PARASITOLOGÍA CLÍNICA PRACTICA 9

1. UNIVERSIDAD NACIONAL JORGE BASADRE
GROHMANN
FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD
Escuela Profesional De Farmacia Y
Bioquímica
INFORME N° 9 “IDENTIFICACIÓN Y
RECONOCIMIENTO DE CESTODOS: TENIAS,
HYMENOLEPIS, EQUINOCOCUS Y OTROS”
ESTUDIANTE: Yerson Romario Condori Calizaya
CÓDIGO: 2020-125032
GRUPO: “C”
DOCENTE: Q.F. Nelson Ricardo Arteaga Téllez
TACNA – PERÚ
2022

2. INFORME N° 9 “IDENTIFICACIÓN Y RECONOCIMIENTO DE
CESTODOS: TENIAS, HYMENOLEPIS, EQUINOCOCUS Y OTROS”
I. OBJETIVOS
 Conocer y diferenciar las características morfológicas de Taenia
saginata, Taenia Solium, Hymenolepis nana , Hymenolepis diminuta
y equinococus
II. MARCO TEÓRICO
Existen unas 4000 especies hermafroditas, con una longitud comprendida entre 1
mm y 25 metros. Todas son endoparásitas y los adultos parasitan vertebrados.
Presentan simetría bilateral pero con una difícil definición de sus superficies ya que
carecen de tubo digestivo. Son alargados y aplanados dorso ventralmente. Con
pseudometamerización: cuerpo dividido en proglótides.
Taenia saginata
Morfología
 Adultos. Aplanados, en forma de cinta, miden entre 4 y 10 metros; de color
lechoso, amarillo o rosado; hermafroditas. El cuerpo está conformado por un
órgano de fijación llamado escólex y un cuerpo o estróbilo que es una cadena
de anillos denominados proglótides.
 Escólex. Pequeño, mide 1 a 2 mm de diámetro y es cuadrangular. Tiene
cuatro ventosas circulares; no posee rostelo ni ganchos, por lo que se dice
que es inerme.

3.  Proglótides inmaduras. No presentan características morfológicas notorias
y se localizan cerca al escólex. Proglótides maduras. Son más anchas que
largas. Poseen órganos sexuales masculinos y femeninos, completos y
visibles; el aparato genital masculino está conformado por testículos y
canales eferentes y deferentes, y el femenino por dos masas ováricas,
glándulas vitelógenas, útero y vagina, esta última junto con el conducto
deferente, desemboca en el poro genital, situado lateralmente.
 Proglótides grávidas. Se encuentran en la parte posterior del estróbilo. Son
más largas que anchas y no se observa bien el sistema genital debido a la
invasión de las ramificaciones del útero que en Taenia saginata son de 13 a
30 a cada lado; cada ramificación se divide en forma dicotómica.
 Huevos. Redondos u ovalados; miden entre 31 y 43 µm de diámetro. En su
interior contienen el embrión hexacanto u oncosfera con tres pares de
ganchos y una envoltura externa gruesa de aspecto radiado llamada
embrióforo.
Forma Infectante
La forma larvaria o cisticerco se encuentra presente en carne o vísceras de ganado
bovino crudas o mal cocidas.
Diagnóstico
El diagnóstico se debe efectuar con base en la historia y cuadro clínicos. Con el
coproparasitoscópico se pueden encontrar huevecillos, los cuales poseen un
embrióforo radiado hexacanto, por lo que se debe efectuar una coloración de Zhiel
Neelsen para diferenciarlos porque T. saginata es ácido-alcohol-resistente, es decir
que captan el carbol fuschina.
Taenia Solium
Morfología
 Adultos. Los caracteres morfológicos macroscópicos son similares a los de
Taenia saginata. Miden entre 2 y 7 metros, son de color lechoso, amarillo o
rosado y con un extremo más delgado que corresponde al escólex.
 Escólex. Piriforme, de 1 a 2 mm de diámetro, tiene cuatro ventosas y una
prominencia anterior o rostelo provisto de doble corona de ganchos.
 Proglótides inmaduras. No tienen ninguna estructura notoria.

4.  Proglótides maduras. Son más anchas que largas. Poseen tres lóbulos
ováricos, dos bien desarrollados y uno rudimentario. Las demás estructuras
de los órganos sexuales son similares a las de T. saginata.
 Proglótides grávidas. Tres veces más largos que anchos. Presentan menos
de 13 ramificaciones uterinas a cada lado, muy irregulares y que se dividen
en forma dendrítica. El número de ramificaciones permite diferenciar las dos
especies de Taenia.
 Huevos. Indistinguibles de los de T. saginata.
Forma Infectante
Forma larvaria o cisticerco presente en carne o vísceras de cerdo mal cocidas. La
ingestión de huevos lleva a la formación del cisticerco
Diagnóstico microscópico.
Para buscar huevos de Taenia en materia fecal se realizan exámenes
coproparasitoscópicos directos (con lugol) o de concentración (Faust o Ritchie)
Esta técnica no es específica, ya que no hay diferencias morfológicas entre los
huevos de T. solium y T. saginata
Diagnóstico inmunológico.
Un importante avance inmunológico en el diagnóstico de teniasis es la detección de
coproantígenos por el método de ELISA. Esta prueba colorimétrica en materia fecal
presenta sensibilidad de 98% y especificidad de 99.2%
Hymenolepis nana
Morfología
 Adultos. Miden de 2 a 4 cm de largo por 1 mm de ancho; el estróbilo está
compuesto de aproximadamente 200 anillos; los poros genitales se localizan
a un mismo lado del estróbilo.
 Escólex. Tiene cuatro ventosas, rostelo retráctil con una corona de 30
ganchos aproximadamente.
 Proglótides inmaduras. No presenta estructuras diferenciadas.
 Proglótides maduras. Se observan tres testículos dispuestos
transversalmente en línea, entre ellos se localizan el ovario y la glándula
vitelina.

5.  Proglótides grávidas. En su interior sólo se visualiza el útero en forma de
saco lleno de huevos.
 Huevos. Son redondos u ovalados, miden 40 a 50 µm de diámetro. Poseen
una membrana transparente externa y una interna que rodea un embrión
hexacanto. La membrana interna tiene a cada lado dos mamelones polares
de donde salen unos filamentos que se cruzan.
Forma Infectante
El huevo o la larva cisticercoide que se encuentra en insectos como pulgas o piojos.
Diagnóstico
Presencia de huevos en materia fecal.
Hymenolepis diminuta
Morfología
 Adultos. Miden de 10 a 60 cm de longitud.
 Escólex. Pequeño, mide 0.25 mm, de forma redondeada con cuatro
ventosas y una invaginación apical en la cual se encuentra el rostelo sin
ganchos y rudimentario.
 Proglótides maduras. Son más anchas que largas y se caracterizan por la
presencia de tres masas testiculares.
 Proglótides grávidas. Miden entre 2 y 4 mm de largo por 0.75 mm de ancho.
El útero es irregular, en forma de arco; gonoporo simple y lateral. Sobresale
del resto del estróbilo.
 Huevos. Grandes, esféricos, de cáscara gruesa, miden 70 µm de longitud
por 85 µm de diámetro. Las oncosferas están rodeadas por una membrana
que está considerablemente separada de la membrana externa. No
presentan filamentos polares.
Diagnóstico
Observación de los huevos característicos en materia fecal.

6. Forma Infectante
Huevos o larvas cisticercoides. El hombre es hospedero accidental y la infección
solamente se presenta al ingerir la larva cisticercoide que se encuentra en insectos
como pulgas o piojos. La infección directa por huevos, como ocurre en H. nana, no
es posible
Echinococcus sp
Morfología
 Adultos. Pequeños, miden de 2 a 10 mm de longitud, poseen un escólex,
cuello corto y generalmente sólo tres proglótides.
 Escólex. Piriforme, provisto de cuatro ventosas y un rostelo con doble corona
de ganchos.
 Proglótides. Presenta una inmadura, una madura y una grávida. La
proglótide grávida terminal es la más ancha y larga de todas; la inmadura es
la más angosta. Larvas. La forma larvaria es el quiste hidatídico que está
constituido por protoescólices, quistes hijos, escólices maduros y líquido. El
material granular formado por protoescólices libres, quistes hijos y material
amorfo se denomina ‘arena hidatídica’.
 Huevos. Indistinguibles de los de Taenia sp.
Forma Infectante
La forma infectante para el hospedero humano es el huevo.
Diagnóstico
El diagnóstico se realiza por medio de pruebas serológicas como
inmunoelectroforesis y ELISA. Ocasionalmente, cuando se examina material del
quiste se hace observación macro y microscópica de los componentes del quiste
hidatídico. La diferenciación morfológica de los estadios larvarios de las especies
de Echinococcus sp. Se basa en el patrón de organización de las vesículas y en el
tamaño de los ganchos del rostelo y de los protoescólices.
III. EQUIPOS Y MATERIALES
a. Equipos
 Microscopio
 Centrifuga
 Microcentrífuga
c. Reactivo
 Agua destilada
 Colorante Wright
 Muestra de sangre

7.  Capilares con heparina
b. Materiales
 Láminas porta objetos
 Láminas cubre objetos
 Pipetas Pasteur
 Tubos de ensayo
IV. PROCEDIMIENTO
Examen Macroscópico de Heces Observar las características de las heces
como:
 Olor
 Color
 Consistencia (Líquida, Sólida, Semisólida, Pastosa).
 Aspecto (presencia de mucus, sangre).
Examen Microscópico de Heces Realizar el Examen Directo
a) En un portaobjetos limpio, se colocan separadamente, una gota de solución
fisiológica y otra de lugol.
b) Con el aplicador de madera se toma una muestra de 1 a 2 mg de heces y
se mezcla con la solución, con el mismo aplicador se retiran las fibras y
otros fragmentos gruesos, procurando hacer una suspensión no un frotis.
c) Colocar el cubreobjetos.
d) Repetir estas operaciones en la gota de lugol.
e) Observar al microscopio con objetivos de 10X y 40X.
TÉCNICA DE RITCHIE:
1. En un mortero o en un tubo de boca ancha, tenemos que mezclar
aproximadamente 1 gramo de heces (o una porción de muestra de 1cm de diámetro)
con 10 ml de Formol al 10%. Con ayuda de una varilla debemos removerla mezcla
hasta obtener una consistencia homogénea.
2. Dejamos reposar la muestra durante 10-15 minutos.
3. A continuación, debemos colar la muestra con ayuda de un embudo, al cual
hemos colocado previamente una gasa extendida que nos ayude a filtrar, en un tubo
de centrífuga.
4. Centrifugar y eliminar el sobrenadante

8. 5. Añadimos ahora 5 ml de alcohol tamponado a ph7 y agitamos.
6. Añadimos 5 ml de solución de éter, tapamos rápidamente y agitamos con
fuerzadurante 1 minuto (con precaución).
7. Destapamos el tubo y lo centrifugamos a 2000 rpm durante 5 minutos.
8. Al finalizar este tiempo, decantamos el sobrenadante y limpiamos las paredes
superiores del tubo con un escobillón para que los restos fecales que están
adheridos no contaminen el sedimento.
9. Para terminar, debemos observar al microscopio el sedimento obtenido tras la
centrifugación. Para ello, lo diluimos con unas gotas de suero y lo examinamos al
microscopio a 10X en un principio, y posteriormente a 40X.
10. Para optimizar la visualización al microscopio podemos añadir Lugol al
portaobjetos en el que depositemos la muestra
V. RESULTADOS

11. VI. CONCLUSIONES
 Se logró reconocer las características morfológicas de los parásitos;
Taenia saginata, Taenia Solium, Hymenolepis nana , Hymenolepis
diminuta y equinococus
 No se logró diferenciar con exactitud los huevos de Taenia saginata y
Taenia Solium porque microscópicamente son indistinguibles
 Fue complicado diferenciar los huevos de Hymenolepis nana y
Hymenolepis diminuta pero se llegó a diferenciarla de acuerdo a la
forma de un huevo frito, en este caso por el tamaño del núcleo
VII. RECOMENDACIONES
 Según trabajado en clase una forma de diferenciar los huevos de
Hymenolepis nana y Hymenolepis diminuta seria por la forma del nucleo,
comparándolo con un huevo frito
 Es importante tomar la muestra con mucho cuidado ya que podemos contraer
el parasito por ello tenemos que practicar buena higiene y desechar con
mucho cuidado el resto
 Revisar fuentes bibliográficas y videos acerca de estos parásitos nos va
ayudar mucho en cuanto a la identificación de los estadios del parasito
 Importante mantener una buena higiene personal tanto para la alimentación
y para los análisis de estos parásitos
 Es importante cocinar bien las carnes ya sea de vaca o de cerdo
VIII. APLICACIONES EN LA PROFESION
Conocer más información sobre cestodos nos va ayudar en un futuro en cuanto a
la identificación de examen parasitológico simple, nosotros ya debemos ser capaces
de identificar de que parasito se trata, en este caso como son cestodos la dificultad
va estar en la forma de los huevos de Hymenolepis nana y Hymenolepis diminuta,
va ser complicada pero con la técnica mencionada en clase, comparar con la forma
de un huevo frito nos va facilitar la identificación. También buscar más información
es de mucha utilidad para tener una mejor perspectiva

12. IX. BIBLIOGRAFIA
 Atlas de Parasitologia Humana/ Atlas of Human Parasitology. (2007). Google Books.
https://books.google.com.pe/books?id=P70U9QRWDiwC&printsec=frontcover&dq=bi
bliografia+de+atlas+de+parasitologia&hl=es-
419&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q=bibliografia%20de%20atlas%20de%20parasit
ologia&f=false
 Parasitosis humanas, 5a Ed. (2012). Google Books.
https://books.google.com.pe/books?id=bgT2DwAAQBAJ&printsec=frontcover&dq=b
otero+5ta+edicion&hl=es-419&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q&f=false
 ParasitologÃa Médica. (2013). Google Books.
https://books.google.com.pe/books?id=jQnCAAAQBAJ&printsec=frontcover&dq=rod
riguez+perez+parasiologia+meica&hl=es419&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q=rodr
iguez%20perez%20parasiologia%20meica&f=false