Instrucciones para usar WebEx y participar en una presentación virtual

Instrucciones para usar WebEx
• Active el audio de su computador – use audífonos para evitar el eco
• En WebEx – active el sistema de voz
• Durante la presentación mantenga su micrófono cerrado
“Mute” para escuchar mejor y evitar interferencia
• Si desea participar use la ventana de Chat
• Tome nota de sus dudas e inquietudes para presentarlas al final
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XP-300
Entrenamiento virtual
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Departamento de Aplicaciones y Soporte Científico

DIFERENCIAS Y SIMILITUDES CON EL
KX21N
XP-300
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XP-300 en América Latina
Sucesor del KX-21 con nuevas
caracterícas
• Concepto Silent Design
• Más competitivo
• Liderazgo en el mercado en
segmento de Diferencial de 3 partes
• Bloquear el uso de reactivos
genéricos
• Fidelización de clientes en segmento
3 partes como un trampolín para la
migración a 5 partes
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KX 21 XP-300
• Hemograma y diferencial de 3
partes
• 3 histogramas RBC, WBC y PLT
• 60 pruebas/hora
• Volumen de aspiración 50 µL
• Impresora térmica integrada
• EIGHTCHECK-3WP X-TRA™
• Puerto serial RS-232

Linealidad
Parámetro MIN MAX UNIDAD
WBC 1.0 99.9 x 10³/µL
RBC 0.3 7.00 x 106/µL
HGB 0.1 25.0 g/dL
HCT 10.0 60.0 %
PLT 10.0 999 x 10³/µL
Parámetro MIN MAX UNIDAD
WBC 1.0 99.9 x 10³/µL
RBC 0.3 7.00 x 106/µL
HGB 0.1 25.0 g/dL
HCT 10.0 60.0 %
PLT 10.0 999 x 10³/µL

Reactivos
Reactivo Volumen Función Temperatura de
almacenamiento
Tiempo
de uso
CELLPACK 20 litros
Diluye las muestras para
determinar
RBC, WBC, y PLT;
lavado del instrumento
5 - 30°C 60 días
STROMATOLYSER-WH 500 mL × 3
Reactivo lisante para conteo
de WBC,
y determinación del
diferencial y la HGB
2 - 35°C 90 días
* Nuevo diseño del empaque de reactivos con código de barras

Manejo de reactivos
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• Diseño compacto
“Silent Design”
• 20 parámetros
• 40,000 resultados en memoria
• Pantalla a color y táctil
• Lector de código de barras incluido
- Reactivos
- Pacientes
- QC
• Diseño compacto
Diseño similar a la serie X
• 19 parámetros
• 300 resultados en memoria
• Pantalla de cristal líquido
• Lector código de barras opcional
KX 21 XP-300

Parámetros analizados
• WBC, LYM %,
LYM #, MXD %,
MXD #,NEUT %,
NEUT #
• RBC, HCT, HGB,
MCV, MCH,
MCHC, RDW-SD,
RDW-CV
• PLT, MPV, P-LCR*,
PCT*, PDW*
* Parámetros de
investigación
• WBC, LYM%,
LYM#, MXD%,
MXD#, NEUT%,
NEUT#
• RBC, HCT, HGB,
MCV, MCH, MCHC,
RDW-SD, RDW-CV,
• PLT, MPV, PDW*,
P-LCR*
* Parámetros de
investigación
KX 21 XP-300

Componentes
Pipeta de
aspiración
de muestra
Botón de aspiración
Impresora térmica
interna
Panatalla LCD a
color “touch screen”
Visualización del
STROMATOLYSER-WH

Menú intuitivo – “touch screen”

CARACTERÍSTICAS GENERALES DEL
PRODUCTO
XP-300
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Especificaciones
XP-300
Concepto similar a la serie XN, lo que garantiza resultados precisos
• Menú intuitivo
• Pantalla táctil LCD a color
Facilidad en la operación
• PDW, P-LCR y PCT son útiles para propósitos de licitación y con valor clínico
agregado
20 parámetros analizados
Capacidad de almacenamiento 40,000 resultados con histogramas
Sistema de código de barras único para facilitar el manejo de los reactivos
Dos modos de análisis: sangre total y pre diluido
Volumen de aspiración: Sangre Total = 50 µL; Pre Diluido = 20 µL

Especificaciones
XP-300
Medición directa del hematocrito que confiere precisión en el valor de VCM y
HCM
Confianza en los resultados a través de la sensibilidad del sistema de alarmas
Programa disponible en Español, Portugués, Inglés, Francés y otros idiomas
Impresora térmica integrada o externa opcional
Interfase Ethernet (TCP/IP, RS-232C)
Monitoreo remoto vía SNCS *
Programa de control de calidad Insight *
* Desarrollo futuro

Revisemos lo aprendido
• Use la ventana de Chat para responder a las
siguientes preguntas
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Pregunta #1
• ¿Cuántos parámetros reporta el XP-300?
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A 13
B 20
C 19
D 21

Pregunta #2
• ¿Cuál es la capacidad de almacenamiento de
resultados en el XP-300?
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A 500
B 40,000
C 10,000
D 2,000

Pregunta #3
• Implementar el uso de códigos de barras en
los reactivos …
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A Facilita la carga de los reactivos
B Bloquea el uso de reactivos genéricos
C Reduce la posibilidad de error en la información
D Todas las anteriores

TECNOLOGÍA
XP-300
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Principios de medición
• WBC: Método de detección de corriente directa
• RBC/PLT: Método de detección de corriente directa
• HGB: Fotometría - método libre de cianuro

Electrodo
externo
Electrodo
interno
Apertura
Vacio
Principios de medición
Corriente directa
V
tPlaqueta
Eritrocito V
t
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25-75 fl 200-250 fl
RL RU
RBC
PLT
Histograma de eritrocitosHistograma de plaquetas
PL
2-6 fl 12-30 fl
PU
PLT
RBC
100%
20%
Principio de medición
Corriente directa
Discriminadores flotantes
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Antes de la reacción
Un WBC y tres RBCs
Reactivo lisante
Después de la reacción
Contracción del WBC y lisis de los RBCs
0 50 100 150 200 250 300
Principio de medición
Corriente directa
Diferencial de 3 partes
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Antes de agregar reactivo lisante
Después de agregar reactivo lisante
Diámetro celular en µm
Neutrófilos 10 – 15
Basófilos 9 – 14
Eosinófilos 11 – 16
Monocitos 12 – 20
Linfocitos 7 – 12
Volumen celular en fL
Linfocitos 30 – 80
Basófilos 60 – 120
Eosinófilos 70 – 130
Monocitos 80 – 140
Neutrófilos 120 – 250
Neutrófilos
Basófilos
Eosinófilos
Monocitos
Linfocitos
Linfocitos
Basófilos
Eosinófilos
Monocitos
Neutrófilos
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Determinación de la hemoglobina
Fotometría – Método libre de cianuro
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Stromatolyser WH contiene sales de amonio cuaternario

Determinación de la hemoglobina
• Análisis fotométrico a 555nm
lente
Flujo de la muestra Cellpack
Celda de flujo Sensor ópticoLED
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Pregunta #4
• El método de corriente directa…
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A Se usa para el conteo de RBC, PLT y HGB
B Usa Stromatolyser WH como tinción fluorescente
C Mide la resistencia eléctrica producida por las células
D Necesita un fotómetro de 555 nm

Pregunta #5
• Después de la reacción con el Stromatolyser WH…
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A Los RBC son más grandes que los Linfocitos
B Los Neutrófilos son más grandes que los Monocitos
C Los Monocitos no sufren ninguna alteración
D Los Linfocitos son más grandes que los Neutrófilos

Pregunta #6
• Los discriminadores flotantes…
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A Se usan para medir la concentración de HGB
B Están entre 250-300 fL para Plaquetas
C Están entre 12-30 fL para Leucocitos
D Mejoran la sensibilidad cuando hay anormalidades

CONFIGURACIÓN Y
PROCESAMIENTO DE CONTROLES
XP-300
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Material de control de calidad
• EIGHTCHECK-3WP X-TRA™
– EIGHTCHECK-3WP-N (Normal)
– EIGHTCHECK-3WP-L (Bajo)
– EIGHTCHECK-3WP-H (Alto)
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Características del control
•1.5 mL x 12 viales
•4.6 mL x 12 viales
Presentación:
•Eritrocitos humanos estabilizados
•Glóbulos blancos humanos modificados
•Un componente de plaquetas en un medio preservado
Composición:
•100 días
Vida útil del control:
•14 días
Estabilidad una vez abierto:
•Entre 2 y 8ºC antes y después de abrir
Conservación:
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Programa de control de calidad
en el XP-300
• 6 archivos de control de calidad
• Capacidad de almacenar hasta 60 puntos por archivo
• La información del control puede ser cargada a través del lector de
código de barras externo
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Configurando el control de calidad
en XP-300
• Introducir la información usando
lector de código de barras
• ID de lote
• Fecha de
expiración *
• Diana
• Límites
© 2013 Sysmex Latin America & the Caribbean All rights
reserved
* Introducirla de
forma manual

Configurando el control de calidad
en XP-300
• Seleccionar una fila libre para cada nivel del nuevo
lote
• Introducir la información 5 pantallas
adicionales
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Procesando control de calidad
Primer paso Segundo paso
• Seleccionar el botón QC en la pantalla principal
• Seleccionar el lote y nivel que desea analizar
All rights reserved

1
2
3
4
Atempere el control 15 minutos antes de su uso.
Mezcle el tubo por inversión suave mínimo 10
veces
Destape el tubo con precaución
Coloque el tubo bajo la pipeta de
aspiración y luego presione el botón
de inicio
Asegúrese que no hay un botón celular en
el fondo del tubo; si es necesario repita el
paso 1
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Pantalla de análisis de control de calidad
All rights reserved

Signos + y/o – indicarán al usuario si el
control está fuera de los límites establecidos
All rights reserved

Gráficas de control de calidad en
XP-300
Menú de fácil acceso
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Gráficas de control de
calidad en XP-300
Primera pantalla
WBC, RBC
Sexta pantalla
NEUT%, LYM%
Segunda pantalla
HGB, HCT
Séptima pantalla MXD#, NEUT#
Tercera pantalla
MCV, MCH
Octava pantalla
W-SMV, W-LMV
Cuarta pantalla
MCHM, PLT
Novena pantalla
RDW-SD, RDW-CV
Quinta pantalla LYM%, MXD% Décima pantalla MPV
• La graficas de control de calidad están distribuidas
en 10 pantallas:
All rights reserved

Gráfica de control de calidad en
XP-300
ID de Lote Fecha de
expiración
Fecha y hora
del análisis
Parámetros
Identificación del operador
All rights reserved

Gráfica de control de calidad en
XP-300
• Impresión de resultados en:
• Impresora interna (IP)
• Impresora externa (GP/LP)
• Envío de datos al HOST
All rights reserved

Insight (en desarrollo)
All rights reserved

Pregunta #7
• El programa de control de calidad en el XP-300
tiene capacidad para
All rights reserved
A 3 archivos y 15 puntos por archivo
B No tiene programa de QC
C Memoria temporal para 1 lote
D 6 archivos y 60 puntos por archivo

Pregunta #8
• El EightCheck-3WP-XTRATM tiene…
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A 100 días de vida útil y 14 días de estabilidad una vez abierto
B EDTA, látex y plaquetas
C A y D son correctas
D NRBC humanos

Pregunta #9
• Los gráficos de Levy-Jennings
All rights reserved
A Se pueden visualizar a través de Menú – Gráf. QC
B Se pueden imprimir a través de la impresora integrada
C Muestran los valores de Media y Límites para el nivel de control
D Todas las anteriores

ANÁLISIS DE MUESTRAS
XP-300
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Análisis de muestras
• Modo WB
– 50 µL de sangre
total
– Identificación de
la muestra
usando
• Teclado
• Lector de código
de barras
All rights reserved

Análisis de muestras
• Modo PD
– Dilución 1:26
(20 µL de sangre total + 500 µL de Cellpack)
All rights reserved

Resultados de pacientes
All rights reserved

Resultados almacenados
• Hasta 40,000 resultados en
memoria
• Opción de búsqueda
– ID de muestra
– Fecha de análisis
• Envío de resultados a
periféricos
– Impresora integrada (IP)
– Impresora externa (GP/LP)
– Computador central (HC)
• Permite editar la
identificación de la última
muestra analizada © 2013 Sysmex Latin America & the Caribbean
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Impresora integrada
• Tres tipos de impresión
All rights reserved

Pregunta #10
• ¿Cuál es la muestra recomendada para
analizar en el XP-300?
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A Sangre total recolectada con EDTA K2 o K3
B Sangre total recolectada sin anticoagulante
C Fluidos corporales
D Sangre total recolectada con heparina

Pregunta #11
• En el modo PD
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A Se extiende la linealidad de los parámetros
B El resultado ya está multiplicado por el factor de dilución
C Se analizan muestras de fluidos corporales
D El XP-300 hace una dilución automática 1:20

Pregunta #12
• La opción de “búsqueda” en el Almacén de
Datos
All rights reserved
A Permite buscar resultados y almacenarlos en un dispositivo USB
B Permite buscar resultados por ID de muestra o fecha de análisis
C Permite buscar resultados por ID del operador
D Permite buscar resultados por demográficos del paciente

AVISOS DEL SISTEMA E
INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS
XP-300
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Avisos del sistema
Signo Explicación
! El valor está fuera de los límites de
linealidad
+ El resultado excede el límite superior
del rango de referencia
- El resultado excede el límite inferior
del rango de referencia para el
paciente
* Baja confiabilidad

Avisos del sistema
Signo Explicación
+++.+ El valor excede el intervalo de visualización
***.* El valor no se ha podido calcular debido a un error
de análisis. Aparecerá el mensaje de ERROR
---.- No ha sido posible calcular el valor por un error de
datos o no se muestra el parámetro de
distribución de volumen por tratarse de un
análisis en modo pre diluido
Si se ha producido un mensaje de ERROR, alguno de los
resultados puede no estar disponible

Histograma de RBC
Es determinado como el conteo de
partículas entre LD y UD los cuales son
contabilizados de forma automática en los
intervalos de 25 - 75 fL y 200 - 250 fL
respectivamente
El conteo de RBC se establece a partir del
número de partículas entre ambos
discriminadores
LD UD

Avisos de anormalidad
Histograma de RBC
All rights reserved
RL
• El límite inferior del
histograma de RBC
no comienza en el eje
X
• Presencia de
fragmentos de RBC o
microcitos, PLT
grandes, aglutinación
o agregación de PLT,
ruido eléctrico, etc.
MP
• Múltiples picos
• Presencia de células
de múltiples
tamaños, por
ejemplo luego de una
transfusión
sanguínea
DW
• No se puede calcular
el ancho de
distribución
• Presencia de
anisocitosis
significativa
RU
• El límite superior del
histograma RBC no
llega al el eje X
• Aglutininas frías,
inclusiones en RBC,
NRBC aumentados,

Histograma de PLT
Es analizado usando 3 discriminadores:
1 LD y 1 UD, determinados automáticamente entre 2 - 6 fL
y entre 25 - 30 fL respectivamente
y 1 discriminador fijo en 12 fL
Todos los discriminadores son determinados
automáticamente por la computadora
El conteo de PLT se calcula a partir del número
de partículas entre LD y UD

Avisos de anormalidad
Histograma de PLT
All rights reserved
PL
• El límite inferior del
histograma de PLT no
comienza en el eje X
• Presencia de
fragmentos de RBC o
de WBC,
crioglobulinas, ruido
eléctrico, etc.
MP
• Múltiples picos
• Agregación de PLT,
conteos bajos de PLT
DW
• No se puede calcular
el ancho de
distribución
• Fragmentos de RBC,
crioglobulinas,
anisocitosis de PLT,
etc.
PU
• El límite superior del
histograma PLT no
llega al el eje X
• Aglutininas frías,
inclusiones en RBC,
NRBC aumentados,

Histograma de WBC
Los WBC se dividen en células
de tamaño pequeño, mediano
y grande para obtener un
diferencial de 3 partes usando
4 discriminadores
• El discriminador inferior (LD) es
localizado automáticamente entre
30 y 60 fL
• El discriminador superior (UD) se fija
en 300 fL

Histograma de WBC
- Se determinan los valles del
histograma de WBC entre los
discriminadores LD y UD; el
primero se define como
discriminador del valle 1 (T1) y el
segundo como discriminador del
valle 2 (T2)
- Toda partícula mayor que este
discriminador es incluida en el
conteo de WBC

Avisos de anormalidad WBC
All rights reserved
WL
La frecuencia relativa para
el discriminador inferior
(LD) excede el intervalo
Causas probables
• Lisis incompleta de los eritrocitos
• Presencia de eritroblastos
• Incremento de plaquetas
grandes
• Agregación o aglutinación
plaquetaria
• Precipitación de fibrina

T1 y T2
All rights reserved
T1
• El discriminador bajo
inferior, que distingue
entre linfocitos y
células mixtas, no se
puede determinar
T2
• El discriminador bajo
superior, que distingue
entre células mixtas y
neutrófilos, no se
puede determinar
Causas probables
• Presencia de LMC u
otros granulocitos
inmaduros
• Lisis incompleta de
eritrocitos
• Muestra envejecida

F1, F2, F3
All rights reserved
F1
• Error de
histograma de
células
pequeñas. La
frecuencia
relativa de T1
excede el
intervalo
F2
• Error de
histograma de
células mixtas.
La frecuencia
relativa de T1 y
T2 exceden el
intervalo
F3
• Error de
histograma de
células grandes.
La frecuencia
relativa de T2
excede el
intervalo
Causas probables
• Presencia de LMC
u otros
granulocitos
inmaduros
• Muestra con
valores elevados
de monocitos,
eosinófilos o
basófilos
• Lisis incompleta de
los eritrocitos
• Muestra
envejecida

WU
All rights reserved
WU
• La frecuencia relativa para el
discriminador superior (UD) excede el
intervalo
Causas probables
• Lisis incompleta de eritrocitos
• Presencia de leucocitos inmaduros
• Agregación de leucocitos
• Satelitismo plaquetario

AG
All rights reserved
AG
• El conteo de partículas iguales o
menores que LD es superior al
intervalo.
• Es un aviso generado en el histograma
de WBC pero que afecta el resultado
de PLT
• PLT es marcado con AG y el resto de
los parámetros no son marcados
Causas probables
• Presencia de eritroblastos
• Efectos de eritrocitos fragmentados
• Incremento de plaquetas grandes
• Agregación o aglutinación plaquetaria
• Precipitación de fibrina

¿Qué hacer cuando se presentan
esos avisos de anormalidad?
En presencia de
aglutinación
plaquetaria
Revisar la correcta toma de la muestra – buscar
coágulos o fibrinas
Mezclar la muestra en vórtex por 1 a 3 minutos
y reanalizar
Si se sospecha de interferencia por EDTA,
colectar una nueva muestra en citrato de sodio,
analizar y multiplicar el resultado de las
plaquetas por 1.1
All rights reserved

Si se
sospecha
de
aglutininas
frías
Observación visual del tubo o una gota de sangre en lámina –
aspecto grumoso
Llevar el tubo a 37°C por 10-30 minutos y reanalizar
Si el paso anterior no da resultado, centrifugar la muestra y
reemplazar el plasma con el mismo volumen de solución salina o
CELLPACK previamente calentados a 37° C y repetir el análisis
Observar al microscopio y reportar las anormalidades
Reportar siempre la presencia de aglutininas frías aún cuando se
haya corregido el resultado. Esto puede indicar al médico la
presencia de una patología
All rights reserved

All rights reserved
• Hacer una dilución y reanalizar la muestra. Multiplicar el resultado
por el factor de dilución
Si existe lisis incompleta de eritrocitos
• Recolectar una nueva muestra y analizarla dentro del tiempo de
estabilidad
Si la muestra está envejecida
• Siempre revisar al microscopio el extendido de sangre periférica
• Corregir el diferencial si es necesario
• Reportar las anormalidades encontradas
En presencia de avisos de anormalidad

Pregunta #14
• En el histograma, identifique las poblaciones
señaladas
All rights reserved
A 1=Eosinófilos, 2=Neutrófilos, 3=Blastos
B 1=Neutrófilos, 2=Monocitos, 3=Eosinófilos
C 1=Neutrófilos, 2=Linfocitos, 3=NRBC
D Ninguna de las anteriores
1 2 3

Pregunta #15
• En el histograma, el aviso MP indica
All rights reserved
A La población de células mixtas no se puede determinar
B Doble población de eritrocitos
C Interferencia por cúmulos plaquetarios o fibrina
D Interferencia en el límite superior por eritroblastos

Mantenimiento diario
Limpiar las cámaras del
transductor y de las
líneas (secuencia de
apagado – Shutdown)
Comprobar el nivel de
la cámara atrapa
líquidos y descartar (si
es necesario)
All rights reserved

Cada 1,500 ciclos*
Limpieza del
transductor
Limpieza de la cámara
de residuos
All rights reserved
* Mantenimiento basado en el número de ciclos – dependiendo del volumen de trabajo
de cada laboratorio, para optimizar la vida útil y el desempeño de los componentes del
instrumento

Cada 4,500 ciclos*
Limpieza
de la SRV
All rights reserved
* Mantenimiento basado en el número de ciclos – dependiendo del volumen de trabajo
de cada laboratorio, para optimizar la vida útil y el desempeño de los componentes del
instrumento

Mantenimiento
• Comprobar el estado del instrumento
• Realizar el lavado automático
• Limpiar la estación de lavado
• Limpiar la apertura de la cámara del transductor
• Calibrar la pantalla LCD
• Ajustar la presión y el vacío
• Reemplazar el papel de la impresora integrada
• Descartar los desechos
Cuando sea necesario
All rights reserved
*Instrucciones detalladas en el manual de operación

Pregunta #18
• El “Mantenimiento basado en ciclos” …
All rights reserved
A Significa que un equipo que corre 50 muestras/día necesita mantenimiento
cada 50 días
B Optimiza la vida útil de los componentes de acuerdo a la carga de trabajo
C Es responsabilidad de Ingeniero de Servicio Técnico
D Significa que el equipo no requiere mantenimiento

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