Fisiologia práctico

PRACTICO N0 1
TOMA DE MUESTRA SANGUINEA
La sangre es el fluido corporal que se
utiliza con más frecuencia para los
diferentes analisis. Hay tres
procedimientos para obtener una
muestra sanguinea
• La venopuncion o flebotomia
• Punción arterial
• Punción capilar o punción
cutánea
La sangre arterial y la sangre venosa
difieren en aspectos importantes:
• La sangre arterial es
esencialmente uniforme en su
composición en todo el cuerpo.
• La composición de la sangre
venosa varía y depende de la
actividad metabólica de los
órganos y tejidos dañados El sitio
de extracción puede afectar la
composición venosa.
• En relación la sangre arterial,
con la venosa es deficiente en
oxigeno y concentración baja de
dióxido de carbono.

• También pueden variar las
concentraciones de glucosa,
acido láctico, cloruro, amoniaco.
OBJETIVO
Es tener conocimiento sobre la
anatomía, materiales y procedimientos
para los diferentes tipos de acceso la
obtención de muestra de sangre
(venosa , arterial, capilar o dérmico)
para la realización de las diferentes
pruebas de laboratorio.
ANATOMIA VENOSA
Venayugular---venasubclabia---vena
axilar------vena humeral------se divide
en venas basílica y cefálica------y
estas en basílica media y cefálica
media.
Verificando de afuera hacia dentro
esta: piel--tejido celular-vena--arteria
y nervio
QUE SE ESTUDIA EN LA MUESTRA
DE SANGRE
• Hemograma completo
• glicemia.70-1º9 Mg/di
• Urea 20-40 Mg/dl
Creatinina 0.8-1.2 Mg/dl

• Colesterol hasta 200 Mg/dl
triglicéridos hasta 160 Mg/dl
• Hematocrito 37-42 %
• Hemoglobina 12-16 Mg/dl
• Valores hematimetricos
• Saturacion oxigeno > 80 %
CANTIDAD DE LA TOMA DE
MUESTRA
Esto dependerá de la solicitud de la
orden médica, mayor ordenes
solicitada mas cantidad de muestra,
menor ordenes solicitada menor
cantidad de muestra.
MATERIALES
• Jeringa estéril para extraer 5 - 10 ml
• Torundas de algodón
• Alcohol etílico (70%)
• Marcador de vidrio.
• Torniquete
• Tubos ensayo con anticoagulante
• Gradilla para tubos
• Guantes descartables.
• Abrazadera.
• Cuaderno de registro, tela adhesiva

•
PROCEDIMIENTO
• Solicitar las ordenes
• Llamar al paciente saludarle con
amabilidad y ponerle cómodo
• Verificar la orden medica e identificar
los tubos de ensayo y registrar en el
cuaderno
• Solicitarle que extienda el miembro
superior sobre la abrazadera y decirle
que habrá y cierre las manos varias
veces para la dilatación de las venas
• Colocar el torniquete a cuatro dedos por
encima del pliegue del codo y que no
quede más de un minuto
• Proceder a verificar el embolo de la
jeringa y observar que no contenga
aire para puncionar la vena
seleccionada, colocar la aguja con el
bisel hacia arriba sobre la vena a 15
grados por encima de la piel
• Introducir la aguja en el centro de la
vena y penetrar a lo largo de la vena
de 1 a 1.5 cm siempre siguiendo a la
vena seleccionada
• Tirar hacia atrás el émbolo de la
jeringa muy lentamente para que

penetre la sangre en la jeringa hasta
llenar con la cantidad de sangre
necesaria.
• Retirar torniquete tirando del extremo
doblado y colocar una torunda de
algodón sobre la piel donde se
encuentra oculta la punta de la aguja
• Extraer la aguja con un movimiento
rápido por debajo de la pieza de
algodón, pedir al paciente que
presione lentamente la torunda
durante 3 minutos con el brazo
extendido.
• Siempre felicitarle y agradecerle por
ser un buen paciente
FUENTES DE ERROR
• Prolongada aplicación del torniquete.
• Extracción violenta de la sangre, por
que puede provocar hemólisis.
• Empleo de tubos mal lavados.
• Depositar la sangre en el tubo en
forma violenta.
• Dejar los tubos con muestras
destapados.
• Que el paciente no cumpla con las
indicaciones de acuerdo al análisis
químico a realizar.

PRACTICO No 2
ANTICOAGULANTES
Una vez extraída la sangre, ésta se va coagular
mantenerla incoagulable mediante la adición
de un anticoagulante. La mayoría de los
exámenes hematológicos requiera que la sangre
sea total y fluida. Para ello se utilizan sustancias
llamadas anticoagulantes, que retirando el calcio
o inhibiendo otros factores de la coagulación,
consiguen mantener la sangre fluida. Estos
anticoagulantes, generalmente, no interfieren la
composición de la sangre de modo que no
perjudican el resultado final del examen.
CARACTERÍSTICAS BÁSICAS DE LOS
ANTICOAGULANTES MÁS USADOS EN
HEMATOLOGÍA
- No alterar el tamaño de los hematíes.
- No produce hemólisis.
- Evita al máximo la agregación plaquetaria.
- No alterar la morfología de los leucocitos.
- La sangre tratada con anticoagulante
debe procesarse lo antes posible, incluso
mantenida bajo refrigeración (4 ºC) si no
pasan de las 2 horas.
- El tiempo máximo entre la extracción de

la sangre y su procesamiento depende
del coagulante de elección y no
debe ser más de 4 horas, a
excepción del anticoagulante EDTA
(etilendiaminotetracético) que puede ser
hasta 24 horas (en refrigeración a 4 ºC).
- Los anticoagulantes pueden emplearse en
forma sólida o líquida. Los primeros están
indicados para la determinación de los
parámetros hematológicos, ya que no
producen, como los anticoagulantes
líquidos, dilución de la sangre.
ANTICOAGULANTES SÓLIDOS
1.- ETILENDIAMINOTETRACETICO (EDTA)
Es la sal disódica o tripotásica del ácido
etilendiaminotetracético. La sal disódica (Na
2). EDTA) es menos soluble que la sal tripotásica
(K3)EDTA).
Estos compuestos realizan su acción a través de
un efecto quelante sobre el calcio, al fijarlo
impiden su activación y, por ende, la coagulación
sanguínea.
VENTAJAS
- Respeta la morfología eritrocitaria
(especialmente la sal tripotásica) y
leucocitaria, de manera que permite una
demora de dos horas en la realización del

frotis sanguíneo después de la extracción
sanguínea.
- Asegura la conservación de los elementos
sanguíneos durante 24horas si la sangre se
mantiene a 4 C.
- Al inhibir la aglutinación de las plaquetas,
facilita su recuento o su expresión
semicuantitativa a partir del frotis.
- La concentración recomendada de EDTA es
de 1,5 mg/ml. de sangre. Una mayor
cantidad de anticoagulante puede
producir retracción celular, con
disminución del hematocrito, y un
aumento de la concentración media de la
hemoglobina. Un exceso de sangre con
relación al anticoagulante produce formación
de microagregados que pueden alterar los
resultados. El empleo de tubos al vacío con
una gota de EDTA tripotásica comercial para
5 ml de sangre es de interés práctico
dado que es cien veces más soluble
facilitando la mezcla de sangre con
anticoagulante.

DESVENTAJAS
- Usado en exceso afecta a los eritrocitos y a
los leucocitos, a los cuales les produce
encogimiento y cambios en su forma, por ello
debe cuidarse de agregar la cantidad correcta de
sangre al anticoagulante.
2.- ANTICOAGULANTE DE WINTROBE
- Es una mezcla de oxalato de amonio y
potasio. Actúa por precipitación del calcio, es
fácil de preparar. Se emplea en forma de polvo
en proporción de 2 deoxalato de amonio por 1 de
oxalato de potasio. La cantidad recomendada es
de 2 mg x ml de sangre.
- Este anticoagulante no afecta el volumen
globular medio y puede usarse para
determinaciones de hemoglobina, hematocrito
y recuento globular, pero para los
extendidos queda limitada a los primeros
minutos, tampoco es útil para el recuento
plaquetario porque produce formación de
agregados plaquetarios.
- Para 5ml de sangre se utilizan 0.5ml de la
mezcla de anticoagulante (desecado en estufa a
37 C. o a temperatura ambiente antes de
utilizarlo) esta dilución anticoagulante actúa para
la fijación del calcio y debe usarse siempre
desecado para no diluir la sangre

3.- Heparina
El nombre de heparina proviene del griego hepar
que significa hígado, ya que fue aislado por
primera vez de las células de este tejido. Es
un mucopolisacárido ácido. Presenta el
inconveniente de que si no se agita
rápidamente con la sangre después de extraída
pueden formarse microcoágulos, aunque no
altera el volumen eritrocitario ni la morfología de
los leucocitos. No es recomendable para el
frotis sanguíneo porque produce un fondo
azul en la lámina.
La heparina de sodio o litio puede usarse en
forma sólida o líquida, en proporción de 0,1 -
0,2 mg de heparina por 1 ml de sangre.
ANTICOAGULANTESLÍQUIDOS.
1.- Citrato trisódico
- Es de elección para las pruebas de
hemostasia y la velocidad de sedimentación.
- Actúa a través de la precipitación del calcio. La
concentración depende de la prueba por realizar.
- Para pruebas de hemostasia se emplea en
proporción de 1: 9 (0,5 ml de anticoagulante para
4,5 ml de sangre total).
- Para la determinación de la VSG (Velocidad de
Sedimentación Globular) es1:4 (0,5 ml de
anticoagulante para 2 ml de sangre).

2.- Oxalato sódico
- Recomendado también para las pruebas de
hemostasia. Se emplea en proporción de un
volumen de anticoagulante para 4 vol. de sangre.
CODIGO DE COLORES INTERNACIONALES
DE LOS TUBOS COLECTORES MUESTRA
SANGUINEA
Tapa roja: Sin anticoagulante (Tubo seco).
Destinado a serología, bioquímica,
inmunología.
Tapa violeta Con EDTA. Contiene
anticoagulante, destinado a hematimetrias.
Tapa azul: Con CITRATO DE SODIO. Destinado
a pruebas de prueba coagulación.
Tapa negro: Con CITRATO SÓDICO. Destinado
VSG (velocidad de sedimentación
globular).
Tapa amarillo: Destinado a la bioquímica.
Tapa verde: Con HEPARINA. Contiene un
separador que se interpone ente las
Células sanguíneas y el suero.
VALORES NORMALES DE LA COAGULACION
SANGUINEA
1.- tiempo coagulación.- 6-10 minutos.
2.- Tiempo protrombina.- de 12 segundos.
3.- Tiempo hemorragia.- 1 a 6 minutos.
MATERIALES.

- Todo referente al práctico uno.
- Anticoagulante EDTA.
PROCEDIMIENTO
- Extraer la sangre según técnica descrita.
- Vaciar 1 gota de EDTA al tubo de ensayo
para 5 ml de sangre.
- Remover el tubo lentamente durante treinta
segundos.
- Esperar el tiempo determinado y observar
para su lectura. . Después de un periodo de
1 a 3 horas, a temperatura de 37º C dejará
separas de la parte coagulada un líquido: el
suero.
PRACTICO No 3
HEMATOCRITO

Es un estudio de laboratorio que nos orienta
para el diagnosticos y alteracion en la sangre
porque nos va a determinar en terminos de
porcentaje solo la concentracion de los globulos
rojos. R ecordemos que los globulos en su
interior llevan la hemoglobina que es una
molecula que va servir para llevar oxigeno a las
celulas de los diferentes organos.
El método de preferencia para la determinación
de Hto es la microcentrifugación de sangre total
en tubo capilar (micrométodo), es una técnica
sencilla, barata y accesible a laboratorios de baja
complejidad. Aunque también puede emplearse
un tubo de Wintrobe (macrométodo), este
procedimiento no es tan recomendable debido a
su mayor inexactitud e imprecisión.
Ambos métodos se basan en medir el
empaquetamiento de la columna de eritrocitos
cuando la sangre total con anticoagulante se
somete a la acción de una fuerza centrífuga.
Por ello entre sus factores de error está
el plasma que queda atrapado entre los
eritrocitos empaquetados y el posible

efecto de leucocitos y plaquetas en la
lectura.
Importancia clínica: El hematocrito es
una medición de la fracción volumétrica
de hematíes. Se trata de un indicador
clave del estado corporal de hidratación,
anemia o pérdida grave de sangre, así
como la capacidad de la sangre para
transportar oxígeno.
CONCEPTO.- Es un estudio de laboratorio que
nos orienta para el diagnosticos y alteracion en
la sangre porque nos va a determinar en
terminos de porcentaje solo la concentracion de
los globulos rojos. R ecordemos que los globulos
en su interior llevan la hemoglobina que es una
molecula que va servir para llevar oxigeno a las
celulas de los diferentes organos.
ACCESO DE LA SANGRE PARA LA PRACTICA
a) Via venosa (capilares azul)
b) Via capilar o dermico (capilares rojos)
MATERIALES
- Todo referente al practico uno

- Capilares: azules no tiene anticoagulante en su
interior asi que hay que preparar con EDTA. y los
capilares rojos si tienen en su interior
anticoagulante osea tiene heparina y este sirve
para realizar las practicas con por via capilar o
dermico.
- Microcentrifugadora.
- Plastilina.
- Lector de hematocrito.
- Lancetas
PROCEDIMIENTO
- Obtencion de la muestra segun tecnica descrita
-Preparar la sangre segun tecnica descrita para
los capilares azules.
- Introducir el capilar azul dentro del tubo de
ensayo hasta hacer contacto con la sagre y
elevar el tubo y bajar el capilar y dejar que pase
por gravedad hasta tres cuartas partes del
capilar, luego colocar el dedo en el extremo de
afuera del capilar y llevar a la plastilina para su
posterior taponamiento .

- Luego llevar a la micricentrifugadora
colocandole en unos de los canales el lado de la
plastilina en direccion interna o del centro de la
microcentrifugadora y el otro extremo en
direccion externa siempre haciendo contacto con
el borde de la microcentrifugadora.
- Cerrar la microcentrifugadora y colorcar en un
tiempo de cinco minutos a 12.000 revoluciones
por minuto que automaticamente se va parar.
- Retirar el capilar y llevar al lector de hematocrito
siempre con la base de la plastilina en la base
del lector donde cruza la linea cero y el otro
extremo hacer que cruce con calquiera de las
lineas siempre del borde de la concentracion de
los globulos rojos.
- Por ultimo realizar la lectura.
METODOS PARA OBTENER RESULTADO
a) metodo lector hematocrito
b) Calculo del hematocrito
A: longitud total de la sangre en el tubo
B: Longitud de la fracción celular
X: Hematocrito en %

Ej: Cálculo utilizando una regla de tres
A= 7.5cm
B=2.8cm
7.5 --------------- 100
2.8 ---------------- X
7.5 X = 2.8 .100 (280)
X = 37.3% (hematocrito)
VALORES NORMALES
- De 37 % hasta 42 %
CUANDO SE DENOMINA POLICITEMIA
- Cuando la concentracion solo de los globulos
rojos sobrepasa el 30 % del valor normal.
ALTERACIONES RESULTADOS
Hematocrito aumentado:
- Deshidratación.
- Hipoxia
- Eritrocitosis
Hematocrito disminuido:
- Anemia
-Leucemia
- Artritis reumatoide

PRÁCTICA HEMATOCRITO
OBJETIVOS
Determinación del hematocrito en una
muestra sanguínea e interpretar sus
resultados.
MATERIAL
1.- guantes
2.- tubos capilares con anticoagulante
3.- lancetas
4.- torundas de algodón con alcohol
5.- plastilina o cera
6.- centrifuga para microhematocrito
7.- lector de microhematocrito
8.- sangre capilarJeringas
desechables.
MÉTODOS Y PROCEDIMIENTOS
1.- Ponerse los guantes
2.- Llenar el tubo capilar unas tres
cuartas partes de su capacidad. Este
llenado se realiza por capilaridad.
3.-Tapar por el lado limpio con la
plastilina y quitar la que sobre.
4.- Repetir la operación con el
segundo capilar.
5.- Colocar los capilares en la
centrifuga teniendo en cuenta que los

extremos cerradostiene que quedar hacia
fuera.
6.- Centrifugar durante 5 minutos a
unas 12.000 rpm.
7.- Retirar los tubos de la centrifuga y
realizar la lectura con el lector de
hematocrito.
Colocar el capilar de manera que el
principio de la sangre coincida con la
línea 0.
Mover el capilar hacia la derecha o
izquierda hasta que coincida la línea 100
con el final del plasma.
El valor nos lo dará aquella línea que
cruce la parte del capilar donde están
pegados el plasma y las células. Obtener
una muestra de sangre según técnica ya
descrita.
2.- Depositar la misma en tubo de
ensayo calibrado.
3.- Llevar el tubo a la centrifugadora
4.- Leer los resultados y comparar
con los descritos en la literatura.
RESULTADOS Y CONCLUSIONES:
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EVALUACIÓN
1. ¿Qué es la centrifugadora?
2. ¿Cuántas clases de
centrifugadora conocemos?
3. ¿Cuál es la velocidad de
centrifugación para microhematocrito?
4. ¿Durante cuánto tiempo se debe
realizar la centrifugación?
5. ¿Que es el Hematocrito?
6. ¿Cuáles son los valores
normales del hematocrito dependiendo
de la edad y sexo?
7. ¿Qué factores influyen para que
los valores del hematocrito estén

alterados?
PROGRAMA DE CONTROL DE
CALIDAD
GUIA DE INVESTIGACION
PRACTICA - GIP # 4
TEMA: FISIOLOGÍA SANGUÍNEA.
TITULO: VELOCIDAD DE
ERITROSEDIMENTACIÓN
FECHA DE ENTREGA:
FECHA DE EVALUACIÓN:
FUNDAMENTACIÓN TEÓRICA
La velocidad de sedimentación
globular (VSG) mide la sedimentación de
eritrocitos en su plasma, consiste en
depositar en un tubo largo y graduado
denominado de Westergreen sangre

incoagulable manteniendo está en
posición vertical.
Los eritrocitos sedimentaran en el
fondo del tubo y sobre este sedimento se
forma una columna de plasma. La altura
de esta columna, después de una hora
indica la velocidad de sedimentación de
los eritrocitos.
VSG es una prueba no específico que
puede ser utilizado para detectar un amplio
rango de enfermedades y para monitorear el
curso evolutivo de ciertas enfermedades
crónicas como los procesos inflamatorios
crónicos (artritis reumatoidea, polimialgia
reumática y tuberculosis) o la respuesta a la
terapia, por ejemplo con citostáticos
(enfermedad de Hodgkin, linfomas y mieloma
múltiple). Sin embargo en ocasiones cuadros
tan graves como neoplasias y la cirrosis
pueden presentar una VSG normal.
Constituye uno de los tests más utilizados
como screening en el laboratorio clínico. Se
trata de un método sencillo para realizar y que
requiere equipamiento simple.
El mecanismo por el cual se produce la
eritrosedimentación no está completamente

dilucidado, pero parece obedecer a
interacciones electrostáticas entre la
superficie de los GR y diversas proteínas del
plasma que favorecen (fibrinógeno y
globulinas) o disminuyen (albúmina) la
agregabilidad de estas células.
Desde el punto de vista físico, este
fenómeno depende de los siguientes factores:
a. Tamaño de los Glóbulos Rojos
b. Diferencia de densidad entre los eritrocitos
y el plasma,
c. Viscosidad del plasma.
d. Temperatura.
La sedimentación ocurre en 3 etapas:
1) una etapa en que se produce la
aglutinación de los GR con formación de
agregados en forma de "pilas de monedas",
2) un período durante el cual los agregados
de GR sedimentan a velocidad constante, y 3)
una etapa final donde la velocidad de
sedimentación se enlentece al mismo tiempo
que los GR se acumulan en el fondo del
recipiente.
PRÁCTICA
OBJETIVOS

Determinación de la
eritrosedimentación en una muestra de
sangre e interpretar los resultados.
MATERIAL
1.- Jeringas desechables.
2.- Ligadura
3.- Torundas de algodón
4.- Alcohol
5.- Tubos de ensayo
6.- Anticoagulante
7.- Pipeta o tubo de Westergreen
8.- Soporte de westergreen
1.- Obtener una muestra de sangre
según técnica ya descrita.
ensayo preparado con anticoagulante.
3.- Llenar el tubo de Westergreen hasta la
marca 0mm y llevar al soporte de

eritrosedimentación
4.- Leer los resultados luego de 60
minutos.
5.- Comparar los resultados obtenidos
con los valores descritos en literatura.
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………………………………
…………………………………………
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CUESTIONARIO:
1. ¿Qué es la eritrosedimentación?
2. ¿Qué factores físicos influyen para
que los valores de eritrosedimentación estén
alterados?
3. ¿Durante cuánto tiempo se debe
realizar la observación?

4. ¿Cuáles son los valores
normales de la VSG?
5. Cite algunas enfermedades
donde estén alterados los valores de la
sedimentación.
PROGRAMA DE CONTROL DE
CALIDAD
GUIA DE INVESTIGACION
PRACTICA - GIP # 5
TITULO: PREPARACIONES DE
EXTENSIONES DE SANGRE
FECHA DE ENTREGA:
La práctica de un frotis sanguíneo

(también llamado extensión) es de gran
importancia en hematología, ya que el
diagnóstico de muchas enfermedades
hematológicas puede realizarse con sólo
observar las características morfológicas de
las células sanguíneas.
La precisión de la evaluación morfológica
depende en gran parte de una correcta
realización del frotis sanguíneo, por lo tanto
se debe procurar que este no sea
excesivamente fino ni excesivamente grueso,
para que permita una distribución uniforme
de los leucocitos.
Existen tres métodos para realizar el
frotis sanguíneo:
• Método de los dos cubreobjetos.
• Método por centrifugación.
• Método de los dos portaobjetos (en
cuña).
El método de cubreobjetos proporciona
una extensión con distribución uniforme de
los leucocitos. Las desventajas de este
método son la dificultad para dominar la
técnica, la fragilidad del cubreobjetos, y la
dificultad para teñirlo. Cabe anotar que
existen laboratorios que han estandarizado

esta prueba, con muy buenos resultados.
El método por centrifugación usa una
fuerza de centrifugación para producir una
sola capa de células con leucocitos y
plaquetas distribuidos uniformemente. Este
método requiere de equipo especial y tiene el
potencial de crear aerosoles que representan
riesgos biológicos.
El método de los dos portaobjetos,
llamado también en cuña, es el más utilizado
en la práctica diaria del laboratorio. Aunque la
distribución de los leucocitos no es tan
uniforme como en el método de los dos
cubreobjetos, la técnica se domina con
facilidad, los frotis son menos frágiles y se
pueden manipular más fácilmente.
Puede usarse sangre entera
anticoagulada con EDTA o sangre capilar de
flujo libre. Si se emplea EDTA, los frotis
deben prepararse antes de la segunda hora
siguiente a la recolección. Es necesario
mezclar bien la muestra antes de
prepararlos. Para realizar el extendido se
requieren portaobjetos limpios de vidrio.
PRÁCTICA

OBJETIVOS
Adiestrar al estudiante en la
preparación de extendidos de sangre.
MATERIAL
2.- Ligadura
4.- Alcohol
5.- Tubos de ensayo
6.- Gradilla
7.- Pipetas
8.- Mechero de alcohol
9.- Anticoagulante
10.- Portaobjetos de vidrio
1.- Obtener una muestra de sangre
según técnica ya descrita.
ensayo preparado con anticoagulante.

3.- Poner una pequeña gota de
sangre en un extremo del portaobjetos.
4.- Colocar el borde de otro
portaobjetos en frente de la gota de
sangre.
5.-desplace el portaobjetos hacia
atrás, hasta que toque la gota de sangre.
6.- deje que la gota de sangre se
extienda por el borde del portaobjetos.
7.- Deslice el portaobjeto hacia el otro
extremo del portaobjetos que contiene la
gota de sangre con un movimiento
suave. El grosor del frotis sanguíneo se
puede variar según sea el ángulo que
formen entre sí ambos portaobjetos. Así,
si es superior a 45º, la extensión
obtenida será gruesa y corta; por lo
contrario, si es inferior a 45º será larga y
fina.

8.- Confirme que la extensión no
tenga líneas ni a lo largo ni a lo ancho del
frotis, el extremo de la extensión debe
terminar suave y gradualmente, sin
desgarros ni espacios vacíos. Ni
demasiado largo ni grueso.
9.- seque la extensión con rápidos
movimientos de vaivén, a un lado del
mechero, o deje secar en una superficie
plana.
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………………………………………………
………………………………………………
………………………………………………
………………………………………………
……………

CUESTIONARIO:
1.- ¿Con que finalidad se realizan los
extendidos de sangre?
2.- ¿Por qué razón se deben limpiar
los portaobjetos antes del extendidos?
3.- ¿Que pasa si se coloca el
portaobjetos directamente sobre la llama
del mechero?
4.- ¿Cuales son las características de
un buen frotis?

PROGRAMA DE CONTROL DE CALIDAD
GUIA DE INVESTIGACION PRACTICA - GIP # 6
TITULO: TINCION DE EXTENDIDOS DE SANGRE
FECHA DE ENTREGA:
Las extensiones de sangre se deben colorear con la finalidad de
poder observar mejor los elementos que se encuentran en el mismo.
Permite realizar recuentos de elementos formes y observar sus
características propias.
El frotis sanguíneo una vez seco, se somete, si es necesario, a un
proceso de fijación y posteriormente a una tinción mediante un colorante
adecuado. En la mayoría de laboratorios, los colorantes más empleados
para la tinción hematológica se basan en el de Romanowsky ya que puede
obtenerse mayor información a partir del examen de un frotis de sangre
periférica bien teñido.
Una tinción de Romanowsky consiste en azul de metileno y sus
productos de oxidación, así como eosina Y. La acción combinada de estos
colorantes produce el efecto de Romanowsky y da una coloración

purpúrica a los núcleos de los leucocitos y a los gránulos neutrófilos y de
color rosado a los eritrocitos. Los componentes principales causantes de
este efecto son el azul B (un producto de oxidación del azul de metileno) y
la eosina Y. La amplia variación en los colores y sombras observadas con
la tinción de Romanowsky permiten distinciones sutiles de las
características celulares.
La naturaleza ácida o básica de las estructuras celulares determina
su avidez por los componentes del colorante de Wright; es así como los
ácidos nucleicos se tiñen con azul B que es el básico y la hemoglobina con
la eosina Y que es ácida. Otras estructuras se tiñen por una combinación
de ambos y se denominan neutrófilas.
La técnica de Giemsa está formada por varios colorantes: los tintes
neutros utilizados combinan el azul de metileno como tinte básico y la
eosina como tinte ácido.
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Adiestrar a los estudiantes en las técnicas de tinción que existen,
para los extendidos de sangre.
MATERIAL
2.- Ligadura
4.- Alcohol
5.- Tubos de ensayo
6.- Anticoagulante
7.- Tinción de Wrigth
8.- Tinción de Giemsa
9.- Agua tamponada de pH 6.4 o agua destilada
10.- Bandeja y puente para tinción
11.- Aceite de inmersión
12.- Microscopio
1.- Obtener una muestra de sangre según técnica ya descrita.
2.- Depositar la misma en tubo de ensayo preparado con
anticoagulante.
3.- Realizar el extendido de acuerdo a técnica descrita
anteriormente.
4.- Dejar secar el extendido.

5.- Realizar la fijación del extendido caso sea necesario:
• Fijación con alcohol etílico durante 10 minutos
• Fijación con alcohol metilico durante 2 minutos
6.- Añadir el colorante de Giemsa, dejar durante 1 a 3 minutos.
7.- Lavar preparación con agua destilada o tampón de 10-15 minutos
8.- Lave en el grifo y seque al aire. Observe al microscopio.
- Si se realiza con la tinción de Wrigth se siguen los mismos pasos
hasta el número 5 y luego:
6.-Colocar el colorante de Wrigth y dejar actuar 1 -2 minutos
7.-Lave con agua o la solución tampón durante 3-5 minutos
8.- Lave en el grifo, secar y observar.
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………………………………………………………………………………
CUESTIONARIO:
1.- ¿Cuáles son las tres partes que debe tener un extendido de
sangre?
2.- ¿Señale dos de todas las técnicas que se utilizan para la tinción
de extendidos
de sangre?
3.- ¿Qué se observa en el extendido de sangre ya con la tinción?
4.- ¿Que tipo de glóbulos blancos se observan en un frotis y cuál de
ellos es más frecuente encontrar?

TITULO: TEST PARA EL ESTUDIO DE LA HEMOSTASIA
FECHA DE ENTREGA:
Hemostasia:
Puede definirse como la serie de fenómenos biológicos que ocurren en respuesta a
la lesión de un vaso y cuya finalidad es la detención de la hemorragia.
La hemorragia ocurre luego de la sección o ruptura de un vaso sanguíneo y la
gravedad de ésta depende del diámetro del vaso y de la duración de la pérdida
sanguínea.
La lesión de un vaso sanguíneo pone en marcha mecanismos para controlar la
pérdida de sangre:
1) Espasmo vascular.
2) Formación del tapón plaquetario.
3) Coagulación de la sangre.
4) Crecimiento del tejido fibroso.
Pruebas de coagulación:
Tiempo de Coagulación: el tiempo de coagulación representa una medida del
funcionamiento de la vía intrínseca de la coagulación de la sangre entera. Su valor
normal es de 5 a 9 minutos siendo normal hasta incluso los 15 min.
Existen otros métodos para estudiar la integridad de la vía intrínseca, más precisos
y reproducibles.
Exámenes de laboratorio que evalúan la función plaquetaria:
Tiempo de sangría: Evalúa la integridad de las primeras etapas de la formación del
tapón hemostático, es decir el espasmo vascular y la formación del tapón
plaquetario (cantidad y calidad de plaquetas). Mide el tiempo necesario para que se
detenga la hemorragia, en respuesta a la incisión de vasos subcutáneos pequeños.
Su valor normal oscila entre 1 a 4 minutos en el M. de Duke y el M. de Ivy de 1 a 9
minutos.
Este examen se lleva a cabo: Para diagnosticar ciertos padecimientos hemorrágicos
o antes de realizar operaciones quirúrgicas.

PRÁCTICA
OBJETIVOS
Que el estudiante conozca las técnicas para el estudio de la coagulación
sanguínea y la interpretación de estas.
MATERIAL
• Tiempo de sangría:
1.- Lancetas
2.- Papel filtro
3.- Cronometro o reloj con segundero
4.- Alcohol
5.- Torundas
6.- Esfingomanómetro o tensiómetro de mercurio ( Método de
Ivy)
• Tiempo de coagulación:
1.- Dos tubos de ensayo medianos
2.- Cronometro o reloj con segundero
3.- Baño Maria a 37°C.
4.- Jeringa desechable de 5ml.
5.- Alcohol
6.- Torundas
Método de Duke:
Con una lanceta se hace una pequeña incisión en el lóbulo de la oreja luego de
haber limpiado la zona con una torunda con alcohol.
La sangre fluye por esta incisión y es recogida en el papel filtro cada 30 segundos.
Se mide el tiempo que transcurre hasta que se detiene el sangrado.
Método de Ivy:
Exponer el antebrazo del paciente y escoger una zona libre de vénulas,
hematomas, heridas y otros.
Limpie con alcohol la zona escogida.
Coloque el tensiómetro en el brazo del paciente y regúlelo a 40 mm Hg.
Se realiza incisión con lanceta al mismo tiempo se empieza a controlar con
cronómetro
Cada 30 segundos secar con el papel de filtro, no tocar los bordes de la incisión
para no interferir con el tapón plaquetario.
Se anota el tiempo que tarda en cesar la hemorragia, lo que corresponde al tiempo
de sangría.

Método de Lee-White:
Poner los dos tubos a Baño Maria a 37°C.
Obtener 2ml. de sangre venosa según técnica enunciada anteriormente.
Poner el cronometro en funcionamiento tan pronto como la sangre
comience a entrar en la jeringa.
Colocar 1ml. de sangre en cada tubo y taponar ambos tubos.
Después de tres minutos saque el primer tubo del Baño Maria e incline
unos 45° para observar si la sangre se a coagulado.
Colocar tubo otra vez en el Baño Maria y examinar cada 30 segundos
hasta que sobrevenga la coagulación.
Examine el segundo tubo inmediatamente después de que se haya
coagulado la sangre del primero.
Detenga el cronometro y tome nota del tiempo transcurrido.
Método capilar:
Limpiar la yema del dedo, realizar la incisión con la lanceta e iniciar el
conteo con el cronometro, llenar tubo capilar 2/3 partes.
En el tercer minuto de la punción se invierte el capilar hasta observar que
no hay desplazamiento de sangre o se observen hilos de fibrina.
Detener el cronometro.
Otra variación de este método es ir rompiendo el capilar hasta observar el
coagulo
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CUESTIONARIO:
1.- ¿Qué otros métodos existen para determinar pruebas de coagulación?
2.- ¿Cual es el número normal de plaquetas?
3.- ¿Cual es la función de las plaquetas?
4.- El método de Lee White mide la vía………………………………de la
coagulación
5.- ¿Qué método mide la vía extrínseca de la coagulación?

TITULO: GRUPOS SANGUINEOS
FECHA DE ENTREGA:
Los eritrocitos de cada ser humano presentan en su membrana antígenos del

sistema ABO y del sistema Rh determinados por su código genético. El nombre del
grupo lo da el antígeno específico presente en los eritrocitos (aglutinógeno). En el
plasma, a su vez, existen anticuerpos que tienen la propiedad de aglutinar los
eritrocitos (aglutininas) que poseen antígenos ABO diferentes a los del propio
individuo.
GRUPOS AGLUTINOGENOS EN ERITROCITOS AGLUTININAS EN PLASMA
O Anti A - Anti B
A A Anti B
B B Anti A
AB AB No posee
El sistema Rh comprende tres antígenos que se los designa como C, D y E. De
ellos el más importante por ser el más antigénico es el D. Un individuo es Rh
positivo si sus eritrocitos poseen el antígeno D. El Rh negativo no lo posee y es
capaz de generar anticuerpos frente a el, por tanto se puede desencadenar una
respuesta inmune cuando se hace una Transfusión de sangre de un individuo Rh+
a uno Rh-, aunque no al contrario.
El grupo O (-) es donante universal y el grupo AB (+) es receptor universal.
Tabla de compatibilidad entre grupos sanguíneos
Recept
or
Donante
O
-
O
+
B
-
B
+
A
-
A
+
A
B-
A
B+
AB+ X X X X X X X X
AB- X X X X
A+ X X X X
A- X X
B+ X X X X
B- X X
O+ X X
O- X
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Que el estudiante sepa diferenciar los grupos sanguíneos y observe
los fenómenos que se presentan en las distintas determinaciones.

MATERIAL
1.- portaobjetos
2.- lancetas
3.- sueros Anti A, Anti B, Anti D
4.- varillas mezcladoras
5.- alcohol
6.- algodón
Obtener tres gotas de sangre mediante punción con una lanceta.
Ir colocando cada una de las gotas en un portaobjetos, separadas
por 1cm. de distancia.
Agregue en cada gota de sangre una gota de anticuerpo (Aglutinina):
Anti A a la primera gota, Anti B a la segunda gota y Anti D a la tercera
gota.
Mezcle y observe si hay aglutinación.
Interpretación:
Se pueden dar las siguientes posibilidades:
1.- Que se produzca la aglutinación de la gota de sangre mezclada
con el suero Anti A y Anti D. La muestra de sangre corresponde al
grupo A y Rh positivo.
2.- Que se produzca la aglutinación de la gota de sangre mezclada
con el suero Anti B y Anti D. La muestra de sangre corresponde al
grupo B y Rh positivo.
3.- Que se produzca la aglutinación de las tres gotas. La muestra de
sangre corresponde al grupo AB y Rh positivo.
4.- Que se produzca la aglutinación solo de la gota de sangre
mezclada con el suero Anti D. La muestra de sangre corresponde al
grupo O y Rh positivo.
5.- La otra posibilidad es que los grupos sean: Grupo A y Rh
negativo, Grupo B y Rh negativo, Grupo AB y Rh negativo, en las
que no se aglutinaria la gota con Anti D y si las correspondientes al
grupo A, B, AB.
Y el grupo O y Rh negativo en el que no se produce aglutinación en
ninguna de las tres gotas.
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CUESTIONARIO:

1.- ¿Cuál es su grupo sanguíneo y su factor Rh?
2.- ¿Cuántos grupos sanguíneos hay y cuales son?
3.- ¿Cuántos factores hay y cuales son?
4.- Grafique un portaobjetos con las tres gotas de sangre y con
resultado de grupo sanguíneo O y factor Rh positivo.
5.-Sobre el sistema ABO, complete los siguientes aspectos:
GRUPO AGLUTINÓGENOS AGLUTININAS
O ............................ ..........................
A ........................... ..........................
B ………………….. ………………….
AB …………………. ………………….

TEMA: FISIOLOGÍA CARDIOCIRCULATORIA.
TITULO: RUIDOS CARDIACOS.
FECHA DE ENTREGA:
La actividad del corazón consiste en la alternancia sucesiva de contracción
(sístole) y relajación (diástole) de las paredes musculares de las aurículas y los
ventrículos. Durante el periodo de relajación, la sangre fluye desde las venas hacia
las dos aurículas, y las dilata de forma gradual. Al final de este periodo la dilatación
de las aurículas es completa. Sus paredes musculares se contraen e impulsan todo
su contenido a través de los orificios auriculoventriculares hacia los ventrículos.
Este proceso es rápido y se produce casi de forma simultánea en ambas aurículas.
La sístole ventricular sigue de inmediato a la sístole auricular. La contracción
ventricular es más lenta, pero más enérgica. Las cavidades ventriculares se vacían
casi por completo con cada sístole. La punta cardiaca se desplaza hacia delante y
hacia arriba con un ligero movimiento de rotación. Este impulso, denominado el
latido de la punta, se puede escuchar al palpar en el espacio entre la quinta y la
sexta costilla. Después de que se produzca la sístole ventricular el corazón queda
en completo reposo durante un breve espacio de tiempo. El ciclo completo se

puede dividir en tres periodos: en el primero las aurículas se contraen; durante el
segundo se produce la contracción de los ventrículos; en el tercero las aurículas y
ventrículos permanecen en reposo. En los seres humanos la frecuencia cardiaca
normal es de 72 latidos por minuto, y el ciclo cardiaco tiene una duración
aproximada de 0,8 segundos. La sístole auricular dura alrededor de 0,1 segundos y
la ventricular 0,3 segundos. Por lo tanto, el corazón se encuentra relajado durante
un espacio de 0,4 segundos, aproximadamente la mitad de cada ciclo cardiaco.
En cada latido el corazón emite dos sonidos, que se continúan después de
una breve pausa. El primer tono, que coincide con el cierre de las válvulas
tricúspide y mitral y el inicio de la sístole ventricular, es sordo y prolongado. El
segundo tono, que se debe al cierre brusco de las válvulas semilunares, es más
corto y agudo. Las enfermedades que afectan a las válvulas cardiacas pueden
modificar estos ruidos, y muchos factores, entre ellos el ejercicio, provocan grandes
variaciones en el latido cardiaco, incluso en la gente sana.
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Reconocer las causas de los ruidos cardiacos, los focos de
auscultación y las características normales de los mismos.
MATERIAL
1.- Estetoscopios.
1. Determinar en el tórax los focos de auscultación.
2. Realizar la auscultación en los diferentes focos.
3. Comparar los ruidos escuchados con la onomatopeya de los
mismos.
RESULTADOS Y CONCLUSIONES
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………………………………………………………………………………………
………………………………
EVALUACIÓN
1. ¿Cómo se llaman y donde se localizan los focos de auscultación?

2. ¿Cuántos son y cuales son los ruidos cardiacos?
3. ¿A que se debe el primer y segundo ruido cardiaco?
4. Cite algunas enfermedades donde estén alterados los ruidos
cardiacos
TEMA: FISIOLOGIA CARDIOCIRCULATORIA.
TITULO: PULSO ARTERIAL .- PRESIÓN ARTERIAL.-
FECHA DE ENTREGA:

PULSO ARTERIAL: Cuando la sangre es impulsada hacia las arterias por la
contracción ventricular, su pared se distiende. Durante la diástole, las arterias
recuperan su diámetro normal, debido en gran medida a la elasticidad del tejido
conjuntivo y a la contracción de las fibras musculares de las paredes de las arterias.
Esta recuperación del tamaño normal es importante para mantener el flujo
continuo de sangre a través de los capilares durante el periodo de reposo del
corazón. La dilatación y contracción de las paredes arteriales que se puede percibir
cerca de la superficie cutánea en todas las arterias recibe el nombre de pulso.
PRESIÓN ARTERIAL: Es la fuerza ejercida por la sangre sobre las paredes
de las arterias. La tensión arterial es un índice de diagnóstico importante, en
especial de la función circulatoria. Debido a que el corazón puede impulsar hacia
las grandes arterias un volumen de sangre mayor que el que las pequeñas
arteriolas y capilares pueden absorber, la presión retrógrada resultante se ejerce
contra las arterias. Cualquier trastorno que dilate o contraiga los vasos sanguíneos,
o afecte a su elasticidad, o cualquier enfermedad cardiaca que interfiera con la
función de bombeo del corazón, afecta a la presión sanguínea. En las personas
sanas la tensión arterial normal se suele mantener dentro de un margen
determinado. El complejo mecanismo nervioso que equilibra y coordina la actividad
del corazón y de las fibras musculares de las arterias, controlado por los centros
nerviosos cerebroespinal y simpático, permite una amplia variación local de la tasa
de flujo sanguíneo sin alterar la tensión arterial sistémica.
CLASIFICACION DE LA PRESION
ARTERIAL
PRESION ARTERIAL
SISTOLICA
PRESION ARTERIAL
DISTOLICA
NORMAL < 120 y < 80
PREHIPERTENSION 120 – 139 ó 80 - 89
HTAS grado 1 140 – 159 ó 90 – 99
HTAS grado 2 ≥ 160 ó ≤ 100
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Reconocer las principales características del pulso y presión arterial,
así como la correcta técnica para su determinación.
MATERIAL
1.- Estetoscopios.
2.- Tensiómetros.

1. Localizar los puntos adecuados para la toma del pulso
2. Contar las pulsaciones en el lapso de un minuto.
3. Con la ayuda del esfigmomanómetro determinar la presión arterial
según los métodos aprendidos.
………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………
EVALUACIÓN
1. Describa como se debe tomar el pulso.
2. ¿En que lugares se puede realizar la medición del pulso?
3. ¿Cuál es la frecuencia normal del pulso?
4. ¿Cuales son las dos técnicas para la determinación de la presión
arterial?
5. ¿A que se llama taquicardia y bradicardia?
6. Cite algunas enfermedades donde estén alterados los valores de
la presión
arterial.

TEMA: FISIOLOGÍA DEL METABOLISMO.
TITULO: TEMPERATURA CORPORAL.
FECHA DE ENTREGA:
Es la medida del grado de calor del organismo en animales de sangre fría y
caliente. El mantenimiento de la temperatura corporal de los animales es resultado
del metabolismo, un conjunto de procesos mediante los cuales se transforman los
alimentos en proteínas, hidratos de carbono y grasas y se libera energía en forma
de calor. El músculo activo metaboliza los alimentos más rápido que si está en
reposo y se libera más calor, por ello la actividad física eleva la temperatura
corporal. El temblor es una forma particular de actividad física que pone en
movimiento ciertos músculos para estimular el metabolismo y de ese modo calentar
el cuerpo.
Las células de los animales de sangre caliente alcanzan su máxima eficacia
funcional dentro de un estrecho intervalo de temperaturas. En la especie humana, la
temperatura correcta es de 37 ºC, aunque se considera que el intervalo de
normalidad está entre 36,4 y 37,2 ºC. Si la temperatura corporal es excesiva, la
actividad celular se resiente, y las propias células pueden resultar dañadas; cuando
es demasiado baja disminuye el ritmo de metabolización de los alimentos. La
temperatura corporal se regula por medio de la tasa de irradiación de calor por la
piel y por la evaporación del agua. La sudoración (evaporación a través de los poros
de la piel) y el jadeo (evaporación a través de los poros de la boca) son reguladores
habituales de la temperatura en los animales de sangre caliente. Estos fenómenos
están controlados de forma involuntaria por el cerebro.
A diferencia de lo que ocurre en los animales de sangre caliente, en los de
sangre fría —como insectos, reptiles, anfibios y peces— la temperatura corporal
varía en función de la temperatura del medio; siempre es algo inferior a la de éste,
para evitar la pérdida de humedad orgánica por evaporación. Como el ritmo
metabólico disminuye cuando baja la temperatura exterior, los animales de sangre
fría se vuelven torpes cuando las temperaturas son bajas. Para evitar una
temperatura corporal excesiva, buscan durante el día los lugares frescos y oscuros.
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Reconocer la técnica correcta para la determinación de la
temperatura corporal y su interpretación clínica.

MATERIAL
1.- Termómetro clínico.
1. Tomar un termómetro clínico y colocarlo en la región de la axila.
2. Leer el resultado luego de tres minutos
3. Realizar el mismo procedimiento tomando la temperatura debajo
de la lengua
RESULTADOS Y CONCLUSIONES.
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………………………………………………………………………………………
……………………………………………………
EVALUACIÓN
1. ¿Cuantas clases de termómetros conoce?
2. ¿Cual es el valor normal de la temperatura corporal?
3. ¿Que variaciones existe en relación al lugar del cuerpo donde se
realice la
medición de la temperatura?
4. Indicar que tipo de factores externos determinan el aumento o la
disminución
de la temperatura del cuerpo.

TEMA: FISIOLOGÍA RENAL
TITULO: EXAMEN DE ORINA
FECHA DE ENTREGA:
El análisis de orina es una de las pruebas de Laboratorio más antiguas,
sencillas y útiles en la práctica clínica. Es una biopsia líquida de riñón y tan
esencial como la exploración física para la valoración del paciente.
EXAMEN FÍSICO DE ORINA
Comprende una serie de análisis macroscópicos como el color, olor,
aspecto y un parámetro para el estudio de otros análisis como la gravedad
especifica.
Aspecto: Mezclando muy bien la muestra, mirar a través de la luz el grado
de turbidez que presente. Ver visualmente.
Densidad: El método para valorar la densidad es la tira reactiva. Como
procedimiento general para éste y los parámetros que siguen: Dispensar en
tubo de ensayo, la orina bien mezclada, 10-12 ml. Sumergir la tira reactiva
brevemente (1 – 2 segundos como mínimo) en la orina. Al retirarla, rozar la
tira reactiva contra el borde el tubo para eliminar el exceso de orina. Al cabo
de 60 segundos como mínimo (zona de leucocitos de 60 a 120 seg.)
comparar el color de reacción con la escala cromática según la casa
comercial.
Color: Reportar el color observado de la orina en el mismo envase. El color

de la orina se debe al pigmento urocromo y a la urocromina.
ANÁLISIS QUÍMICO
pH
Proteínas
Glucosa
Cetonas
Sangre Oculta
Bilirrubina
Urobilinógeno
Nitrito
Estearasa leucocitaria
PRACTICA
OBJETIVOS:
Entrenar al estudiante en la observación al microscopio de una muestra de orina e
identificación de sus elementos.
MATERIAL
1.- Tubos de ensayo
2.- Tapón para los tubos
3.- Pipeta desechable de plastico
4.- Portaobjetos, cubreobjetos
5.- Centrifuga
6.- Microscopio
7.- Tiras reactivas para PH
METODOS Y PROCEDIMIENTOS:
ESTANDARDIZACIÓN EN LA OBTENCIÓN DEL SEDIMENTO URINARIO PARA
EL ESTUDIO MICROSCÓPICO:
Mezclar bien la orina.
Tomar 12 ml. de orina en un tubo de centrifuga.
Centrifugar la orina en el tubo de ensayo de 12 por 75 mm a 2.500 r.p.m.
durante 5 minutos.
Decantar el sobrenadante y re suspender suavemente para no dañar los
cilindros el sedimento (debe quedar más o menos 1 ml en el tubo).
Colocar una gota del sedimento sobre el portaobjetos, colocar un
cubreobjetos evitando la formación de burbujas.
Dejar en reposo por un minuto y observar al microscopio.
Estudiar el sedimento en 10x y en 40x y con luz amortiguada para dar un
contraste adecuado.
ANÁLISIS MICROSCÓPICO DEL SEDIMENTO URINARIO:
Después de dispensar una gota del sedimento de orina y colocarle el

cubreobjetos, leer en 10X, recorrer toda placa y contar los cilindros, pasando a
40X para su identificación, teniendo cuidado pues los cilindros tienden a
depositarse en los extremos de la placa. Observar las células epiteliales altas y
bajas, leucocitos, eritrocitos, acúmulos de leucocitos, cuerpos ovales, células
centellantes etc, y por cantidad los cristales, bacterias, moco, etc.
………………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………………
………………………………………………………………………………………….
EVALUACION:
1.- ¿Cómo se debe realizar la toma de muestra?
2.- Indicar como se debe conservar la muestra (temperatura, duración de la
muestra)
3.- ¿Cuales son los valores normales en un examen de orina?

TEMA: FISIOLOGÍA RESPIRATORIA
TITULO: VOLUMENES Y CAPACIDADES PULMONARES.

FECHA DE ENTREGA:
En los seres humanos y en otros vertebrados, los pulmones se localizan en el
interior del tórax. Las costillas forman la caja torácica, que está delimitada en su
base por el diafragma. Las costillas se inclinan hacia adelante y hacia abajo cuando
se elevan por la acción del músculo intercostal, provocando un aumento del
volumen de la cavidad torácica.
El volumen del tórax también aumenta por la contracción hacia abajo de los
músculos del diafragma. En el interior del tórax, los pulmones se mantienen
próximos a las paredes de la caja torácica sin colapsarse, debido a la presión que
existe en su interior.
Cuando el tórax se expande, los pulmones comienzan a llenarse de aire
durante la inspiración. La relajación de los músculos tensados del tórax permite que
éstos vuelvan a su estado natural contraído, forzando al aire a salir de los
pulmones. Se inhalan y se exhalan más de 500 cc de aire en cada respiración; a
esta cantidad se denomina volumen de aire corriente o de ventilación pulmonar. Aún
se pueden inhalar 3.300 cc más de aire adicional con una inspiración forzada,
cantidad que se denomina volumen de reserva inspiratoria.
Una vez expulsado este mismo volumen, aún se pueden exhalar 1.000 cc,
con una espiración forzada, cantidad llamada volumen de reserva espiratoria. La
suma de estas tres cantidades se llama capacidad vital. Además, en los pulmones
siempre quedan 1.200 cc de aire que no pueden salir, que se denomina volumen de
aire residual o alveolar.
PRÁCTICA
OBJETIVOS
Reconocer la técnica para la medición y registro de los volúmenes y
capacidades pulmonares.
MATERIAL
1.- Espirómetro.

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……………………………………………………………………………….
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EVALUACIÓN
1. ¿Qué es un espirómetro?
2. ¿A que se llaman volúmenes respiratorios?
3. ¿A que se llaman capacidades respiratorias?
4. ¿Cómo se determinan los volúmenes y las capacidades
pulmonares?
5. Cite algunas enfermedades donde se hallen alterados estos
valores.

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