE 9788522 Carta Resg. SDA, Form. Especial 24 a 48 hrs.
PERFIL HEMATOLOGICO Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
PH en LIQUIDOS Líquido Sin Ayuno Jeringa con heparina de litio Cadena frío Quimica 242003 En el día
PH URINARIO Muestra Orina Sin Ayuno Frasco Cadena frio Quimica 242003 En el día
PIRIMIDONA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb I.NEUROCIR 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 hrs.
PREALBUMINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
PROGRAF (TACROLIMUS) Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Lila, 5 ml cadena frio, protegido luz. H. C. MACK. 5755958 Última dosis (hora), peso, talla 24 horas
PROLACTINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T.amb H.F.BULNES 281580 En el día
PROGESTERONA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
17-OH-PROGESTERONA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
PROTEINA C REACTIVA (PCR) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde , 5 ml T.amb Quimica 242003 En el día
PROTEINURIA Muestra Orina Aislada o de 24 hrs. Frasco / Bidón T.amb Orina 242042 En el día
PROTEINAS TOTALES Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
PTGO (prueba tolerancia) Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Gris T. amb Quimica 242003 Identificar 1 y 2°muestra En el día
PARATOHORMONA (PTH) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila, 5 ml T.amb H.F.BULNES 281580 Se procesan jueves 1 a 7 días
PSA total (Antígeno Prostático) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
PSA libre Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
RAPAMUNE Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Lila, 5 ml cadena frio, protegido luz. U.CATOLICA 3543000 Tarjeta solicitud Especial 1 día
RETICULOCITOS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
RUBEOLA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T.amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 12 días
SCREENING HEMOLISIS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo Lila,Verde,Rojo T.amb Hemato-Onco 241999 3 días
SUBPOBLACIÓN LINFOCITARIA NO VIH Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Lila , 5 ml T. amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 12 días
TEOFILINA Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb I.NEUROCIR 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 hrs.
TEST DEL SUDOR Sudor Sin ayuno Capilar especial T.amb Serologia 242332 Lunes a Jueves En el día
TIEMPO DE PROTROMBINA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Celeste, 5 ml cadena de frio Coagulación 242003 En el día
TIEMPO PARCIAL TROMBOPLASTINA Sangre Venosa Sin ayuno Tubo tapa Celeste, 5 ml cadena de frio Coagulación 242003 En el día
TIOPETAL Sangre Venosa Sin Ayuno, Sin dosis matinal Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb I.NEUROCIR 5754827 Última dosis (hora), peso, talla 24 a 72 hrs.
TRIGLICERIDOS Sangre Venosa Ayuno 12 hrs Tubo tapa Verde, 5 ml T. amb Quimica 242003 En el día
TOXOCARIOSIS Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T.amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días
TOXOPLASMOSIS (IgG - IgM) Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Quimica 242003 1 a 7 días
TRANSFERRINA Sangre Venosa Ayuno 8 hrs. Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Quimica 242003 24 horas
T4 Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
T4 LIBRE Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
TEST DE BORRELIA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T.amb ISP 3507244 Formulario Especial ISP 7 a 30 días
TESTOSTERONA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
TSH Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
TIROGLOBULINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Amarilla, 5 ml T. amb H.F.BULNES 281580 En el día
VANCOMICINA Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb H. C. MACK. 5755958 Orden Especial 24 horas
VHS Sangre Venosa Ayuno 8 hrs Tubo tapa Negra, 5 ml T. amb Hematología 241999 En el día
VIH Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Verde , 5 ml T.amb Serologia 242332 Consentimiento informado 24 horas
VDRL sangre Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 5 ml T. amb Serologia 242332 24 horas
VDRL LCR LCR Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 2 ml T. amb Serologia 242332 1 a 4 días
Viscosidad sanguinea Sangre Venosa Sin Ayuno Tubo tapa Roja, 2 ml T. amb Hematología 241999 En el día

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* Todo examen solicitado para envío al Instituto de Salud Publica debe enviarse con el formulario
correspondiente, emitido por dicha entidad y con todos los datos requeridos por este, los cuales
deben ser llenados por el profesional solicitante.
Anexo 2: Orden de examen.

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Anexo 3: Registro planilla de flebotomista.
TV: Tubo verde, TL: T.lila, TC: T.celeste, TR: T.rojo, TN: T.VHS, TG: T.gris
N°de Tubos por Paciente
Hr Nombre TV TL TC TR TN TG Rut Teléfono

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Anexo 4: Registro de rechazo de muestras.
Fecha/n°
ingreso
Paciente/ RUT Procedencia Motivo de Rechazo Responsable

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Anexo 5: Registro recepción de muestras de laboratorio clínico.
Microb. Hemogr. Orinas TAC Tx Hb glic. Gases
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15
16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30
31 32 33 34 35 36 37 38 39 40 41 42 43 44 45
46 47 48 49 50 51 52 53 54 58 56 57 58 59 60
61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75
76 77 78 79 80 81 82 83 84 85 86 87 88 89 90
91 92 93 94 95 96 97 98 99 100 101 102 103 104 105
106 107 108 109 110 111 112 113 114 115 116 117 118 119 120
121 122 123 124 125 126 127 128 129 130 131 132 133 134 135
136 137 138 139 140 141 142 143 144 145 146 147 148 149 150
151 152 153 154 155 156 157 158 159 160 161 162 163 164 165
166 167 168 169 170 171 172 173 174 175 176 177 178 179 180
181 182 183 184 185 186 187 188 189 190 191 192 193 194 195
196 197 198 199 200 201 202 203 204 205 206 207 208 209 210
211 212 213 214 215 216 217 218 219 220 221 222 223 224 225
226 227 228 229 230 231 232 233 234 235 236 237 238 239 240
241 242 243 244 245 246 247 248 249 250 251 252 253 254 255
256 257 258 259 260 261 262 263 264 265 266 267 268 269 270
271 272 273 274 275 276 277 278 279 280 281 282 283 284 285
286 287 288 289 290 291 292 293 294 295 296 297 298 299 300
301 302 303 304 305 306 307 308 309 310 311 312 313 314 315
316 317 318 319 320 321 322 323 324 325 326 327 328 329 330
331 332 333 334 335 336 337 338 339 340 341 342 343 344 345
346 347 348 349 350 351 352 353 354 355 356 357 358 359 360
361 362 363 364 365 366 367 368 369 370 371 372 373 374 375
376 377 378 379 380 381 382 383 384 385 386 387 388 389 390
391 392 393 394 395 396 397 398 399 400 401 402 403 404 405
406 407 408 409 410 411 412 413 414 415 416 417 418 419 420
421 422 423 424 425 426 427 428 429 430 431 432 433 434 435
436 437 438 439 440 441 442 443 444 445 446 447 448 449 450
451 452 453 454 455 456 457 458 459 460 461 462 463 464 465
466 467 468 469 470 471 472 473 474 475 476 477 478 479 480
481 482 483 484 485 486 487 488 489 490 491 492 493 494 495
496 497 498 499 500 501 502 503 504 505 506 507 508 509 510
511 512 513 514 515 516 517 518 519 520 521 522 523 524 525
526 527 528 529 530 531 532 533 534 535 536 537 538 539 540
541 542 543 544 545 546 547 548 549 550 551 552 553 554 555
556 557 558 559 560 561 562 563 564 565 566 567 568 569 570
571 572 573 574 575 576 577 578 579 580 581 582 583 584 585
586 587 588 589 590 591 592 593 594 595 596 597 598 599 600
601 602 603 604 605 606 607 608 609 610 611 612 613 614 615
616 617 618 619 620 621 622 623 624 625 626 627 628 629 630
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EXÁMENES DE BIOQUÍMICA

APL 1.2
Edición: 2
Fecha: Junio 2010
Página 35 de 35
Laboratorio
Clínico
OCCIDENTE
Anexo 6: Registro de actividades diarias de toma de muestras.
Material Entregado Material Utilizado Material excedente
PERSO
NAL
N°de
Pctes
N°de
TAC
TX GSA
GSV TV TL TC TR TN TG TV TL TC TR TN TG TV TL TC TR TN TG
TPM 1 30 30 15 30 10 0
TPM 2 30 30 15 30 10 0
TPM 3 30 30 15 30 10 0
TPM 4 30 20 15 30 10 0
TPM 5 30 20 15 30 10 0
TPM
Urgenci
15 15 15 15 8 0
TPM
Apoyo
1
10 10 10 10 5 0
A TPM
Apoyo
2
10 10 10 10 5 0
TPM
Apoyo
3
10 10 10 10 5 0
Total

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