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Malaria o Paludismo

Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo V, Tema 14: Plasmodios y sus vectores. Aspectos diagnósticos de la malaria.

1 de 68
FACULTAD DE CIENCIAS
DE LA SALUD
ESCUELA DE
BIOANÁLISIS
Universidad de Carabobo
Facultad de Ciencias de la Salud
Escuela de Bioanálisis
Asignatura Parasitología
MSc. Diana Graterol
Plasmodios y sus vectores.
Aspectos diagnósticos de la
malaria
 Malaria o Paludismo.
 Taxonomía, Morfología y Ciclo
Evolutivo.
 Mecanismos Patogénicos, Patología
y Sintomatología.
 Diagnóstico clínico y de laboratorio.
 Epidemiología, Tratamiento y
Profilaxis.
 Caracteres morfológicos de los
anofelinos.
3
Malaria o Paludismo
Malaria proviene del
italiano medieval
mala aria (mal aire);
en español se le
llama también
Paludismo, del latín
palus, «pantano».
Agente etiológico: Plasmodium.
Es la más mortal de todas las enfermedades parasitarias tropicales,
caracterizada por fiebre, escalofríos, anemia y esplenomegalia
Hay 4 tipos de malaria en el humano:
P. falciparum (Fiebre terciana maligna)
P. vivax (Fiebre terciana benigna)
P. ovale (Fiebre terciana benigna)
P. malariae (Fiebre cuartana)
Hospedador
intermediario
Hospedador
definitivo Anopheles
Importancia Epidemiológica
4
 La OMS ha estimado que cada año ocurren entre 300 y 500 millones de
nuevos casos clínicos y hasta 2,7 millones de muertes.
 Problema de salud en 106 países.
 Más de 2.400 millones de personas en zonas endémicas.
 Los niños son los más afectados.
 Actualmente la transmisión malárica en Venezuela se localiza en tres
focos que ocupan 23% del territorio nacional.
www.malaria.org/background.info.htlm
Enfermedad infecciosa caracterizada por episodios paroxísticos de fiebre,
escalofríos y sudoraciones; evoluciona con anemia y esplenomegalia
Clasificación Taxonómica
5
Plasmodium vivax
Reino: Protista
Sub-reino: Protozoa
Phylum: Miozoa
Infraphylum: Apicomplexa
Clase: Aconoidasida
Orden: Haemosporida
Familia: Plasmodiidae
Género: Plasmodium
falciparum
vivax
ovale
malariae
(presencia complejo apical)
6
Morfología Plasmodios
Esporozoítos Criptozoítos Esquizonte
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Malaria o Paludismo

  • 1. FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD ESCUELA DE BIOANÁLISIS Universidad de Carabobo Facultad de Ciencias de la Salud Escuela de Bioanálisis Asignatura Parasitología
  • 2. MSc. Diana Graterol Plasmodios y sus vectores. Aspectos diagnósticos de la malaria  Malaria o Paludismo.  Taxonomía, Morfología y Ciclo Evolutivo.  Mecanismos Patogénicos, Patología y Sintomatología.  Diagnóstico clínico y de laboratorio.  Epidemiología, Tratamiento y Profilaxis.  Caracteres morfológicos de los anofelinos.
  • 3. 3 Malaria o Paludismo Malaria proviene del italiano medieval mala aria (mal aire); en español se le llama también Paludismo, del latín palus, «pantano». Agente etiológico: Plasmodium. Es la más mortal de todas las enfermedades parasitarias tropicales, caracterizada por fiebre, escalofríos, anemia y esplenomegalia Hay 4 tipos de malaria en el humano: P. falciparum (Fiebre terciana maligna) P. vivax (Fiebre terciana benigna) P. ovale (Fiebre terciana benigna) P. malariae (Fiebre cuartana) Hospedador intermediario Hospedador definitivo Anopheles
  • 4. Importancia Epidemiológica 4  La OMS ha estimado que cada año ocurren entre 300 y 500 millones de nuevos casos clínicos y hasta 2,7 millones de muertes.  Problema de salud en 106 países.  Más de 2.400 millones de personas en zonas endémicas.  Los niños son los más afectados.  Actualmente la transmisión malárica en Venezuela se localiza en tres focos que ocupan 23% del territorio nacional. www.malaria.org/background.info.htlm Enfermedad infecciosa caracterizada por episodios paroxísticos de fiebre, escalofríos y sudoraciones; evoluciona con anemia y esplenomegalia
  • 5. Clasificación Taxonómica 5 Plasmodium vivax Reino: Protista Sub-reino: Protozoa Phylum: Miozoa Infraphylum: Apicomplexa Clase: Aconoidasida Orden: Haemosporida Familia: Plasmodiidae Género: Plasmodium falciparum vivax ovale malariae (presencia complejo apical)
  • 6. 6 Morfología Plasmodios Esporozoítos Criptozoítos Esquizonte Merozoítos Trofozoítos Gametocitos (microgametocito, macrogametocito) Zigoto Ooquineto Ooquiste Esporozoítos
  • 7. 7 Morfología Plasmodios Esporozoíto  Presente en saliva insecto vector  Forma infectante para el vertebrado Complejo apical Roptrias Micronemas Membrana externa Membrana interna Citostoma Núcleo Mitocondria
  • 8. 8 Morfología Plasmodios Trofozoíto Consta de dos partes:  Citoplasma  Núcleo Los parásitos jóvenes tienen forma de anillo y los maduros ameboides, con granulaciones en la superficie propias de la especie de plasmodio que se trate.
  • 9. 9 Morfología Trofozoíto Joven Vacuolas pigmentos Citostoma Membrana plasmática Núcleo Ribosomas libres Mitocondria Plastídio Exocitosis vesículas Complejo Golgi (?) RER Vacuolas pigmentos Citostoma Membrana plasmática Núcleo Ribosomas libres Mitocondria Plastídio Exocitosis vesículas Complejo Golgi (?) RER
  • 10. 10 Morfología Trofozoíto Maduro Vacuola pigmento Plastidio Prominencia superficial Ribosomas libres Mitocondria Membrana plasmática Núcleo Complejo Golgi RER Exocitosis vesículas Invaginación superficial Citostoma Vacuolas alimenticias Vacuola pigmento Plastídio Prominencia superficial Ribosomas libres Mitocondria Membrana plasmática Núcleo Complejo Golgi RER Exocitosis vesículas Invaginación superficial Citostoma Vacuolas alimenticias
  • 11. 11 Morfología Plasmodios Esquizonte Presenta dos o más masas de cromatina según el grado de maduración. Aspecto globoso de la cromatina (esquizonte joven) para luego dividirse y rodearse de citoplasma (esquizonte maduro). Están constituidos por un acúmulo de Merozoítos, a veces en forma de roseta y con el pigmento malárico de color marrón.
  • 12. 12 Morfología Esquizonte Membrana GR Citostoma Vacuola pigmento Retículo Endoplásmico rugoso Depresión superficial Depresión profunda Brotes merozoítos Roptrias Complejo Golgi Huso mitótico Núcleo Mitocondria Prominencias membrana glóbulo rojo Membrana GR Citostoma Vacuola pigmento Retículo Endoplásmico rugoso Depresión superficial Depresión profunda Brotes merozoítos Roptrias Complejo Golgi Huso mitótico Núcleo Mitocondria Prominencias membrana glóbulo rojo
  • 13. 13 Morfología Merozoíto Núcleo Capa superficial Plastídio Mitocondria Microtúbulos Gránulos densos Micronema Anillos polares Prominencia apical Roptria Cisterna pelicular Ribosomas Membrana plasmática Núcleo Capa superficial Plastídio Mitocondria Microtúbulos Gránulos densos Micronema Anillos polares Prominencia apical Roptria Cisterna pelicular Ribosomas Membrana plasmática
  • 14. 14 Morfología Plasmodios Gametocitos Ocupan casi todo el eritrocito o pueden estar libres. Citoplasma voluminoso. La cromatina se presenta como masa única, condensada o dispersa. Macrogametocitos presenta una cromatina condensada y el citoplasma extendido por todo el glóbulo rojo. Microgametocitos presenta una cromatina dispersa, citoplasma similar al macrogametocito.
  • 16. Ciclo Evolutivo Plasmodios 16 Imagen tomada del DPD CDC. http://www.dpd.cdc.gov/dpdx/HTML/ImageLibrary/Malaria_il.htm Esporozoítos Hepatocito Criptozoíto Esquizonte CicloPre-eritrocítico Ruptura hepatocito Merozoítos Trofozoíto inmaduro Trofozoíto maduro Gametocitos Esquizonte Lisis GR Cicloeritrocítico Mosquito ingiere gametocitos Mosquito inocula esporozoítos Ciclo esporogónico Ruptura ooquiste Liberación esporozoítos Ooquiste Ooquineto Macrogameto Microgameto fecundando macrogameto Exflagelación microgameto Esporozoítos Hepatocito Criptozoíto Esquizonte Ciclo Pre-eritrocítico Ruptura hepatocito Merozoítos Trofozoíto inmaduro Trofozoíto maduro Gametocitos Esquizonte Lisis GR Ciclo eritrocítico Mosquito ingiere gametocitos Mosquito inocula esporozoítos Ciclo esporogónico Ruptura ooquiste Liberación esporozoítos Ooquiste Ooquineto Macrogameto Microgameto fecundando macrogameto Exflagelación microgameto
  • 17. Ciclo Evolutivo Plasmodios 17 Afinidad por los eritrocitos P. vivax ataca principalmente a reticulocitos y eritrocitos jóvenes P. falciparum ataca a todos los eritrocitos de todas las edades P. ovale ataca eritrocitos maduros P. malariae ataca eritrocitos maduros
  • 18. Ciclo Sexual Anofelino 18 Gametos Zigoto Femenino Masculino Matriz peritrófica Lámina basal Ooquineto Ooquiste Lámina basal Glándula salival Hemolinfa Liberación esporozoítos desde el ooquiste
  • 19. 19 Mecanismos Patogénicos  Liberación de merozoítos en el torrente sanguíneo.  Aumento de la destrucción de glóbulos rojos.  Grandes cantidades de hemoglobina libre liberada en la circulación.  Obstrucción vasos sanguíneos. “Daño provocado depende de la especie, virulencia de la cepa infectante, resistencia natural y del estado inmunitario del hospedador”
  • 20. 20 Patología Sangre: Hígado y Bazo:  Aumento de tamaño  Acumulación pigmento malárico  Anemia: anoxia tisular, astenia y disnea  Reticulocitosis  Poiquilocitosis  Anisocitosis  Aumento bilirrubina: ictericia Cerebro:  Obstrucción capilares sanguíneos  Congestión, edema
  • 21. 21 Manifestaciones Clínicas Etapa pirética •Cefalea •Dolor de huesos •Vómito •Escalofríos •Temblor •Piel seca y pálida •Pulso acelerado Duración: 15 a 60 minutos. •Elevación de temperatura (40-42°C) Duración: 2 a 4 horas. •Sudoración profusa •Debilidad •Anemia •Hepatomegalia •Esplenomegalia Duración: 2 a 4 horas. Etapa premonitoria Etapa de sudor Acceso malárico P. vivax: cada 48 horas P. falciparum: 36 - 48 horas P. malariae: cada 72 horas P. ovale: cada 48 horas
  • 22. 22 Manifestaciones Clínicas Características de las infecciones producidas por las especies de Plasmodium P. vivax P. falciparum P. malariae Duración del ciclo preeritrocítico 6 a 8 días 5 a 7 días 12 a 16 días Periodo prepatente 11 a 13 días 9 a 10 días 15 a 16 días Periodo de incubación 12 a 17 días 9 a 14 días 18 a 40 días Ciclo esquizogónico de los hematíes 48 horas 48 horas(irregular) 72 horas Gravedad del ataque primario Benigno Grave en los no inmunes Benigno Duración de la crisis febril (en horas) 8 a 12 16 a 36 8 a 10 Recurrencias Medianas Nulas o escasas Abundantes Lapsos entre recurrencias Largos Cortos Muy largos Duración de la infección (en años) 2 a 3 1 a 2 3 a 50
  • 23. 23 Manifestaciones Clínicas Complicaciones Malaria  Malaria cerebral  Anemia grave: Hb < 5g/dL, Ht < 15%  Insuficiencia renal: < 400 mL orina/día  Hipoglicemia: glucosa < 40 mg/dL  Sangramiento espontáneo  Convulsiones generalizadas  Acidemia: pH < 7,2  Hemoglobinuria
  • 24. Diagnóstico 24 Criterios Epidemiológicos:  Proceder de un área endémica  Contacto con pacientes con malaria  Haber recibido transfusiones  Adictos a droga por vía parenteral Diagnóstico diferencial: fiebre tifoidea, Hepatitis viral, leptospirosis, fiebre recurrente, septicemias Criterios Clínicos:  Episodios paroxísticos de fiebre o fiebre periódica  Escalofríos  Sudoración  Otros: anemia hipocrómica, esplenomegalia, cefalea
  • 25. Diagnóstico 25 Criterios Parasitológicos:  Demostración parásito en sangre Gota gruesa Extendido coloreado QBC  Diagnóstico inmunológico Búsqueda antígenos circulantes Búsqueda anticuerpos
  • 26. Diagnóstico 26 Criterios Parasitológicos:  Extendido coloreado  Gota gruesa Recuento parásitos: + = 1-10 parásitos/ 100 campos gota gruesa 2 + = 2-100 parásitos / 100 campos gota gruesa 3 + = 1-10 parásitos / 1 campo gota gruesa 4 + = más de 10 parásitos/ 1 campo gota gruesa
  • 27. Diagnóstico 27 Caracteres diferenciales de los parásitos maláricos en extendido P. vivax P. falciparum P. malariae Formas en sangre periférica Trofozoíto (joven, maduro), esquizontes y gametocitos Trofozoíto joven, gametocitos Trofozoíto (joven, maduro), esquizontes y gametocitos Aspecto GR infectados Aumentados tamaño, pálidos. Abundantes granulaciones Schüffner (finas, regulares, claras) Normal. Escasas granulaciones Maurer (gruesas, irregulares, oscuras) Normal. Escasas granulaciones Ziemann (finas, regulares, oscuras)
  • 28. Plasmodium vivax 28 Trofozoíto joven: Forma anillo, citoplasma delgado, núcleo cromatina densa, Poliparasitismo raro. Trofozoíto maduro: muy raro en sangre periférica. Pequeño y compacto, citoplasma más abundante. Núcleo con cromatina densa. Abundantes granulaciones Schüffner. Esquizonte: forma ameboide, citoplasma irregular vacuolizado, cromatina segmentada. Posee 12 a 24 merozoítos. Macrogametocito: con citoplasma abundante, redondeado u oval, núcleo pequeño con cromatina densa. Ocupa casi todo el volumen del glóbulo rojo. Microgametocito: citoplasma pálido, abundante. Núcleo cromatina difusa. Ocupa casi todo el volumen del eritrocito.
  • 29. Plasmodium falciparum 29 Trofozoíto joven: Forma anillo, citoplasma delgado, núcleo cromatina densa, a veces dos núcleos. Poliparasitismo frecuente. Escasas granulaciones Maurer. Trofozoíto maduro: muy raro en sangre periférica. Pequeño y compacto, citoplasma más abundante. Núcleo con cromatina densa. Esquizonte: muy raro sangre periférica, generalmente redondo, citoplasma contínuo, múltiples núcleos con cromatina densa. Posee entre 6 y 32 merozoítos. Macrogametocito: forma media luna, citoplasma azul intenso, núcleo con cromatina densa y rodeado por pigmento malárico. Microgametocito: forma media luna, citoplasma pálido, núcleo cromatina difusa, pigmento malárico diseminado.
  • 30. Plasmodium malariae 30 Trofozoíto joven: Forma anillo, citoplasma delgado, núcleo cromatina densa. Poliparasitismo raro. Trofozoíto maduro: disposición de faja ecuatorial. Se conocen como formas en banda. Esquizonte: multilobulado, con aspecto típico de margarita. Posee de 6 a 12 merozoítos. Macrogametocito: citoplasma abundante, redondeado u oval, núcleo grande con cromatina densa. Ocupa casi todo el volumen del glóbulo rojo. Microgametocito: citoplasma pálido, abundante. Núcleo cromatina difusa. Ocupa casi todo el volumen del eritrocito.
  • 31. Visualización de láminas 31 Glóbulo rojo Núcleo Citoplasma Tienen forma de anillo con un grueso punto cromático, el cual puede estar en la parte central o periférica; el circulo citoplasmático del anillo es grande y teñido de azul, posee una vacuola definida, estos anillos ocupan alrededor de 1/3 a ¼ del glóbulo rojo. Plasmodium vivax Trofozoítos jóvenes
  • 32. Visualización de láminas 32 Son parecidos a los trofozoítos jóvenes, con el núcleo más grande, citoplasma más abundante y presenta una o varias vacuolas más pequeñas, las ramificaciones citoplasmáticas son abundantes y netas e indican los movimientos ameboides característicos del crecimiento; se perciben gránulos de pigmento marrón-amarillento, pequeños, angulares o en forma de bastoncitos que crecen con la edad del parásito, el cual en esta etapa ocupa ¼ a ¾ del glóbulo rojo. Citoplasma Núcleo Glóbulo rojo Plasmodium vivax Trofozoíto mediano
  • 33. Visualización de láminas 33 El núcleo está formado por abundante masa de cromatina, situado en la periferia del parásito, citoplasma compacto de contorno irregular o definido, sin ramificaciones citoplasmáticas o pseudópodos, pigmentos color marrón-oro. Este estadio parece más pequeño que las formas ameboides de los trofozoítos medianos, por lo compacto, se tiñe más intensamente, ocupa casi en su totalidad el glóbulo rojo hipertrofiado en 1 ó 2 veces el tamaño normal. Plasmodium vivax Trofozoítos adultos (maduros)
  • 34. Visualización de láminas 34 Presenta núcleo dividido, primero en dos y luego en varias masas cromáticas, de forma irregular, que luego se define; citoplasma conserva el aspecto de los trofozoítos adultos y el pigmento muestra tendencia a colectarse en partes del citoplasma. Plasmodium vivax Esquizonte inmaduro (pre-segmentado) Masas cromáticas Pigmento malárico Citoplasma
  • 35. Visualización de láminas 35 Posee de 12 a 14 merozoítos, compuestos de un punto de cromatina y una porción de citoplasma, el pigmento se concentra en una o dos masas flojas, pero definidas, hecho que denota que la segmentación está ya completa. El parásito llena casi completamente el glóbulo hipertrofiado. Plasmodium vivax Esquizonte maduro (segmentado) Pigmento malárico Merozoítos
  • 36. Visualización de láminas 36 El citoplasma es azul oscuro, sin vacuolas, con una coloración homogénea, en lo cual se diferencia de los trofozoítos adultos que tienen porciones pálidas y más intensamente teñidas. Núcleo pequeño, compacto, rojo oscuro, rodeado frecuentemente de un halo claro y es generalmente excéntrico. Pigmento marrón, más oscuro que en microgametocito, distribuido por todo el citoplasma, más abundante y de gránulos mayores que en los trofozoítos adultos. Cuando el macrogametocito está maduro, llena casi todo el glóbulo hipertrofiado, cuyo contorno es circular u oval y regular, siendo su tamaño 1 ½ a 2 veces el tamaño de un glóbulo rojo normal. Núcleo Citoplasma Plasmodium vivax Macrogametocito
  • 37. Visualización de láminas 37 Posee núcleo grande, de cromatina difusa, reticular y granulosa de color rojo pálido o rosado, situado en el centro del parásito y rodeado frecuentemente de un área vesicular clara; algunas veces la forma del núcleo es estelar, en huso o en banda, a través del citoplasma, el cual se presenta azul pálido, gris rosado o casi incoloro. Pigmento marrón- amarillento, menos oscuro que el macrogametocito, distribuido por todo el citoplasma, menos abundante que el anterior, pero más que en el trofozoíto. Cuando está maduro es del tamaño de un glóbulo rojo normal de contorno circular. Plasmodium vivax Microgametocito Citoplasma Núcleo
  • 38. Visualización de láminas 38 Trofozoíto Esquizontes Macro gametocito Micro gametocito Plasmodium vivax
  • 40. Visualización de láminas 40 Tienen forma de anillo, con uno o dos puntos cromáticos pequeños que se proyectan hacia afuera y que pueden estar en un mismo lado o en lados opuestos. Citoplasma delgado, filiforme. Las situaciones marginales del parásito, las formas en cometa o las formas en puente son muy frecuentes. En general son mucho más pequeños que las otras especies, algunas veces el núcleo es central en el anillo o se observa como una línea azul atravesando el glóbulo rojo con un punto cromático central. Las infecciones múltiples se producen frecuentemente. Llenan apenas 1/6 del glóbulo rojo. Plasmodium falciparum Trofozoítos jóvenes Glóbulo rojo Núcleo Citoplasma
  • 41. Visualización de láminas 41 Mantienen la forma del trofozoíto joven, el núcleo y el citoplasma aumentan hasta alcanzar el anillo del Plasmodium vivax con los cuales pueden confundirse. Escasos gránulos de pigmento de tinte amarillento, llenan ¼ a 1/3 del eritrocito. Por lo general este estadio y el trofozoíto joven de Plasmodium falciparum se encuentra en sangre periférica, al igual que los gametocitos. Las otras formas no se observan en sangre periférica, porque su multiplicación se hace en los capilares internos de vísceras y encéfalo. Plasmodium falciparum Trofozoíto mediano
  • 42. Visualización de láminas 42 Tiene forma de banana, salchicha o de media luna, núcleo formado por una sola masa cromática situada en el centro del parásito o ligeramente hacia uno de los polos, citoplasma más azul que el microgametocito, pigmento concentrado alrededor del núcleo, más oscuro que el microgametocito, pero en las formas jóvenes se encuentra distribuido por todo el citoplasma. Los polos del macrogametocito son finos y delgados, 1 a 1 ½ vez el diámetro del eritrocito. Plasmodium falciparum Macrogametocito
  • 43. Visualización de láminas 43 Posee núcleo difuso, rosado pálido, citoplasma menos coloreado que el anterior, del color azul grisáceo o rosado, pigmento en forma de gránulos y bastoncitos, numerosos, agrupados en dos cuartos centrales del parásito. Las forma del gametocito es mas ancha, corto, de extremos redondeados, que le da el aspecto de salchicha. Plasmodium falciparum Microgametocito
  • 44. Visualización de láminas 44 Plasmodium falciparum Trofozoíto Macrogametocito
  • 45. Visualización de láminas 45 Forma anillo, citoplasma delgado, núcleo cromatina densa. Poliparasitismo raro. Plasmodium malariae Trofozoítos jóvenes Glóbulo rojo Núcleo Citoplasma
  • 46. Visualización de láminas 46 Disposición de faja ecuatorial. Se conocen como formas en banda. Plasmodium malariae Trofozoítos maduros (formas en banda)
  • 47. Visualización de láminas 47 Esquizonte inmaduro Esquizonte maduro Plasmodium malariae Esquizontes pre-segmentado y segmentado Esquizonte pre- segmentado Esquizonte segmentado
  • 48. Visualización de láminas 48 Macrogametocitos Plasmodium malariae Macrogametocito y Microgametocito
  • 49. Visualización de láminas 49 Formas evolutivas de Plasmodium vivax en sangre trofozoítos, esquizontes y gametocitos
  • 50. Visualización de láminas 50 Formas evolutivas de Plasmodium falciparum en sangre trofozoítos y gametocitos
  • 51. Visualización de láminas 51 Formas evolutivas de Plasmodium malariae en sangre trofozoítos, esquizontes y gametocitos
  • 52. Diagnóstico 52 La técnica del QBC es un poco más sensible que GG pero como no es posible identificar especie y debido al alto costo del microscopio de fluorescencia, no se considera que pueda sustituir la técnica de referencia Quantitative Buffy Coat (QBC): Detección antígenos:  Parasitemias hasta de 0,0001%. Pruebas rápidas de captura de antígenos circulantes de P. falciparum Pruebas inmunocromatográficas: PfHRP2 (Proteína-2 rica His P. falciparum) LDH (Lactato deshidrogenasa)
  • 53. Diagnóstico 53 Origen muestra Líneas de detección Almohadilla absorbente Anticuerpos Anti Plasmodium sp (LDH) Antígenos LDH Anticuerpos Anti P. falciparum Pruebas inmunocromatográficas:
  • 54. Diagnóstico 54 Pruebas inmunocromatográficas: Mezclar la sangre con tampón lisis para provocar ruptura de los glóbulos rojos. La sangre lisada difunde a través del soporte Los antígenos se enlazan a los anticuerpos presentes en las tiras. Añadir tampón lavado y solución revelado Se forman bandas visibles
  • 55. Diagnóstico 55 Pruebas inmunocromatográficas: Negativo Malaria Plasmodium sp excepto P. falciparum Malaria Plasmodium falciparum LDH LDH LDH PfHRP2 PfHRP2 PfHRP2
  • 56. Diagnóstico 56 Pruebas inmunocromatográficas: ParaSight-F ICT-MalaKit Opti-Mal Permite sólo diagnóstico malaria causada por P. falciparum Permite diagnóstico malaria causada por P. falciparum u otras especies.
  • 58. Diagnóstico 58 Detección anticuerpos:  Reacción indirecta anticuerpos Fluorescentes (RIAF)  ELISA  Reacción fijación complemento  Inmunoblot Pruebas Moleculares:  Parasitemias inferiores a 1 parásito/µL
  • 59. Diagnóstico 59 PCR múltiple anidada: (Identificación de Género y Especies) ssrDNA ADN ribosómico Plasmodium rPLU5 rPLU6 rOVA1 rFAL1 rMAL1 rVIV1 rVIV2 rMAL2 rFAL2 rOVA2 P. ovale P. falciparum P. malariae P. vivax Amplificación de región del genoma de las especies de Plasmodium: P. vivax 120 pb, P. malariae 144 pb, P. falciparum 205 pb y P. ovale 800 pb
  • 60. 60 Epidemiología Plasmodios Reservorio o Fuente Infección: Hombre enfermo Antroponosis Mecanismo transmisión: Hospedador susceptible: Hombre sano
  • 61. 61 Inmunidad Natural Hemoglobina F Deficiencia de la glucosa 6-fosfato deshidrogenasa Genes Hemoglobina S Talasemia Negatividad al Grupo sanguíneo Duffy
  • 62. 62 Epidemiología Plasmodios ÁREA CON MAYOR INCIDENCIA MALÁRICA ÁREA CON MENOR INCIDENCIA MALÁRICA Foco Oriental Foco Occidental Foco Meridional Anopheles emilianus Anopheles núñez-tovari Anopheles darlingi Áreas endémicas de Malaria en Venezuela A. núñez-tovari: Endófago, exófilo, hábitos nocturnos. A. emilianus: Endófago, exófilo, hábitos crepusculares. A. darlingi: Endófago, endófilo, hábitos crepusculares. Monagas, Sucre, Anzoátegui, Delta Amacuro Barinas, Mérida, Portuguesa, Apure, Yaracuy, Zulia, Trujillo, Táchira Bolívar, Amazonas
  • 63. Epidemiología Plasmodios 63 Culicinos Orden Diptera (1 par de alas membranosas) Suborden Nematocera (Antenas largas) Familia Culicidae Género Anopheles Género Culex Género Aedes (Metamorfosis completa) Actividad crepuscular o nocturna 1. Aspecto jorobado 2. Tercer par de patas en el aire en posición de reposo.
  • 64. Epidemiología Plasmodios 64 Cabeza de hembra Cabeza de macho Hembras: Palpos largos – Antenas Pilosas Macho: Palpos largos – Antenas Plumosas
  • 65. Tratamiento 65 Paludismo no complicado: Prevención de recaídas: Paludismo complicado: Cloroquina: 10 mg/Kg/dosis VO y luego 5 mg/Kg/c/6horas, 2 y 3 día (25 mg/Kg/en 3 días) Esquizonticida hemático, gametocida. Útil para las 4 especies plasmodios. Primaquina: 15 mg VO/día durante 14 días Esquizonticida hepático, gametocida. Útil para P. falciparum y P. vivax. Sulfato de Quinina: 20 mg/Kg/dosis de carga, seguida de 10 mg/Kg/dosis cada 8 horas por 3 días y luego, VO hasta completar 7 días de tto + Doxiciclina 100 mg VO cada 12 h o Clindamicina 900 mg c/8h por 5 días Esquizonticida hemático y hepático. Útil para las 4 especies plasmodios.
  • 66. Profilaxis 66 Hospedador susceptible: Vector:  Empleo de repelentes  Aplicación de vacunas  Aislamiento  Uso de mosquiteros  Construcción y protección de viviendas  Control químico
  • 67. Vacunas antimaláricas 67  Proteína circumsporozoítica (esporozoíto): Impide invasión hepatocito Vacuna RTS Proteína circumsporozoítica + HBsAg  RESA (Ring infected erithrocyte surface antigen): Impide invasión eritrocito y fagocitosis glóbulos rojos infectados  Proteínas de esquizontes (83, 55, 35 kDa): Impide el desarrollo ciclo eritrocítico  Proteínas de gametocitos: impide exflagelación microgameto y fecundación macrogameto. SPf55 SPf83 SPf35 NANP NANP
  • 68. Bibliografía 68  Almeida Andrade HT, Serpa Filho A. (2021). Principios básicos de Entomología médica. Brasil: Kindle edition.  Becerril M. (2008). Parasitología Médica. 2da Edición. México: Editorial McGraw-Hill Interamericana.  Botero D, Restrepo M. (2012). Parasitosis humanas. 5ta Edición. Colombia: Corporación para Investigaciones Biológicas.  Campuzano-Zuluaga G, Blair-Trujillo S. (2010). Malaria: consideraciones sobre su diagnóstico. Medicina & Laboratorio. 16: 311-354.  Gállego Berenguer J. (2007). Manual de Parasitología: morfología y biología de los parásitos de interés sanitario. España: Edicions de la Universitat de Barcelona.  Hómez J, Soto R, De Soto S, Méndez H, Mármol P. (2004). Parasitología, Libro de Texto. 10ma Edición. Venezuela: Editorial de la Universidad del Zulia (Ediluz).  Incani RN. (2012). Guía de Parasitología. Venezuela: Escuela de Medicina, FCS- UC.  Markell EK, John DT, Krotoski WA. (1999). Medical Parasitology. 8va Edición. USA: Editorial W.B. Saunders.  Rey L. (2001). Parasitología. 3ra Edición. Brasil: Editorial Guanabara-Koogan.  Rodríguez Pérez EG. (2013). Parasitología médica. 1ra Edición. México: Editorial El Manual Moderno.  Todd A, Sanford L, Davidsohn P. (1988). Diagnóstico y tratamiento clínicos por el laboratorio. 8va Edición. Tomo I.