Proyección sobre monitoreo hidrobiologica

1. MÓDULO 4
Monitoreo Hidrobiológico
MONITOREO AMBIENTAL

2. INTRODUCCIÓN Y GENERALIDADES
SESIÓN 1

3. Introducción
El monitoreo hidrobiológico en el Perú es un proceso crucial para la
gestión y el monitoreo de los recursos hidrobiológicos. Estudio de la
diversidad hidrobiológica del mar peruano se ha identificado una
diversidad inmensa, con la identificación de unas 750 especies de peces,
872 de moluscos, 412 de crustáceos, 45 de equinodermos y 240 de algas ,
para implementar este proceso en su contexto, puede contactar a
organismos como la Autoridad Nacional del Agua, la Reserva Comunal
Amarakaeri (RCA) y Parque Nacional Manu (PNM), que han priorizado
acciones de monitoreo hidrobiológico, también puede considerar la
participación en programas de monitoreo participativo, como el descrito
para la Intercuenca del Alto Madre de Dios y gran parte de La Universidad
Nacional Mayor de San Marcos. Museo de Historia Natural Métodos de
colecta, identificación y análisis de comunidades biológicas: plancton,
perifiton, bentos (macroinvertebrados) y necton (peces) en aguas
continentales del Perú / Departamento de Limnología, Departamento de
Ictiología -- Lima: Ministerio del Ambiente, 2014

4. Planificación de muestreo
SESIÓN 2

5. Durante la planificación de la actividad de muestreo, y dependiendo del tipo de muestreo a
realizar, los analistas deben asegurarse de verificar lo siguiente:
❑ Cantidad y tipo de preservante para las comunidades hidrobiológicas a evaluar
❑ Cantidad y tipo de envase según la comunidad hidrobiológica a evaluar
❑ Que los materiales, herramientas y equipos se encuentren completos, limpios, operativos
y en la cantidad solicitada.
❑ Contar con la indumentaria y el equipo de protección personal (EPP) necesario para la
ejecución de la actividad. Se listan los siguientes equipos de protección personal, la cual
deben ser considerados según la actividad a desarrollar:
✓ Casco de seguridad.
✓ Chaleco
✓ Guantes de nitrilo, cuero, hilo u otro
✓ Líneas de vida
✓ Lentes de seguridad
✓ Protector solar
✓ Botas de cana alta y material
✓ Específicos según actividad
❑ Plan de muestreo, cadenas de custodias, procedimientos
Planificación del muestreo
No me
mandaron¡¡¡

6. IDENTIFICAR EL ÁREA
➢ LOTICOS
▪ Ríos, arroyos, etc.
▪ Corriente unidireccional.
▪ Diferentes tipos de substratos en
tamaño.
▪ Gran diversidad de microhábitats.
➢ LENTICOS (lagos, lagunas, etc.)
Poca corriente unidireccional.
Pobreza de sustratos.
Técnicas Aplicadas al Trabajo de Campo

7. Herramientas de muestreo
SESIÓN 3

8. HERRAMIENTAS PARA ZONAS CONTINENTALES

9. HERRAMIENTAS PARA MUESTRAS MARINAS

10. MUESTREO EN ECOSISTEMAS CONTINENTALES Y
MARINOS
SESIÓN 4

11. MUESTREO HIDROBIOLÓGICO:
AMBIENTES ACUÁTICOS CONTINENTALES Y MARINOS

12. Componentes Hidrobiológicos

13. 1. Zonas Lóticas.
2. Zonas Lénticas.
3. Vegetación Acuáticas emergidas.
4. Área, grava o fango.
5. Macrófitos o Macroalgas.
Selección de Hábitats

14. Muestreo de Macroinvertebrados acuáticos
SESIÓN 5

15. Macroinvertebrados Acuáticos

16. ➢ Invertebrados con un tamaño corporal superior a 0.25 mm.
➢ Habitan en la zona béntica (=lecho fluvial o lacustre).
➢ Ciclos completos en el agua (moluscos, oligoquetos, etc.) o
➢ fase larvaria acuática y adulto terrestre (insectos).
➢ Gran diversidad taxonómica.
➢ Gran diversidad trófica.
➢ Componente importante en la dieta de numerosas especies
➢ de peces.
➢ Escasa movilidad.
➢ Ocupan muchos microhábitats diferentes
Macroinvertebrados Acuáticos

17. ➢ Variable compleja del ambiente físico.
➢ Incluye todo lo que esta en el fondo y laterales del riachuelo/río.
➢ Para organismos bentónicos:
➢ Espacio donde se sostienen.
➢ Se alimentan.
➢ Completan la mayor parte de su ciclo de vida.
➢ Lugar de refugio de la corriente y enemigos.
➢ La corriente y el material disponible determina la composición del substrato
mineral
➢ Tipos de substrato:
➢ Inorgánico.
➢ Orgánico.
Sustrato

18. ➢ Característica más importante: estabilidad
➢ Tendencia general a disminución de tamaño de las partículas conforme se procede
rio abajo
➢ Lecho de grava, guijarro, canto rodado es común en los ríos.
➢ Arena: substrato pobre para invertebrados inestable y con poca capacidad de
atrapar detrito
Sustrato Inorgánico

19. ➢ Substratos orgánicos: algas, musgos, macrófitos, hojas, madera
➢ Macro invertebrados generalmente más abundantes donde hay mayor cantidad de
materia orgánica fina
➢ Las plantas sirven como refugio y lugar de deposito de materia orgánica, no
proveen alimento directo.
➢ Mayor complejidad arquitectónica del hábitat deviene en mayor número de taxa
Sustrato Orgánico

20. Arroyos y ríos de poca profundidad
HERRAMIENTAS
Hess sampler
Red surber
Kick-net sampler
D-frame- net sampler

21. Cuerpo de agua más profundos (Ríos y lagunas)
HERRAMIENTAS

22. Muestreo de Macroinvertebrados acuáticos Cualitativo
❑ Ambientes lóticos (Ríos y/o arroyos) y lénticos:
Identificar todos los
sustratos del lugar
Realizar diferentes colectas sobre todos
los mesohábitats o sustratos
sumergidos (uno por uno), avanzando
en contra de la corriente
Depositar la colecta en un
frasco de boca ancha de
1Kg.
Cubrir la muestra con
alcohol al 70%-90%,

23. Muestreo de Macroinvertebrados acuáticos Cuantitativo
❑ Ambientes lóticos (Ríos y/o arroyos) y lénticos:
Identificar todos los
sustratos del lugar
Realizar la colecta en el área delimitado
por la surber, removiendo y lavando
piedras, gravas, etc.
Depositar la colecta en un
frasco de boca ancha de
1Kg.
Cubrir la muestra con
alcohol al 70%-90%,

24. Muestreo de Fitoplancton
SESIÓN 6

25. Plancton

26. Fitoplancton
Comunidad de microorganismos en su mayoría fotosintéticos (microalgas,
Cianobacterias, flagelados heterótrofos, y otros grupos sin clorofila) que viven
suspendidas en la masa de agua.
La composición y abundancia del fitoplancton depende de varios factores:
➢ Condiciones físicas e hidrológicas
➢ Composición química del agua.
➢ Factores biológicos

27. Toma de muestras
Tomar la muestra directamente en
una botella de un litro de color
topacio o transparente. No llenar
completamente la botella (solo hasta
el 90%) que permita posteriormente
un correcto homogenizado en
laboratorio.
Almacenar las
muestras a oscuras
preferiblemente, o
en todo caso en
recipientes de
color topacio.
Muestras directas:
Cuantitativo
Muestras con red.
Cualitativas
Fijador
Se utiliza una red de 20 -25 um, en cuerpos
de agua ultraoligotróficos puede usarse una
malla de 10um.
Se arrastra en el seno del agua
horizontal o vertical
O Se filtra de 20 a 40 litros
de agua.

28. CONSIDERACIONES AL MUESTREO DE FITOPLANCTON
Equipos Reactivos y fijadores
Solución
alcalina
El líquido resultante debe estar bien coloreado, en un frasco herméticamente
cerrado y protegido de la luz.
Añadir 3 a 7 mL de lugol por cada litro de agua, hasta adquirir un
color guaraná. La cantidad va a depender de la cantidad de
materia orgánica u otros reductores en la muestra.
Es algo agresivo con
algunas estructuras
celulares.
Verificar el correcto
etiquetado del preservante
Aplica para todos los
ensayos de plancton y
perifiton
LUGOL
Corto plazo
1-2 meses
Solución
acida
Largos periodos de
tiempo:
permanentes
Folmaldehido
2-4%

29. Muestreo de Zooplancton
SESIÓN 7

30. Zooplancton
Organismos que componen el plancton que son heterótrofos y no
tienen capacidad autótrofa.

31. Muestreo de Zooplancton

32. Muestreo de Zooplancton

33. Muestreo de Perifiton
SESIÓN 8

34. Perifiton
Productores primarios y secundarios asociados a sustrato solidos.
Son los principales productores en ríos y arroyos(especialmente microalgas)

35. Perifiton
Ojo:
Hay
sustratos
alternativos…

36. Perifiton Cuantitativo
1. Buscar y seleccionar un determinado sustrato representativo en los
cuerpos de agua y que se encuentren expuestos a la luz.
2. Realizar un raspado con un cepillo de cerdas duras o espátula sobre un
área de 5 x 5 cm2 .
3. El contenido adherido en el cepillo o espátula se sumerge y/o lava en el
pote de 250 mL de capacidad, usando una piseta con agua destilada;
llevando hasta un volumen conocido o total aproximado de 100 mL
(mitad aproximado de la capacidad efectiva del pote).
4. Añadir el preservante lugol al frasco en volúmenes de 0.3 mL a 0.7 mL por
cada 100 mL de muestra; la muestra debe apreciarse con un color a té
suave.
Nota: Nunca usar el agua de la estación muestreada para evitar
contaminación cruzada con algas del plancton. Asimismo, en cada punto
deberá lavarse el cepillo con agua destilada.

37. Perifiton Cualitativo
1. Identificar y seleccionar por lo menos tres diferentes tipos de sustratos
sumergidos, ya sea duro (piedras) o blandos (troncos de plantas vivas
(sedimento superficial, macrófitas sumergidas, etc.).
2. Realizar raspados ligeros con un cepillo de cerdas finas o espátula
pequeña sobre todos los sustratos. No es importante él área, por lo que
un raspado con el cepillo o espátula en cada sustrato será suficiente.
3. El contenido adherido en el cepillo o espátula se sumerge y/o lava en el
pote de 250 mL de capacidad, usando una piseta con agua destilada;
llevando hasta un volumen conocido o total aproximado de 100 mL
(mitad aproximado de la capacidad efectiva del pote).
4. Añadir el preservante lugol al frasco en volúmenes de 0.3 mL a 0.7 mL por
cada 100 mL de muestra; la muestra debe apreciarse con un color a té
suave.

38. Perifiton Cualitativo

39. INDICACIONES PARA LA PRESERVACIÓN CON LUGOL
Volumen de muestra (mL)
Dosis de lugol
Observación
mínimo máximo
50 0.15 0.35
En todos los casos la
muestra debe apreciarse
de un color a té suave
100 0.30 0.70
150 0.45 1.05
200 0.60 1.40
500 1.50 3.50
1000 3.00 7.00

40. Muestreo de Necton
SESIÓN 9

41. Muestreo de Necton
Se denomina al conjunto de los organismos que nadan activamente en las
áreas acuáticas, principalmente peces.

42. Muestreo de Necton
Censado directo a través de BUCEO
en ríos profundos y claros. Muy
empleado para juveniles
Censado a través de REDES DE CAPTURA. Ideal para
ríos profundos y con poca corriente y substratos no
pedregosos.
Censando a través del
uso de ATARRAYA.
Censado a través de PESCA ELÉCTRICA. Ideal para ríos
poco profundos y con corriente y substrato pedregosos.

43. PREPARACIÓN PARA ENVIÓ
SESIÓN 10

44. Preparación
Es indispensable, antes de efectuar el embalaje y el transporte de las muestras
recolectadas, verificar que el etiquetado de las mismas corresponde con la cadena
de custodia, lo que permitirá la rápida y correcta identificación de todas y cada una
de las muestras en el momento de su recepción. Adicionalmente se debe cuidar que
los envases estén perfectamente cerrados, para evitar la pérdida y derrame de la
muestra o fijador.
Los envases con las muestras deberán ser enviadas en cajas térmicas adecuadamente
embaladas.