PROTOCOLO DE LABORATORIO PARA LA IDENTIFICACIÓN Y
DIAGNÓSTICO DE TUBERCULOSIS PULMONAR
Tipo de Muestra: Esputo
IDENTIFICACIÓN
Solicitud médica:
BK-TINCIÓN Y CULTIVO.
Recepción de la muestra
Área de Microbiología
Procedimiento: Baciloscopia (Tinción
ziehl Neelsen)
Marcar portaobjetos con el
número correspondiente de la
muestra.
Prender el mechero, asegurando un
ambiente estéril
Esta preparación se realiza en
un portaobjetos limpio y seco.
La muestra se debe fijar aplicando
fuego al portaobjeto por debajo.
Se cubre el portaobjetos con la
solución de carbol fucsina
(colorante básico primario).
Calentar durante 5
minutos.
Lavar con Agua limpia
Cubrir el frotis con alcohol ácido al 3% Durante 5 minutos. Lavar con Agua limpia
Cubrir el frotis con azul de
metileno ( colorante de contraste)
Durante 1 - 2 minutos. Lavar con Agua limpia
Examinar el frotis en el microscopio Objetivo de 100X + el aceite de inmersión.
Interpretar los resultados
Microorganismos → ácido
alcohol resistente negativos
(AAR-).
Microorganismos → ácido
alcohol resistente positivos
(AAR+).
Color rojizo Color Azul
Realizar Cultivo
Análisis Microscópico
Descontaminación de la muestra
Hidróxido de Sodio (NaOH) al 4% 3 ml
durante 2 minutos.
Sembrar en
Incubar a 37°C
Verificar crecimiento a
los 7, 30 y 60 días.
Positivo para bacilos AAR
compatibles con M.
tuberculosis en la muestra
analizada.
DIAGNÓSTICO
Agar lowenstein-jensen
Reportar Baciloscopia
Elaborado por: Juliana Alejandra Aguirre Rodríguez – Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca – Facultad de Ciencias Básicas – Bacteriología y Laboratorio Clínico.

Protocolo tuberculosis pulmonar

  • 1.
    PROTOCOLO DE LABORATORIOPARA LA IDENTIFICACIÓN Y DIAGNÓSTICO DE TUBERCULOSIS PULMONAR Tipo de Muestra: Esputo IDENTIFICACIÓN Solicitud médica: BK-TINCIÓN Y CULTIVO. Recepción de la muestra Área de Microbiología Procedimiento: Baciloscopia (Tinción ziehl Neelsen) Marcar portaobjetos con el número correspondiente de la muestra. Prender el mechero, asegurando un ambiente estéril Esta preparación se realiza en un portaobjetos limpio y seco. La muestra se debe fijar aplicando fuego al portaobjeto por debajo. Se cubre el portaobjetos con la solución de carbol fucsina (colorante básico primario). Calentar durante 5 minutos. Lavar con Agua limpia Cubrir el frotis con alcohol ácido al 3% Durante 5 minutos. Lavar con Agua limpia Cubrir el frotis con azul de metileno ( colorante de contraste) Durante 1 - 2 minutos. Lavar con Agua limpia Examinar el frotis en el microscopio Objetivo de 100X + el aceite de inmersión. Interpretar los resultados Microorganismos → ácido alcohol resistente negativos (AAR-). Microorganismos → ácido alcohol resistente positivos (AAR+). Color rojizo Color Azul Realizar Cultivo Análisis Microscópico Descontaminación de la muestra Hidróxido de Sodio (NaOH) al 4% 3 ml durante 2 minutos. Sembrar en Incubar a 37°C Verificar crecimiento a los 7, 30 y 60 días. Positivo para bacilos AAR compatibles con M. tuberculosis en la muestra analizada. DIAGNÓSTICO Agar lowenstein-jensen Reportar Baciloscopia Elaborado por: Juliana Alejandra Aguirre Rodríguez – Universidad Colegio Mayor de Cundinamarca – Facultad de Ciencias Básicas – Bacteriología y Laboratorio Clínico.