Informe final de bioterio

"AÑO DE LA PROMOCIÓN DE LA INDUSTRIA RESPONSABLE Y DEL
COMPROMISO CLIMÁTICO"
“INFORME FINAL DE BIOTERIO”
CURSO: Nutricion y planificacion.
CICLO: VI
DOCENTE: ING. CASTILLO BENITES Darwin.
INTEGRANTES:
 MEJIA ROCHA Johann Luigi.
 MUÑOZ ROJAS, Andrea Gisela.
 VEGA VIERA, Jhonas Abner.
 PRIETO ZARE SHYLLA NATALY
 VASQUEZ AGUIRRE Gabriel Anthony.
FACULTAD DE INGENIERÍA
ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE
INGENIERÍA AGROINDUSTRIAL
NUEVO CHIMBOTE - PERÚ

COMPOSICIÓN BIOQUÍMICA DE
PRODUCTOS AGROINDUSTRIALES
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CARACTERISTICAS GENERALES Y TAXONOMIA DE LOS ROEDORES
Los roedores son animales nocturnos que se adaptan con facilidad a su medio
ambiente. No son animales agresivos. Poseen picos de actividad durante periodos
oscuros. Sus ojos están adaptados a la oscuridad y tiene muy poca visión de color.
(Zúñiga et al, 2001; Van Zutphen et al, 1999; Olivares, 1996; Osias, 2008).
Las crías de los roedores (excepto la de los cobayos), nacen con la piel de color
rojizo, con los ojos y idos cerrados; la transparencia de la piel permite la
observación del corazón, el hígado el bazo y la leche del estómago. A los 2 – 3 días,
el color de la piel se aclara y se despegan las orejas; a la semana están cubiertas
por un fino pelaje; hacia los días 10 – 12, los incisivos superiores e inferiores han
hecho erupción y los pezones inguinales son visibles en la hembras, en los días
siguientes (13-16), abren los ojos, la edad óptima para el destete oscila entre los 21
y 25 días de edad. El destete es el momento adecuado para proceder al alojamiento
de las crías, separándolas por sexo. (Zúñiga et al, 2001; Van Zutphen et al, 1999;
Olivares, 1996; Osias, 2008).
La determinación del sexo en las crías puede realizarse desde el nacimiento
considerando la distancia entre la papila genital y el ano. El los machos, esta
distancia suele ser aproximadamente el doble que en la hembras, conocimiento
que puede aprovecharse para igualas las diferentes camadas. En estadios
posteriores, se pueden identificar ambos sexos por la presencia de mamas en las
hembras, en el caso de los machos, por el descenso delos testículos a la zona
inguinal, a partir del día catorce ante una ligera presión en la zona abdominal.
(Zúñiga et al, 2001; Van Zutphen et al, 1999; Olivares, 1996; Osias, 2008).
Orden Suborden Familia Genero/Especie
Rodentia
Myomorpha
Muridae
Mus musculus (raton común)
Rattus norvegicus (rata noruega)
Criceridae
Mesocricetus aratus (hámster
sirio)
Meriones unguiculatus
Histricomorpha Caviidae Cavia porcellus
Cuadro. Taxonómico (Zúñiga et al, 2001; Van Zutphen et al, 1999; Olivares,
1996; Osias, 2008).

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MANEJO Y GENERALIDADES BIOLOGICAS DE LA RATA
Las ratas comenzaron a utilizarse a mediados del siglo XIX, y proceden de la rata
noruega Raattus norvegicus. El nombre de la “rata marrón” conduce a error ya que
su color puede variar. De la raza salvaje se derivan dos poblaciones: (Zúñiga et al,
2001; Van Zutphen et al, 1999).
- Rata Long Evans: es más pequeña que la rata wistar o Sprague-Dawley, de
pelo negro en cabeza y cuello, el resto del cuerpo es de color blanco, por lo
que se le conoce como rata encapuchada (Zúñiga et al, 2001; Van Zutphen
et al, 1999; CINESTAV, 2009)
- Ratas Albinas: Sprague-Dawley, ratas más largas con cabeza y cola más
larga que el cuerpo, crece más rápidamente que la rata Wistar. Ora rata
albina es la Wistar, ratas con orejas más grandes, cabeza más ancha y cola
de menos longitud que su cuerpo. (Zúñiga et al, 2001; Van Zutphen et al,
1999; CINESTAV, 2009).
Las primeras cepas de rata utilizadas para la investigación biomédica
fueron desarrolladas en el instituto de Wistar de Filadelfia. Muchas de las
cepas consanguíneas que se emplean en la actualidad son descendientes de
estas cepas albinas (Wistar)

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- La rata es el vertebrado usado con más frecuencia después del ratón y se
utiliza sobre todo en medicina, nutrición, toxicología, estudios de sistema
nerviosos y dela conducta animal. En la actualidad existen un registro de
más de 400 cepas consanguíneas definidas genéticamente y unas 50 cepas
no consanguíneas. . (Zúñiga et al, 2001; Van Zutphen et al, 1999;
CINESTAV, 2009).
CARACTERÍSTICAS ANATÓMICAS Y FISIOLÓGICAS
La anatomía y fisiología de la rata es muy semejante a la del ratón. Las nefrinas
de la corteza del riñon están bastante cercanas a la superficie y es bastante fácil
acceder a ellas. Las glnadulas suprarrenales se enceuntran alejadas de los
principales vasos sanguíneos, lo que hace que la adrenalectomía en la rata sea
menos arriesgada que po ejemplo, en el conejo. (Van Zutphen et al, 1999;
Villanueva y Hernández, 2004).
Las ratas tienen una vista limitada. Tienen un hígado pentabulado, pero a
diferencia de los ratones carecen de vesícula biliar. Las glándulas suprarrenales
están mas alejados de los grandes vasos. (Van Zutphen et al, 1999;
Villanueva y Hernández, 2004).
En el alveolo ocular se encuentra la glándula Harder, que produce una
secreción rica en porfirinas, de color marrón, que lubrica el ojo. (Zúñiga et al,
2001; Van Zutphen et al, 1999).
 Hígado pentalobulado
 Carecen de vesícula
Biliar
 No regurgitan ni
vomitan
 Glándulas del ojo
secreciones de color
marrón.

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Datos Fisiológicos de la Rata
(Zúñiga et al, 2001; CINESTAV, 2009; Villanueva y Hernández, 2004; Arriaga, 2001;
Fuentes et al, 2008; Vásquez, 2009; Batchelor et al, 2005).
DIFERENCIAS ENTRE RATAS Y HUMANOS
Las enfermedades coronarias son las grandes asesinas
de los adultos americanos. Pero las ratas son muy
diferentes de los humanos en las formas en las que sus
cuerpos procesan la grasa y el colesterol.
Por ejemplo, las ratas tienen una actividad mucho mayor
de la enzima hepática 5-desaturasa, que se utiliza en el
cuerpo para cambiar la estructura química de las grasas
(Stone KJ, et. al 1979).
En humanos, los ácidos bílicos son formados por el colesterol en el hígado, después
excretados a la vesícula biliar y de allí al intestino. Las ratas no tienen vesícula
biliar (Kohn DF et. al 1978), por lo que sus ácidos bílicos son secretados
directamente al intestino. Las ratas fabrican un ácido bílico llamado ácido
muricólico, que no producen los humanos (Thomas JN et. al 1984). Los
EVENTO DATOS
Temperatura corporal 35.9 – 37.5 ºC
Frecuencia Cardiaca 250-600 por minuto
Frecuencia respiratoria 66-144 por minuto
Peso Macho adulto: 300-500 gr
Hembra adulta: 200-400 gr
Recién nacido: 5 gr
Consumo de agua 24-60 ml por día, o 10-12 ml por cada
100 gramos de peso corporal por día
Consumo de alimento 15-30 gr por día, o 5-6 gr por cada
100 gramos de peso corporal por día
Heces Dura y alargada de color marrón
con extremos redondeados
Orina Transparente y amarilla
Duración de vida 2.5-3.5 años
Numero de cromosomas 42

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investigadores creen que el ácido muricólico es responsable de la capacidad de las
ratas de eliminar rápidamente el colesterol del cuerpo (Jon A. el. al, 1993).
Los resultados de estas diferencias son que, al contrario que los humanos, las ratas
son muy resistentes a los cambios del suero del colesterol, y también son
resistentes a las placas en las arterias inducidas por la dieta. Para producir estas
lesiones en ratas, deben ser alimentadas con una combinación de colesterol,
thiouracil (una droga anti-tiróidea), caseína, y ácido cólico (un ácido biliar)
(Stehbens WE, et. al, 1983). Los humanos sólo necesitan añadir grasa a su dieta
para mostrar tales lesiones
Las ratas tienen niveles mucho más altos de la enzima ATP en el corazón, que es
importante en la energía del metabolismo, por lo que son muy resistentes a las
drogas derivadas de la digitalis usadas en humanos para los fallos cardíacos
(Bishop SP) También tienen una diferente anatomía en el sistema cardiovascular
(Bishop SP), y su ratio normal de pulsaciones es de 300 a 500 pulsaciones por
minuto (Kohn DF et. al 1978).
- Otras diferencias importantes
Las ratas necesitan el 20-27% de sus calorías como proteínas para una dieta de
mantenimiento (Harkness JE, et. al 1983). Los humanos requieren menos de la
mitad de esta cantidad.
Las ratas jóvenes crecen 5-6 gramos por día en peso, que es el 10% de su peso
corporal. Los niños crecen mucho más despacio, unos 5 gramos por día, lo que es
el 0,00025% de su peso corporal (Lindsey JR. et. al, 1979).
Al contrario que los humanos, las ratas tienen un tejido mamario que se extiende
desde el principio del pecho hasta el abdomen.
DIETA DEL ANIMAL
Los alimentos se suministran normalmente en la
forma de pellets de 4-5 gramos.
Las pellets son duras y tiene que ser roídas por los
animales. Esto ayuda a desgastar sus incisivos.

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Normalmente se pone una cantidad suficiente de pellets para que dure varios días
en el área designada de la jaula. A los roedores generalmente se les suministra
alimento y agua ad limitum. Esto significa que se les suministra alimento para
animales y agua continuamente para que lo consuma a voluntad. El agua se puede
proveer mediante una botella de agua una valvula automática de suministro de
agua ubicada a nivel dela jaula. (Zúñiga et al, 2001; Villanueva y Hernández,
2004; Van Zutphen et al, 1999; Osias, 2008).
- Componentes dietéticos y funciones de los alimentos
El cuerpo humano se compone de agua, aminoácidos (proteínas), ácidos grasos
(lípidos), ácidos nucleicos (ADN/ARN) y carbohidratos (azúcares y fibra), cada
uno compuesto de carbono, oxígeno, nitrógeno, hidrógeno y fósforo y pueden o
no contener minerales tales como calcio, hierro y zinc. (Anderson et.al, 2007).
Ahora, el cuerpo requiere de una dieta alimenticia que contenga nutrientes que
permitan el continuo trabajo metabólico estos son:
 Carbohidratos: Es un combustible de energía para el calor corporal y el
trabajo.
 Grasas: Combustible energético y producción de ácidos grasos esenciales.
 Proteínas: Crecimiento y reparación.
 Partículas indigeribles y no absorbibles, incluyendo fibra: Forma un
vehículo para otros nutrientes, agregan volumen a la dieta, suministran un
hábitat para la flora bacteriana y ayudan a la eliminación adecuada de
desechos.
 Minerales: Desarrollo de tejidos corporales, procesos metabólicos y
protección.
 Vitaminas: Procesos metabólicos y de protección.
Cada uno de estos nutrientes se encuentra en su mayoría en alimentos básicos
como arroz, maíz y trigo, clasificados dentro de los carbohidratos los cuales sirven
como fuente de energía. Las frutas, verduras, leche, carnes, grasas y dulces,
también tienen de estos macronutrientes y micronutrientes responsables de un
balance alimenticio en el ser viviente (Latham et.al, 2001).

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GASTO ENERGÉTICO
Cada alimento ingerido contiene energía, la cual va a
ser almacenada y gastada por el organismo. La tabla,
muestra la entrada de los alimentos de manera
cualitativa y cuantitativa incluyendo el oxígeno, el cual
va a los pulmones. La salida de los compuestos simples
proviene de productos de oxidación (catabolismo) de
los compuestos ingeridos (urea y amonio como
compuestos nitrogenados). Por lo tanto, la tasa de flujo
catabólico está determinada por el gasto energético,
pero podría variar si en la utilización de la energía por ejemplo hay una
contracción muscular al hacer ejercicio. Entonces, la ingesta calórica que son las
calorías contenidas en el alimento y absorbidas en el intestino se determinarían
por el gasto energético previo.
El organismo tiene como mecanismo de defensa a cualquier respuesta externa
unas reservas y estas son de carbohidratos la cual se reserva en forma de
glucógeno, almacenado en todas las células y en mayor parte en el musculo.
También otra reserva son los lípidos distribuidos en diferentes lugares del cuerpo
humano estos son: grasa subcutánea, perirrenal, gonadal, intraperitoneal, etc. Su
ventaja es que se oxidan y proveen más calorías (9Cal/g) comparado con los
carbohidratos (4Cal/g). Las proteínas también son una fuente de reserva que se
encuentra en un 30-40% del peso corporal,las cuales no se consumen en su
totalidad, por ejemplo para una persona que pese 70Kg solo 10Kg representan la
cantidad proteica del cuerpo (Racotta et.al, 2001).
ENTRADAS SALIDAS
Carbohidratos (CHO) Bióxido de Carbono
Lípidos (LIP) MATERIA Agua
Proteínas (PRO) Productos nitrogenados
Oxigeno (O2)
Energía Química en CHO,
LIP y PRO
ENERGIA Síntesis orgánica
Contracción Muscular
Ciclos de sustrato
Producción de Calor
Tabla 1 Entradas y salidas de materia y energía.

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PROTEINA
Las proteínas incluyen un grupo grande de compuestos
químicos similares pero con propiedades fisiológicas
diferentes. Se diferencian las proteínas vegetales de las
animales y de estas cada animal tiene proteínas
características y aún existen diferencias entre las proteínas
de cada órgano. Son constituyentes importantísimos del
cuerpo animal por lo cual se requiere suministro continuo y abundante para las
funciones de crecimiento, reposición de tejidos, reproducción y producción.
La transformación de la proteína alimenticia en proteína corporal es una parte
muy importante de la nutrición. La característica más importante que distingue las
diversas proteínas desde el punto de vista nutricional, son los aminoácidos que la
componen.
Las proteínas son macromoléculas las cuales desempeñan el mayor número de
funciones en las células de los seres vivos. Forman parte de la estructura básica de
tejidos (músculos, tendones, piel, uñas, etc.), durante todos los procesos de
crecimiento y desarrollo, crean, reparan y mantienen los tejidos corporales;
además desempeñan funciones metabólicas (actúan como enzimas, hormonas,
anticuerpos) y reguladoras a saber: asimilación de nutrientes, transporte de
oxígeno y de grasas en la sangre, eliminación de materiales tóxicos, regulación de
vitaminas liposolubles y minerales, etc. (3).
Las proteínas son moléculas de gran tamaño formadas por una larga cadena lineal
de sus elementos constitutivos propios, los aminoácidos (aa). Éstos se encuentran
formados de un grupo amino (NH2) y un grupo carboxilo (COOH), enlazados al
mismo carbono de la molécula. Los aminoácidos se encuentran unidos por un
enlace peptídico (enlace de un grupo amino con otro carboxilo perteneciente a
otro aminoácido). Las proteínas por hidrólisis o por acción de los ácidos fuertes o
de las enzimas, se desintegran en aminoácidos, siendo estos los productos finales
de la digestión y del catabolismo de las proteínas de los alimentos.

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DIGESTIBILIDAD DE LOS ALIMENTOS
La digestibilidad es una forma de medir el aprovechamiento de una alimento, es
decir, la facilidad con que es convertido en el aparato digestivo en sustancias útiles
para la nutrición. Comprende dos procesos, la digestión que corresponde a la
hidrólisis de las moléculas complejas de los alimentos, y la absorción de pequeñas
moléculas (aminoácidos, ácidos grasos) en el
intestino.
La digestibilidad es uno de los indicadores
más utilizados para determinar la calidad de
las proteínas debido a que no todas son
digeridas, absorbidas y utilizadas en la misma
medida. Las diferencias en digestibilidad pueden deberse a factores inherentes a la
naturaleza de las proteínas alimentarias, a la presencia de componentes no
proteicos con influencia en la digestión (fibra de la dieta, taninos, fitatos), a la
presencia de factores antifisiológicos o a las condiciones de elaboración que
pueden interferir en los procesos enzimáticos de liberación de los aminoácidos
(Church y Pond, 1990). La digestibilidad proteica se puede determinar por varios
métodos, entre ellos, la digestibilidad in vivo, ya sea aparente o verdadera, directa
o indirecta, y la digestibilidad in vitro utilizando enzimas (FAO/OMS, 1992).
- Digestión y absorción de compuestos nitrogenados en los
animales
El valor nutritivo de las proteínas del alimento no depende sólo del análisis
cuantitativo sino también del tipo y cantidad de aminoácidos que llegan al
organismo animal una vez digerida la proteína. Es importante hacer una revisión
del proceso de digestión y los factores que la afectan para interpretar la nutrición
proteica.
Digestión y absorción
Las proteínas del alimento son hidrolizadas en sus constituyentes, los aminoácidos,
luego estos son absorbidos y llevados al hígado por la vía de la vena porta y en
pequeñas cantidades por la Linfa.

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Las enzimas de la mucosa gástrica y del páncreas, son secretadas en la cavidad
gástrica e intestinal, estas últimas actúan dentro de las mismas células de la
mucosa. Hay dos clases de enzimas: Las endoenzimas (pepsina, Tripsina y
Quimotripsina) que actúan rompiendo las grandes moléculas proteicas en
moléculas más pequeñas y Las Exoenzimas (Carboxipeptidasas y peptidasas) que
actúan sobre los aminoácidos terminales produciendo aminoácidos libres.
La digestión proteica se inicia en el estómago con la desnaturalización de las
proteínas por efecto del ácido clorhídrico, proceso que es continuado por la
digestión péptida descrita antes, la cual requiere un pH ácido bajo, esto produce
péptidos grandes y aminoácidos libres. El contenido estomacal pasa luego al
intestino (Duodeno) donde las enzimas pancreáticas lo transforman en gran
cantidad de aminoácidos libres y oligopéptidos, los cuales son absorbidos
activamente y directamente por la mucosa intestinal, en los dos tercios anteriores
del intestino, y son hidrolizados por las peptidasas dando aminoácidos que son
llevados por la vena Porta hacia el hígado.
El quimo intestinal es una solución de compuestos del alimento desintegrado, más
las excreciones endógenas del animal, formadas por enzimas, moco, células
epiteliales descamadas y proteína del plasma sanguíneo, las cuales son
nuevamente digeridas y recicladas. A la digestión también contribuyen los
organismos microbiales: bacterias y protozoarios. La fracción que no es digerida,
junto con los organismos microbiales intestinales, continúa por el intestino y son
excretados en las heces como Nitrógeno Metabólico Fecal (NMF).
La reabsorción de las excreciones proteicas redigeridas enmascaran la digestión y
absorción verdadera de la proteína de los alimentos y de los aminoácidos de la
dieta que son absorbidos, lo que hace impreciso su evaluación.
Digestibilidad de proteínas
Los aminoácidos en los alimentos no siempre están disponibles. La degradación de
las proteínas, así como su absorción puede ser incompleta. El porcentaje promedio
de digestión y absorción en proteínas de origen animal es alrededor de un 90%,

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siendo el de las proteínas de origen vegetal de sólo un 60 a un 70%
aproximadamente.
Hay varias razones que limitan la digestibilidad de ciertas proteínas:
 Conformación de la proteína: las proteasas atacan a las proteínas fibrosas
insolubles más lentamente que a las proteínas globulares solubles. Pero, la
digestibilidad puede ser fácilmente incrementada por la desnaturalización
de la proteína, por ejemplo, por un tratamiento térmico previo.
 La unión a ciertos metales, lípidos, ácidos nucleicos, celulosa u otros
polisacáridos, puede ver limitada parcialmente su digestibilidad.
 Factores antinutricionales como los inhibidores de tripsina o quimotripsina.
Otros inhibidores afectan a la absorción de aminoácidos.
 El tamaño y superficie de la partícula donde se encuentran las proteínas. La
digestibilidad de las proteínas de los cereales puede ser incrementada, por
ejemplo, mediante el molido más fino de la harina.
Además, las diferencias biológicas entre individuos pueden afectar a la digestión
de proteínas, así como a la absorción de aminoácidos. La edad es una de estas
diferencias, pues en los primeros meses de vida no se encuentran presentes todas
las enzimas necesarias para la correcta degradación de las proteínas, así como en
los ancianos o adultos mayores se dejan de producir otras tantas enzimas y la
digestión de estos nutrientes se vuelve cada vez más difícil. Algunos otros
individuos pueden presentar defectos genéticos como deficiencia de enterocinasa
o tripsinógeno, deficiencia de prolina dipeptidasa, síndrome de Hartnup (defecto
en transporte de aminoácidos neutros), los cuales impiden que se produzcan
enzimas para degradar ciertas proteínas, o que su degradación se lleve a cabo
ineficazmente (24).
Digestibilidad verdadera y aparente
Se cree que la proteína del alimento que no aparece en las heces, ha sido digerida.
Esto es la digestibilidad aparente, pues parte del Nitrógeno fecal, es endógeno o
sea derivado del animal.

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Al deducir el Nitrógeno Metabólico Fecal (NMF) del nitrógeno fecal, se obtiene la
digestibilidad verdadera que es realmente el N del alimento que ha sido absorbido.
El NMF es pr9porcional al alimento ingerido, lo que representa 2 mg de N por
gramo de MS consumida. Esta cifra permite convertir la digestibilidad aparente en
digestibilidad verdadera. Sin embargo la digestibilidad aparente aumenta si
aumenta el nivel de proteína en la ración aunque se mantenga constante la MS
consumida.
Métodos para determinar la digestibilidad de las proteínas
Si las proporciones de aminoácidos de una proteína constituyen probablemente el
determinante más importante de su calidad, los factores que le siguen en
importancia son la digestibilidad de la proteína y la biodisponibilidad de los
aminoácidos que la constituyen. Ello se debe a que no todas las proteínas son
digeridas, absorbidas y utilizadas en la misma medida. Las diferencias de
digestibilidad entre las proteínas pueden deberse a diferencias inherentes a la
naturaleza de las proteínas alimentarias (configuración de la proteína, unión de los
aminoácidos ); a la presencia de componentes no proteicos con influencia en la
digestión (fibra de la dieta, taninos, fitatos); a la presencia de factores
antifisiológicos o a las condiciones de elaboración, que pueden interferir en los
procesos enzimáticos de liberación de los aminoácidos de las proteínas
(FAO/OMS, 1992 ; FAO/OMS/UNU, 1985).
De poco sirve la información sobre el contenido de un alimento si se desconoce su
digestibilidad. La digestibilidad también afecta el volumen y la forma de las heces,
así como la frecuencia de las defecaciones. Aunque no es obligatorio que los
fabricantes lleven a cabo ensayos de digestibilidad con sus productos, los
fabricantes con reputación y que producen productos de alta calidad si los realizan.
(Case et al., 1997).
Existen dos procedimientos principales para determinar la digestibilidad, estos
son: Determinación de la digestibilidad in vivo y la determinación de la
digestibilidad in vitro. En el primer procedimiento se utiliza directamente al

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animal, mientras que en el segundo se trata de reproducir en el laboratorio los
procesos de digestión (Córdova, 1993).
 Digestibilidad de las proteínas in vivo
Este procedimiento ha sido usado tradicionalmente para determinar la
digestibilidad. La cantidad media diaria de nitrógeno aparentemente absorbido
por el animal, se calcula por diferencia entre la cantidad de nitrógeno del alimento
consumido y la cantidad excretada en las heces. Esa cantidad, expresada como
porcentaje de lo ingerido es el coeficiente de digestibilidad. Puesto que las heces no
se componen únicamente de alimentos indigestibles sino que incluyen células
descamadas y productos excretados al tracto digestivo, la diferencia entre lo
ingerido y lo excretado determinada de esta forma se denomina digestibilidad
aparente (DA) (Edney,1989; Bondi,1988).
La digestibilidad aparente se calcula de la siguiente forma:
Para hallar la digestibilidad real es preciso tener en cuenta la cantidad de
nitrógeno fecal excretado cuando el animal consume una dieta sin proteína
(nitrógeno metabólico) (FAO/OMS, 1992).
 Digestibilidad de las proteínas in vitro
Los estudios de digestibilidad son tan laboriosos de llevar a cabo que se han hecho
numerosos intentos para reproducir en el laboratorio las reacciones que tienen
lugar en el tracto digestivo del animal, con el objeto de poder determinar la
digestibilidad de los alimentos. No es fácil reproducir, en su totalidad, la digestión
de los animales monogástricos, pero la digestibilidad de las proteínas puede
determinarse mediante las técnicas multienzimáticas y el ataque in vitro con
pepsina y ácido clorhídrico (Mc Donald et al., 1986).

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- Método de la pepsina y ácido clorhídrico
Este método se basa en reproducir la digestión proteica en el laboratorio,
sometiendo a una muestra de alimento a la acción de pepsina y ácido clorhídrico.
Como resultado de este ataque se obtiene un residuo indigestible al cual se le
determina su contenido de nitrógeno, que multiplicado por 6.25 dará el contenido
de proteína indigestible, que se resta del contenido de proteína bruta de la
muestra, previamente determinada, y se obtiene el porcentaje de proteína
digestible del alimento (AOAC, 1990).
Para determinar el valor nutritivo de las proteínas se utilizan métodos biológicos
(in vivo) y químicos (in vitro) (Cuadro 2).

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Cuadro 2. Métodos para evaluar la calidad de la proteína. Hand et al., 2000
Factores que afectan la digestibilidad de un alimento.
La digestibilidad de un alimento es bastante variable, siendo influida por factores
relacionados con el animal, con el medio ambiente y con el alimento, entre los
cuales se destacan los siguientes:
 Edad Del Animal. En cada fase de desarrollo y productiva se presenta un
desarrollo anatómico y funcional del tubo digestivo y una actividad enzimática,
que permite el aprovechamiento más eficiente de ciertos alimentos.
 Especie Animal. Los rumiantes y los herbívoros monogástricos están
adaptados para el aprovechamiento de los carbohidratos estructurales,
mediante procesos de fermentación microbiana a nivel ruminal o cecal.
 Composición De Los Alimentos. La cantidad de fibra bruta, especialmente
del complejo lignocelulolítico, afecta de manera negativa la digestibilidad del
alimento por reducción de la digestibilidad de las proteínas y los carbohidratos
fermentables, los cuales quedan atrapados dentro de la pared celular. En todas
las especies animales es indispensable una cierta cantidad de fibra bruta para
ayudar al normal tránsito intestinal.
 Composición De la dieta. En una dieta mixta el exceso de carbohidratos
fermentables puede disminuir el aprovechamiento de los carbohidratos
estructurales. El exceso de proteína verdadera puede afectar la utilización del
nitrógeno no proteico, en el caso de los rumiantes.
 Tamaño De la Partícula Del Alimento. La molienda fina de los granos y los
cereales favorece la digestibilidad por existir una mayor área de exposición a
la acción de las enzimas. Pero puede provocar inconvenientes, representados

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en un incremento de problemas respiratorios y un mayor desperdicio del
alimento. En el caso de los forrajes, la excesiva reducción del tamaño de las
partículas aumenta la velocidad de tránsito del alimento, presentándose una
reducción en la digestibilidad y en la exposición a la fermentación microbiana.
 Cocción Del Alimento. Es útil para eliminar factores anti nutricionales
presentes en algunos alimentos: por ejemplo, la solanina de la papa y los
factores antitripsínicos en las semillas de las leguminosas. No obstante, un
exceso de calentamiento de dichas semillas produce la formación de sustancias
indigestibles.
 Tratamientos Químicos. El empleo de ácidos, álcalis, enzimas o gases como el
amonio, aumenta la digestibilidad de materiales fibrosos como el afrecho, el
tamo, la paja y las socas de cereal.
 Presencia De Factores Anti nutricionales. Disminuye la digestibilidad de los
alimentos. Como ejemplos se tienen los glucanos en la cebada, el ácido
cianhídrico en la yuca, los antitripsínicos en las semillas de leguminosas y los
taninos en el sorgo.
- Expresión De La Digestibilidad.
La expresión de este parámetro se hace a través del coeficiente de
digestibilidad, el cual expresa en % la cantidad de alimento o sustancias
nutritivas que se asimilan por el organismo con fines fisiológicos y productivos.
Este coeficiente se presenta por la siguiente fórmula.
Dónde:
 C = Coeficiente de digestibilidad
 P = Alimento o sustancia ingerida
 P = Alimento o sustancia excretada
 (P - p) = Alimento o sustancia absorbida
CONSUMO VOLUNTARIO DEL ALIMENTO.

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El consumo voluntario del alimento por parte del animal está regulado por
diversos factores internos y externos, entre los cuales se mencionan.
 Nivel Energético De La Ración. Los monogástricos regulan la ingestión del
alimento, no consumiendo cuando se sienten satisfechos tanto en cantidad
como en calidad cubriendo sus requerimientos energéticos. En los rumiantes
el consumo está regulado por la proporción molar de ácidos grasos volátiles,
acético, propiónico y butírico. Por lo tanto una disminución en el consumo de
fibra, trae como consecuencia la diminución del apetito.
 Contenido De Proteína En La Ración. Las dietas pobres en proteínas
incrementan el consumo de alimento, mientras que los altos niveles de
contenido de este nutriente bastan para disminuirlo.
 Palatabilidad Del Alimento. Es la aceptación o el rechazo del alimento por
su olor, poco gustoso o no es fresco y su presentación en cuanto a tamaño y
textura.
 Presencia De Toxinas En El Alimento. Las micotoxinas contenidas en los
granos empleados para la alimentación animal, aflatoxinas, ocratoxinas, etc.,
provocan una disminución del consumo de alimentos, como un mecanismo
de defensa del individuo.
 Temperatura Ambiental. Las bajas temperaturas aumentan el consumo
debido a un mayor requerimiento energético, mientras que las altas lo
deprimen, disminuyendo a su vez el crecimiento de los animales. Por
termorregulación
 Racionamiento De La Dieta. Es necesario regular el consumo de alimentos,
de acuerdo con los requerimientos del animal, la calidad esperada en la
carne, la conversión alimenticia establecida y la relación estimada de
costo/beneficio. Los requerimientos deben estar planteados según la especie,
la edad, el peso, el estado productivo y la producción esperada.
 Grado De Digestibilidad Del Alimento. Entre más digestible sea un
alimento, más rápido abandona el tracto gastrointestinal, aumentando el
apetito del animal. Los alimentos poco digestibles tardan más tiempo en el
tubo digestivo, disminuyendo así su consumo
VALOR PROTEICO DE LOS ALIMENTOS
El valor proteico de un alimento corresponde a su capacidad para satisfacer las
necesidades de nitrógeno y aminoácidos y asegurar así un crecimiento y

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mantenimiento adecuados. Esto depende del contenido de proteína, del contenido
de aminoácidos y la disponibilidad de los mismos.
Teniendo en cuenta que el valor nutritivo difiere para cada proteína, su valoración
es muy útil y permitirá: Prever la cantidad de proteínas o de mezclas de proteínas
alimenticias necesarias para satisfacer las necesidades de aminoácidos para el
crecimiento y mantenimiento; clasificar las proteínas en función de su valor
nutritivo potencial; e identificar las modificaciones nutricionales que las proteínas
alimenticias puedan sufrir durante los tratamientos tecnológicos (Cheftel et al.,
1989).
El término “calidad proteica” se refiere a la capacidad de una proteína de la dieta
para incorporarse en las proteínas corporales y se puede estimar a través de varios
indicadores, dentro de los que se destaca el valor biológico o “calificación química”.
El valor biológico esta definido como la proporción en que se encuentra un
aminoácido indispensable limitante con respecto al patrón de referencia. Por
definición, se entiende como aminoácido limitante a aquel en el que el déficit es
mayor comparado con la proteína de referencia, es decir, aquel que, una vez
realizado el cálculo, da un valor químico más bajo. La “proteína de referencia” es
una proteína teórica definida por la FAO la cual tiene la composición adecuada
para satisfacer correctamente las necesidades proteicas, la FAO ha propuesto a la
proteína del huevo y la proteína de la leche humana como proteínas de referencia.
Se han fijado distintas proteínas de referencia dependiendo de la edad, ya que las
necesidades de aminoácidos esenciales son distintas en las diferentes etapas del
crecimiento y desarrollo humano. Las proteínas de los cereales son en general
severamente deficientes en lisina, mientras que las de las leguminosas lo son en
aminoácidos azufrados (metionina y cisteína). Las proteínas animales tienen en
general composiciones más próximas a la considerada ideal (Laura González-
Torres et.al, 2007).
En la dieta de los seres humanos se puede distinguir entre 2 tipos de proteínas, las
de origen animal y las de origen vegetal. Dentro de las primeras, las que provienen
de huevo, leche y derivados lácteos son consideradas como de excelente calidad;
otras carnes (tejido muscular) como el pescado, res y aves contienen proteínas de
buena calidad. De las proteínas vegetales, la proteína del frijol de soya es

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considerada de buena calidad, la contenida en cereales, harinas y la mayor parte de
tubérculos y raíces vegetales está clasificada como de mediana calidad, y la
mayoría de las frutas y verduras contienen proteína de baja calidad. Las proteínas
de origen vegetal, tomadas en conjunto, son menos complejas que las de origen
animal (Laura González-Torres et.al, 2007).
ANTINUTRIENTES
Los antinutrientes son compuestos naturales o sintéticos que interfieren con
la absorción de nutrientes.1 Estudios en el ámbito nutricional, hallaron estos
compuestos antinutricionales en alimentos y bebidas
- Antinutrientes: inhibidores enzimáticos
Entre los antinutrientes, un grupo muy importante son los inhibidores
enzimáticos. Nuestra digestión ocurre gracias a la acción de enzimas, que
descomponen los nutrientes en la digestión para que los podamos absorber. Pero
hay ciertas sustancias en algunos alimentos que impiden la correcta acción de esas
enzimas.
Impiden la proteólisis digestiva (o sea, la descomposición de las proteínas en
aminoácidos). Las proteínas deben llegar descompuestas en aminoácidos a
nuestro intestino. Si no lo están, estos fragmentos pueden pasar por un intestino
demasiado permeable y causar problemas a nuestro sistema inmune o a nuestro
riñón. Incluso pueden originar problemas de crecimiento, debido a la baja
absorción de proteínas y también porque estos inhibidores hipertrofian el
páncreas y estimulan su (esto se puede reconocer por el aumento del nitrógeno
fecal).
Normalmente, al cocinar el calor desnaturaliza estos factores y con ello casi todo
su efecto inhibidor, aunque suele quedar un valor residual inhibidor del 5-20%. El
significado toxicológico de este efecto residual se desconoce en la actualidad.
Estos inhibidores son:

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 Antitripsinas o inhibidores de proteasas: son sustancias que impiden el uso
o metabolismo enzimático de las proteínas. Se encuentran en productos
tanto de origen vegetal –leguminosas, patata, batata, cacahuete- como
animal –leche, calostro, huevo (ovomucoide y ovoinhibidor)-. El más
conocido y destacado es el inhibidor de tripsina, que se encuentra en la soja,
judía, etc.
 Inhibidores de la tripsina y quimotripsina bovina: en la soja se han hallado
inhibidores del tipo factor Bowman-Birk y factor de Kunitz. También se han
aislado inhibidores similares en judías, cacahuetes, guisantes, lentejas,
aunque la actividad de cada uno es diferente.
ANIMALES DE BIOTERIO – INSTALACIONES, SALUD Y ALIMENTACION
Roedores: Rata, ratón, cobayo, hámster y jerbo.
- Confinamiento o encierro primario.
El equipo para alojar a los animales debe estar diseñado para facilitar el
bienestar del animal, satisfacer las necesidades de la investigación y reducir o
eliminar las variables experimentales, por lo cual el equipo para confinar al
animal o encierro primario debe:
a) Proporcionar el espacio adecuado que permita movimientos y
adopciones de las posturas normales de la especie.
b) Ser cerrado a prueba de escape y proteger al animal de amenazas
externas.
c) Ser adecuado en ventilación y conforme a las necesidades biológicas de la
especie.
d) Ser resistente al lavado y desinfección frecuente.

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Los roedores deben mantenerse en algunos de los tres tipos de jaulas o cajas
existentes:
a) Cajas con pisos y paredes continuas sólidas y con tapa removible de reja
o perforadas, en los cobayos pueden ser sin tapa.
b) Jaulas enteramente hechas de malla de alambre.
c) Combinación de los dos tipos:
Las jaulas consideradas en el inciso a) se podrán utilizar para cualquier etapa
de desarrollo y experimentación.
Las jaulas y cajas consideradas en los incisos b) y c) con pisos de malla de
alambre sólo podrán utilizarse cuando las condiciones experimentales lo exijan
y nunca para parición, destete o mantenimiento prolongado. Los hámsteres
deben alojarse en cajas con piso sólido.
Las recomendaciones de espacio mínimo que se deben proporcionar a los
animales se describen en el cuadro.
Los confinamientos o encierros primarios deben tener las siguientes
características; aun cuando en condiciones experimentales pueden variar,
previa autorización del Comité. a) Satisfacer las necesidades fisiológicas
(alimentación, defecación, micción u otros) y conductuales de los animales,
permitiendo los movimientos normales y ajustes posturales característicos de
la especie.
b) Cuando esté indicado, deberá favorecer la reproducción y la crianza.

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c) Permitir las interacciones sociales entre los individuos de la especie, el
establecimiento de jerarquías y las conductas de escape.
d) Brindar una ventilación e iluminación adecuadas.
e) Favorecer que los animales se mantengan limpios y secos.
f) Ser seguras, impidiendo el escape de los animales o el entrampamiento de
sus extremidades.
g) Deben tener bordes y aristas redondeadas.
h) El diseño debe facilitar la limpieza y saneamiento rutinarios y también las
faenas de cambio, llenado y suministro de agua y alimento.
i) Permitir la observación de los animales.
j) Los materiales para la construcción de las jaulas deben ser resistentes,
durables e impermeables.
k) Deben mantenerse en buenas condiciones de uso.
l) Se recomienda alojar a los roedores en jaulas con piso sólido y material de
lecho.
Salud animal.
a) Cada una de estas especies se alojará en cuartos separados de otras especies
o de animales con diferente condición microbiológica. Cuando se cuente con
sistemas de aislamiento, podrán alojarse en el mismo cuarto.
b) Los roedores deben estar libres de las enfermedades zoonóticas y parásitos
externos, a menos que el procedimiento experimental aprobado por el Comité
indique lo contrario. En este caso, el bioterio debe contar con las medidas
sanitarias y de control que asegure el control absoluto de los animales en
experimentación (escape, contacto con roedores silvestres, eliminación de
cadáveres u otros), así como protección del personal en contacto con los
animales, sus partes o sus desechos.
c) El personal del bioterio debe someterse al menos una vez al año a un
examen de salud.
Alimentación y provisión de agua.
a) El alimento debe proporcionarse a libre acceso o en forma restringida
dependiendo de las necesidades de la cepa y de los procedimientos
experimentales.

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El alimento debe ser palatable, de una fórmula nutricional constante y certificado
en cuanto a su composición. En el cuadro que se muestra acontinuacion se describe
la composición general de un alimento para roedores de laboratorio en base seca
para cubrir las necesidades de crecimiento, gestación, lactación y mantenimiento.
Se podrá proporcionar alimentos frescos a los animales, siempre y cuando el
Comité lo apruebe.
b) El agua debe ser potable y suministrarse a libre acceso durante toda la vida del
animal.
Los procedimientos que requieran de privación de líquidos deben justificarse
plenamente ante el Comité.
En caso de que el procedimiento experimental lo justifique y que sea aprobado por
el Comité, se podrá hacer las modificaciones pertinentes a la dieta y forma de
suministrar los alimentos.
Cama y nido.
Los roedores alojados en cajas con piso sólido deben tener el material de cama
suficiente que garantice la absorción de su orina, excremento y desperdicio de
agua, favorecer su aislamiento térmico y construcción de nido.
Los materiales de cama deben seleccionarse por su suavidad, capacidad de
absorción, laxitud, ausencia de polvo y fragmentación, así como por la constancia
de su calidad, neutralidad química, inercia nutricional y carencia de palatabilidad.

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MANEJO Y CUIDADO DEL ANIMAL DE LABORATORIO: RATÓN
I. MARCO TEÓRICO
EL RATÓN, SUTAXONOMÍA Y USO COMO ANIMAL DE LABORATORIO
TAXONOMÍA
 Clase: Mammalia
 Familia: Muridae
 Género: Mus
 Especie: Mus musculus.
Ventajas de su uso como animal de laboratorio:
 De fácil cuidado y mantenimiento, por su pequeño tamaño.
 Bajos costo de manutención.
 Cepa definida.
 Diversidad de características específicas que sirven como modelo.
 Eficiencia reproductiva.
 Por su vida relativamente corta es excelente para su uso en ensayos
crónicos de toxicología, microbiología, virología, farmacología, etc.
 Corto tiempo de generación.
Desventajas:
 Dificultad en la recolección de material biológico.
 Dificultad la administración de drogas.
 Dificultad en las técnicas quirúrgicas.
Figura Nº1 Ratón Albino
Fuente: Bioterio Central – CNPB del INS. 2007

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CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL RATÓN
El ratón doméstico es una especie cosmopolita, se adapta a una gran variedad de
condiciones ambientales, desde zonas muy frías hasta regiones tropicales. En
general, las especies prefieren ambientes más secos que húmedos.
El ratón es un mamífero de sangre caliente, de hábitos nocturnos y su
comportamiento está influenciado por feromonas. Posee un agudo sentido de la
audición, por lo que se alteran rápidamente con los ruidos, es por ello que hay que
tener cuidado con los equipos que se utilizan.
Su sentido del olfato está muy desarrollado, no sólo para detectar comida y
depredadores, sino también para percibir un orden social.
Su visión es muy pobre y no pueden percibir los colores. En la órbita del ojo posee
unas glándulas con forma de herradura llamadas glándulas Harderianas, cuando el
ratón está en estrés, excreta en la zona periocular una sustancia de color marrón
llamada porfirina.
El sistema social depende de la densidad de población, viven en grandes colonias y
el rango social está bien desarrollado. Generalmente, son muy dóciles a excepción
de algunas cepas exocriadas que mantienen su agresividad, al igual que sus
antecesores salvajes.
Por su pequeño tamaño son muy susceptibles a cambios ambientales, puesto que
una variación de la temperatura entre 2 a 3°C, puede afectar su temperatura
corporal y modificar su fisiología.
El tamaño del ratón adulto varia entré 12 a 15 cm desde la punta de la nariz a la
punta de la cola; el largo de la cola es igual al largo del cuerpo y con un peso
aproximado de 30 gr. Las crías al nacer tienen un peso aproximado de 1 a 2 g y
gana rápidamente peso durante la lactancia.
Tienen una vida útil de 10 a12 meses y se obtiene de ocho a diez camadas.
COMPORTAMIENTO DEL RATÓN
El ratón es un animal sociable y se mantiene en grupos sin ningún inconveniente,
estos grupos deben formarse rápidamente luego del destete.
Sin embargo, los machos de algunas cepas comienzan a mostrar su agresividad
entre la séptima y décima semana de edad, aun cuando estos grupos se hayan
establecido al destete. En el grupo de machos existe uno dominante que puede ser
muy agresivo. Las hembras generalmente no pelean, incluso cuando se hayan
agrupado siendo ya adultas.

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El acto de comer es cíclico, con un pico máximo durante el periodo de oscuridad. El
mayor consumo de agua es durante las horas de oscuridad. El consumo de
alimento y agua varía entre las cepas de ratones.
El ratón generalmente divide su caja en áreas específicas para dormir, comer,
orinar y defecar.
Las hembras parturientas construyen un nido y permanecen mucho tiempo cerca
de él o sobre las crías.
SISTEMA REPRODUCTIVO
La hembra es poliéstrica continua. Tras el parto, a las 14 - 28 horas se produce un
estro fértil, por lo que puede utilizarse el estro posparto. Hay que tener en cuenta
que la lactancia y gestación simultáneas puede retrasar entre tres a cinco días la
implantación del embrión.
Al nacer el ratón pesa entre uno y dos gramos, nacen con los ojos y oídos cerrados,
sin pelos y son muy activos. Al tercer día comienza a observarse el desarrollo del
pelaje, llegando a cubrirse totalmente desde los siete a diez días. A los 12 días
empiezan abrir los ojos y el conducto auditivo externo, entre los días 13 y 14
inician a ingerir alimento sólido y agua del bebedero.
Generalmente se les desteta a los 21 días de edad con un peso de
aproximadamente 11 a 14 gramos (bioterio central del CNPB/INS). Cuando no se
ha utilizado el estro posparto, empiezan a ciclar a los cinco días postdestete. El
ciclo estral tiene una duración de cuatro a cinco días, en tanto que el celo dura 12
horas.
Las hembras reproductoras pueden convivir en apareamientos monogámicos o
poligámicos (de harén). Los apareamientos monogámicos consisten en el
aislamiento de un macho y una hembra a lo largo de su vida reproductiva,
equivalente a un año o a una cantidad de partos que oscila entre los cinco y los
ocho. La pareja de reproductores va a permanecer junta procreando, con un
promedio de ocho a diez crías por camada.

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En el caso de los apareamientos poligámicos, un macho es confinado junto con un
número superior de hembras para incrementar la reproducción.
Las poblaciones endocriadas se obtienen por el cruzamiento de hermanos con
hermanas luego de 20 generaciones como mínimo. Las poblaciones de animales
exocriados se obtienen apareando individuos no aparentados entre sí y se les
denomina stock.
BIOTERIO DE PRODUCCIÓN
Estructura física y organizacional especialmente diseñada para la cría y
mantenimiento de animales de laboratorio. De ubicación exclusiva, fuera del
alcance de peligros sanitarios. El objetivo principal de tener un bioterio es
asegurar la procedencia de animales sanos para que no interfieran en los trabajos
científicos de las diferentes áreas de investigación, fabricación de vacunas,
antígenos y su control.
Los determinantes de un bioterio para un buen desempeño son:
 Aspecto de infraestructura.
 Animales definidos.
 Personal capacitado.

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BIOTERIO DE EXPERIMENTACIÓN
Destinado solamente para alojar animales durante el tiempo que dure un estudio o
una investigación. Se debe tener en cuenta que existan instalaciones con barreras
sanitarias establecidas para la protección de las personas así como de los animales,
con el equipamiento necesario y los procedimientos normativos operacionales
correspondientes para dichos fines.
DISEÑO DE UN BIOTERIO
Un elemento importante para el cuidado y uso de animales, son las instalaciones
diseñadas construidas y mantenidas apropiadamente, además, que faciliten una
operación segura, eficiente y económica.
Para el diseño de un bioterio se tendrá presente:
› Actividades por realizarse.
› Relación de estas actividades con el espacio y con las necesidades ambientales.
Los bioterios deben estar construidos con paredes y pisos recubiertos por material
de fácil lavado, resistente a la aplicación de desinfectantes; techos lisos, uniformes,
fáciles de limpiar y con bordes sanitarios; cierres herméticos en las puertas y con
factores controlados, entre ellos, los ambientales (temperatura, humedad,
ventilación, presurización) y físico-químicos (iluminación, ruido, sanitizantes, etc.).

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Las instalaciones deberán contar con condiciones físicas y de diseño, que aseguren
la eficacia de su funcionamiento ya que los animales de laboratorio requieren
satisfacer los fines de la investigación, y es por ello que deberán estar ubicados en
áreas apropiadamente adecuadas, para alojarlos y cuidarlos. Existen dos tipos de
distribución interna de las áreas, según la American
Association for Laboratory Animal Science (AALAS) y la diferencia entre ellas
radica en la disposición del acceso y salida de las salas.
Bioterio convencional o de corredor único: el tránsito es mediante una única
puerta, la cual comunica hacia un corredor común de acceso y salida.
Bioterio con dos corredores de acceso: en donde se separan el acceso y retorno de
la sala, los cuales se efectúan por corredores independientes, diseñado para
albergar animales de mayor calidad. Se separan dos áreas básicas, una destinada a
la preparación del material y el otro es el corredor de retorno destinada a la
limpieza de materiales.
II. EL RATÓN: SU MICROAMBIENTE Y MACROAMBIENTE
Figura Nº 5

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El investigador podrá decidir, de acuerdo con sus necesidades, dónde ubicar a los
animales empleados, teniendo en cuenta que el lugar brinde las condiciones
ambientales y de manejo óptimos que aseguren la salud y la comodidad de
especímenes, de modo que sus patrones metabólicos y de comportamiento se
mantengan normales y estables, dando respuestas confiables.
Los principales factores ambientales que afectan a los animales pueden clasificarse
en:
 Climáticos: temperatura, humedad, ventilación, etc.
 Fisicoquímicos: iluminación, ruido, composición del aire, sanitizantes, lecho
o cama, etc.
 Habitacionales: forma, tamaño, tipo y población de las jaulas, etc.
 Nutricionales: dieta, agua, esquema de administración.
 Microorganismos y parásitos.
 Situación experimental.
MICROAMBIENTE
El microambiente, es el ambiente físico inmediato que rodea al ratón, también
llamado confinamiento o encierro primario, está limitado por el perímetro de la
jaula o caja, cama, alimento y agua de bebida; deben contribuir a la salud de los
animales, y evitarles todo estrés, por lo que deberá asignársele, a cada uno, un
espacio adecuado que le permita movimientos y adopciones de posturas normales,
preservando a su vez las mínimas condiciones de higiene y de protección contra
insectos, roedores y otras plagas.
El microambiente lo conforman la caja o jaula, el alimento, el agua, así como el
mantenimiento de las condiciones de higiene de cada uno de ellos.
CAJA O JAULA
Los ratones se alojan en cajas o jaulas especialmente diseñadas para facilitar su
bienestar, pueden ser de metal o de plástico (polipropileno, policarbonato,
poliestireno y polysulfano), provistas de tapas de acero inoxidable con o sin filtro.

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El poliestireno es transparente y resiste al autoclavado y a la mayoría de
desinfectantes. El poliestireno y el polipropileno no resisten temperatura elevadas.
La altura de las paredes de la caja no debe ser menor de 12,7 cm.
Debe tener las siguientes características:
› Proporcionar espacio adecuado, ser cerrado, seguro y protegerlo de las amenazas
externas.
› Ser adecuado en ventilación.
› Ser resistente al lavado, desinfección y esterilización frecuente.
› Permitir la observación del animal.
› Tener pisos y paredes fáciles de limpiar (superficies lisa) y con tapa removible de
rejas o perforada.
› Mantenerse en buenas condiciones de uso.
› Facilitar el acceso de los animales al agua y alimento.
› No presentar bordes cortantes o proyecciones que puedan causar lesiones.
RECOMENDACIONES DE ESPACIO (DENSIDAD ANIMAL)
El número de animales por jaula estará en relación con el tamaño corporal (edad
del ratón, estado pre y postnatal) evitándose la sobrecarga.
El tamaño de las jaulas o cajas debe ser apropiado; por ejemplo, en el caso de
ratones adultos, se requiere una superficie mínima de 80 cm2 por animal.
El requerimiento mínimo es que el animal disponga de espacio suficiente para
moverse y para expresar las posturas normales de conducta y sociabilidad, debe
tener fácil acceso al agua y alimento y debe tener un área suficiente con material
de lecho limpio y sin obstáculos para moverse y descansar.
En la siguiente tabla se muestra las recomendaciones del espacio asignado a
roedores alojados en grupos; si se alojan individualmente o exceden los pesos

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listados, podrían requerir de más espacio, de acuerdo con el criterio profesional y
de experiencia.
LECHO O CAMA
Los lechos serán de material absorbente tal como la viruta de madera, la coronta
molida del maíz (marlo), etc.; libres de polvillo, alérgenos y sustancias tóxicas.
Deben ser esterilizables.
La viruta más adecuada es la de pino blanco, seguida por la de tornillo.
Se debe tener especificaciones de calidad de la viruta para su adquisición, tales
como:

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 No ser nocivo.
 Capacidad de absorción
 No se recomienda el uso de viruta procedente de cedro o caoba.
AGUA DE BEBIDA
El agua debe ser potable y suministrarse libremente durante toda la vida del
animal, puede ser en frascos bebederos de vidrio o de policarbonato.
El agua debe ser acidificada, esterilizada mediante autoclave o por método de
filtración.
ALIMENTO

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MACROAMBIENTE
El macroambiente es el espacio inmediato al microambiente y es la sala de
alojamiento en su ámbito general.
La alteración de los factores del macroambiente producirá cambios en el modelo
animal y con ello, la modificación del tipo de respuesta, y aumento de la
variabilidad de los resultados entre o dentro de los laboratorios de
experimentación.
AIRE Y VENTILACIÓN
Los ambientes destinados a la producción de animales, en su interior, deben
poseer ventilación con presión positiva de aire respecto a los pasillos o áreas
exteriores, manteniendo las gradientes de presión, de tal forma que se evita el
ingreso de patógenos desde el exterior.
En caso de poseer un bioterio de doble pasillo con locales centrales (circulación
limpia y sucia), la gradiente de presión será del limpio hacia el sucio.
La ventilación es importante para controlar la humedad, calor, gases tóxicos. Se
debe generar entre 15 a 20 recambios de aire / hora.
Los sistemas de aire acondicionado o ventilación no podrán ser compartidos con
otras áreas, serán exclusivos para el sector bioterio y con factores controlados de
temperatura y humedad.
TEMPERATURA Y HUMEDAD RELATIVA
Las exigencias de temperatura para ratones son de 20 a 25 °C y la humedad
relativa ambiental entre 40 y 70%.
Las condiciones ambientales en que se crían y experimentan los animales influyen
decisivamente en las respuestas a los diferentes tratamientos.
Si se requiere respuestas estandarizadas, las condiciones en que se mantienen los
animales deben ser fijas.

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INTENSIDAD DE LUZ Y TIPO DE ILUMINACIÓN
Los ambientes de crianza deben contar con la luz artificial, provista de lámparas
fluorescentes tipo luz día, con incidencia oblicua, con una iluminación máxima de
323 lux a un metro del piso; de forma tal, que todas las jaulas, independientemente
de su ubicación, reciban intensidades similares de luz.
La iluminación debe distribuirse adecuadamente a través de la sala de alojamiento
y ser lo suficiente para las prácticas de mantenimiento, inspección y bienestar de
estos, sin causarles signos clínicos a los animales. También debe proporcionar
condiciones seguras de trabajo para el personal.
La iluminación es importante para la regulación del ciclo estral y reproductivo. Se
recomienda 12 horas luz/12 horas oscuridad, lo cual se programa con un reloj
temporizador.
RUIDO
Los ratones son muy sensibles al ruido y pueden percibir frecuencias de sonido
que son inaudibles para el ser humano, por lo que el personal debe tratar de
minimizar la generación de ruido innecesario. El ruido excesivo e intermitente se
puede minimizar capacitando al personal en modos alternativos a las prácticas que
producen ruido. Los radios, celulares, alarmas y otros generadores de sonido, aun
con auriculares o audífonos, no deben usarse en las salas de alojamiento de
animales. Se permite un nivel máximo de ruido de 85 decibeles, si estos son
mayores tiene efectos nocivos como estrés y problemas de fertilidad.
OLOR
El olor es otro factor que afecta al ratón, es por ello que no se debe utilizar
desinfectantes que emanen olores, que sean irritantes y mucho menos
desodorizantes, dentro de los ambientes del bioterio.
La percepción de amoniaco en el ambiente es un indicador de saturación del lecho,
por lo que se recomienda tener programas de cambio de lecho según la población
que se maneje.

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Por ejemplo, se conoce que el hombre es capaz de percibir 100 ppm de amoniaco
del ambiente del ratón y éste puede percibir desde 25 ppm de amoniaco.
III. VALOR BIOLÓGICO
El aprovechamiento de una proteína aislada no depende de su origen, intervienen
muchos factores más, como son la combinación con otras proteínas, otras
moléculas o nutrimentos, además de los procesos de digestión, absorción, o el
hecho de que algunos aminoácidos puedan estar en formas químicas no utilizables,
etc. El término “calidad proteica” se refiere a la capacidad de una proteína de la
dieta para incorporarse en las proteínas corporales y se puede estimar a través de
varios indicadores, dentro de los que se destaca el valor biológico o “calificación
química”. El valor biológico está definido como la proporción en que se encuentra
un aminoácido indispensable limitante con respecto al patrón de referencia. Por
definición, se entiende como aminoácido limitante a aquel en el que el déficit es
mayor comparado con la proteína de referencia, es decir, aquel que, una vez
realizado el cálculo, da un valor químico más bajo. La “proteína de referencia” es
una proteína teórica definida por la FAO la cual tiene la composición adecuada
para satisfacer correctamente las necesidades proteicas, la FAO ha propuesto a la
proteína del huevo y la proteína de la leche humana como proteínas de referencia.
Se han fijado distintas proteínas de referencia dependiendo de la edad, ya que las
necesidades de aminoácidos esenciales son distintas en las diferentes etapas del
crecimiento y desarrollo humano. Las proteínas de los cereales son en general
severamente deficientes en lisina, mientras que las de las leguminosas lo son en
aminoácidos azufrados (metionina y cisteína). Las proteínas animales tienen en
general composiciones más próximas a la considerada ideal.
En la dieta de los seres humanos se puede distinguir entre 2 tipos de proteínas, las
de origen animal y las de origen vegetal. Dentro de las primeras, las que provienen
de huevo, leche y derivados lácteos son consideradas como de excelente calidad;
otras carnes (tejido muscular) como el pescado, res y aves contienen proteínas de
buena calidad. De las proteínas vegetales, la proteína del frijol de soya es
considerada de buena calidad, la contenida en cereales, harinas y la mayor parte de
tubérculos y raíces vegetales está clasificada como de mediana calidad, y la
mayoría de las frutas y verduras contienen proteína de baja calidad. Las proteínas

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de origen vegetal, tomadas en conjunto, son menos complejas que las de origen
animal.
Prácticamente todos los alimentos contienen proteínas, aunque no en la misma
concentración. En el medio no especializado y hasta en muchos textos de nutrición
existe la idea, la cual es errónea, de que es importante el origen de la proteína, es
decir, animal o vegetal. Si bien, las proteínas de origen animal son de mejor calidad,
esto no quiere decir que las vegetales no se puedan aprovechar, o que su calidad se
vea desmerecida.
El valor biológico (BV) es una escala de mediciones utilizadas para determinar qué
porcentaje de una fuente dada de nutriente es utilizada por el cuerpo. La escala
para fuentes proteicas es la más frecuentemente aplicada. Valor biológico es
derivado tomando en cuenta una proteína ingerida como medida base, calculando
el nitrógeno contenido en ella (ingreso) versus el nitrógeno excretado (salida). Los
BV teóricos más altos de algunas fuentes de alimentos son iguales al 100%. En
síntesis BV se refiere a que tan bien y que tan rápido el cuerpo puede realmente
usar la proteína que se consume.
El BV se usa particularmente para proteínas ya que el cuerpo no almacena los
excesos de aminoácidos como las grasas y carbohidratos que si pueden ser
almacenados en el cuerpo. Por lo tanto la dieta diaria deberá proporcionar siempre
bastante proteína, y de apropiada calidad, para suplir la necesidad corporal.
El aminoácido más restrictivo determina el BV de la proteína entera. Si el cuerpo
necesita, por ejemplo 1 g de fenilalanina diariamente y el alimento suplementa 500
g de proteína, pero solo 0.5 g de fenilalanina, entonces el BV de la proteína es muy
bajo. Solo una fracción de la proteína puede ser usada, el resto tiene entonces que
ser eliminada por el cuerpo.
Un BV bajo puede ser compensado por el consumo de otras proteínas. Por ejemplo
cuando una proteína es baja en leucina, el BV es bajo. Cuando se combina esta
proteína con una con alto contenido de leucina, el BV combinado será más alto que
la primera proteína sola. En la combinación el otro aminoácido puede ser limitante,
por lo tanto se debe determinar un nuevo BV. Nunca se puede añadir dos valores

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biológicos para obtener uno nuevo. El nuevo valor en una combinación será
determinado por el aminoácido más restrictivo de la combinación.
El valor biológico BV es muy importante para vegetarianos y veganos, quienes no
consumen proteína animal. En general proteínas animales tienen más BV que
proteínas vegetales, debido a la semejanza de humanos y animales. Vegetarianos y
veganos deberán seleccionar ingeniosamente fuentes de proteína para obtener así
un alto BV.
Tabla 3: Valores biológicos de algunos alimentos
Producto Valor Biológico
Huevo entero 93.7
Leche 84.5
Pescado 76.0
Carne 74.3
Sojas 72.8
Arroz, refinado 64.0
Trigo, entero 64.0
Maíz 60.0
Frijoles, secos 58.0
La proteína de la clara de huevo es considerada por tener uno de los perfiles más
altos de aminoácidos para la nutrición humana. Proteínas vegetales generalmente
tienen bajo contenido de algunos aminoácidos esenciales tal como lisina y
metionina. La proteína de soya es una de las mejores proteínas vegetales, sin
embargo, la diferencia más prominente es la proporción del contenido de azufre de
aminoácidos sulfurados esenciales como metionina. La proteína de la clara de
huevo tiene aproximadamente tres veces más metionina que las encontradas en
proteína de soya.

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PROCEDIMIENTO.
DISEÑO DE JAULA.
Los ratones se alojan en una jaula especialmente diseñada para facilitar su bienestar, Fue
de metal y plástico.
Las medidas de la jaula se mostraran en las siguientes imágenes donde se siguió las
siguientes características.
Se Proporcionó un
espacio adecuado,
cerrado, seguro y
protegido de las
amenazas externas.
Es resistente al lavado,
desinfección y
esterilización frecuente
Tiene pisos y paredes fáciles de
limpiar (superficies lisa) y con
tapa removible de rejas o
perforada.
Mantuvo en buenas
condiciones de uso.
27cm
Permitir la observación
del animal.
Facilito el acceso de
los animales al agua
y alimento.
No presentar bordes cortantes o proyecciones que puedan causar lesiones.

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Todo este análisis fue basado de una guía de manejo cuidado de animales de laboratorio:
ratón
Para seguir con el procedimiento primero se consideró algunos puntos
fundamentales para la investigación.
1. El ratón es un mamífero de sangre caliente, de hábitos nocturnos y su
comportamiento está influenciado por feromonas. Posee un agudo sentido
de la audición, por lo que se alteran rápidamente con los ruidos, es por ello
que hay que tener cuidado con los equipos que se utilizan.
Su sentido del olfato está muy desarrollado, no sólo para detectar comida y
depredadores, sino también para percibir un orden social. Su visión es muy
pobre y no pueden percibir los colores; Y Tienen una vida útil de 10 a12
meses y se obtiene de ocho a diez camadas.
ANÁLISIS DE COMIDA SUMINISTRADA.
En cuanto a la comida hemos considera 3 días de adaptación. Y luego se procedió a
tomar los análisis para su evaluación.
Los alimentos para mascotas preparados comercialmente se encuentran
disponibles en tres formas básicas: secos, semi-húmedos y húmedos. Como se
deduce de los nombres de categoría, el contenido de agua difiere enormemente
entre las tres formas. Otras diferencias incluyen el perfil típico de los nutrientes y
las ventajas y desventajas de cada forma. La calidad del alimento para mascotas es
independiente de la forma; pueden encontrarse alimentos de alta calidad en las
tres categorías. Las preferencias del consumidor también varían. Los
norteamericanos prefieren los alimentos secos mientras que los europeos

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Consumen mayor porcentaje de alimentos húmedos (por lo general enlatados). La tendencia global es hacia el uso de alimentos secos (Hand
et al., 2000).
En nuestra FORMULACIÓN DE ALIMENTO utilizamos como alimento dos tipos de alimentos que son alimento para gatos.
Se tuvo en porciones
iguales un
aproximado de 252 g
de alimento de cada
tipo.

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COMPOSICIÓN QUÍMICA DE UNA DIETA ESTÁNDAR
Entonces analizamos y hacemos los cálculos respectivos para determinar cuánto de
proteína ay en 252 gramos de alimento, para esto aplicamos la regla de tres simple.
252g 252g
Se calculó que por cada 252g de pollo + atún
ay aproximadamente 75.6g de proteína del
mismo modo también de sardina y atún.
Sabemos por descripción del
producto que por cada 100 g de
comida ay 30g de proteína.
100g de
comida
30% de
proteína
252g de
comida
X
+ =Obtenemos 151.2g de
proteína por cada 504 g de
alimento.

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Por lo tanto la comida que se le dio a nuestra ratita diaria fue 20g para esto hallamos la
cantidad de proteína que se le dio.
PROCEDIMIENTO DEL ANÁLISIS DE PROTEÍNA.
MOLES DE HCl = MOLES DE NH3 = MOLES DE NITRÓGENO EN LA MUESTRA
Se calculó que por cada 20g de pollo +
atún + sardina ay aproximadamente 6g de
proteína.
504g de
comida
151.2g de
proteína
20g de
comida
X
PROTEINA

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1.0100 gr de Muestra
Balon Kjeldahl
Digestor Kjeldahl 419 ºC
Enfriar 80 ºC
Encender equipo
Vaso Erlenmeyer 250 ml
Balon Kjeldahl
Destilador
Neutralizar (color marron o negro)
Destilar 150 ml a 250 ml
25 ml de H2SO4
14.4 gr de K2SO4
1 gr de CuSO45H20
25 ml de H3BO3
50 ml de H2O

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DIGESTIÓN:
1. Pese exactamente 1.0100g de muestra con exactitud de 0.1 gramos sobre
un trozo de papel libre de amoniaco (papel glacine o similar) luego colocar
la muestra dentro del balón de digestión Kjeldahl (evitar que se quede
muestra adherida al cuello del balón).
2. Agregar 14.4 gr de sulfato de potasio, 1 gramos de sulfato de cobre y 25 ml
de ácido sulfúrico concentrado.
Titular HCl 0.1 N
Nitrogeno (%) = (
𝑯𝑪𝒍 𝒎𝒍 𝒙 𝑵 𝑯𝑪𝒍
𝑾 𝒎𝒖𝒆𝒔𝒕𝒓𝒂
𝒙 𝟎. 𝟎𝟏𝟒)x100
Proteina (%) = Nitrogeno x Factor
5 gotas
Naranja de Metileno
Muestra K2SO4 CuSO45H20 H2SO4

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3. Colocar el balón en el aparato de digestión y calentar la mezcla de digestión
a temperatura baja hasta que cese la formación de espuma. Aumentar
progresivamente la temperatura de la hornilla (no permita que escape
acido del balón por exceso de calor puesto que se pueden producir perdidas
de nitrógeno por volatilización de las sales de amonio).
4. La digestión terminará cuando el color de la muestra sea verde-turquesa
transparente (son partículas visibles de muestra). Y luego continúe calentando
durante 1h y 30 mint. La digestión demora aprox. 2h. Retirar los balones del
equipo y dejar enfriar.
5. Agregar a cada balón 50 ml de agua destilada con mucho cuidado

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DESTILACIÓN
1. Preparar un matraz de 500 ml, que contenga 50 ml de ácido bórico al 4%
(sobre el cual se va a recoger el NH3 destilado) y 3 a 4 gotas del indicador, y
colocarlo a la salida del refrigerante cuidando que el extremo de la pipeta
colectora quede sumergida en la solución. Abrir la llave del agua de
refrigeración del destilador.
2. Adicionar 1 gramo aproximadamente de perlas de vidrio al balón que
contiene la muestra digerida, luego agregar cuidadosamente 70 a 75 ml de
Na OH al 33% por las paredes del balón de manera que las dos capas no se
mezclen. En seguida se conecta el matraz al pico del aparato de destilación.
Se calienta el líquido alcalino pasando vapor, hasta que hierva durante 20
min, al comienzo se calienta poco a poco para reducir la espuma.
3. El volumen recogido de destilado deberá ser de por lo menos 150 ml.

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TITULACIÓN
1. El ácido bórico remanente del destilado se titula con solución de HCl 0.1 N
valorada, hasta el cambio de color.
2. Titule la muestra con 0.1N de HCl. Un color violeta indica el punto final de la
titulación. Compárese este color con el del blanco. Cada equivalente del HCl
usado corresponde a un equivalente de NH3 o a un equivalente de N en la
muestra original. El peso del N en mg está dado por miliequivalentes del
ácido X 14 (el peso equivalente del N).
Obtuvimos un gasto aproximadamente de 38.2 ml

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MÉTODOS UTILIZADOS PARA LA DETERMINACIÓN DE DIGESTIBILIDAD:
• METODOS DIRECTOS
1. Digestibilidad aparente
Normalmente los valores de digestibilidad que se obtienen son alores aparentes,
es decir, incluyen en las heces los aportes metabólicos y endógenos provenientes
de enzimas, células epiteliales, células microbiales, metabolitos, entre otros, que
llegan a la luz intestinal.
El método directo, también llamado método de recolección total, consiste en la
recolección cuantitativa, la estimación y el análisis de todas las heces producidas.
El método in vivo descrito por (Crampton y Lloyd 1959, citados por Cerda 1986) es
sin duda, el que da la mejor estimación de la digestibilidad de un alimento. Este
método por colección total de heces fecales es el que mide más exactamente la
digestibilidad de un alimento, aunque presenta un leve sesgo respecto de la
digestibilidad real debido al material endógeno que se elimina a través de las
heces.
En los estudios convencionales acerca de la digestión, los animales se confinan en
un box o establo con el fin de facilitar la recolección de heces y orina. Existen
diversos métodos para recoger las heces, dependiendo de la especie, del tipo de
animal, y en las condiciones que se encuentra (estabulado o pastoreo).
En estos tipos de ensayos realizados con mamíferos se usan machos con
preferencia a las hembras, porque con ellos es más fácil recoger la orina y las heces
por separado (Mac Donal, 1986).
2. Digestibilidad real:
Con el fin de obtener información más aproximada al verdadero aprovechamiento
de los nutrientes por parte de los animales, se establece el concepto de
digestibilidad verdadera en el cual se tiene en cuenta en los cálculos los valores
endógenos, ya que se reconocio que parte de los nutrientes que se encuentran en
las heces se derivan del animal y no son residuos del alimento (Maynard, 1986).

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Se puede calcular la digestibilidad verdadera de los animales teniendo en cuenta
los aportes endógenos Cuando se tienen en cuenta los desechos endógenos se
puede definir un coeficiente de digestibilidad verdadera (Watanabe, 1988; Hepher,
1988; Mendoza, 1993; Hardy, 1997).
MÉTODOS DE RECOLECCIÓN DE HECES.
Las comparaciones entre los coeficientes de digestibilidad resultan un poco
difíciles, teniendo en cuenta que no existe una metodología estandarizada debido a
las diferencias entre un gran número de variables tales como, la especie, la talla de
los individuos, el estado fisiológico, las condiciones ambientales, el diseño
experimental, la composición de la dieta y el método de recolección de heces. El
proceso para la determinación de la digestibilidad en los peces no puede ser
comparado con el de los animales terrestres, esto se debe al medio el cual dificulta
la recolección de heces para ser analizadas (Mendoza, 1993; De Silva y Anderson,
1995). Teniendo en cuenta que evidentemente no es fácil la recolección de heces
de los organismos acuáticos e implica problemas tales como lixiviación y estrés en
los animales, debe orientarse a la obtención de una muestra representativa, libre
de partículas de alimento no consumido y el uso de un marcador inerte.
Los métodos de recolección pueden ser clasificados considerando si el muestreo se
realiza fuera o dentro del agua
RESULTADOS:
DETERMINACION DE PROTEINAS
Determinación de % proteínas en las heces:
( ) .
DONDE:
%N: porcentaje de nitrógeno
Vhcl: volumen gasto del acido clorhídrico (ml)
Mili equivalente: 0.014
N: normalidad HCl (0.1N)
M: peso de la muestra en gr.

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. . .
.
.
LUEGO, HALLAMOS EL % DE PROTEÍNA CRUDA:
.
%P: % de proteína cruda
%N: % de nitrógeno
Factor: 6.25
. .
.
Coeficiente de la digestibilidad aparente:
Coeficiente de la digestibilidad Real:
( )

Página 53
BIBLIOGRAFIA
 ANDERSON, Mary. A complete guide to fitness, sports and nutrition. Primera
Edición. Global Media, 2007, pp. 148-149.
 AOAC. Official Methods of Analysis.1990. Pepsin digestibility of animal protein
feeds. p 78-79. EEUU.
 AOAC. Official Methods of Analysis.1995. True protein digestibility of foods and
food ingredients. 2:62. Maryland, EEUU
 Arriaga Aguirre Kutzi. Principios para el cuidado y uso de animals. Empleados
en investigación, Pruebas de laboratorio y enseñanza. México. Academia
Nacionla de Medicina, 2001.
 Bishop SP. Cardiovascular research. In: The Laboratory Rat, Volume II, pp. 161-
79
 Case, L.P.; D.P. Carey; D.A. Hirakawa. 1997. Nutrición canina y felina.2da ed. Ed.
Harcourt Brace, España. 455p.
 Cheftel,JC; J.L. Cuq; D.Lorient.1989. Proteinas Alimentarias. 1ª ed. p107-273. Ed.
Acribia. España.
 Church, D.C. and W.G.Pond.1990. Fundamentos de nutrición y alimentación de
animales. 2da ed. p.51-60. Ed. Limusa. México.
 CONTRERAS M. Pedro, etal. Manual De Ganadería. Hoechst colombiana S.A
1.972
 Córdova, P.1993. Alimentación animal. p. 1ª ed. 48-61. Ed.Concytec. Perú.
 Edney,A.1989. Nutrición de perros y gatos. 2ª ed. p.139-140. Ed. Acribia.
Zaragoza, España.
 FAO/OMS: Informe de una Consulta de expertos .1992.Evaluación de la calidad
de las proteínas. EE.UU. 57p.
 FAO/OMS/UNU: Informe De una reunión consultiva conjunta de expertos.
1985. Necesidades de energía y proteínas. España. p. 127-139
 Fuentes Paredes, Flor de María; Mendoza Yanavilca, rosa Amelia; rosales
Fernández, Arturo Lorenzo. Y Cisneros Tameño Rosario Alberto. Guía de
manejo y cuidados de animales de laboratorio: Ratón. Ministro de Salud.
Instituto Nacional de Salud. Lima, 2008.
 G. R. Batchelor; F. P. Brain; A. J. Dick; Elliot. H; R.J. Francis; R. C. Hobrecht; J. L.
Horst; D. B. Morton; A. G. Peters; R. Raymond; G. D. Sales; C. M. Sherwin and C.
Wesr. Guía para el transporte de animals de laboratorio. Informe del grupo de
trabajo sobre el transporte establecido por la Sociedad para la Ciencia del
Animal de Laboratorio (LASA). Laboratory Animals. 39, 1-39. Sociedad
Española para la Ciencia del Animal de Laboratorio, Laboratory Animals
Limited. España, 2005.
 Hand,M; Thatcher,C; Remillard,R; Roudebush.P.2000. Nutrición Clínica En
Pequeños Animales. 4° ed. 1368p. Ed. Mark Morris Institute. EEUU

Página 54
 Harkness JE, Wagner JE. The Biology and Medicine of Rabbits and Rodents,
2nd edition. Philadelphia: Lea & Febiger, 1983.
 Kohn DF, Barthold SW. Biology and diseases of rats. In: Laboratory Animal
Medicine, ed. Fox JG, Cohen BJ, Loew FM. Orlando, FL: Academic Press, Inc.,
1984, pp. 91-122.
 Laura González-Torres, Alfredo Téllez-Valencia, José G. Sampedro y Hugo
Nájera. Ensayo. LAS PROTEÍNAS EN LA NUTRICIÓN.2007 Ed. Medigraphic vol 8
nº 2
 LATHAM, Michael. C. Nutrición humana en el mundo en desarrollo. Colección
FAO: Alimentación y Nutrición N° 29. Estados Unidos: Roma, 2002, pp. 91-98.
 Lindsey JR. Historical foundations. In: The Laboratory Rat, Volume I, Biology
and Diseases, ed. Baker HJ, Lindsey JR, Weisbroth SH. New York: Academic
Press, Inc., 1979, pp. 1-36.
 Mc Donald, P; Edwards, R; Greenhalgh, J. 1986. Nutrición animal. 3ª ed. p 45-
60, 201-215. Ed. Acribia, Zaragoza
 Olivares Guerrero Araceli. Manual para el manejo de Animales de Laboratorio.
Villahermosa, Tabasco. Universidad Juárez Autónoma de Tabasco. División
Académica de Ciencias Biológicas.
 Osias Hoabeth Medran Obregón. Diciembre 2008. Revisión bibliográfica de las
principales Especies Animales de Laboratorio para el Bioterio Central
Universitario (tesina de licenciatura). Universidad Michoacana de San Nicolás
de Hidalgo. Facultad de Medicina Veterinaria y zootecnia. Morelia Michoacán,
México.
 Personal interview with Jon A. Story, Ph.D., 24 March 1993.
 RACOTTA, Radu. Metabolismo energético en el humano: Un enfoque
cuantitativo. Primera Edición. México: Instituto Técnico Nacional: 2001, pp. 14-
16
 Stehbens WE. An appraisal of cholesterol feeding in experimental
atherogenesis. Prog Cardiovasc Dis 1986; 29(2):107-28.
 Stone KJ, Willis AL, Hart M, Kirtland SJ, Kernoff PBA, McNicol GP. The
metabolism of dihomo-gamma-linolenic acid in man. Lipids 1979;
14(2):174-80.
 Thomas JN, Kelley MJ, Story JA. Alteration of regression of cholesterol
accumulation in rats by dietary pectin. Br J Nutrition 1984; 51:339-45.
 Van Zutphen L. F.M. ; Baumas V; Bernen A. C. .Principios de la Ciencia del
Animal de Laboratorio: una combinación al empleo y cuidado humanitario de
los animales y a la calidad de resultados experimentales.
 Villanueva Sánchez Octavio; Hernández Gonzales Rafael. Manual de Ciencia de
los animales de Laboratorio. México. Instituto Nacional de –ciencias Médicas y
Nutricion Salvador Zubiran. 2004
 Zuñiga Jesus M; et. al. Ciencia y Tecnologia en proteccio y experimentación
animal. Madrid. McGraw-Hill Interamericana. 2001.

Página 55
 http://emcs.mty.itesm.mx/investigacion/centros/ciecs/descargar/Biologia_An
imales_Laboratorio.pdf
 http://www.conasi.eu/blog/consejos-de-salud/inhibidores-enzimaticos/
 http://es.wikipedia.org/wiki/Antinutriente

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