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Exámen Parasitológico Seriado De
     Deposiciones (EPSD)
             Método de Telemann Modificado




                            Por Consuelo Morán – Darío Vergara
   UNIVERSIDAD DE CHILE - FACULTAD DE MEDICINA - ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA
Introducción

 Las técnicas directas de Diagnóstico
  Parasitológico se basan en el diagnóstico
  morfológico de los distintos estados de los
  parásitos.
 Tiene como objetivo pesquisar e identificar
  distintas formas de protozoos (trofozoitos ,
  quistes, ooquistes) y helmintos (larvas,
  adultos, proglótidas y huevos).
Introducción

 El estudio de enteroparásitos
  generalmente se realiza con muestras de
  deposiciones, pero puede efectuarse en
  forma excepcional en el líquido biliar, y
  aspirado duodenal.
 El examen parasitológico de
  deposiciones puede ser seriado (3
  muestras), o de sólo una muestra
  (examen rápido y directo).
Método de Telemann Modificado

 Es una técnica de sedimentación en la
  cual se utiliza una solución salina de
  menor densidad mayor a la de los
  parásitos para que estos se concentren
  en el sedimento
 Este examen parasitológico de
  deposicionespuede ser seriado o de solo
  una muestra.
Método de Telemann

   Ventajas:
    -Procesamiento rápido y económica.
    - No invasivo
    - Permite el diagnóstico de la mayoría de los
    enteroparáitos.
   Desventajas:
    -Es operado dependiente, lo que puede llevar a
    resultados falsos negativos
    -Tiene un mal rendimiento para diagnóstico de
    trofozoitos.
    - Implica excesivo tiempo consulta-resultado.
Materiales


Pipetas Pasteur
                                        Tubos de centrífuga
Solución Salina
                                                       Malla
Varillas de Mezcla
                                                       Vasos

 Acetato de Etilo
                                                 Tinción MIF


  Portaobjetos


                                  Lápiz para rotular
Proceso

Muestra:
   Se le proporciona frascos adecuados al paciente
    para la toma de la muestra, con 10 ml de formol-sal
    (fijador)
   La muestra debe ser fresca, recien emitida y no
    mezclada con orina.
   No se debe consumir 6 días previos a al exmámen
    antibióticos, antiparasitarios, carbón ni bario.
   La muestras deben ser tomadas día por medio y
    mezclarse con el fijador.
Proceso

Procesamiento de la muestra
1. Resuspender la emulsión fecal.
2. Vaciar la mitad del contenido de cada frasco en un vaso.
                                    2.
    1.
Proceso
3. Depositar una gota de la emulsión en un portaobjeto
    (Preparación directa)
4. Tamizar la emulsión fecal a través de una malla, estando
    atento de que aparezca algún elemento macroscópico

    3.                   4.
Proceso

4. En un tubo de centrífuga agregar 10 ml de
   tamizado diluido + 1 ml de acetato de etilo.
   Centrifugar.


            +
Proceso
5. Eliminar sobrenadante. Depositar una gota
  del sedimento en un portaobjeto.
Proceso
6. Agregar una gota de tinción MIF y cubrir
  con un cubreobjeto.




       Mantener en una cámara húmeda hasta su lectura.
Lectura
 La lectura del preparado directo y
  concentrado se recorre totalmente en 10X,
  seguido de 40X. Solo si es necesario,
  observar en 100X
 La lectura debe ser ordenada y sistemática
  abarcando toda la preparación y evitando
  que los recorridos se superpongan para no
  dejar área sin examinar.
Podemos Observar
FIN

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Exámen parasitológico seriado de deposiciones (epsd)

  • 1. Exámen Parasitológico Seriado De Deposiciones (EPSD) Método de Telemann Modificado Por Consuelo Morán – Darío Vergara UNIVERSIDAD DE CHILE - FACULTAD DE MEDICINA - ESCUELA DE TECNOLOGÍA MÉDICA
  • 2. Introducción  Las técnicas directas de Diagnóstico Parasitológico se basan en el diagnóstico morfológico de los distintos estados de los parásitos.  Tiene como objetivo pesquisar e identificar distintas formas de protozoos (trofozoitos , quistes, ooquistes) y helmintos (larvas, adultos, proglótidas y huevos).
  • 3. Introducción  El estudio de enteroparásitos generalmente se realiza con muestras de deposiciones, pero puede efectuarse en forma excepcional en el líquido biliar, y aspirado duodenal.  El examen parasitológico de deposiciones puede ser seriado (3 muestras), o de sólo una muestra (examen rápido y directo).
  • 4. Método de Telemann Modificado  Es una técnica de sedimentación en la cual se utiliza una solución salina de menor densidad mayor a la de los parásitos para que estos se concentren en el sedimento  Este examen parasitológico de deposicionespuede ser seriado o de solo una muestra.
  • 5. Método de Telemann  Ventajas: -Procesamiento rápido y económica. - No invasivo - Permite el diagnóstico de la mayoría de los enteroparáitos.  Desventajas: -Es operado dependiente, lo que puede llevar a resultados falsos negativos -Tiene un mal rendimiento para diagnóstico de trofozoitos. - Implica excesivo tiempo consulta-resultado.
  • 6. Materiales Pipetas Pasteur Tubos de centrífuga Solución Salina Malla Varillas de Mezcla Vasos Acetato de Etilo Tinción MIF Portaobjetos Lápiz para rotular
  • 7. Proceso Muestra:  Se le proporciona frascos adecuados al paciente para la toma de la muestra, con 10 ml de formol-sal (fijador)  La muestra debe ser fresca, recien emitida y no mezclada con orina.  No se debe consumir 6 días previos a al exmámen antibióticos, antiparasitarios, carbón ni bario.  La muestras deben ser tomadas día por medio y mezclarse con el fijador.
  • 8. Proceso Procesamiento de la muestra 1. Resuspender la emulsión fecal. 2. Vaciar la mitad del contenido de cada frasco en un vaso. 2. 1.
  • 9. Proceso 3. Depositar una gota de la emulsión en un portaobjeto (Preparación directa) 4. Tamizar la emulsión fecal a través de una malla, estando atento de que aparezca algún elemento macroscópico 3. 4.
  • 10. Proceso 4. En un tubo de centrífuga agregar 10 ml de tamizado diluido + 1 ml de acetato de etilo. Centrifugar. +
  • 11. Proceso 5. Eliminar sobrenadante. Depositar una gota del sedimento en un portaobjeto.
  • 12. Proceso 6. Agregar una gota de tinción MIF y cubrir con un cubreobjeto. Mantener en una cámara húmeda hasta su lectura.
  • 13. Lectura  La lectura del preparado directo y concentrado se recorre totalmente en 10X, seguido de 40X. Solo si es necesario, observar en 100X  La lectura debe ser ordenada y sistemática abarcando toda la preparación y evitando que los recorridos se superpongan para no dejar área sin examinar.
  • 15. FIN