UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE
     SAN LUIS POTOSÍ
MAESTRÍA EN ENDODONCIA

EDUARDO RODRÍGUEZ CASTRO
BIOLOGÍA MOLECULAR EN
    MICROBIOLOGÍA
¿Qué es la biología
molecular?
   Estudio de la estructura, función y
    composición     de   las    moléculas
    biológicamente importantes.




     http://mc2coruna.org/domus/genetica/html/adn.html
¿Qué es la microbiología?
                                      Microbiología: es la rama de la
                                       biología encargada del estudio de
                                       los microorganismos, seres vivos
                                       pequeños,      también  conocidos
                                       como microbios.




http://www.google.com.mx/imgres?q=e+fecali+en+el+conducto+radicular&hl=es&sa=X&gbv=2&biw=1366&bih=643&tbm=isch&tbnid=33idI101o_y9kM:&imgrefurl=http://www.iztacala.unam.mx/rrivas/NOTAS/Notas13Microbiologia/genpatpersistentes.html&docid=lCj
                                            AfVcLL-ctuM&imgurl=http://www.iztacala.unam.mx/rrivas/imagenes/microbiologia/enterococcus-faecalis.jpg&w=192&h=224&ei=MMi9T9WsGKKi2wWxj4CHDw&zoom=1
Un poco de historia…….

Watson y Crick, escribieron
 en 1953, ― esta estructura
 tienen una novedosa
 característica, la cual la
 hace        tener       un
 considerable       interés
 biológico‖.


     http://www.galileog.com/ciencia/biologia/adn/adn1.htm#descubrimiento
ADN
   Sustancia química donde se
    almacenan las instrucciones
    que dirigen el desarrollo de
    un huevo hasta formar un
    organismo      adulto,   que
    mantienen su funcionamiento
    y permiten la herencia.



      http://www.profesorenlinea.cl/Ciencias/cromosomas.htm
ADN
 Azúcares, llamados
  desoxirribosas,
 Ácido fosfórico
 Bases
  nitrogenadas:      la
  adenina,           la
  timina, la guanina, y
  la citosina.

       http://mc2coruna.org/domus/genetica/html/adn.html
Replicación, Transcripción Y
        Traducción




    http://www.youtube.com/watch?v=JQvGvnUIFUw
Sensibilidad y Especificidad

 En       microbiología:
    la sensibilidad analítica, es la
    capacidad de una prueba para
    detectar pequeñas cantidades
    de un organismo o substancia en
    una muestra.
   Especificidad: es la capacidad
    para          identificar       a
    microorganismos correctamente.



    Microbiological and molecular analysis of endodontic infections, J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics
                                                    2004, 7, 35–51
En endodoncia….
   La identificación de organismos que causan
    procesos infecciosos es el objetivo para
    comprender la enfermedad y así proveer un
    tratamiento antimicrobiano efectivo.
    La detección e identificación de todos los
    microorganismos asociados ha sido difícil.
   No hay una correlación absoluta entre especies
    microbianas específicas o en combinación con
    signos y síntomas clínicos.




Microbiological and molecular analysis of endodontic infections, J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7,
                                                         35–51
No cumplen con los postulados de Koch.          Generalidades; Métodos
                                                     Moleculares
                                            Los métodos moleculares son:
                                             sencillos, rápidos y más precisos que los
                                             métodos tradicionales de cultivo.

                                          Ventaja:
                                          No se necesitan organismos viables.
                                          Objetivos:
                                          Separación de los ácidos nucleicos.
                                          Dejar una muestra no infecciosa.
                                          Eliminar sustancias inhibidoras.
                                          Desventaja:
                                          los organismos no son cultivados.
                                                        Microbiological and molecular analysis of endodontic infections
                                                        J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7, 35–51
Exploiting Molecular Methods to Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosi

                                                                                                                                                PCR:Reacción en cadena de la
                                                                                                                                                        polimerasa
                               J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD




                                                                                                                                       Método molecular, diseñado por Kary
                                              JOE — Volume 31, Number 6, June 2005




                                                                                                                                        Mullis en 1983. premio nobel de
                                                                                                                                        química 1993.
                                                                                                                                       Capaz de amplificar una pequeña
                                                                                                                                        copia de un gen a millones o billones
                                                                                                                                        de copias de ese mismo gen.
                                                                                                                                       Hoy en día, es posible aislar cualquier
                                                                                                                                        gen de cualquier organismo usando
                                                                                                                                        PCR.
                                                                                                                                    Microbiological and molecular analysis of endodontic infections, J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7,
Ventajas de la PCR

   A partir de una muestra pequeña de ADN se
    puede obtener una cantidad considerable
    para el estudio que se vaya a realizar.
   El producto se puede utilizar                                         para
    clonar, secuenciar y análisis.
   Se puede amplificar ADN de cualquier
    organismo vivo o muerto.

       http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
Desventajas de la PCR
 Se puede reproducir solamente partes del
  genoma en donde se conoce por lo menos
  una mínima secuencia de 20 – 40 pb.
 Se necesitan ―primers‖ específicos que
  sean complementarios al fragmento que se
  desea sintetizar.
 La polimerización puede tener errores al
  sintetizar el ADN.
 Puede contaminarse con otro ADN (puede
  ser del mismo investigador o de cualquier
  otro)
    http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
Aplicaciones de la PCR
◦   Sus aplicaciones son múltiples:Detección
    de agentes infecciosos.
◦   Análisis de DNA de cualquier organismo
    vivo o muerto, análisis de fósiles
◦   Mutagénesis dirigida (cambios en la
    información contenida a través de
    ―primers‖ con mutaciones)
◦   Investigación forense
◦   Pruebas de paternidad

     http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
¿PCR?

 La polimerasa es una enzima capaz
  de transcribir o replicar ácidos
  nucleicos. Resultan cruciales en la
  división celular (ADN polimerasa) y en
  la transcripción del ADN (ARN
  polimerasa).
 Se realiza de manera exponencial.



         Microbiological and molecular analysis of endodontic infections
         J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7, 35–51
Componentes de la PCR


 La Taq polimerasa
 El amortiguador
 El ADN molde
 Los oligonucleótidos (dNTPs)




      Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual
                  moderno, 5ª edición, pág. 262.
Taq polimerasa

 Un factor muy importante de la PCR
  es la DNA polimerasa estable en el
  calor, de un termófilo, Thermus
  aquaticus.
 La Taq polimerasa, a diferencia de la
  DNA polimerasa de E. Coli, no se
  destruye a altas temperaturas, por lo
  tanto podrá desnaturalizar DNA en el
  primer paso de cada ciclo etde la
          Microbiología Humana, Eugene W. Nester al, manual
                      moderno, 5ª edición, pág. 262.
  amplificación.
Amortiguador
 Solución buffer: 50mM KCl, 10mM
  Tris. Cl (pH 8.3 a temperatura
  ambiente). Su función la de resistir los
  cambios de pH.
 MgCl2: (cloruro de magnesio)Puede
  estar en forma de MgCl2, MgSO4. Se
  usa 25mM -Es un cofactor para la
  función de la polimerasa-

    http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
ADN molde
 Es una parte de ADN, a partir de la cual se realizará
  la amplificación.
 El DNA a amplificar puede tener desde 50 a 2,000
  nucleótidos de longitud.
  El mínimo va de 10-100 ng. y el máximo entre 400-
  500 ng.




      Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
Oligonucleótidos

 Cebadores                        Son    “primers”:
 secuencias cortas de nucleótidos 20-
 24            nucleótidos           de
 longitud, complementarias a una
 región del DNA que se quiere
 amplificar. -Se usa a concentración de
 1 M-


  Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
 El primer paso para esta técnica es la
                   extracción de DNA.
Técnica de PCR
                  A partir de la muestra de realiza lo
                   siguiente:       Tubo de Ependorf, 2 ml.
                                                 250 µL Buffer de lisis celular. (NaCl 0,1 M;
                                                 sacarosa 0,2M; EDTA 50mM, tris-HCl 100Mm
                                                 pH8,25; SDS 0,05 %).
                                                 Proteinasa K, 10mg/ml
                                                 Se incuba a 65 °C por una hora
                                                   Se mezcla, vortex 1
                                                           min.
                                                   300 µL de etanol
                                                   Se mezcla, vortex 1
                                                           min.
                                                  Cloroformo 300 µL
                                                  Se mezcla, vortex 1
                                                           min.
                                                 Centrifugado 14 mil rpm. 15 min                      Retirar fase acuosa
                                                   Etanol al 100% 1                       Se precipita el DNA.
                                                   ml.
                                                  Centrifugado 5 min.
                                                   300 µL de etanol
                                                  Centrifugado 5 min.
                                                  Pasta blanca
                           http://es.scribd.com/doc/20820913/EXTRACCION-DE-ADN-DE-mosquito-y-sangre
                                              http://www.youtube.com/watch?v=qH_c-3VKI6U
REACCIÓN EN CADENA DE LA POLIMERASA Alfredo G. torres y Beatriz
Eugenia Baca, Centro de investigaciones microbiológicas instituto de ciencias,
 Universidad autónoma de puebla Elementos, no. 23. Vol. 3, 1995, pp. 16-21




                                                                  


                                       tubo de Ependorf de .25 ml
                                                                                     electroforesis en gel
                                       Ya con la extracción de DNA se
                                                                               Técnica de PCR; amplificación y


                                       prosigue a colocar el DNA diana en un
Técnica de PCR; amplificación y
      electroforesis en gel




TERMOCICLADOR




    PROPIEDAD DEL IPICYT, LABORATORIO DE PROTEOMICA, SLP. MEXICO
Técnica de PCR; amplificación y
          electroforesis en gel
 Segundo paso:
 El DNA molde es incubado a alta
  temperatura (92-98°C, por 30 a 90
  segundos), en el termociclador para
  separar las cadenas complementarias,
  DESNATURALIZACIÓN del DNA y así
  hacerlas accesibles al apareamiento con el
  iniciador especifico.



      Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
Técnica de PCR; amplificación y
          electroforesis en gel

 Tercer paso:
 ALINEAMIENTO,       la mezcla de
  reacción es enfriada para permitir que
  los oligonucleótidos iniciadores se
  alineen o hibriden las secuencias
  complementarias del DNA blanco.


Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
Técnica de PCR; amplificación y
      electroforesis en gel
 Cuarto paso:
 EXTENSIÓN, se lleva a cabo a una
  temperatura intermedia, en la cual la DNA
  polimerasa copia el DNA entre las
  secuencias correspondientes a los
  oligonucleótidos iniciadores.
 Estas tres etapas constituyen un ciclo
  térmico. En tanto que para un protocolo típico
  de PCR se incluyen de 30 a 50 ciclos.




    Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
Exploiting Molecular Methods to Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosis
                               J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD
                                              JOE — Volume 31, Number 6, June 2005




                                                                                                 
                                                                                        exponencial
                                                                                                                       electroforesis en gel
                                                                               En el PCR hay una amplificación
                                                                                                                 Técnica de PCR; amplificación y
Técnica de PCR; amplificación y
           electroforesis en gel
  Electroforesis en gel
  Se usa para separar fragmentos de
   DNA, de acuerdo a su tamaño.
  Técnica:
  Bloque de gel (agar o
   poliacrilamida), con poros.
  Se coloca en el gel la muestra de DNA
   previamente amplificado.
Exploiting Molecular Methods to Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosis
                               J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD
                                              JOE — Volume 31, Number 6, June 2005
Electroforesis en gel   El gel se somete a corriente
                                  eléctrica.
                              El DNA tiene carga
                           negativa, por lo que los
                          fragmentos migran hacia
                             el electrodo positivo.

                            Las moléculas de
                          DNA más pequeñas
                          realizan su recorrido
                          más rápido en el gel.

                           Se tiñe la muestra con
                             bromuro de etidio.
                            Fluorescente a la luz UV
                                                                                                                                                  Cámara de
                                                                                                                                                electroforesis
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                                                              J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD
                                                                             JOE — Volume 31, Number 6, June 2005
Técnica de PCR; amplificación y
      electroforesis en gel
 La muestra al pasar por la cámara de
  electroforesis esta lista para poder
  analizarla, esto se logra mediante un
  fotodocumentador.
 El cual emite luz UV sobre la muestra
  y se identifica el ADN por su color
  fluorescente.
 la información obtenida se registra en
  el computador y se almacena la
  fotografía.
    Exploiting Molecular Methods to Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosis
                                    J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD
                                                   JOE — Volume 31, Number 6, June 2005
Técnica de PCR; amplificación y
      electroforesis en gel
   Fotodocumentador.




       PROPIEDAD DEL IPICYT, LABORATORIO DE PROTEOMICA, SLP. MEXICO
Técnica de PCR; amplificación y
      electroforesis en gel
 Analisis de resultados
 Cada banda fluorecente representa
  millones de moleculas de un tamañao
  especifico de DNA.
 Se mide el tamaño según las pares de
  bases en Kb.
 1 Kb = 1,000 pares de bases.
Análisis de la secuencia del
             rDNA 16S
 El rRNA, presente en todos los
  organismos, realiza una tarea constante
  y muy importante, limitando el numero
  de mutaciones sin afectar al organismo.
 La secuencia del rDNA 16S es similar en
  ciertas porciones a la de todos los
  organismos.
 Sufre cambios muy lentos y por lo tanto
  es útil para determinar cambios
  recientes.
 Es efectiva para determinar la
  filologénesis de organismos con relación
  distante.
          Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual
                      moderno, 5ª edición, pág. 262.
Hibridación del DNA
 Se determina la magnitud de la
  similitud en la secuencia de
  nucleótidos entre dos organismo a
  medir.
 Las dos cepas que muestren cuando
  menos similitud del 70% se
  consideraran como miembros de la
  misma especie.

       Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual
                   moderno, 5ª edición, pág. 262.
Conclusión
 La inmensa cantidad de conocimiento
  genético esta afectando a la
  nomenclatura bacteriana. Mientras
  mas genomas se secuencian, se hará
  aparente la similitud evolutiva entre
  los organismos.
 Todos estos cambios crearán una
  fuente potencial de confusión para el
  científico y el hombre en común.
Pcr en endodoncia

Pcr en endodoncia

  • 1.
    UNIVERSIDAD AUTÓNOMA DE SAN LUIS POTOSÍ MAESTRÍA EN ENDODONCIA EDUARDO RODRÍGUEZ CASTRO
  • 2.
  • 3.
    ¿Qué es labiología molecular?  Estudio de la estructura, función y composición de las moléculas biológicamente importantes. http://mc2coruna.org/domus/genetica/html/adn.html
  • 4.
    ¿Qué es lamicrobiología?  Microbiología: es la rama de la biología encargada del estudio de los microorganismos, seres vivos pequeños, también conocidos como microbios. http://www.google.com.mx/imgres?q=e+fecali+en+el+conducto+radicular&hl=es&sa=X&gbv=2&biw=1366&bih=643&tbm=isch&tbnid=33idI101o_y9kM:&imgrefurl=http://www.iztacala.unam.mx/rrivas/NOTAS/Notas13Microbiologia/genpatpersistentes.html&docid=lCj AfVcLL-ctuM&imgurl=http://www.iztacala.unam.mx/rrivas/imagenes/microbiologia/enterococcus-faecalis.jpg&w=192&h=224&ei=MMi9T9WsGKKi2wWxj4CHDw&zoom=1
  • 5.
    Un poco dehistoria……. Watson y Crick, escribieron en 1953, ― esta estructura tienen una novedosa característica, la cual la hace tener un considerable interés biológico‖. http://www.galileog.com/ciencia/biologia/adn/adn1.htm#descubrimiento
  • 6.
    ADN  Sustancia química donde se almacenan las instrucciones que dirigen el desarrollo de un huevo hasta formar un organismo adulto, que mantienen su funcionamiento y permiten la herencia. http://www.profesorenlinea.cl/Ciencias/cromosomas.htm
  • 7.
    ADN  Azúcares, llamados desoxirribosas,  Ácido fosfórico  Bases nitrogenadas: la adenina, la timina, la guanina, y la citosina. http://mc2coruna.org/domus/genetica/html/adn.html
  • 8.
    Replicación, Transcripción Y Traducción http://www.youtube.com/watch?v=JQvGvnUIFUw
  • 9.
    Sensibilidad y Especificidad En microbiología:  la sensibilidad analítica, es la capacidad de una prueba para detectar pequeñas cantidades de un organismo o substancia en una muestra.  Especificidad: es la capacidad para identificar a microorganismos correctamente. Microbiological and molecular analysis of endodontic infections, J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7, 35–51
  • 10.
    En endodoncia….  La identificación de organismos que causan procesos infecciosos es el objetivo para comprender la enfermedad y así proveer un tratamiento antimicrobiano efectivo.  La detección e identificación de todos los microorganismos asociados ha sido difícil.  No hay una correlación absoluta entre especies microbianas específicas o en combinación con signos y síntomas clínicos. Microbiological and molecular analysis of endodontic infections, J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7, 35–51
  • 11.
    No cumplen conlos postulados de Koch. Generalidades; Métodos Moleculares  Los métodos moleculares son: sencillos, rápidos y más precisos que los métodos tradicionales de cultivo.  Ventaja:  No se necesitan organismos viables.  Objetivos:  Separación de los ácidos nucleicos.  Dejar una muestra no infecciosa.  Eliminar sustancias inhibidoras.  Desventaja:  los organismos no son cultivados. Microbiological and molecular analysis of endodontic infections J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7, 35–51
  • 12.
    Exploiting Molecular Methodsto Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosi PCR:Reacción en cadena de la polimerasa J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD  Método molecular, diseñado por Kary JOE — Volume 31, Number 6, June 2005 Mullis en 1983. premio nobel de química 1993.  Capaz de amplificar una pequeña copia de un gen a millones o billones de copias de ese mismo gen.  Hoy en día, es posible aislar cualquier gen de cualquier organismo usando PCR. Microbiological and molecular analysis of endodontic infections, J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7,
  • 13.
    Ventajas de laPCR  A partir de una muestra pequeña de ADN se puede obtener una cantidad considerable para el estudio que se vaya a realizar.  El producto se puede utilizar para clonar, secuenciar y análisis.  Se puede amplificar ADN de cualquier organismo vivo o muerto. http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
  • 14.
    Desventajas de laPCR  Se puede reproducir solamente partes del genoma en donde se conoce por lo menos una mínima secuencia de 20 – 40 pb.  Se necesitan ―primers‖ específicos que sean complementarios al fragmento que se desea sintetizar.  La polimerización puede tener errores al sintetizar el ADN.  Puede contaminarse con otro ADN (puede ser del mismo investigador o de cualquier otro) http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
  • 15.
    Aplicaciones de laPCR ◦ Sus aplicaciones son múltiples:Detección de agentes infecciosos. ◦ Análisis de DNA de cualquier organismo vivo o muerto, análisis de fósiles ◦ Mutagénesis dirigida (cambios en la información contenida a través de ―primers‖ con mutaciones) ◦ Investigación forense ◦ Pruebas de paternidad http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
  • 16.
    ¿PCR?  La polimerasaes una enzima capaz de transcribir o replicar ácidos nucleicos. Resultan cruciales en la división celular (ADN polimerasa) y en la transcripción del ADN (ARN polimerasa).  Se realiza de manera exponencial. Microbiological and molecular analysis of endodontic infections J. CRAIG BAUMGARTNER Endodontic Topics 2004, 7, 35–51
  • 17.
    Componentes de laPCR  La Taq polimerasa  El amortiguador  El ADN molde  Los oligonucleótidos (dNTPs) Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 18.
    Taq polimerasa  Unfactor muy importante de la PCR es la DNA polimerasa estable en el calor, de un termófilo, Thermus aquaticus.  La Taq polimerasa, a diferencia de la DNA polimerasa de E. Coli, no se destruye a altas temperaturas, por lo tanto podrá desnaturalizar DNA en el primer paso de cada ciclo etde la Microbiología Humana, Eugene W. Nester al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262. amplificación.
  • 19.
    Amortiguador  Solución buffer:50mM KCl, 10mM Tris. Cl (pH 8.3 a temperatura ambiente). Su función la de resistir los cambios de pH.  MgCl2: (cloruro de magnesio)Puede estar en forma de MgCl2, MgSO4. Se usa 25mM -Es un cofactor para la función de la polimerasa- http://www.sumanasinc.com/webcontent/anisamples/molecularbiology/pcr.html
  • 20.
    ADN molde  Esuna parte de ADN, a partir de la cual se realizará la amplificación.  El DNA a amplificar puede tener desde 50 a 2,000 nucleótidos de longitud. El mínimo va de 10-100 ng. y el máximo entre 400- 500 ng. Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 21.
    Oligonucleótidos  Cebadores Son “primers”: secuencias cortas de nucleótidos 20- 24 nucleótidos de longitud, complementarias a una región del DNA que se quiere amplificar. -Se usa a concentración de 1 M- Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 22.
     El primerpaso para esta técnica es la extracción de DNA. Técnica de PCR  A partir de la muestra de realiza lo siguiente: Tubo de Ependorf, 2 ml. 250 µL Buffer de lisis celular. (NaCl 0,1 M; sacarosa 0,2M; EDTA 50mM, tris-HCl 100Mm pH8,25; SDS 0,05 %). Proteinasa K, 10mg/ml Se incuba a 65 °C por una hora Se mezcla, vortex 1 min. 300 µL de etanol Se mezcla, vortex 1 min. Cloroformo 300 µL Se mezcla, vortex 1 min. Centrifugado 14 mil rpm. 15 min Retirar fase acuosa Etanol al 100% 1 Se precipita el DNA. ml. Centrifugado 5 min. 300 µL de etanol Centrifugado 5 min. Pasta blanca http://es.scribd.com/doc/20820913/EXTRACCION-DE-ADN-DE-mosquito-y-sangre http://www.youtube.com/watch?v=qH_c-3VKI6U
  • 23.
    REACCIÓN EN CADENADE LA POLIMERASA Alfredo G. torres y Beatriz Eugenia Baca, Centro de investigaciones microbiológicas instituto de ciencias, Universidad autónoma de puebla Elementos, no. 23. Vol. 3, 1995, pp. 16-21  tubo de Ependorf de .25 ml electroforesis en gel Ya con la extracción de DNA se Técnica de PCR; amplificación y prosigue a colocar el DNA diana en un
  • 24.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel TERMOCICLADOR PROPIEDAD DEL IPICYT, LABORATORIO DE PROTEOMICA, SLP. MEXICO
  • 25.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel  Segundo paso:  El DNA molde es incubado a alta temperatura (92-98°C, por 30 a 90 segundos), en el termociclador para separar las cadenas complementarias, DESNATURALIZACIÓN del DNA y así hacerlas accesibles al apareamiento con el iniciador especifico. Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 26.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel  Tercer paso:  ALINEAMIENTO, la mezcla de reacción es enfriada para permitir que los oligonucleótidos iniciadores se alineen o hibriden las secuencias complementarias del DNA blanco. Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 27.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel  Cuarto paso:  EXTENSIÓN, se lleva a cabo a una temperatura intermedia, en la cual la DNA polimerasa copia el DNA entre las secuencias correspondientes a los oligonucleótidos iniciadores.  Estas tres etapas constituyen un ciclo térmico. En tanto que para un protocolo típico de PCR se incluyen de 30 a 50 ciclos. Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 28.
    Exploiting Molecular Methodsto Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosis J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD JOE — Volume 31, Number 6, June 2005  exponencial electroforesis en gel En el PCR hay una amplificación Técnica de PCR; amplificación y
  • 29.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel  Electroforesis en gel  Se usa para separar fragmentos de DNA, de acuerdo a su tamaño.  Técnica:  Bloque de gel (agar o poliacrilamida), con poros.  Se coloca en el gel la muestra de DNA previamente amplificado. Exploiting Molecular Methods to Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosis J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD JOE — Volume 31, Number 6, June 2005
  • 30.
    Electroforesis en gel El gel se somete a corriente eléctrica. El DNA tiene carga negativa, por lo que los fragmentos migran hacia el electrodo positivo. Las moléculas de DNA más pequeñas realizan su recorrido más rápido en el gel. Se tiñe la muestra con bromuro de etidio. Fluorescente a la luz UV Cámara de electroforesis Exploiting Molecular Methods to Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosis J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD JOE — Volume 31, Number 6, June 2005
  • 31.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel  La muestra al pasar por la cámara de electroforesis esta lista para poder analizarla, esto se logra mediante un fotodocumentador.  El cual emite luz UV sobre la muestra y se identifica el ADN por su color fluorescente.  la información obtenida se registra en el computador y se almacena la fotografía. Exploiting Molecular Methods to Explore Endodontic Infections: Part 1—Current Molecular Technologies for Microbiological Diagnosis J. F. Siqueira, Jr, DDS, MSc, PhD, and I. N. Roˆc¸as, DDS, MSc, PhD JOE — Volume 31, Number 6, June 2005
  • 32.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel  Fotodocumentador. PROPIEDAD DEL IPICYT, LABORATORIO DE PROTEOMICA, SLP. MEXICO
  • 33.
    Técnica de PCR;amplificación y electroforesis en gel  Analisis de resultados  Cada banda fluorecente representa millones de moleculas de un tamañao especifico de DNA.  Se mide el tamaño según las pares de bases en Kb.  1 Kb = 1,000 pares de bases.
  • 34.
    Análisis de lasecuencia del rDNA 16S  El rRNA, presente en todos los organismos, realiza una tarea constante y muy importante, limitando el numero de mutaciones sin afectar al organismo.  La secuencia del rDNA 16S es similar en ciertas porciones a la de todos los organismos.  Sufre cambios muy lentos y por lo tanto es útil para determinar cambios recientes.  Es efectiva para determinar la filologénesis de organismos con relación distante. Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 35.
    Hibridación del DNA Se determina la magnitud de la similitud en la secuencia de nucleótidos entre dos organismo a medir.  Las dos cepas que muestren cuando menos similitud del 70% se consideraran como miembros de la misma especie. Microbiología Humana, Eugene W. Nester et al, manual moderno, 5ª edición, pág. 262.
  • 36.
    Conclusión  La inmensacantidad de conocimiento genético esta afectando a la nomenclatura bacteriana. Mientras mas genomas se secuencian, se hará aparente la similitud evolutiva entre los organismos.  Todos estos cambios crearán una fuente potencial de confusión para el científico y el hombre en común.