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Práctica de reconocimiento de instalaciones y
equipos de un laboratorio de cultivo de tejidos.
C.E.B. UNESUM.
Dr.C. Byron E. Zevallos Bravo.
Centro de Estudios de Biotecnología. UNESUM
byron.zevallos@unesum.edu.ec
Ing. Azucena Zhindon Ganchozo MsC
Centro de Estudios de Biotecnología. UNESUM
bertha,zhindon@unesum.edu.ec
CARRERA DE INGENIERIA AGROPECUARIA.
7MO SEMESTRE.
DOCENTE RESPONSABLE: Dra.C. Blanca Indacochea Ganchozo
CONTENIDO
Medios de cultivo.
Control de calidad del agua.
pH.
Desinfección y esterilización.
Reconocimiento de equipos e
instalaciones.
Practica de cultivo in vitro de ajo (Alium
sativum)
Medios de Cultivo: generalidades,
composición y preparación.
• Una vez definido el objetivo perseguido con el cultivo
in vitro de un determinado explante, es necesario
elegir un medio apropiado de cultivo, en el cual hay
que considerar no sólo sus componentes sino su
preparación.
• Componentes. En la actualidad existen innumerables
formulaciones cada una de las cuales contiene entre
15 y 35 compuestos químicos que suministran:
a)Carbono, b)Nutrimentos minerales,
c)Vitaminas,d)Agente gelificante,e)Sustancias
reguladoras del crecimiento,f)Otros compuestos.
• Generalmente se hace referencia al conjunto de
componentes a+b+c como al medio basal (MB).
MEDIOS MAS USADOS. Contenido de macronutrientes (mg/L).
Macronutrientes White
(1954)
W
Murashige &
Skoog
(1962)
Gamborg
(1968)
B5
Schenk
Hildebrandt
(1972)
S&H
Chu et al
(1975) N6
KNO3
NH4NO3
Ca(NO3)2.4H2O
CaCL2.2H2O
MgSO4.7H2O
KCL
KH2PO4
NH4H2PO4
NaH2PO4.H2O
Na2SO4
(NH4)2SO4
80
-
300
-
720
65
-
-
16.5
200
-
1900
1650
-
440
370
-
170
-
-
-
-
2500
-
-
150
250
-
-
150
-
-
134
2500
-
-
200
400
-
-
-
-
-
-
2830
-
-
166
185
-
400
-
-
-
463
Micronutrientes White
(1954)
W
Murashige &
Skoog
(1962)
Gamborg
(1968)
B5
Schenk
Hildebrandt
(1972)
S&H
Chu et al
(1975) N6
MnSO4.H2O
MnSO4.4H2O
ZnSO4.7H2O
H3BO3
KI
CuSO4.5H2O
Na2MoO4.2H2O
CoCl2.6H2O
FeSO4.7H2O
NaFeEDTA.2H2O
Fe(SO4)3
7.0
-
3.0
1.5
0.75
-
-
-
-
-
2.5
22.3
-
8.6
6.2
0.83
25 µg
250 µg
25 µg
27.8
37.3
-
-
10.0
2.0
3.0
0.75
25 µg
250 µg
25 µg
-
-
-
-
10.0
1.0
5.0
1.0
0.2
0.1
0.1
15.0
20.0
-
-
4.4
1.5
1.6
0.8
-
-
-
27.85
37.25
-
MEDIOS MAS USADOS. Contenido de macronutrientes (mg/L).
Vitaminas White
(1954)
W
Murashige &
Skoog
(1962)
Gamborg
(1968)
B5
Schenk
Hildebrandt
(1972)
S&H
Chu et al
(1975) N6
Myo-inositol
Thiamina-HCL
Acido Nicotínico
Piridoxina-HCL
Ca-Pantotenato
Biotina
Acido Fólico
Cloruro Cholina
Rivoflavina
-
-
-
-
-
-
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-
-
100
0.1
0.5
0.5
-
--
-
-
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100
10.0
1.0
1.0
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1000
5.0
5.0
0.5
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-
-
-
1.0
0.5
0.5
-
0.05
0.5
-
-
MEDIOS MAS USADOS. Contenido de macronutrientes (mg/L).
PREPARACIÓN DE MEDIO DE CULTIVO BASAL
SOLUCIONES STOCK
5 SOLUCIONES MADRE: 10 ML C/U POR LITRO
ADICIONAR VITAMINAS: 10 ml/L
ADICIONAR: 30 g de azúcar
REGULAR pH a 5.5 – 5.8
ADICIONAR 7 g de agar
SOMETER A TEMPERATURA PARA ACTIVAR EL GELIFICANTE
REPARTIR EN FRASCOS O TUBOS Y AUTOCLAVAR
LISTO
• Control de calidad del agua destilada
Para la preparación de medios, soluciones y tampones,
debe utilizarse agua destilada y desmineralizada que haya
sido sometida a controles periódicos que aseguren su
calidad.
Controles periódicos:
- Requisitos del agua destilada:
 Conductividad – 0.5 - 2.0 μS/cm
 pH – 5.5- 7
 Libre de metales pesados
 Libre de otros contaminantes
Practica: Medir
conductividad de
varios tipos de
aguas.
pH - Importancia
Cuando se prepara un medio de cultivo,
después de añadir sus componentes, se
procede a ajustar el pH final al valor deseado,
añadiendo OHNa 0.1 N o HCl 0.1N al medio.
Una vez ajustado el pH se procede a agregar
el gelificante, de ser el caso y esterilizar el
medio. El pH final del medio de cultivo es un
factor importante por diversas razones:
•Valores bajos, inferiores a 3.5 impiden la
solidificación de los agentes gelificantes añadidos a
los medios.
•El valor del pH puede afectar a la solubilidad de
algunos componentes del medio de cultivo.
•El valor del pH puede afectar a la absorción de
determinados nutrientes por parte del explante (p.e.
la absorción de iones NO3-aumenta con la acidez
del medio)
•El valor del pH del medio puede afectar al pH del
citoplasma y como consecuencia a la actividad de
muchas enzimas.
Por todas estas razones conviene optimizar el pH
del medio para cada caso en concreto. En general,
no obstante, en la mayoría de situaciones se
trabaja a pH entre 5.2 y 5.8.
Una vez ajustado el pH del medio, este sufrirá una
ligera acidificación durante el proceso de
esterilización en autoclave, para, después, subir
nuevamente durante el tiempo de cultivo, y luego se
irá acidificando progresivamente como resultado de
la absorción diferencial de algunos componentes,
así como de la excreción de exudados por parte del
explante.
Práctica: Regular pH
Esterilización.
• Es el proceso mediante el cual cualquier
material, sitio o superficie se libera
completamente de cualquier
microorganismo vivo o espora.
• La desinfección se limita al proceso de
destrucción de los microorganismos
mediante métodos químicos, la esterilización
se refiere al método físico para la
destrucción de los microorganismos.
Práctica: Cálculos de Preparación de
soluciones. CV y VV. Diferencias.
Procedimientos de esterilización.
• El calor es uno de los agentes que se utiliza con
más frecuencia en la esterilización, se puede
usar en forma de llama directa, de calor
húmedo (vapor) o de calor seco (aire caliente).
• CALOR SECO. Los recipientes de vidrio y
demás utensilios que se utilizan para las
operaciones de implantación, son esterilizados
mediante el empleo de una ESTUFA a una
temperatura mínima de 170ºC, durante dos
horas, nunca menos de una hora.
• Todos los materiales a esterilizar mediante calor
seco(estufa) deben estar limpios y libres de
trazas de materia orgánica.
• VAPOR BAJO PRESIÓN.(AUTOCLAVE).
• Es muy eficiente para destruir todas las formas de
bacterias , hongos y sus esporas y es el método
más utilizado para esterilizar diferentes materiales
incluyendo los medios de cultivo(siempre y
cuando no contengan componentes termolábiles).
• Es necesario extraer todo el aire antes de
empezar el proceso de esterilización ya que a
presiones iguales, la temperatura de una mezcla
de aire y vapor no es tan alta como la del vapor
puro.
• La temperatura dentro del autoclave se regula
mediante la presión y es directamente
proporcional a ésta, la presión se lee en un
manómetro que forma parte del autoclave.
• Para esterilizar los materiales relacionados
con el cultivo de tejidos se acostumbra usar
una presión de 15 lb durante 20 minutos, a
esta presión la temperatura del vapor es
aproximadamente 121ºC, suficiente para
matar virtualmente a todas las formas de
vida en cinco minutos. Pero el tiempo
dependerá del tipo de material como de su
cantidad.
• La siguiente es una guía para presiones
variables:
• 10 lb. de presión (115.5ºC)durante 30 minutos.
• 15 lb. de presión (121.5ºC)durante 20 minutos.
• 20 lb. de presión (126.5ºC)durante 15 minutos.
• FILTRACIÓN.Cuando se usa componentes
termolábiles en el medio de cultivo, se procede
a su filtración y no al autoclaveo. Estos son
filtros especiales (Millipore) a prueba de hongos
y bacterias, existen filtros desechables que
aunque costosos, pueden ahorrar tiempo y son
pre-esterilizados.
Esterilización del medio de cultivo
• Son generalmente esterilizados en autoclave a 1210C y
1,2 kg/cm2
Volumen de medio por frasco
(mL)
Tiempo mínimo de
esterilización (min)
20-50 15
75-200 20
250-500 25
1000 30
1500 35
2000 40
El agua que se
utiliza en el
autoclave debe ser
siempre
desmineralizada.
Gracias.
INICIO DE TOUR BIOTECNOLOGICO

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  • 1. Práctica de reconocimiento de instalaciones y equipos de un laboratorio de cultivo de tejidos. C.E.B. UNESUM. Dr.C. Byron E. Zevallos Bravo. Centro de Estudios de Biotecnología. UNESUM byron.zevallos@unesum.edu.ec Ing. Azucena Zhindon Ganchozo MsC Centro de Estudios de Biotecnología. UNESUM bertha,zhindon@unesum.edu.ec CARRERA DE INGENIERIA AGROPECUARIA. 7MO SEMESTRE. DOCENTE RESPONSABLE: Dra.C. Blanca Indacochea Ganchozo
  • 2. CONTENIDO Medios de cultivo. Control de calidad del agua. pH. Desinfección y esterilización. Reconocimiento de equipos e instalaciones. Practica de cultivo in vitro de ajo (Alium sativum)
  • 3. Medios de Cultivo: generalidades, composición y preparación. • Una vez definido el objetivo perseguido con el cultivo in vitro de un determinado explante, es necesario elegir un medio apropiado de cultivo, en el cual hay que considerar no sólo sus componentes sino su preparación. • Componentes. En la actualidad existen innumerables formulaciones cada una de las cuales contiene entre 15 y 35 compuestos químicos que suministran: a)Carbono, b)Nutrimentos minerales, c)Vitaminas,d)Agente gelificante,e)Sustancias reguladoras del crecimiento,f)Otros compuestos. • Generalmente se hace referencia al conjunto de componentes a+b+c como al medio basal (MB).
  • 4. MEDIOS MAS USADOS. Contenido de macronutrientes (mg/L). Macronutrientes White (1954) W Murashige & Skoog (1962) Gamborg (1968) B5 Schenk Hildebrandt (1972) S&H Chu et al (1975) N6 KNO3 NH4NO3 Ca(NO3)2.4H2O CaCL2.2H2O MgSO4.7H2O KCL KH2PO4 NH4H2PO4 NaH2PO4.H2O Na2SO4 (NH4)2SO4 80 - 300 - 720 65 - - 16.5 200 - 1900 1650 - 440 370 - 170 - - - - 2500 - - 150 250 - - 150 - - 134 2500 - - 200 400 - - - - - - 2830 - - 166 185 - 400 - - - 463
  • 5. Micronutrientes White (1954) W Murashige & Skoog (1962) Gamborg (1968) B5 Schenk Hildebrandt (1972) S&H Chu et al (1975) N6 MnSO4.H2O MnSO4.4H2O ZnSO4.7H2O H3BO3 KI CuSO4.5H2O Na2MoO4.2H2O CoCl2.6H2O FeSO4.7H2O NaFeEDTA.2H2O Fe(SO4)3 7.0 - 3.0 1.5 0.75 - - - - - 2.5 22.3 - 8.6 6.2 0.83 25 µg 250 µg 25 µg 27.8 37.3 - - 10.0 2.0 3.0 0.75 25 µg 250 µg 25 µg - - - - 10.0 1.0 5.0 1.0 0.2 0.1 0.1 15.0 20.0 - - 4.4 1.5 1.6 0.8 - - - 27.85 37.25 - MEDIOS MAS USADOS. Contenido de macronutrientes (mg/L).
  • 6. Vitaminas White (1954) W Murashige & Skoog (1962) Gamborg (1968) B5 Schenk Hildebrandt (1972) S&H Chu et al (1975) N6 Myo-inositol Thiamina-HCL Acido Nicotínico Piridoxina-HCL Ca-Pantotenato Biotina Acido Fólico Cloruro Cholina Rivoflavina - - - - - - - - - 100 0.1 0.5 0.5 - -- - - - 100 10.0 1.0 1.0 - -- - - - 1000 5.0 5.0 0.5 - -- - - - - 1.0 0.5 0.5 - 0.05 0.5 - - MEDIOS MAS USADOS. Contenido de macronutrientes (mg/L).
  • 7. PREPARACIÓN DE MEDIO DE CULTIVO BASAL SOLUCIONES STOCK 5 SOLUCIONES MADRE: 10 ML C/U POR LITRO
  • 8. ADICIONAR VITAMINAS: 10 ml/L ADICIONAR: 30 g de azúcar REGULAR pH a 5.5 – 5.8 ADICIONAR 7 g de agar SOMETER A TEMPERATURA PARA ACTIVAR EL GELIFICANTE REPARTIR EN FRASCOS O TUBOS Y AUTOCLAVAR LISTO
  • 9. • Control de calidad del agua destilada Para la preparación de medios, soluciones y tampones, debe utilizarse agua destilada y desmineralizada que haya sido sometida a controles periódicos que aseguren su calidad. Controles periódicos: - Requisitos del agua destilada:  Conductividad – 0.5 - 2.0 μS/cm  pH – 5.5- 7  Libre de metales pesados  Libre de otros contaminantes Practica: Medir conductividad de varios tipos de aguas.
  • 10. pH - Importancia Cuando se prepara un medio de cultivo, después de añadir sus componentes, se procede a ajustar el pH final al valor deseado, añadiendo OHNa 0.1 N o HCl 0.1N al medio. Una vez ajustado el pH se procede a agregar el gelificante, de ser el caso y esterilizar el medio. El pH final del medio de cultivo es un factor importante por diversas razones:
  • 11. •Valores bajos, inferiores a 3.5 impiden la solidificación de los agentes gelificantes añadidos a los medios. •El valor del pH puede afectar a la solubilidad de algunos componentes del medio de cultivo. •El valor del pH puede afectar a la absorción de determinados nutrientes por parte del explante (p.e. la absorción de iones NO3-aumenta con la acidez del medio) •El valor del pH del medio puede afectar al pH del citoplasma y como consecuencia a la actividad de muchas enzimas.
  • 12. Por todas estas razones conviene optimizar el pH del medio para cada caso en concreto. En general, no obstante, en la mayoría de situaciones se trabaja a pH entre 5.2 y 5.8. Una vez ajustado el pH del medio, este sufrirá una ligera acidificación durante el proceso de esterilización en autoclave, para, después, subir nuevamente durante el tiempo de cultivo, y luego se irá acidificando progresivamente como resultado de la absorción diferencial de algunos componentes, así como de la excreción de exudados por parte del explante. Práctica: Regular pH
  • 13. Esterilización. • Es el proceso mediante el cual cualquier material, sitio o superficie se libera completamente de cualquier microorganismo vivo o espora. • La desinfección se limita al proceso de destrucción de los microorganismos mediante métodos químicos, la esterilización se refiere al método físico para la destrucción de los microorganismos. Práctica: Cálculos de Preparación de soluciones. CV y VV. Diferencias.
  • 14. Procedimientos de esterilización. • El calor es uno de los agentes que se utiliza con más frecuencia en la esterilización, se puede usar en forma de llama directa, de calor húmedo (vapor) o de calor seco (aire caliente). • CALOR SECO. Los recipientes de vidrio y demás utensilios que se utilizan para las operaciones de implantación, son esterilizados mediante el empleo de una ESTUFA a una temperatura mínima de 170ºC, durante dos horas, nunca menos de una hora. • Todos los materiales a esterilizar mediante calor seco(estufa) deben estar limpios y libres de trazas de materia orgánica.
  • 15. • VAPOR BAJO PRESIÓN.(AUTOCLAVE). • Es muy eficiente para destruir todas las formas de bacterias , hongos y sus esporas y es el método más utilizado para esterilizar diferentes materiales incluyendo los medios de cultivo(siempre y cuando no contengan componentes termolábiles). • Es necesario extraer todo el aire antes de empezar el proceso de esterilización ya que a presiones iguales, la temperatura de una mezcla de aire y vapor no es tan alta como la del vapor puro. • La temperatura dentro del autoclave se regula mediante la presión y es directamente proporcional a ésta, la presión se lee en un manómetro que forma parte del autoclave.
  • 16. • Para esterilizar los materiales relacionados con el cultivo de tejidos se acostumbra usar una presión de 15 lb durante 20 minutos, a esta presión la temperatura del vapor es aproximadamente 121ºC, suficiente para matar virtualmente a todas las formas de vida en cinco minutos. Pero el tiempo dependerá del tipo de material como de su cantidad. • La siguiente es una guía para presiones variables:
  • 17. • 10 lb. de presión (115.5ºC)durante 30 minutos. • 15 lb. de presión (121.5ºC)durante 20 minutos. • 20 lb. de presión (126.5ºC)durante 15 minutos. • FILTRACIÓN.Cuando se usa componentes termolábiles en el medio de cultivo, se procede a su filtración y no al autoclaveo. Estos son filtros especiales (Millipore) a prueba de hongos y bacterias, existen filtros desechables que aunque costosos, pueden ahorrar tiempo y son pre-esterilizados.
  • 18. Esterilización del medio de cultivo • Son generalmente esterilizados en autoclave a 1210C y 1,2 kg/cm2 Volumen de medio por frasco (mL) Tiempo mínimo de esterilización (min) 20-50 15 75-200 20 250-500 25 1000 30 1500 35 2000 40 El agua que se utiliza en el autoclave debe ser siempre desmineralizada. Gracias. INICIO DE TOUR BIOTECNOLOGICO