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                                         Desinfectantes de uso hospitalario

            1. INTRODUCCIÓN
            La necesidad de seleccionar desinfectantes adecuados para destinarlos a procesos de desinfección en el
            equipo biomédico y en el medioambiente hospitalario ha sido destacada durante varias décadas en
            múltiples artículos científicos. Asimismo, se han publicado docenas de notas que documentan infecciones
            en los pacientes, después de aplicar inadecuados procesos de desinfección en los elementos utilizados
            para su cuidado y tratamiento.
            Si consideramos que un número creciente de formulaciones de esterilizantes químicos y desinfectantes
            están disponibles en el comercio y que han proliferado distintas técnicas de uso, debemos concluir que
            cada institución debe aplicar una clara política de reprocesamiento de elementos biomédicos y que los
            profesionales de la salud tienen que conocer los principios de la desinfección, a fin de seleccionar los
            desinfectantes adecuados y utilizarlos en los elementos apropiados, de la forma correcta.
            Para una cabal comprensión del tema, es conveniente aclarar algunos conceptos, como los que se
            definen a continuación.

            2. ESTERILIZACIÓN, DESINFECCIÓN Y OTROS CONCEPTOS RELACIONADOS

            Esterilización
            Es la completa destrucción o eliminación de toda forma de vida microbiana. El término "esterilización" es
            entendido como absoluto, no relativo a ciertos microorganismos o determinado material. Los procesos
            utilizados en el hospital son físicos, químicos o una combinación de ambos: por ejemplo, calor seco, óxido
            de etileno y plasma de peróxido.
            Los agentes químicos usados para la eliminación de toda forma de vida microbiana (hongos y esporas
            bacterianas) son los llamados esterilizantes químicos. Son los mismos que se utilizan como parte de los
            procesos de desinfección de alto nivel, pero durante mayores períodos de tiempo.

            Desinfección
            La "desinfección" se diferencia de la esterilización por la falta de actividad esporicida; pero esta definición
            resulta una excesiva simplificación, ya que algunos desinfectantes pueden destruir esporas luego de
            tiempos prolongados de exposición (6-10 horas) y son llamados esterilizantes químicos. En
            concentraciones similares pero en menores tiempos de exposición (menor o igual a 30 minutos), estos
            mismos desinfectantes pueden eliminar todos los microorganismos, con excepción de un elevado número
            de esporas bacterianas. Se denominan desinfectantes de alto nivel (DAN). Otros desinfectantes -de bajo
            nivel- pueden eliminar la mayoría de las bacterias vegetativas, algunos hongos y virus, en menor tiempo
            (menor o igual a 10 minutos). Por último, los desinfectantes de nivel intermedio en altas concentraciones
            pueden eliminar el bacilo de la tuberculosis, las bacterias vegetativas, la mayoría de los hongos y virus,
            pero no necesariamente las esporas bacterianas.
            En la elección de los desinfectantes se deben considerar las características del producto ideal (ver Tabla
            1), de modo de tratar de sumar la mayor cantidad de atributos para acercarse a ese modelo deseado.

                                         Tabla 1: Propiedades de un desinfectante ideal

                                PROPIEDAD                                           CARACTERÍSTICAS
                           AMPLIO ESPECTRO                          Debe tener un amplio espectro antimicrobiano.
                            RÁPIDA ACCIÓN                           Debe producir una rápida muerte.
                  NO SER AFECTADO POR FACTORES DEL                  Debe ser activo en presencia de materia orgánica
                            MEDIOAMBIENTE                           (sangre, esputo, heces) y compatible con detergentes,
                                                                    jabones y otros agentes químicos en uso.
                              NO TÓXICO                             No debe ser irritante para el usuario ni para el paciente.
                    COMPATIBLE CON LAS SUPERFICIES                  No debe corroer metales ni deteriorar plásticos, gomas,
                                                                    etc.
                                 SIN OLOR                           Debe tener un olor suave o ser inodoro.
                                ECONÓMICO                           El costo se debe evaluar en relación con la dilución, el
                                                                    rendimiento y la seguridad.
                                 ESTABLE                            En su concentración y dilución en uso.
                                 LIMPIEZA                           Debe tener buenas propiedades de limpieza.
                               FÁCIL DE USAR                        La complejidad en la preparación, concentraciones,
                                                                    diluciones y tiempo de exposición del producto pueden
                                                                    crear confusión en el usuario.
                 EFECTO RESIDUAL NO TÓXICO SOBRE LAS                Muchos desinfectantes tienen acción residual sobre las
                             SUPERFICIES                            superficies, pero el contacto de las mismas con humanos
                                                                    puede provocar irritación de piel, mucosas u otros efectos
                                                                    no deseables.
                             SOLUBLE EN AGUA                        Para lograr un descarte del producto no tóxico o nocivo
                                                                    para el medioambiente.




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            Modificado de Rutala, W. “Selection and Use of Disinfectants in Health Care”, en Mayhall Hospital Epidemiology and
            Infection Control. Maryland: G. Baltimore. 1996.


            Suciedad

            Se denomina de este modo a la materia orgánica y/o inorgánica potencialmente portadora de
            microorganismos, que llega a las superficies por medio de la contaminación directa por el uso diario, por
            contaminación indirecta por contacto con el aire y el polvo ambientales, por abandono temporal de los
            espacios, por contaminación por fluidos de humanos o animales y por contaminación directa de
            microorganismos de la actividad de artrópodos o roedores.

            Limpieza

            La limpieza es definida como la remoción física de materia orgánica y suciedad desde los objetos.(1) Este
            proceso generalmente se realiza utilizando agua con o sin detergentes. Habitualmente la limpieza intenta
            remover microorganismos antes que matarlos.

            Área Limpia

            Se conoce con este nombre a las superficies o lugares donde se trabaja con elementos limpios o
            estériles.

            Área sucia

            Comprende las superficies o lugares donde se eliminan fluidos corporales. Sirve de depósito y lugar para
            lavar y descontaminar elementos utilizados con los pacientes.

            Desinfectante

            Es una solución que destruye o inactiva microorganismos, pero no necesariamente los esporos.
            Los desinfectantes son categorizados por la Agencia de Protección del Medioambiente (Environmental
            Protection Agency -EPA- de los EEUU) de la siguiente manera:

            Desinfectante limitado: efectivo contra algunas bacterias Gram positivas (Staphylococcus aureus) o
            Gram negativas (Salmonella C).
            Desinfectante general o de amplio espectro: efectivo contra algunas bacterias Gram positivas y Gram
            negativas.
            Desinfectante de Hospital: efectivo contra bacterias Gram positivas y Gram negativas, incluyendo la
            Pseudomonas aeruginosa. Algunos amonios cuaternarios y fenoles entran en esta clasificación.
            Detergente desinfectante: este producto usa una combinación de detergente y desinfectante químico.
            No todos los detergentes y desinfectantes son compatibles. Varias presentaciones comerciales están
            disponibles actualmente: detergentes alcalinos formulados con compuestos que liberan cloro, detergentes
            alcalinos formulados con amonios cuaternarios o surfactantes no iónicos, y detergentes ácidos formulados
            con iodoforos.
            Sanitizante: es un compuesto que reduce pero no necesariamente elimina los microorganismos desde el
            medioambiente inanimado. Se utiliza generalmente en contacto con los alimentos.
            Los desinfectantes se clasifican además por su nivel de actividad a los microorganismos.
            Se denominan desinfectantes de alto nivel (DAN) a aquellos que inactivan bacterias vegetativas, hongos,
            virus, mycobacterias y en tiempos mas prolongados esporas.
            Se denominan desinfectantes de nivel intermedio (DNI) a aquellos que inactivan bacterias vegetativas,
            hongos, virus y en tiempos y concentraciones elevadas mycobacterias.
            Por último los desinfectantes de bajo nivel (DBN) son los que eliminan bacterias vegetativas, algunos virus
            y algunos hongos.

            3. PROBLEMAS ASOCIADOS CON LOS PROCESOS DE DESINFECCIÓN

            En el año 1961, Earle H. Spaulding ideó una clasificación para la desinfección y la esterilización de los
            elementos y equipos usados con el paciente. Esto resultó tan lógico, que se utilizó en todo el mundo como
            modelo para entender ambos procesos.
            La teoría de Spaulding se fundamenta en dividir los elementos de cuidado del paciente en tres categorías,
            basadas en el riesgo de infección que representan.

            Las tres categorías son:

            Crítica: Llamada así porque existe alto riesgo de infección, si el elemento se contamina con algún
            microorganismo, incluyendo las esporas. Los objetos de esta categoría son los que entran en contacto




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            con el torrente sanguíneo o con las cavidades estériles. La mayoría de estos elementos debe
            esterilizarse.

            Semicrítica: Comprende los objetos que entran en contacto con las mucosas o con la piel no intacta y
            deben estar libres de todos los microorganismos, excepto de un alto número de esporas bacterianas.
            Las membranas mucosas intactas son resistentes a la infección por esporas bacterianas, pero
            susceptibles frente a otros microorganismos, como el bacilo de la tuberculosis y los virus. Los equipos de
            terapia respiratoria y de anestesia, los endoscopios y el aro del diafragma, entre otros, entran en esta
            categoría. Los elementos semicríticos deben recibir, por lo menos, una desinfección de alto nivel con
            esterilizantes químicos entre cada uso.

            No crítica: Los elementos de esta categoría entran en contacto con la piel sana, pero no con las
            membranas mucosas. La piel intacta es una barrera efectiva para la mayoría de los microorganismos. En
            contraste con los elementos críticos y semicríticos, gran parte de los no críticos que pueden volver a
            usarse deben limpiarse con desinfectantes de bajo nivel o de nivel intermedio. Pueden contribuir a la
            transmisión secundaria de infecciones, contaminando las manos del personal de salud y el equipo
            médico. No obstante, hoy se considera un riesgo a tener en cuenta la transmisión de agentes infecciosos
            entre pacientes por la vía no crítica.

            Un serio problema asociado con los procesos de desinfección es su excesiva simplificación y la dificultad
            para encasillar los elementos biomédicos en las categorías correspondientes, fundamentalmente porque
            cuando Spaulding ideó esta clasificación no había cirugías laparoscópicas o artroscópicas, endoscopía
            para diagnóstico o tratamiento, aislamiento del Clostridium difficile, Creutzfeld-Jacob, HIV, tuberculosis
            resistente, ni una gran cantidad de desinfectantes cuyo espectro es dudoso o sólo estudiado in vitro. Por
            ejemplo, los laparoscopios y artroscopios que entran en cavidades estériles idealmente deberían ser
            esterilizados. Sin embargo, en nuestro país y en otras partes -como en Estados Unidos y algunos países
            de Europa(1, 20)-, comúnmente reciben sólo DAN, ya que no hay evidencias claras que demuestren que
            estas prácticas incrementan el riesgo de infección. Por otra parte, si bien los endoscopios son, por
            clasificación, elementos semicríticos, cuando se utilizan para tratamientos o biopsias, se vuelven críticos,
            y por su estructura compleja resultan difíciles de limpiar y desinfectar.
            Además, si un artroscopio que es un elemento crítico se puede someter a procesos de desinfección de
            alto nivel, cabe preguntarse por qué no se debería hacer lo mismo con ciertos elementos quirúrgicos.
            También existen otros problemas asociados con la desinfección propiamente dicha, como ser el tiempo
            óptimo de contacto con el desinfectante, que para varios elementos aún no se conoce. Por estas razones,
            las estrategias de desinfección a implementar con varios objetos biomédicos son sumamente variables y
            discutidas. Será necesario hacer más estudios, a los efectos de determinar si la simplificación de los
            procesos es eficaz en la práctica clínica.

            4. RECOMENDACIONES PARA EL USO DE PROCESOS DE DESINFECCIÓN

            Endoscopios

            Algunos informes examinados relacionados con endoscopios(1, 9, 7) muestran que 281 infecciones fueron
            transmitidas por endoscopía gastrointestinal y 96 por broncoscopías. El espectro clínico de estas
            infecciones comprende desde la colonización asintomática hasta la muerte. Las especies de Salmonella y
            Pseudomonas aeruginosa fueron repetidamente identificadas como la causa más común de infecciones
            transmitidas por endoscopía gastrointestinal; y el M. tuberculosis, las micobacterias atípicas y la
            Pseudomonas aeruginosa(16, 17, 18) por broncoscopios.
            Las causas más frecuentes de transmisión fueron la inadecuada limpieza, la inapropiada selección de
            agentes desinfectantes o las fallas en las recomendaciones en los procesos de limpieza y desinfección.
            Una investigación en varios estados de Estados Unidos(12) encontró que el 23,9% de los cultivos
            bacterianos de los canales internos de 71 endoscopios gastrointestinales dejaron 100.000 colonias de
            bacterias o más, después de haber completado todo el proceso de desinfección o esterilización y antes
            del próximo uso con el paciente. Las máquinas automáticas de reprocesamiento han estado vinculadas
            con epidemias de infección o colonización, en relación con accesorios del endoscopio, como así también
            con las válvulas de succión o los fórceps de biopsia.(9)
            A partir de estos sucesos, se recomienda que si tales elementos no pueden limpiarse totalmente de
            materia extraña, deberían ser esterilizados, preferentemente con vapor. Si los accesorios del endoscopio
            son descartables, no se deberían volver a utilizar, pues la limpieza es dificultosa y el proceso de
            desinfección o esterilización puede fracasar.
            Existe una evidente necesidad de rediseñar los endoscopios y revisar las políticas de desinfección, pues
            ellos son una potencial ruta de transmisión de agentes infecciosos. Se hicieron algunos esfuerzos para
            introducir en el mercado un endoscopio reutilizable, con canales de aire, agua y succión descartables. No
            obstante, se debe evaluar la relación costo-beneficio de esta medida, al igual que la seguridad y la
            reducción del riesgo de infección de este sistema.
            Las recomendaciones para la limpieza y desinfección de los endoscopios se resumen en la Tabla 2.




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                                         Tabla 2: Proceso de desinfección de endoscopios

               QUÉ HACER                                               CÓMO HACER
                                   Inmediatamente después del procedimiento, sumergiendo y repasando las
                                   superficies externas y los canales internos con cepillos, solución de agua y
                 LIMPIAR           enzimáticos.
                ENJUAGAR           Con abundante agua, el exterior, y todos los canales con jeringas adecuadas.
                                   Posteriormente drenar el agua.
              DESINFECTAR          Sumergir el endoscopio en un desinfectante de alto nivel, asegurándose de que
                                   penetre por los canales de aire, agua, succión y biopsia. Dejarlo por lo menos 20
                                   minutos.
                ENJUAGAR           El endoscopio y los canales con agua estéril. Si no es posible, se usará agua de la
                                   canilla, y luego se enjuagará con alcohol .
                  SECAR            Después de la desinfección y antes del almacenamiento, tratar los canales internos
                                   con aire forzado, y el exterior, con una compresa limpia.
               ALMACENAR           El endoscopio debe ser almacenado en un lugar que prevenga una nueva
                                   contaminación.

            * Si el endoscopio no se puede esterilizar, el proceso DAN se debe realizar inmediatamente antes de su uso con el
                     (9)
            paciente.
            * Elementos de uso simple: El fabricante provee estos elementos, también llamados descartables, estériles. La apertura
            del paquete estéril implica su empleo inmediato. Una vez que se utilizó, se debe descartar y no debe volver a usarse
            bajo ninguna circunstancia.
            * El proceso para la limpieza y desinfección de artroscopios y laparoscopios es el mismo que para endoscopios, con la
            salvedad de que el enjuague debe realizarse con agua estéril sin excepción. El área y el momento para efectuar este
            procedimiento es el quirófano, antes del acto quirúrgico. El secado debe llevarse a cabo con compresas estériles.




            Laparoscopios y artroscopias

            Si bien la desinfección de alto nivel parece ser un estándar mínimo para el procesamiento de
            laparoscopios y artroscopios entre pacientes, existen continuos debates con respecto a esta práctica. Los
            que proponen la desinfección de alto nivel se refieren a estudios hechos a fines de la década del 70 y
            comienzos de la del 80, que involucran más de 117.000 y 10.000 procedimientos laparoscópicos y
            ginecológicos, respectivamente, con un bajo riesgo de infección (menor a 0,3 %).
            En el primer estudio se encontró una sola infección, relacionada con un germen esporulado; por otra
            parte, estudios realizados por Corson y sus colaboradores demostraron el desarrollo de gérmenes
            comunes de la piel (S. epidermidis, difteroides) desde el área umbilical, después de la preparación de la
            misma con iodopovidona.
            Por su parte, quienes proponen la esterilización argumentan la posibilidad de transmitir una infección por
            organismos formadores de esporas. Los investigadores han planteado varias razones por las cuales la
            esterilización no sería necesaria para todos los equipos laparoscópicos. Incluyen las siguientes:
                §     Número limitado de organismos (menor que 10), introducidos en la cavidad peritoneal.
                §     Daño mínimo de la estructura de la luz abdominal con poco tejido desvitalizado.
                §     Tolerancia de la cavidad peritoneal a pequeños números de bacterias formadoras de esporas.




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                §    Simplicidad de limpieza y desinfección del equipo.
                §    Falta de evidencia epidemiológica de que la desinfección de alto nivel incremente el riesgo de
                     infección.
            Los artroscopios deben ser esterilizados antes del uso, pues también ingresan en una cavidad estéril del
            cuerpo. Sin embargo, en varios países -incluyendo el nuestro- sólo reciben desinfección de alto nivel
            (DAN). En un estudio retrospectivo de 12.505 procedimientos artroscópicos, realizado en la década del
            80, se encontró una tasa de infección del 0,04% (cinco infecciones), cuando el artroscopio era sumergido
            en glutaraldehído alcalino al 2% durante 20 minutos. Cabe destacar que cuatro de estas infecciones eran
            por gérmenes de piel (S. aureus) y una por Estreptococo. Como estos organismos son muy sensibles al
            glutaraldehído, probablemente fueran del paciente. En resumen, existen pocos datos publicados en
            relación con estos objetos y no hay evidencia cierta de que la DAN aumente el riesgo de infección. El
            tema seguirá siendo controvertido hasta que se realicen estudios bien diseñados y randomizados al
            respecto.
            En la DAN se debe utilizar agua estéril para el enjuague y secar con un procedimiento que no
            recontamine el equipo (por ejemplo, compresas estériles, aire filtrado caliente).

            Tonómetros, aros de diafragma e instrumentos de criocirugía

            Las estrategias de desinfección para estos elementos son muy variadas y pocas investigaciones
            demostraron su efectividad.
            Si bien éstos son elementos semicríticos, muchos estudios se realizaron utilizando como desinfectantes
            los alcoholes o clorados que son de nivel intermedio. Los microorganismos que nos interesa inactivar son
            fundamentalmente los virus de la hepatitis, el HIV, el adenovirus y el herpes. Sin embargo, estos
            desinfectantes no fueron testeados para alguno de estos virus. Después de una exhaustiva limpieza con
            detergentes enzimáticos, enjuague y secado, en la actualidad se utiliza la desinfección con isopropil o etil
            alcohol al 70% por 15 minutos. La eficacia de esta práctica no está comprobada.
            En ginecología, se utiliza un condón para cubrir el explorador vaginal en estudios de scanning
            sonográficos. No obstante, este adminículo puede fallar y, por lo tanto, se exige la DAN entre pacientes.
            En criocirugías, también se debe utilizar DAN.

            Instrumentos dentales

            Los artículos científicos y la abundante publicidad asociada a la potencial transmisión de agentes
            infecciosos en la práctica odontológica focalizaron la atención de los profesionales de esta disciplina
            sobre los instrumentos dentales como posibles agentes de transmisión de enfermedades.
            La ADA (American Dental Association) recuerda que todo elemento quirúrgico o que normalmente penetre
            en algún tejido blando o hueso (fórceps, escalpelos, elementos de aspiración quirúrgica, tallador de
            huesos, etc.) está clasificado como crítico y recomienda que sea esterilizado o descartado entre usos. Los
            instrumentos que no penetran en los tejidos o el hueso (condensador de amalgama, jeringa de aire/agua,
            etc.), pero que están en contacto con la cavidad oral, son considerados semicríticos y también deben ser
            esterilizados entre cada uso. Las piezas de mano que no toleran altas temperaturas deben ser
            reemplazadas por otras que se puedan exponer al calor. Los procesos de desinfección no deben utilizarse
            en elementos dentales críticos ni semicríticos.

            Los procesos de esterilización recomendados son los siguientes:

            -Vapor bajo presión (autoclave).
            -Calor seco (estufa).
            -Vapor químico:
                §    El óxido de etileno (ETO) es un eficaz método de esterilización, si el instrumento que va a ser
                     esterilizado está limpio y seco.
                §    Plasma de peróxido de hidrógeno.

            No se debe considerar que las ampollas utilizadas en un recipiente hermético fueron esterilizadas por
            ETO.
            Las cubiertas de las superficies operatorias (sillones de tratamiento, luz, etc.) tienen que ser lavadas con
            un detergente desinfectante luego de la atención de cada paciente. Si no son resistentes a los líquidos,
            deben cubrirse con un protector impermeable o descartable.


            Desinfección de elementos contaminados con HBV, HIV o Mycobacterium tuberculosis
            Los elementos biomédicos semicríticos contaminados con sangre de pacientes HBV o HIV, o bien con
            secreciones respiratorias de pacientes con tuberculosis, pueden recibir desinfecciones de alto nivel,
            porque estudios experimentales han demostrado la inactivación de estos gérmenes con desinfectantes de
            este tipo. Es preciso recordar que muchos pacientes son portadores asintomáticos de estos gérmenes y
            no es posible separar los elementos biomédicos para darles otro tratamiento. Por eso, es tan importante
            respetar siempre los pasos de los procesos de desinfección.




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            Inactivación del Clostridium difficile

            Los endoscopios, tales como los colonoscopios, pueden servir como vehículos de transmisión. Hay datos
            que demuestran que el glutaraldehído al 2% mata las esporas del Clostridium difficile en tiempos de
            exposición mayores a 20 minutos.
            Una vez más se destaca que se puede poner al paciente en riesgo, si no se cumplen todos los pasos del
            proceso de desinfección.

            Inactivación del agente de la enfermedad de Creutzfeldt-Jakob (ECJ)

            El virus de ECJ requiere recomendaciones especiales. Se ha transmitido iatrogénicamente por medio de
            electrodos cerebrales que fueron desinfectados con alcohol y formaldehído, después de haber sido
            usados con pacientes con diagnóstico de ECJ. También se observó el contagio en receptores de córneas
            y hormonas humanas.
            La necesidad de recomendaciones especiales está basada en la alta resistencia del virus, cuando está
            protegido por tejidos o piel.
            Cuando se sospecha enfermedad por priones, es de suma importancia utilizar elementos descartables,
            siempre que sea posible. Los elementos de bajo riesgo de contaminación o riesgo intermedio, que son los
            que no se usaron en el tejido cerebral, pueden recibir los procesos de desinfección y/o esterilización que
            se practican habitualmente. Aquéllos de alto riesgo de contaminación, como los elementos quirúrgicos
            usados en una neurocirugía, se deben tratar como sigue a continuación. Si el elemento es termolábil,
            deberá descartarse, ya que los procesos dañarán las estructuras básicas de los mismos.
            El medioambiente se limpiará de acuerdo con las normas básicas de limpieza y desinfección de
            superficies.
            La esterilización por vapor a 132º C durante una hora es el método preferido para tratar el material
            contaminado, después del lavado. Los desinfectantes como el hidróxido de sodio, después de una hora a
            temperatura ambiente, matan al virus, pero son cáusticos.
            Los elementos no vinculados con el paciente, como pisos o mesas de autopsias, no requieren
            recomendaciones especiales, ya que no se consideran agentes de potencial transmisión. Para la
            inactivación del virus en la muestra de tejido de pacientes, se requiere el ácido de formalina-fórmica.

            Inactivación de agentes patógenos de la sangre en equipos y medioambiente

            Con el surgimiento del HIV, se comenzó a tomar conciencia de todos los microorganismos patógenos que
            se transmiten por la sangre. Sin embargo, las recomendaciones nacionales e internacionales relacionadas
            con la eliminación de estos gérmenes en las superficies del medioambiente no parecen ser de mayor
            utilidad. En general, se reglamenta “eliminar o minimizar el riesgo de exposición ocupacional a microbios
            patógenos que se transmiten por la sangre, descontaminando con un desinfectante apropiado”.
            Los estudios realizados con desinfectantes señalan que se requiere un tiempo de inmersión de 10
            minutos. Los equipos, pisos, camas, por ejemplo, no se pueden sumergir. Y, por otra parte, la mayoría de
            los desinfectantes se inactiva en presencia de materia orgánica. Si se aumentan las concentraciones de
            algunos de ellos, pueden resultar cáusticos o tóxicos.
            La OSHA (Estados Unidos) sugiere utilizar un agente tuberculicida para inactivar los virus de las
            salpicaduras de sangre en el medioambiente. Sin embargo, un amonio cuaternario elimina el virus de la
            hepatitis B, así como otros agentes (fenólicos, clorados). En todos los casos sería necesario limpiar
            previamente.

            Este tema ha causado confusiones por al menos tres razones:

                §   Hay productos no tuberculicidas que eliminan microorganismos patógenos de la sangre (por
                    ejemplo, amonios cuaternarios).
                §   Las superficies no críticas raramente están involucradas con la transmisión de estos patógenos.
                §   Los tiempos de exposición sugeridos por el fabricante no se pueden alcanzar en estos elementos
                    (inmersión de 10 minutos).
                 §
            Alternativamente, sería adecuado utilizar productos de limpieza a base de amonios cuaternarios, fenoles o
            clorados para realizar la limpieza de los equipos y el medioambiente, quitando la sangre y la suciedad
            visible previamente. Con esta práctica también se eliminan los virus, se realiza un solo paso -limpieza- y
            se reducen el tiempo, la corrosión y la toxicidad.
            También se pueden retirar previamente la sangre y la suciedad y utilizar alcohol al 70% para la
            desinfección posterior.
            La elección adecuada dependerá del tipo de elemento y los factores de corrosión o posibilidades de
            sumersión del mismo.




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            TIPOS DE DESINFECTANTES: MODO DE ACCIÓN Y USO

            Un gran número de desinfectantes se utilizan en el cuidado de la salud. Incluyen:
                 §   Alcohol.
                 §   Glutaraldehído.
                 §   Orto-ftalaldehído.
                 §   Peróxido de hidrógeno.
                 §   Persulfato de postasio
                 §   Ácido peracético.
                 §   Amonios cuaternarios.
                 §   Fenólicos.
                 §   Compuestos de cloro.
                 §   Formaldehído.
                 §   Iodóforos.
            Estos desinfectantes no son intercambiables; cada uno tiene un espectro de uso, ventajas y desventajas.
            La selección apropiada se debe realizar teniendo en cuenta la seguridad y la eficiencia.
            Las concentraciones adecuadas, el tiempo de exposición recomendado según los estudios científicos del
            fabricante, el espectro microbiano, la aprobación de su uso efectuada por organismos oficiales y el
            adiestramiento del usuario, son algunas de las características que hay que evaluar antes de elegir un
            desinfectante.

            Alcohol

            En el cuidado de la salud, se reconoce como alcohol especialmente a dos compuestos químicos solubles
            en agua: el alcohol etílico y el alcohol isopropílico. Estos alcoholes son rápidamente bactericidas para
            toda forma vegetativa de bacterias. También son tuberculicidas, fungicidas y virucidas. No destruyen
            esporas bacterianas. Su actividad depende de la concentración; el rango comprendido entre el 60% y el
            90% de solución en agua (volumen/volumen) es el indicado para la acción bactericida.

            Modo de acción

            Actúan por desnaturalización de las proteínas. El alcohol etílico absoluto es un agente deshidratante y
            menos bactericida que la mezcla de alcohol y agua, porque las proteínas se desnaturalizan más
            rápidamente en presencia de agua. Esta observación también se estudió con la dehydrogenasa de la
            Escherichia coli, también incrementa la fase de latencia del Enterobacter aerogenes y esta podría ser
            revertida por la adición de ciertos aminoácidos.
            Más tarde varios autores concluyeron que la acción bacteriostática estaba relacionada a la inhibición de la
            producción de metabolitos escenciales



            Actividad microbicida

            El alcohol metílico (metanol) tiene la acción bactericida más amplia de los alcoholes y raramente es usado
            en el cuidado de la salud.
            La acción bactericida de varias concentraciones de alcohol etílico (etanol) fue examinada contra una
            variedad de microorganismos en períodos de exposición entre 10 segundos y 1 hora. Por ejemplo al
            Pseudomonas aeruginosa muere en 10 segundos de exposición con alcohol a 30% (v/v), mientras la
            Serratia marsecens, la E. coli y la Salmonella tiphosa mueren en 10 segundos en concentraciones de
            etanol entre 40% y 100% (v/v) El Staphylococcus aureus y el Streptococcus pyogenes resultaron
            altamente resistentes, y se necesitaron concentraciones de alcohol entre 60% y 90% (v/v) en 10 segundos
            para obtener la muerte bacteriana.
            Sin embargo solo en concentraciones de 60% al 80%, es virucida potente para virus lipofílicos (ej, herpes,
            vaccinia, influenza) y algunos hidrofílicos (adeno, entero, rhino y rotavirus, pero no para el virus de la
            Hepatitis A, y si para el virus de la Hepatitis B)
            El alcohol isopropílico (isopropanol) es más bactericida que el alcohol etílico para la E. coli y el S. aureus,
            no es activo para los virus no lipídicos y tiene actividad para los virus lipiditos
            Los alcoholes son mycobactericidas en 15 segundos a concentraciones del 95%

            Usos

            Los alcoholes no están recomendados para la esterilización de instrumentos por su falta de acción
            esporicida y la inhabilidad de penetrar en mteriales ricos en proteínas. Se han documentado muertes
            fatales por infección de herida por Clostridium cuando se para la esterilización de instrumental quirúrgico.
            Se usan, en cambio, para la desinfección de elementos no críticos, como aparatos, estetoscopios,
            termómetros, elementos de goma, y pequeñas superficies del medio ambiente.




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            Glutaraldehído

            El glutaraldehído es un dialdehído saturado, usado como desinfectante de alto nivel y esterilizante
            químico. Las soluciones acuosas son ácidas y generalmente en ese estado no son esporicidas. Por el uso
            de agentes alcalinizantes (pH 7.5 a 8.5), la solución se hace esporicida. Una vez que la solución es
            activada tiene una vida media de 14 días. Esto se debe a que el glutaraldehído en pH alcalino se
            polimeriza, volcando moléculas de grupo aldehído a la solución, perdiendo actividad biocida.
            Los glutaraldehídos neutros, ligeramente ácidos y alcalinos poseen mayor actividad microbicida y
            anticorrosiva, cuando son comparados con los glutaraldehídos ácidos. Sin embargo, según recientes
            publicaciones no se encontró diferencia en la actividad microbicida de ambos. La actividad microbicida y
            los efectos de anticorrosión de los glutaraldehídos ácidos deben ser demostrados por estudios propios de
                                                               (30)
            cada fabricante, ya que son fórmula dependientes.
            La gran ventaja de los glutaraldehídos neutros y ácidos radica en que sus formulaciones están listas para
            usar. No requieren, como los glutaraldehídos alcalinos ser mezclados con otros productos

            Modo de acción

            La actividad biocida de estos compuestos es una consecuencia de lal alkilación de sulfhydral, hydroxyl,
            carboxy y grupos amino, los cuales alteran el ácido ribonucleico (RNA), ácido deoxyribonucleico (DNA) y
            síntesis de proteína.

            Actividad microbicida

            No sólo está determinada por el pH o la concentración, sino también por la dilución en uso y por la carga
            orgánica. Estos productos son efectivos en un rango de 1.5% y 3%. Las concentraciones inferiores
            afectan su actividad biocida; por tal motivo los productos del mercado comercial deben venderse con un
            control que se debe realizar diariamente a los efectos de asegurar estos niveles.
            Su actividad microbicida alcanza las bacterias vegetativas, los hongos, los virus en 10 minutos, esporos
            de Bacillus y Clostridium en 3 horas y Mycobacteria de la tuberculosis entre 20 a 30 minutos. Las
            micobacterias atípicas y hongos han demostrado ser resistentes al glutaraldehído.(30) Algunas
            formulaciones de glutaraldehído ácido no son esporicidas.
            Tienen alta toxicidad en seres humanos y se utilizan en los procesos de desinfección de alto nivel de
            elementos biomédicos.
            El tiempo de exposición y la temperatura han sido validados. La dilución del glutaraldehído en máquinas
            lavadoras endoscópicas automáticas se estimó en 3 días. Esto ocurre porque los instrumentos pasan por
            un proceso de secado. Es por ello que se deben utilizar cintas testigos para testear la concentración
            efectiva. . Los envases de estas cintas tiene fecha de vencimiento deben ser controlados. La frecuencia
            del testeo debe estar basada en la frecuencia de uso del glutaraldehído. Se recomienda utilizar como
            mínimo un test cada 10 usos. La concentración debe ser considerada inaceptable cuando la dilución está
            entre 1.0 a 1.5% o menos, entonces el indicador no cambia de color.
            También debe ser usado este test cuando se utilizan formulaciones de glutaraldehído alcalino que se
            debe mezclar con un buffer, a los efectos de confirmar que se ha realizado una buena mezcla.



            Usos

            El glutaraldehído se utiliza como desinfectante de alto nivel para equipo médico como endoscopios, tubos
            de espirómetro, dializadores, transductores, equipos de terapia respiratoria y de anestesia. No es
            corrosivo para el metal y no daña lentes, plásticos o goma. No debe ser usado para la desinfección de
            superficies, porque es muy tóxico para las personas.
            Debe ser usado en ambientes que tengan 7 a 15 recambios de aire por hora, control específico del
            ambiente, el límite de glutaraldehído al cielo no debe exceder las 0.05 ppm. Y protección personal
            (guantes, barbijos y antiparras)

            Orto-ftalaldehído (OPA)

            El OPA es un esterilizante químico que recibió la aprobación de la FDA en octubre de 1999. Contiene
            0.55% de 1,2-benzenedicarboxaldehído (OPA), con un pH de 7.5.
            Es activo para un amplio rango de bacterias, hongos, virus, micobacterias, incluyendo las atípicas y el
            bacillus subtilis.
            Tiene excelente estabilidad en un rango de pH entre 3 y 9. No es irritante para la piel ni las mucosas, no
            requiere activación ni monitoreo de exposición y tiene un aroma imperceptible.

            Modo de acción

            Interactúa con aminoácidos, proteínas y microorganismos




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            Actividad microbicida

            Es efectivo contra las micobacterias en 6 minutos, incluyendo las que son resistentes para el
            glutaraldehído. Es efectivo para todas las bacterias y virus, incluyendo esporos de Bacillus subtilis
            Se lo utiliza como desinfectante de alto nivel para elementos biomédicos, en tiempos de exposición de
            entre 5 y 12 minutos.

            Usos

            Es usado como desinfectante de alto nivel. Tiene varias ventajas comparado con el glutaraldehído. Tiene
            excelente estabilidad en un amplio rango de pH (pH 3-9). No es irritante para los ojos o la mucosa nasal.
            no requiere monitoreo de exposición, tiene un aceptable olor y no requiere activación. El OPA tiene
            excelente compatibilidad con los materiales.
            Su principal desventaja es que, en presencia de proteínas, mancha la piel y el instrumental, aunque
            paulatinamente la mancha desaparece cuando el objeto o la piel se limpian y dejan de tener contacto con
            el producto. Debe usarse sobre elementos limpios y enjuagarse bien antes del contacto con la piel y las
            mucosas.


            Peróxido de hidrógeno

            El peróxido de hidrógeno estabilizado tiene una buena actividad microbicida, en concentraciones del 6%
            al 25%. Sin embargo, utiliza mucho tiempo para completar su actividad -entre 1 y 2 horas- a altas
            concentraciones.
            Actualmente se comercializa el producto listo para usar con 7.5% de peróxido de hidrógeno y 0.85% de
            ácido fosfórico para mantener un pH bajo. Tiene actividad micobactericida. Pero, posee una actividad
            sinergística para los esporulados, cuando se combina con el ácido peracético.
            Debe ser almacenado en envases oscuros. Se lo utiliza en la desinfección de alto nivel.

            Modo de acción

            Destruye radicales libres de hydroxil que pueden atacar las membranas lipídicas, DNA, y otros
            componentes escenciales de la célula. Las bacterias productoras de catalasa pueden proteger a las
            células de la acción del peróxido de hidrógeno y degradarlo en agua y oxigeno. Esta defensa de la
            bacteria es preocupante para la concentración usada en la desinfección.

            Actividad microbicida

            El peróxido de hidrógeno (PH) es activo contra un amplio rango de microorganismos incluyendo bacterias,
            hongos, virus y esporos. Los organismos productores de catalasa (S aureus, Serratia marcescens y
            Proteus mirabilis) requieren de 30 a 60 minutos de exposición con PH a una concentración de 0.6%, sin
            embargo los micororganismos menos productores de catalasa (E. coli, Streptococcus y Pseudomonas)
            requieren solo 15 minutos de exposición.
            Las concentraciones útiles de PH para la DAN están en un rango entre 6% y 25%. El producto
            actualmente se comercializa listo para usar en concentraciones que contienen 7.5% de PH y 0.85%de
            ácido fosfórico (que mantiene el pH bajo). Se mostró la muerte de micobacterias de la tuberculosis
            resistentes después de 10 minutos de exposición de PH a 7.5%. Se requieren 30 minutos para eliminar el
            99.9% del virus de la polio y el de la Hepatitis A. Sin embargo usando un acelerador de la actividad se
            necesita sólo un minuto para eliminar el virus de la Hepatitis A. Un nuevo producto al 13.4% de
            concentración (no aprobado aún) ha demostrado ser esporicida, micobactericida, fungicida y virucida,

            Los datos de los fabricantes del PH demostraron que la solución esteriliza en 30 minutos y produce DAN
            en 5 minutos.

            Usos

            Está recomendado para la desinfección de superficies inanimadas al 3%. Las concentraciones entre el
            3% y 6% se utilizan para lentes de contacto, respiradores y endoscopios.
            Es irritante de mucosas, produce daño corneal, y como otros esterilizantes químicos, la dilución debe ser
            controlada por medio de un testeo regular que permita comprobar su concentración mínima efectiva entre
            6% y 7%. Ofrece cambios cosméticos sobre algunas superficies, como la decoloración del acabado
            metálico. Sin embargo no ha sido suficientemente evaluado para establecer la compatibilidad a los
            endoscopios y otros elementos semicríticos.




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            Ácido peracético (AP)

            El ácido peracético o peroxiacético se caracteriza por una acción muy rápida contra todos los
            microorganimos. Entre sus ventajas principales, se puede señalar que se descompone en ácido acético y
            agua oxigenada, no deja residuos tóxicos, permanece efectivo aún en presencia de materia orgánica y es
            esporicida a bajas temperaturas.
            Puede corroer algunos metales -zinc, bronce, plata, acero, cromo-, pero esto se corrige agregando a la
            formulación aditivos que modifiquen el pH.
            Se lo utiliza en máquinas automáticas, donde la concentración inicial es del 35%, y es diluido al 0.2% a
            una temperatura de 50 grados centígrados.

            Modo de acción

            Se conoce poco pero se piensa que su acción como la de otros agentes oxidantes, desnaturaliza las
            proteínas, altera la permeabilidad de la pared celular, y oxida metabolitos, enzimas y proteínas.
            Demostró alterar el metal de los endoscopios -opaca, empaña o mancha - y tiene una vida útil de 24
            horas.

            Actividad microbiana

            El AP mata bacterias gram positivas, bacterias gram negativas y hongos, en 5 minutos a 100 ppm. En
            presencia de materia orgánica requiere 200-500 (0.02-0.05%) ppm. Los virus como el polio requiere altas
            concentraciones para ser eliminado. Entre 1500 y 2250 ppm en 15 minutos logra el objetivo. Los esporos
            mueren en 30 minutos a concentraciones del 1%.

            Usos

            Se utilizan en máquinas automáticas al 35% que es diluido por la misma máquina al 0.2% a una
            temperatura de 50ºC, y realizan esterilización química a instrumentos quirúrgicos y dentales (ej
            artroscopias, endoscopios)
            La estructura y funcionamiento de las máquinas están directamente relacionados
            Con el éxito de los procesos. Se han documentado infecciones por fallas en el mismo.
            En Inglaterra se comercializa un producto que contiene 0.35% de ácido peracético. Si bien el producto es
            ampliamente efectivo para un amplio rango de microorganismos, mancha los metales. Su vida media útil
            es de 24 horas.
            Las nuevas formulaciones de AP líquidas tienen inhibidores de la corrosión y son muy estables. Se debe
            controlar su efectividad con testigos que debe entregar el fabricante del producto.




            Peróxido de hidrógeno y ácido peracético

            Los dos esterilizantes químicos están disponibles y contienen ácido peracético y peróxido de hidrógeno,
            en formulaciones que dependen de la marca comercial (por ejemplo, 0.08% de ácido peracético y 1% de
            peróxido de hidrógeno; 0.23% de ácido peracético y 7.35% de peróxido de hidrógeno).

            Actividad microbicida

            Tienen actividad microbicida para un alto rango de bacterias, que incluyen las micobacterias atípicas.
            Inactiva todos los microorganismos excepto las esporas bacterianas en 20 minutos. El 0.08% de ácido
            peracético y 1% de peróxido de hidrógeno fue efectivo para inactivar las micobacterias atípicas resistentes
            al glutaraldehído.




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            Usos:

            Esta combinación se utiliza ampliamente en los centros de diálisis para la desinfección de
            hemodializadores. El 56% de los centros de diálisis en los EEUU, durante el año 1997, lo usaban para
            reprocesar las membranas.
            Algunas empresas de endoscopios no lo aprueban para sus productos, porque provocan daños
            cosméticos en los mismos.

            Amonios cuaternarios

            Los detergentes basados en amonios cuaternarios son limpiadores extremadamente efectivos en un solo
            paso de limpieza y desinfección. Están formulados con detergentes catiónicos y no iónicos y son
            compatibles con detergentes aniónicos; sin embargo, no se deben mezclar otros limpiadores con estos
            desinfectantes.
            Los cuaternarios tienen baja toxicidad y amplio nivel de desinfección contra bacterias, hongos y virus. Su
            mayor efectividad es en pH alcalino en un rango de entre 7 y 10.
            Estos desinfectantes no dejan manchas y no son corrosivos. Los cuaternarios por sí mismos no son
            efectivos contra el Mycobacterium tuberculosis; pero, las nuevas formulaciones con alcohol de
            preparaciones listas para usar permiten la actividad tuberculicida.
            Los amonios cuaternarios son los limpiadores de superficie más frecuentemente usados en los EEUU por
            las siguientes razones:(24)
            -Bajo nivel de corrosión de las superficies inanimadas.
            -Amplio espectro de actividad microbiana.
            -Disponibilidad para una gran variedad de usos.
            -Facilidad de empleo.

            Los cuaternarios poseen cinco generaciones de desarrollo:
            §   Cloruro de Benzalconio (BZK): introducidos en el año 1935, fueron los primeros comercialmente
                disponibles. Aceptados por su amplio espectro microbiano y su fuerte actividad detersiva, tenían
                algunos inconvenientes: requerían un paso previo de limpieza y, además, los factores comunes del
                medioambiente como las aguas duras, los residuos aniónicos, los jabones y la suciedad con
                proteínas los encontraron débilmente efectivos.
            §   Cuaternarios de segunda generación: introducidos en 1955, ofrecieron efectividad probada en aguas
                duras y aumentaron su actividad antimicrobiana. Estos desinfectantes fueron de mayor eficacia y
                mejor tolerados que el BZK.
            §   Cuaternarios de tercera generación: desarrollados en el año 1965, llamados químicamente de
                cadenas gemelas, fueron elaborados con detergentes no iónicos, lograron mayor poder limpiador y se
                convirtieron en mejores desinfectantes. Superan cuatro veces a los anteriores por su acción con
                aguas duras, y de dos a tres veces, por su acción contra los residuos aniónicos.
            §   Cuaternarios de cuarta generación: fueron introducidos en la década del 70 y son una combinación
                de un alkyl dimethyl benzyl ammonium chloride (ADBAC) y un cuaternario de cadenas gemelas.
                Estos cuaternarios resultaron ser menos tóxicos y costosos, y más convenientes, pero demostraron
                menor actividad germicida que el BZK en un 50%.
            §   Cuaternarios de quinta generación: unen los de cuarta generación y los cuaternarios de segunda
                generación. Tienen muy buena acción germicida y son activos bajo las condiciones más hostiles del
                medioambiente. Además, son fáciles de usar.
            Los amonios cuaternarios NO debe usarse como desinfectantes de alto nivel.

            Derivados fenólicos

            Se encuentran en este grupo los Alquilfenoles (cresol, xilenol, timol); los Bifenoles (triclosan,
            ortofenilfenol); los Polifenoles (resorcina, gualacol); los Fenoles halogenados (hexaclorofeno,
            ortobenzilparaclorofenol); los Nitrofenoles (ácido pícrico); y los Fenoles ácidos (ácido salicílico).
            De acuerdo con su actividad, se comportan como bacteriostáticos y bactericidas según el pH y la
            concentración. Son activos frente a bacterias Gram positivas y Gram negativas, incluidas las
            Pseudomonas. Poseen actividad frente a los hongos. Son activos frente a virus con cubierta lipídica y,
            según la formulación y concentración, frente a virus sin cubierta lipídica. Su actividad es variable frente a
            micobacterias en función de su formulación.
            La materia orgánica reduce su actividad. Son absorbidos por materiales porosos. Deben protegerse de la
            luz.
            Los derivados sintéticos del fenol poseen una actividad germicida superior a la del fenol. Dos derivados
            fenólicos usados comúnmente como desinfectantes hospitalarios son el ortofenilfenol y el
            ortobenzilparaclorofenol. En altas concentraciones actúa sobre el protoplasma, penetrando y destruyendo
            la membrana celular y precipitando las proteínas. A bajas concentraciones de fenol, los derivados
            fenólicos de alto peso molecular causan la muerte de las bacterias por inactivación del sistema
            enzimático, esencial para el metabolismo de la membrana celular.




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            No se recomiendan para la limpieza de las incubadoras o cunas, porque se ha observado la aparición de
            hiperbilirrubinemia en recién nacidos.
            Debido a que son absorbidos por materiales porosos, sus residuos pueden provocar irritación en los
            tejidos, aun cuando sean enjuagados.
            Las salpicaduras deben tratarse mediante el lavado con agua durante 10 minutos y pueden ser irritantes,
            incluso después del enjuague.
            No se recomiendan para la desinfección de elementos semicríticos ni críticos.
            Los derivados fenólicos NO debe usarse como desinfectantes de alto nivel.

            Derivados clorados

            Pertenecen a esta categoría el dicloroisocianurato de sodio (NaDCC), el hipoclorito de sodio y el
            cloroxidante electrolítico en solución hipertónica de cloruro de sodio.
            Son bactericidas de elevada potencia. Activos frente a bacterias Gram positivas y Gram negativas, virus,
            esporas y bacilo de tuberculosis; su actividad frente a otras micobacterias es variable.
            La materia orgánica reduce su actividad. Las soluciones o pastillas son estables durante 3 años. Son muy
            irritantes para la piel y las mucosas.
            El agua corriente -de pH normalmente ácido- activa los clorados, generando una concentración importante
            de ácido hipocloroso y llevando la solución a un pH de 8, punto máximo de la actividad desinfectante de
            este clorado.
            La materia orgánica reduce la actividad de los clorados. No se deben aplicar sobre superficies metálicas.
            No deben prepararse soluciones con agua caliente, debido a que se forma trihalometano (cancerígeno
            animal). Las soluciones concentradas de hipoclorito de sodio tienen un pH alcalino cercano a 12 que
            favorece su conservación, pero son inactivas como desinfectantes.
            No se debe almacenar diluido en sitios húmedos o envases sin protección de la luz. El hipoclorito de sodio
            comercial debe expenderse a una concentración de 60 g por dm 3 (60.000 ppm, es decir, 6%). Su uso en
            los hospitales debería ser cada vez más limitado, porque es corrosivo; se inactiva en presencia de materia
            orgánica y es relativamente inestable.
            El dicloroisocianurato de sodio (NaDCC) tiene como ventaja la fácil y correcta dilución (seguir las
            instrucciones del fabricante) y la estabilidad del producto, ya que se prepara en el momento de ser usado.
            Se presenta en pastillas de 2.5 g y 5 g.
            El cloroxidante electrolítico en solución hipertónica de cloruro de sodio es un desinfectante a base de
            cloro, obtenido por vía electrolítica utilizando una solución salina de agua y cloruro de sodio. Su
            característica principal es una alta concentración de cloro libre (1,1%) y de cloruro de sodio (18%), lo que
            brinda estabilidad al producto. Actúa por alteración de algunas enzimas del metabolismo energético
            microbiano.

            Recomendaciones para la dilución de Hipoclorito de Na:


                §    500 ppm (partes por millón) de cloro disponible es igual a 0.05%
                     (elimina bacterias gram positivas, gram negativas, virus y hongos)
                §    Se prepara colocando 10cc de cloro por litro e agua
                §    1000 ppm (partes por millón) de cloro disponible es igual a 0.10%
                     (elimina bacterias gram positivas, gram negativas, virus, hongos y
                     mycobacterias)
                §    Se prepara colocando se prepara colocando 10 cc de cloro en 500
                     cc de agua


            Los derivados clorados NO deben usarse como desinfectantes de alto nivel.

            Persulfato de potasio (PP):
            Está dentro del grupo de los compuestos peroxigenados. Se lo puede encontrar en la bibliografía con
            sinónimos como persulfato potásico, peroxidisulfato de dipotasio, peroxidisulfato de potasio, sal dipotásica
            de ácido peroxidisulfúrico. El agente activo es el monopersulfato de potasio. En los productos
            comercializados se suman otros agentes auxiliares diseñados para potenciar la eficacia desinfectante y
            anticorrosiva.
            La mayoría de los productos comerciales, contienen un tensioactivo que brinda al producto características
            de limpiador, permitiendo que el desinfectante actúe.
            Actúa por oxidación de las diferentes estructuras bacterianas lo cual finalmente conlleva a la muerte
            celular.
            Es un desinfectante de amplio espectro que de acuerdo a la clasificación del CDC es un desinfectante de
            hospital (de nivel intermedio) Activo frente a bacterias, hongos y algunos virus. Es menos corrosivo para




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            metales que los clorados, de todas formas se debe enjuagar con abundante agua, si se lo utiliza sobre los
            mismos. Es incompatible con el hipoclorito de sodio y no debe aplicarse sobre alfombras o telas.
            Durante el almacenamiento debe evitarse la humedad, el calor, y la luz directa.
            Las formulaciones de Monopersulfato de Potasio poseen ingredientes activos que disminuyen o anulan
            los efectos corrosivos y la inactivación frente a la materia orgánica.
            Debe evitarse el contacto con la piel y los ojos.
            Se deben seguir las instrucciones del fabricante para su dilución y uso y se debe seleccionar
            formulaciones fáciles de preparar.
            El PP NO debe usarse como desinfectantes de alto nivel.

            6. RESUMEN DE LAS RECOMENDACIONES

                §   Todo el material que se utilizará con el paciente deberá recibir un proceso de desinfección o
                    esterilización.
                §   Antes del mismo, deberá limpiarse exhaustivamente por inmersión y con productos adecuados.
                §   Los elementos críticos deben esterilizarse sin excepción.
                §   Los endoscopios, los fórceps de biopsia y otros elementos cortantes que atraviesan mucosas
                    deben ser esterilizados. Si no es posible hacerlo, necesitarán un proceso de DAN.
                §   Los laparoscopios, artroscopios y otros objetos que atraviesan cavidades estériles se deben
                    esterilizar entre cada uso. Si no es posible, recibirán DAN y enjuague con agua estéril.
                §   Los instrumentos dentales que penetren en tejidos o huesos son clasificados como críticos y
                    deben esterilizarse.
                §   La selección del agente desinfectante debe ser cuidadosa y no debe dejar dudas sobre el
                    espectro microbiano.
                §   La implementación del agente desinfectante y las condiciones de uso estarán a cargo del
                    profesional especializado en control de infecciones (enfermera en control de infecciones u otra
                    persona idónea).
                §   No se debe suponer, imaginar o creer que un desinfectante es útil para cualquier uso.




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                  endoscopes”, en J. Hosp. Infec. 26: 15-26. 1994.
              23. Babb. J. R. & Bradley, C. “Endoscope Decontamination. Where Do We Go From Here?”, en J. Hosp.
                  Infec. 30: 543-551. 1995.
              24. European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) “Guidelines for the use of accessories in
                  digestive endoscopy. Endoscopy”, 534. 1996.
              25. Rutala, W, Selection and Use of Disinfectants, Mayhall, Glen M. D. Williams and Wilkins 913. 1996.
              26. Roy, M. C Prevention and Control of Nosocomial Infections: In: Wenzel, R. P. Third edition, The
                  Operating Theater: a Special Environmental Area, 515 Williams and Wilkins 1997.
              27. Centers for disease Control and Prevention. Rutala, Williams, Weber, David and the HIPAC.
                  “Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities”. 2002.
              28. ASHCSP/ASHES “Guidance Document for CJV. Leaders in the central Services, Sterile Processing
                  Profession. The Care and handling of surgical Instruments an Environmental Recommendation”.
                  Junio 2001.
              29. Maimone, S. “Desinfectantes de uso hospitalario”, en www.codeinep.com.ar. 2004.




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Desinfectantes de uso_hospitalario

  • 1. Página 1 de 14 Desinfectantes de uso hospitalario 1. INTRODUCCIÓN La necesidad de seleccionar desinfectantes adecuados para destinarlos a procesos de desinfección en el equipo biomédico y en el medioambiente hospitalario ha sido destacada durante varias décadas en múltiples artículos científicos. Asimismo, se han publicado docenas de notas que documentan infecciones en los pacientes, después de aplicar inadecuados procesos de desinfección en los elementos utilizados para su cuidado y tratamiento. Si consideramos que un número creciente de formulaciones de esterilizantes químicos y desinfectantes están disponibles en el comercio y que han proliferado distintas técnicas de uso, debemos concluir que cada institución debe aplicar una clara política de reprocesamiento de elementos biomédicos y que los profesionales de la salud tienen que conocer los principios de la desinfección, a fin de seleccionar los desinfectantes adecuados y utilizarlos en los elementos apropiados, de la forma correcta. Para una cabal comprensión del tema, es conveniente aclarar algunos conceptos, como los que se definen a continuación. 2. ESTERILIZACIÓN, DESINFECCIÓN Y OTROS CONCEPTOS RELACIONADOS Esterilización Es la completa destrucción o eliminación de toda forma de vida microbiana. El término "esterilización" es entendido como absoluto, no relativo a ciertos microorganismos o determinado material. Los procesos utilizados en el hospital son físicos, químicos o una combinación de ambos: por ejemplo, calor seco, óxido de etileno y plasma de peróxido. Los agentes químicos usados para la eliminación de toda forma de vida microbiana (hongos y esporas bacterianas) son los llamados esterilizantes químicos. Son los mismos que se utilizan como parte de los procesos de desinfección de alto nivel, pero durante mayores períodos de tiempo. Desinfección La "desinfección" se diferencia de la esterilización por la falta de actividad esporicida; pero esta definición resulta una excesiva simplificación, ya que algunos desinfectantes pueden destruir esporas luego de tiempos prolongados de exposición (6-10 horas) y son llamados esterilizantes químicos. En concentraciones similares pero en menores tiempos de exposición (menor o igual a 30 minutos), estos mismos desinfectantes pueden eliminar todos los microorganismos, con excepción de un elevado número de esporas bacterianas. Se denominan desinfectantes de alto nivel (DAN). Otros desinfectantes -de bajo nivel- pueden eliminar la mayoría de las bacterias vegetativas, algunos hongos y virus, en menor tiempo (menor o igual a 10 minutos). Por último, los desinfectantes de nivel intermedio en altas concentraciones pueden eliminar el bacilo de la tuberculosis, las bacterias vegetativas, la mayoría de los hongos y virus, pero no necesariamente las esporas bacterianas. En la elección de los desinfectantes se deben considerar las características del producto ideal (ver Tabla 1), de modo de tratar de sumar la mayor cantidad de atributos para acercarse a ese modelo deseado. Tabla 1: Propiedades de un desinfectante ideal PROPIEDAD CARACTERÍSTICAS AMPLIO ESPECTRO Debe tener un amplio espectro antimicrobiano. RÁPIDA ACCIÓN Debe producir una rápida muerte. NO SER AFECTADO POR FACTORES DEL Debe ser activo en presencia de materia orgánica MEDIOAMBIENTE (sangre, esputo, heces) y compatible con detergentes, jabones y otros agentes químicos en uso. NO TÓXICO No debe ser irritante para el usuario ni para el paciente. COMPATIBLE CON LAS SUPERFICIES No debe corroer metales ni deteriorar plásticos, gomas, etc. SIN OLOR Debe tener un olor suave o ser inodoro. ECONÓMICO El costo se debe evaluar en relación con la dilución, el rendimiento y la seguridad. ESTABLE En su concentración y dilución en uso. LIMPIEZA Debe tener buenas propiedades de limpieza. FÁCIL DE USAR La complejidad en la preparación, concentraciones, diluciones y tiempo de exposición del producto pueden crear confusión en el usuario. EFECTO RESIDUAL NO TÓXICO SOBRE LAS Muchos desinfectantes tienen acción residual sobre las SUPERFICIES superficies, pero el contacto de las mismas con humanos puede provocar irritación de piel, mucosas u otros efectos no deseables. SOLUBLE EN AGUA Para lograr un descarte del producto no tóxico o nocivo para el medioambiente. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 2. Página 2 de 14 Modificado de Rutala, W. “Selection and Use of Disinfectants in Health Care”, en Mayhall Hospital Epidemiology and Infection Control. Maryland: G. Baltimore. 1996. Suciedad Se denomina de este modo a la materia orgánica y/o inorgánica potencialmente portadora de microorganismos, que llega a las superficies por medio de la contaminación directa por el uso diario, por contaminación indirecta por contacto con el aire y el polvo ambientales, por abandono temporal de los espacios, por contaminación por fluidos de humanos o animales y por contaminación directa de microorganismos de la actividad de artrópodos o roedores. Limpieza La limpieza es definida como la remoción física de materia orgánica y suciedad desde los objetos.(1) Este proceso generalmente se realiza utilizando agua con o sin detergentes. Habitualmente la limpieza intenta remover microorganismos antes que matarlos. Área Limpia Se conoce con este nombre a las superficies o lugares donde se trabaja con elementos limpios o estériles. Área sucia Comprende las superficies o lugares donde se eliminan fluidos corporales. Sirve de depósito y lugar para lavar y descontaminar elementos utilizados con los pacientes. Desinfectante Es una solución que destruye o inactiva microorganismos, pero no necesariamente los esporos. Los desinfectantes son categorizados por la Agencia de Protección del Medioambiente (Environmental Protection Agency -EPA- de los EEUU) de la siguiente manera: Desinfectante limitado: efectivo contra algunas bacterias Gram positivas (Staphylococcus aureus) o Gram negativas (Salmonella C). Desinfectante general o de amplio espectro: efectivo contra algunas bacterias Gram positivas y Gram negativas. Desinfectante de Hospital: efectivo contra bacterias Gram positivas y Gram negativas, incluyendo la Pseudomonas aeruginosa. Algunos amonios cuaternarios y fenoles entran en esta clasificación. Detergente desinfectante: este producto usa una combinación de detergente y desinfectante químico. No todos los detergentes y desinfectantes son compatibles. Varias presentaciones comerciales están disponibles actualmente: detergentes alcalinos formulados con compuestos que liberan cloro, detergentes alcalinos formulados con amonios cuaternarios o surfactantes no iónicos, y detergentes ácidos formulados con iodoforos. Sanitizante: es un compuesto que reduce pero no necesariamente elimina los microorganismos desde el medioambiente inanimado. Se utiliza generalmente en contacto con los alimentos. Los desinfectantes se clasifican además por su nivel de actividad a los microorganismos. Se denominan desinfectantes de alto nivel (DAN) a aquellos que inactivan bacterias vegetativas, hongos, virus, mycobacterias y en tiempos mas prolongados esporas. Se denominan desinfectantes de nivel intermedio (DNI) a aquellos que inactivan bacterias vegetativas, hongos, virus y en tiempos y concentraciones elevadas mycobacterias. Por último los desinfectantes de bajo nivel (DBN) son los que eliminan bacterias vegetativas, algunos virus y algunos hongos. 3. PROBLEMAS ASOCIADOS CON LOS PROCESOS DE DESINFECCIÓN En el año 1961, Earle H. Spaulding ideó una clasificación para la desinfección y la esterilización de los elementos y equipos usados con el paciente. Esto resultó tan lógico, que se utilizó en todo el mundo como modelo para entender ambos procesos. La teoría de Spaulding se fundamenta en dividir los elementos de cuidado del paciente en tres categorías, basadas en el riesgo de infección que representan. Las tres categorías son: Crítica: Llamada así porque existe alto riesgo de infección, si el elemento se contamina con algún microorganismo, incluyendo las esporas. Los objetos de esta categoría son los que entran en contacto PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 3. Página 3 de 14 con el torrente sanguíneo o con las cavidades estériles. La mayoría de estos elementos debe esterilizarse. Semicrítica: Comprende los objetos que entran en contacto con las mucosas o con la piel no intacta y deben estar libres de todos los microorganismos, excepto de un alto número de esporas bacterianas. Las membranas mucosas intactas son resistentes a la infección por esporas bacterianas, pero susceptibles frente a otros microorganismos, como el bacilo de la tuberculosis y los virus. Los equipos de terapia respiratoria y de anestesia, los endoscopios y el aro del diafragma, entre otros, entran en esta categoría. Los elementos semicríticos deben recibir, por lo menos, una desinfección de alto nivel con esterilizantes químicos entre cada uso. No crítica: Los elementos de esta categoría entran en contacto con la piel sana, pero no con las membranas mucosas. La piel intacta es una barrera efectiva para la mayoría de los microorganismos. En contraste con los elementos críticos y semicríticos, gran parte de los no críticos que pueden volver a usarse deben limpiarse con desinfectantes de bajo nivel o de nivel intermedio. Pueden contribuir a la transmisión secundaria de infecciones, contaminando las manos del personal de salud y el equipo médico. No obstante, hoy se considera un riesgo a tener en cuenta la transmisión de agentes infecciosos entre pacientes por la vía no crítica. Un serio problema asociado con los procesos de desinfección es su excesiva simplificación y la dificultad para encasillar los elementos biomédicos en las categorías correspondientes, fundamentalmente porque cuando Spaulding ideó esta clasificación no había cirugías laparoscópicas o artroscópicas, endoscopía para diagnóstico o tratamiento, aislamiento del Clostridium difficile, Creutzfeld-Jacob, HIV, tuberculosis resistente, ni una gran cantidad de desinfectantes cuyo espectro es dudoso o sólo estudiado in vitro. Por ejemplo, los laparoscopios y artroscopios que entran en cavidades estériles idealmente deberían ser esterilizados. Sin embargo, en nuestro país y en otras partes -como en Estados Unidos y algunos países de Europa(1, 20)-, comúnmente reciben sólo DAN, ya que no hay evidencias claras que demuestren que estas prácticas incrementan el riesgo de infección. Por otra parte, si bien los endoscopios son, por clasificación, elementos semicríticos, cuando se utilizan para tratamientos o biopsias, se vuelven críticos, y por su estructura compleja resultan difíciles de limpiar y desinfectar. Además, si un artroscopio que es un elemento crítico se puede someter a procesos de desinfección de alto nivel, cabe preguntarse por qué no se debería hacer lo mismo con ciertos elementos quirúrgicos. También existen otros problemas asociados con la desinfección propiamente dicha, como ser el tiempo óptimo de contacto con el desinfectante, que para varios elementos aún no se conoce. Por estas razones, las estrategias de desinfección a implementar con varios objetos biomédicos son sumamente variables y discutidas. Será necesario hacer más estudios, a los efectos de determinar si la simplificación de los procesos es eficaz en la práctica clínica. 4. RECOMENDACIONES PARA EL USO DE PROCESOS DE DESINFECCIÓN Endoscopios Algunos informes examinados relacionados con endoscopios(1, 9, 7) muestran que 281 infecciones fueron transmitidas por endoscopía gastrointestinal y 96 por broncoscopías. El espectro clínico de estas infecciones comprende desde la colonización asintomática hasta la muerte. Las especies de Salmonella y Pseudomonas aeruginosa fueron repetidamente identificadas como la causa más común de infecciones transmitidas por endoscopía gastrointestinal; y el M. tuberculosis, las micobacterias atípicas y la Pseudomonas aeruginosa(16, 17, 18) por broncoscopios. Las causas más frecuentes de transmisión fueron la inadecuada limpieza, la inapropiada selección de agentes desinfectantes o las fallas en las recomendaciones en los procesos de limpieza y desinfección. Una investigación en varios estados de Estados Unidos(12) encontró que el 23,9% de los cultivos bacterianos de los canales internos de 71 endoscopios gastrointestinales dejaron 100.000 colonias de bacterias o más, después de haber completado todo el proceso de desinfección o esterilización y antes del próximo uso con el paciente. Las máquinas automáticas de reprocesamiento han estado vinculadas con epidemias de infección o colonización, en relación con accesorios del endoscopio, como así también con las válvulas de succión o los fórceps de biopsia.(9) A partir de estos sucesos, se recomienda que si tales elementos no pueden limpiarse totalmente de materia extraña, deberían ser esterilizados, preferentemente con vapor. Si los accesorios del endoscopio son descartables, no se deberían volver a utilizar, pues la limpieza es dificultosa y el proceso de desinfección o esterilización puede fracasar. Existe una evidente necesidad de rediseñar los endoscopios y revisar las políticas de desinfección, pues ellos son una potencial ruta de transmisión de agentes infecciosos. Se hicieron algunos esfuerzos para introducir en el mercado un endoscopio reutilizable, con canales de aire, agua y succión descartables. No obstante, se debe evaluar la relación costo-beneficio de esta medida, al igual que la seguridad y la reducción del riesgo de infección de este sistema. Las recomendaciones para la limpieza y desinfección de los endoscopios se resumen en la Tabla 2. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 4. Página 4 de 14 Tabla 2: Proceso de desinfección de endoscopios QUÉ HACER CÓMO HACER Inmediatamente después del procedimiento, sumergiendo y repasando las superficies externas y los canales internos con cepillos, solución de agua y LIMPIAR enzimáticos. ENJUAGAR Con abundante agua, el exterior, y todos los canales con jeringas adecuadas. Posteriormente drenar el agua. DESINFECTAR Sumergir el endoscopio en un desinfectante de alto nivel, asegurándose de que penetre por los canales de aire, agua, succión y biopsia. Dejarlo por lo menos 20 minutos. ENJUAGAR El endoscopio y los canales con agua estéril. Si no es posible, se usará agua de la canilla, y luego se enjuagará con alcohol . SECAR Después de la desinfección y antes del almacenamiento, tratar los canales internos con aire forzado, y el exterior, con una compresa limpia. ALMACENAR El endoscopio debe ser almacenado en un lugar que prevenga una nueva contaminación. * Si el endoscopio no se puede esterilizar, el proceso DAN se debe realizar inmediatamente antes de su uso con el (9) paciente. * Elementos de uso simple: El fabricante provee estos elementos, también llamados descartables, estériles. La apertura del paquete estéril implica su empleo inmediato. Una vez que se utilizó, se debe descartar y no debe volver a usarse bajo ninguna circunstancia. * El proceso para la limpieza y desinfección de artroscopios y laparoscopios es el mismo que para endoscopios, con la salvedad de que el enjuague debe realizarse con agua estéril sin excepción. El área y el momento para efectuar este procedimiento es el quirófano, antes del acto quirúrgico. El secado debe llevarse a cabo con compresas estériles. Laparoscopios y artroscopias Si bien la desinfección de alto nivel parece ser un estándar mínimo para el procesamiento de laparoscopios y artroscopios entre pacientes, existen continuos debates con respecto a esta práctica. Los que proponen la desinfección de alto nivel se refieren a estudios hechos a fines de la década del 70 y comienzos de la del 80, que involucran más de 117.000 y 10.000 procedimientos laparoscópicos y ginecológicos, respectivamente, con un bajo riesgo de infección (menor a 0,3 %). En el primer estudio se encontró una sola infección, relacionada con un germen esporulado; por otra parte, estudios realizados por Corson y sus colaboradores demostraron el desarrollo de gérmenes comunes de la piel (S. epidermidis, difteroides) desde el área umbilical, después de la preparación de la misma con iodopovidona. Por su parte, quienes proponen la esterilización argumentan la posibilidad de transmitir una infección por organismos formadores de esporas. Los investigadores han planteado varias razones por las cuales la esterilización no sería necesaria para todos los equipos laparoscópicos. Incluyen las siguientes: § Número limitado de organismos (menor que 10), introducidos en la cavidad peritoneal. § Daño mínimo de la estructura de la luz abdominal con poco tejido desvitalizado. § Tolerancia de la cavidad peritoneal a pequeños números de bacterias formadoras de esporas. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 5. Página 5 de 14 § Simplicidad de limpieza y desinfección del equipo. § Falta de evidencia epidemiológica de que la desinfección de alto nivel incremente el riesgo de infección. Los artroscopios deben ser esterilizados antes del uso, pues también ingresan en una cavidad estéril del cuerpo. Sin embargo, en varios países -incluyendo el nuestro- sólo reciben desinfección de alto nivel (DAN). En un estudio retrospectivo de 12.505 procedimientos artroscópicos, realizado en la década del 80, se encontró una tasa de infección del 0,04% (cinco infecciones), cuando el artroscopio era sumergido en glutaraldehído alcalino al 2% durante 20 minutos. Cabe destacar que cuatro de estas infecciones eran por gérmenes de piel (S. aureus) y una por Estreptococo. Como estos organismos son muy sensibles al glutaraldehído, probablemente fueran del paciente. En resumen, existen pocos datos publicados en relación con estos objetos y no hay evidencia cierta de que la DAN aumente el riesgo de infección. El tema seguirá siendo controvertido hasta que se realicen estudios bien diseñados y randomizados al respecto. En la DAN se debe utilizar agua estéril para el enjuague y secar con un procedimiento que no recontamine el equipo (por ejemplo, compresas estériles, aire filtrado caliente). Tonómetros, aros de diafragma e instrumentos de criocirugía Las estrategias de desinfección para estos elementos son muy variadas y pocas investigaciones demostraron su efectividad. Si bien éstos son elementos semicríticos, muchos estudios se realizaron utilizando como desinfectantes los alcoholes o clorados que son de nivel intermedio. Los microorganismos que nos interesa inactivar son fundamentalmente los virus de la hepatitis, el HIV, el adenovirus y el herpes. Sin embargo, estos desinfectantes no fueron testeados para alguno de estos virus. Después de una exhaustiva limpieza con detergentes enzimáticos, enjuague y secado, en la actualidad se utiliza la desinfección con isopropil o etil alcohol al 70% por 15 minutos. La eficacia de esta práctica no está comprobada. En ginecología, se utiliza un condón para cubrir el explorador vaginal en estudios de scanning sonográficos. No obstante, este adminículo puede fallar y, por lo tanto, se exige la DAN entre pacientes. En criocirugías, también se debe utilizar DAN. Instrumentos dentales Los artículos científicos y la abundante publicidad asociada a la potencial transmisión de agentes infecciosos en la práctica odontológica focalizaron la atención de los profesionales de esta disciplina sobre los instrumentos dentales como posibles agentes de transmisión de enfermedades. La ADA (American Dental Association) recuerda que todo elemento quirúrgico o que normalmente penetre en algún tejido blando o hueso (fórceps, escalpelos, elementos de aspiración quirúrgica, tallador de huesos, etc.) está clasificado como crítico y recomienda que sea esterilizado o descartado entre usos. Los instrumentos que no penetran en los tejidos o el hueso (condensador de amalgama, jeringa de aire/agua, etc.), pero que están en contacto con la cavidad oral, son considerados semicríticos y también deben ser esterilizados entre cada uso. Las piezas de mano que no toleran altas temperaturas deben ser reemplazadas por otras que se puedan exponer al calor. Los procesos de desinfección no deben utilizarse en elementos dentales críticos ni semicríticos. Los procesos de esterilización recomendados son los siguientes: -Vapor bajo presión (autoclave). -Calor seco (estufa). -Vapor químico: § El óxido de etileno (ETO) es un eficaz método de esterilización, si el instrumento que va a ser esterilizado está limpio y seco. § Plasma de peróxido de hidrógeno. No se debe considerar que las ampollas utilizadas en un recipiente hermético fueron esterilizadas por ETO. Las cubiertas de las superficies operatorias (sillones de tratamiento, luz, etc.) tienen que ser lavadas con un detergente desinfectante luego de la atención de cada paciente. Si no son resistentes a los líquidos, deben cubrirse con un protector impermeable o descartable. Desinfección de elementos contaminados con HBV, HIV o Mycobacterium tuberculosis Los elementos biomédicos semicríticos contaminados con sangre de pacientes HBV o HIV, o bien con secreciones respiratorias de pacientes con tuberculosis, pueden recibir desinfecciones de alto nivel, porque estudios experimentales han demostrado la inactivación de estos gérmenes con desinfectantes de este tipo. Es preciso recordar que muchos pacientes son portadores asintomáticos de estos gérmenes y no es posible separar los elementos biomédicos para darles otro tratamiento. Por eso, es tan importante respetar siempre los pasos de los procesos de desinfección. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 6. Página 6 de 14 Inactivación del Clostridium difficile Los endoscopios, tales como los colonoscopios, pueden servir como vehículos de transmisión. Hay datos que demuestran que el glutaraldehído al 2% mata las esporas del Clostridium difficile en tiempos de exposición mayores a 20 minutos. Una vez más se destaca que se puede poner al paciente en riesgo, si no se cumplen todos los pasos del proceso de desinfección. Inactivación del agente de la enfermedad de Creutzfeldt-Jakob (ECJ) El virus de ECJ requiere recomendaciones especiales. Se ha transmitido iatrogénicamente por medio de electrodos cerebrales que fueron desinfectados con alcohol y formaldehído, después de haber sido usados con pacientes con diagnóstico de ECJ. También se observó el contagio en receptores de córneas y hormonas humanas. La necesidad de recomendaciones especiales está basada en la alta resistencia del virus, cuando está protegido por tejidos o piel. Cuando se sospecha enfermedad por priones, es de suma importancia utilizar elementos descartables, siempre que sea posible. Los elementos de bajo riesgo de contaminación o riesgo intermedio, que son los que no se usaron en el tejido cerebral, pueden recibir los procesos de desinfección y/o esterilización que se practican habitualmente. Aquéllos de alto riesgo de contaminación, como los elementos quirúrgicos usados en una neurocirugía, se deben tratar como sigue a continuación. Si el elemento es termolábil, deberá descartarse, ya que los procesos dañarán las estructuras básicas de los mismos. El medioambiente se limpiará de acuerdo con las normas básicas de limpieza y desinfección de superficies. La esterilización por vapor a 132º C durante una hora es el método preferido para tratar el material contaminado, después del lavado. Los desinfectantes como el hidróxido de sodio, después de una hora a temperatura ambiente, matan al virus, pero son cáusticos. Los elementos no vinculados con el paciente, como pisos o mesas de autopsias, no requieren recomendaciones especiales, ya que no se consideran agentes de potencial transmisión. Para la inactivación del virus en la muestra de tejido de pacientes, se requiere el ácido de formalina-fórmica. Inactivación de agentes patógenos de la sangre en equipos y medioambiente Con el surgimiento del HIV, se comenzó a tomar conciencia de todos los microorganismos patógenos que se transmiten por la sangre. Sin embargo, las recomendaciones nacionales e internacionales relacionadas con la eliminación de estos gérmenes en las superficies del medioambiente no parecen ser de mayor utilidad. En general, se reglamenta “eliminar o minimizar el riesgo de exposición ocupacional a microbios patógenos que se transmiten por la sangre, descontaminando con un desinfectante apropiado”. Los estudios realizados con desinfectantes señalan que se requiere un tiempo de inmersión de 10 minutos. Los equipos, pisos, camas, por ejemplo, no se pueden sumergir. Y, por otra parte, la mayoría de los desinfectantes se inactiva en presencia de materia orgánica. Si se aumentan las concentraciones de algunos de ellos, pueden resultar cáusticos o tóxicos. La OSHA (Estados Unidos) sugiere utilizar un agente tuberculicida para inactivar los virus de las salpicaduras de sangre en el medioambiente. Sin embargo, un amonio cuaternario elimina el virus de la hepatitis B, así como otros agentes (fenólicos, clorados). En todos los casos sería necesario limpiar previamente. Este tema ha causado confusiones por al menos tres razones: § Hay productos no tuberculicidas que eliminan microorganismos patógenos de la sangre (por ejemplo, amonios cuaternarios). § Las superficies no críticas raramente están involucradas con la transmisión de estos patógenos. § Los tiempos de exposición sugeridos por el fabricante no se pueden alcanzar en estos elementos (inmersión de 10 minutos). § Alternativamente, sería adecuado utilizar productos de limpieza a base de amonios cuaternarios, fenoles o clorados para realizar la limpieza de los equipos y el medioambiente, quitando la sangre y la suciedad visible previamente. Con esta práctica también se eliminan los virus, se realiza un solo paso -limpieza- y se reducen el tiempo, la corrosión y la toxicidad. También se pueden retirar previamente la sangre y la suciedad y utilizar alcohol al 70% para la desinfección posterior. La elección adecuada dependerá del tipo de elemento y los factores de corrosión o posibilidades de sumersión del mismo. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 7. Página 7 de 14 TIPOS DE DESINFECTANTES: MODO DE ACCIÓN Y USO Un gran número de desinfectantes se utilizan en el cuidado de la salud. Incluyen: § Alcohol. § Glutaraldehído. § Orto-ftalaldehído. § Peróxido de hidrógeno. § Persulfato de postasio § Ácido peracético. § Amonios cuaternarios. § Fenólicos. § Compuestos de cloro. § Formaldehído. § Iodóforos. Estos desinfectantes no son intercambiables; cada uno tiene un espectro de uso, ventajas y desventajas. La selección apropiada se debe realizar teniendo en cuenta la seguridad y la eficiencia. Las concentraciones adecuadas, el tiempo de exposición recomendado según los estudios científicos del fabricante, el espectro microbiano, la aprobación de su uso efectuada por organismos oficiales y el adiestramiento del usuario, son algunas de las características que hay que evaluar antes de elegir un desinfectante. Alcohol En el cuidado de la salud, se reconoce como alcohol especialmente a dos compuestos químicos solubles en agua: el alcohol etílico y el alcohol isopropílico. Estos alcoholes son rápidamente bactericidas para toda forma vegetativa de bacterias. También son tuberculicidas, fungicidas y virucidas. No destruyen esporas bacterianas. Su actividad depende de la concentración; el rango comprendido entre el 60% y el 90% de solución en agua (volumen/volumen) es el indicado para la acción bactericida. Modo de acción Actúan por desnaturalización de las proteínas. El alcohol etílico absoluto es un agente deshidratante y menos bactericida que la mezcla de alcohol y agua, porque las proteínas se desnaturalizan más rápidamente en presencia de agua. Esta observación también se estudió con la dehydrogenasa de la Escherichia coli, también incrementa la fase de latencia del Enterobacter aerogenes y esta podría ser revertida por la adición de ciertos aminoácidos. Más tarde varios autores concluyeron que la acción bacteriostática estaba relacionada a la inhibición de la producción de metabolitos escenciales Actividad microbicida El alcohol metílico (metanol) tiene la acción bactericida más amplia de los alcoholes y raramente es usado en el cuidado de la salud. La acción bactericida de varias concentraciones de alcohol etílico (etanol) fue examinada contra una variedad de microorganismos en períodos de exposición entre 10 segundos y 1 hora. Por ejemplo al Pseudomonas aeruginosa muere en 10 segundos de exposición con alcohol a 30% (v/v), mientras la Serratia marsecens, la E. coli y la Salmonella tiphosa mueren en 10 segundos en concentraciones de etanol entre 40% y 100% (v/v) El Staphylococcus aureus y el Streptococcus pyogenes resultaron altamente resistentes, y se necesitaron concentraciones de alcohol entre 60% y 90% (v/v) en 10 segundos para obtener la muerte bacteriana. Sin embargo solo en concentraciones de 60% al 80%, es virucida potente para virus lipofílicos (ej, herpes, vaccinia, influenza) y algunos hidrofílicos (adeno, entero, rhino y rotavirus, pero no para el virus de la Hepatitis A, y si para el virus de la Hepatitis B) El alcohol isopropílico (isopropanol) es más bactericida que el alcohol etílico para la E. coli y el S. aureus, no es activo para los virus no lipídicos y tiene actividad para los virus lipiditos Los alcoholes son mycobactericidas en 15 segundos a concentraciones del 95% Usos Los alcoholes no están recomendados para la esterilización de instrumentos por su falta de acción esporicida y la inhabilidad de penetrar en mteriales ricos en proteínas. Se han documentado muertes fatales por infección de herida por Clostridium cuando se para la esterilización de instrumental quirúrgico. Se usan, en cambio, para la desinfección de elementos no críticos, como aparatos, estetoscopios, termómetros, elementos de goma, y pequeñas superficies del medio ambiente. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 8. Página 8 de 14 Glutaraldehído El glutaraldehído es un dialdehído saturado, usado como desinfectante de alto nivel y esterilizante químico. Las soluciones acuosas son ácidas y generalmente en ese estado no son esporicidas. Por el uso de agentes alcalinizantes (pH 7.5 a 8.5), la solución se hace esporicida. Una vez que la solución es activada tiene una vida media de 14 días. Esto se debe a que el glutaraldehído en pH alcalino se polimeriza, volcando moléculas de grupo aldehído a la solución, perdiendo actividad biocida. Los glutaraldehídos neutros, ligeramente ácidos y alcalinos poseen mayor actividad microbicida y anticorrosiva, cuando son comparados con los glutaraldehídos ácidos. Sin embargo, según recientes publicaciones no se encontró diferencia en la actividad microbicida de ambos. La actividad microbicida y los efectos de anticorrosión de los glutaraldehídos ácidos deben ser demostrados por estudios propios de (30) cada fabricante, ya que son fórmula dependientes. La gran ventaja de los glutaraldehídos neutros y ácidos radica en que sus formulaciones están listas para usar. No requieren, como los glutaraldehídos alcalinos ser mezclados con otros productos Modo de acción La actividad biocida de estos compuestos es una consecuencia de lal alkilación de sulfhydral, hydroxyl, carboxy y grupos amino, los cuales alteran el ácido ribonucleico (RNA), ácido deoxyribonucleico (DNA) y síntesis de proteína. Actividad microbicida No sólo está determinada por el pH o la concentración, sino también por la dilución en uso y por la carga orgánica. Estos productos son efectivos en un rango de 1.5% y 3%. Las concentraciones inferiores afectan su actividad biocida; por tal motivo los productos del mercado comercial deben venderse con un control que se debe realizar diariamente a los efectos de asegurar estos niveles. Su actividad microbicida alcanza las bacterias vegetativas, los hongos, los virus en 10 minutos, esporos de Bacillus y Clostridium en 3 horas y Mycobacteria de la tuberculosis entre 20 a 30 minutos. Las micobacterias atípicas y hongos han demostrado ser resistentes al glutaraldehído.(30) Algunas formulaciones de glutaraldehído ácido no son esporicidas. Tienen alta toxicidad en seres humanos y se utilizan en los procesos de desinfección de alto nivel de elementos biomédicos. El tiempo de exposición y la temperatura han sido validados. La dilución del glutaraldehído en máquinas lavadoras endoscópicas automáticas se estimó en 3 días. Esto ocurre porque los instrumentos pasan por un proceso de secado. Es por ello que se deben utilizar cintas testigos para testear la concentración efectiva. . Los envases de estas cintas tiene fecha de vencimiento deben ser controlados. La frecuencia del testeo debe estar basada en la frecuencia de uso del glutaraldehído. Se recomienda utilizar como mínimo un test cada 10 usos. La concentración debe ser considerada inaceptable cuando la dilución está entre 1.0 a 1.5% o menos, entonces el indicador no cambia de color. También debe ser usado este test cuando se utilizan formulaciones de glutaraldehído alcalino que se debe mezclar con un buffer, a los efectos de confirmar que se ha realizado una buena mezcla. Usos El glutaraldehído se utiliza como desinfectante de alto nivel para equipo médico como endoscopios, tubos de espirómetro, dializadores, transductores, equipos de terapia respiratoria y de anestesia. No es corrosivo para el metal y no daña lentes, plásticos o goma. No debe ser usado para la desinfección de superficies, porque es muy tóxico para las personas. Debe ser usado en ambientes que tengan 7 a 15 recambios de aire por hora, control específico del ambiente, el límite de glutaraldehído al cielo no debe exceder las 0.05 ppm. Y protección personal (guantes, barbijos y antiparras) Orto-ftalaldehído (OPA) El OPA es un esterilizante químico que recibió la aprobación de la FDA en octubre de 1999. Contiene 0.55% de 1,2-benzenedicarboxaldehído (OPA), con un pH de 7.5. Es activo para un amplio rango de bacterias, hongos, virus, micobacterias, incluyendo las atípicas y el bacillus subtilis. Tiene excelente estabilidad en un rango de pH entre 3 y 9. No es irritante para la piel ni las mucosas, no requiere activación ni monitoreo de exposición y tiene un aroma imperceptible. Modo de acción Interactúa con aminoácidos, proteínas y microorganismos PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 9. Página 9 de 14 Actividad microbicida Es efectivo contra las micobacterias en 6 minutos, incluyendo las que son resistentes para el glutaraldehído. Es efectivo para todas las bacterias y virus, incluyendo esporos de Bacillus subtilis Se lo utiliza como desinfectante de alto nivel para elementos biomédicos, en tiempos de exposición de entre 5 y 12 minutos. Usos Es usado como desinfectante de alto nivel. Tiene varias ventajas comparado con el glutaraldehído. Tiene excelente estabilidad en un amplio rango de pH (pH 3-9). No es irritante para los ojos o la mucosa nasal. no requiere monitoreo de exposición, tiene un aceptable olor y no requiere activación. El OPA tiene excelente compatibilidad con los materiales. Su principal desventaja es que, en presencia de proteínas, mancha la piel y el instrumental, aunque paulatinamente la mancha desaparece cuando el objeto o la piel se limpian y dejan de tener contacto con el producto. Debe usarse sobre elementos limpios y enjuagarse bien antes del contacto con la piel y las mucosas. Peróxido de hidrógeno El peróxido de hidrógeno estabilizado tiene una buena actividad microbicida, en concentraciones del 6% al 25%. Sin embargo, utiliza mucho tiempo para completar su actividad -entre 1 y 2 horas- a altas concentraciones. Actualmente se comercializa el producto listo para usar con 7.5% de peróxido de hidrógeno y 0.85% de ácido fosfórico para mantener un pH bajo. Tiene actividad micobactericida. Pero, posee una actividad sinergística para los esporulados, cuando se combina con el ácido peracético. Debe ser almacenado en envases oscuros. Se lo utiliza en la desinfección de alto nivel. Modo de acción Destruye radicales libres de hydroxil que pueden atacar las membranas lipídicas, DNA, y otros componentes escenciales de la célula. Las bacterias productoras de catalasa pueden proteger a las células de la acción del peróxido de hidrógeno y degradarlo en agua y oxigeno. Esta defensa de la bacteria es preocupante para la concentración usada en la desinfección. Actividad microbicida El peróxido de hidrógeno (PH) es activo contra un amplio rango de microorganismos incluyendo bacterias, hongos, virus y esporos. Los organismos productores de catalasa (S aureus, Serratia marcescens y Proteus mirabilis) requieren de 30 a 60 minutos de exposición con PH a una concentración de 0.6%, sin embargo los micororganismos menos productores de catalasa (E. coli, Streptococcus y Pseudomonas) requieren solo 15 minutos de exposición. Las concentraciones útiles de PH para la DAN están en un rango entre 6% y 25%. El producto actualmente se comercializa listo para usar en concentraciones que contienen 7.5% de PH y 0.85%de ácido fosfórico (que mantiene el pH bajo). Se mostró la muerte de micobacterias de la tuberculosis resistentes después de 10 minutos de exposición de PH a 7.5%. Se requieren 30 minutos para eliminar el 99.9% del virus de la polio y el de la Hepatitis A. Sin embargo usando un acelerador de la actividad se necesita sólo un minuto para eliminar el virus de la Hepatitis A. Un nuevo producto al 13.4% de concentración (no aprobado aún) ha demostrado ser esporicida, micobactericida, fungicida y virucida, Los datos de los fabricantes del PH demostraron que la solución esteriliza en 30 minutos y produce DAN en 5 minutos. Usos Está recomendado para la desinfección de superficies inanimadas al 3%. Las concentraciones entre el 3% y 6% se utilizan para lentes de contacto, respiradores y endoscopios. Es irritante de mucosas, produce daño corneal, y como otros esterilizantes químicos, la dilución debe ser controlada por medio de un testeo regular que permita comprobar su concentración mínima efectiva entre 6% y 7%. Ofrece cambios cosméticos sobre algunas superficies, como la decoloración del acabado metálico. Sin embargo no ha sido suficientemente evaluado para establecer la compatibilidad a los endoscopios y otros elementos semicríticos. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 10. Página 10 de 14 Ácido peracético (AP) El ácido peracético o peroxiacético se caracteriza por una acción muy rápida contra todos los microorganimos. Entre sus ventajas principales, se puede señalar que se descompone en ácido acético y agua oxigenada, no deja residuos tóxicos, permanece efectivo aún en presencia de materia orgánica y es esporicida a bajas temperaturas. Puede corroer algunos metales -zinc, bronce, plata, acero, cromo-, pero esto se corrige agregando a la formulación aditivos que modifiquen el pH. Se lo utiliza en máquinas automáticas, donde la concentración inicial es del 35%, y es diluido al 0.2% a una temperatura de 50 grados centígrados. Modo de acción Se conoce poco pero se piensa que su acción como la de otros agentes oxidantes, desnaturaliza las proteínas, altera la permeabilidad de la pared celular, y oxida metabolitos, enzimas y proteínas. Demostró alterar el metal de los endoscopios -opaca, empaña o mancha - y tiene una vida útil de 24 horas. Actividad microbiana El AP mata bacterias gram positivas, bacterias gram negativas y hongos, en 5 minutos a 100 ppm. En presencia de materia orgánica requiere 200-500 (0.02-0.05%) ppm. Los virus como el polio requiere altas concentraciones para ser eliminado. Entre 1500 y 2250 ppm en 15 minutos logra el objetivo. Los esporos mueren en 30 minutos a concentraciones del 1%. Usos Se utilizan en máquinas automáticas al 35% que es diluido por la misma máquina al 0.2% a una temperatura de 50ºC, y realizan esterilización química a instrumentos quirúrgicos y dentales (ej artroscopias, endoscopios) La estructura y funcionamiento de las máquinas están directamente relacionados Con el éxito de los procesos. Se han documentado infecciones por fallas en el mismo. En Inglaterra se comercializa un producto que contiene 0.35% de ácido peracético. Si bien el producto es ampliamente efectivo para un amplio rango de microorganismos, mancha los metales. Su vida media útil es de 24 horas. Las nuevas formulaciones de AP líquidas tienen inhibidores de la corrosión y son muy estables. Se debe controlar su efectividad con testigos que debe entregar el fabricante del producto. Peróxido de hidrógeno y ácido peracético Los dos esterilizantes químicos están disponibles y contienen ácido peracético y peróxido de hidrógeno, en formulaciones que dependen de la marca comercial (por ejemplo, 0.08% de ácido peracético y 1% de peróxido de hidrógeno; 0.23% de ácido peracético y 7.35% de peróxido de hidrógeno). Actividad microbicida Tienen actividad microbicida para un alto rango de bacterias, que incluyen las micobacterias atípicas. Inactiva todos los microorganismos excepto las esporas bacterianas en 20 minutos. El 0.08% de ácido peracético y 1% de peróxido de hidrógeno fue efectivo para inactivar las micobacterias atípicas resistentes al glutaraldehído. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 11. Página 11 de 14 Usos: Esta combinación se utiliza ampliamente en los centros de diálisis para la desinfección de hemodializadores. El 56% de los centros de diálisis en los EEUU, durante el año 1997, lo usaban para reprocesar las membranas. Algunas empresas de endoscopios no lo aprueban para sus productos, porque provocan daños cosméticos en los mismos. Amonios cuaternarios Los detergentes basados en amonios cuaternarios son limpiadores extremadamente efectivos en un solo paso de limpieza y desinfección. Están formulados con detergentes catiónicos y no iónicos y son compatibles con detergentes aniónicos; sin embargo, no se deben mezclar otros limpiadores con estos desinfectantes. Los cuaternarios tienen baja toxicidad y amplio nivel de desinfección contra bacterias, hongos y virus. Su mayor efectividad es en pH alcalino en un rango de entre 7 y 10. Estos desinfectantes no dejan manchas y no son corrosivos. Los cuaternarios por sí mismos no son efectivos contra el Mycobacterium tuberculosis; pero, las nuevas formulaciones con alcohol de preparaciones listas para usar permiten la actividad tuberculicida. Los amonios cuaternarios son los limpiadores de superficie más frecuentemente usados en los EEUU por las siguientes razones:(24) -Bajo nivel de corrosión de las superficies inanimadas. -Amplio espectro de actividad microbiana. -Disponibilidad para una gran variedad de usos. -Facilidad de empleo. Los cuaternarios poseen cinco generaciones de desarrollo: § Cloruro de Benzalconio (BZK): introducidos en el año 1935, fueron los primeros comercialmente disponibles. Aceptados por su amplio espectro microbiano y su fuerte actividad detersiva, tenían algunos inconvenientes: requerían un paso previo de limpieza y, además, los factores comunes del medioambiente como las aguas duras, los residuos aniónicos, los jabones y la suciedad con proteínas los encontraron débilmente efectivos. § Cuaternarios de segunda generación: introducidos en 1955, ofrecieron efectividad probada en aguas duras y aumentaron su actividad antimicrobiana. Estos desinfectantes fueron de mayor eficacia y mejor tolerados que el BZK. § Cuaternarios de tercera generación: desarrollados en el año 1965, llamados químicamente de cadenas gemelas, fueron elaborados con detergentes no iónicos, lograron mayor poder limpiador y se convirtieron en mejores desinfectantes. Superan cuatro veces a los anteriores por su acción con aguas duras, y de dos a tres veces, por su acción contra los residuos aniónicos. § Cuaternarios de cuarta generación: fueron introducidos en la década del 70 y son una combinación de un alkyl dimethyl benzyl ammonium chloride (ADBAC) y un cuaternario de cadenas gemelas. Estos cuaternarios resultaron ser menos tóxicos y costosos, y más convenientes, pero demostraron menor actividad germicida que el BZK en un 50%. § Cuaternarios de quinta generación: unen los de cuarta generación y los cuaternarios de segunda generación. Tienen muy buena acción germicida y son activos bajo las condiciones más hostiles del medioambiente. Además, son fáciles de usar. Los amonios cuaternarios NO debe usarse como desinfectantes de alto nivel. Derivados fenólicos Se encuentran en este grupo los Alquilfenoles (cresol, xilenol, timol); los Bifenoles (triclosan, ortofenilfenol); los Polifenoles (resorcina, gualacol); los Fenoles halogenados (hexaclorofeno, ortobenzilparaclorofenol); los Nitrofenoles (ácido pícrico); y los Fenoles ácidos (ácido salicílico). De acuerdo con su actividad, se comportan como bacteriostáticos y bactericidas según el pH y la concentración. Son activos frente a bacterias Gram positivas y Gram negativas, incluidas las Pseudomonas. Poseen actividad frente a los hongos. Son activos frente a virus con cubierta lipídica y, según la formulación y concentración, frente a virus sin cubierta lipídica. Su actividad es variable frente a micobacterias en función de su formulación. La materia orgánica reduce su actividad. Son absorbidos por materiales porosos. Deben protegerse de la luz. Los derivados sintéticos del fenol poseen una actividad germicida superior a la del fenol. Dos derivados fenólicos usados comúnmente como desinfectantes hospitalarios son el ortofenilfenol y el ortobenzilparaclorofenol. En altas concentraciones actúa sobre el protoplasma, penetrando y destruyendo la membrana celular y precipitando las proteínas. A bajas concentraciones de fenol, los derivados fenólicos de alto peso molecular causan la muerte de las bacterias por inactivación del sistema enzimático, esencial para el metabolismo de la membrana celular. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 12. Página 12 de 14 No se recomiendan para la limpieza de las incubadoras o cunas, porque se ha observado la aparición de hiperbilirrubinemia en recién nacidos. Debido a que son absorbidos por materiales porosos, sus residuos pueden provocar irritación en los tejidos, aun cuando sean enjuagados. Las salpicaduras deben tratarse mediante el lavado con agua durante 10 minutos y pueden ser irritantes, incluso después del enjuague. No se recomiendan para la desinfección de elementos semicríticos ni críticos. Los derivados fenólicos NO debe usarse como desinfectantes de alto nivel. Derivados clorados Pertenecen a esta categoría el dicloroisocianurato de sodio (NaDCC), el hipoclorito de sodio y el cloroxidante electrolítico en solución hipertónica de cloruro de sodio. Son bactericidas de elevada potencia. Activos frente a bacterias Gram positivas y Gram negativas, virus, esporas y bacilo de tuberculosis; su actividad frente a otras micobacterias es variable. La materia orgánica reduce su actividad. Las soluciones o pastillas son estables durante 3 años. Son muy irritantes para la piel y las mucosas. El agua corriente -de pH normalmente ácido- activa los clorados, generando una concentración importante de ácido hipocloroso y llevando la solución a un pH de 8, punto máximo de la actividad desinfectante de este clorado. La materia orgánica reduce la actividad de los clorados. No se deben aplicar sobre superficies metálicas. No deben prepararse soluciones con agua caliente, debido a que se forma trihalometano (cancerígeno animal). Las soluciones concentradas de hipoclorito de sodio tienen un pH alcalino cercano a 12 que favorece su conservación, pero son inactivas como desinfectantes. No se debe almacenar diluido en sitios húmedos o envases sin protección de la luz. El hipoclorito de sodio comercial debe expenderse a una concentración de 60 g por dm 3 (60.000 ppm, es decir, 6%). Su uso en los hospitales debería ser cada vez más limitado, porque es corrosivo; se inactiva en presencia de materia orgánica y es relativamente inestable. El dicloroisocianurato de sodio (NaDCC) tiene como ventaja la fácil y correcta dilución (seguir las instrucciones del fabricante) y la estabilidad del producto, ya que se prepara en el momento de ser usado. Se presenta en pastillas de 2.5 g y 5 g. El cloroxidante electrolítico en solución hipertónica de cloruro de sodio es un desinfectante a base de cloro, obtenido por vía electrolítica utilizando una solución salina de agua y cloruro de sodio. Su característica principal es una alta concentración de cloro libre (1,1%) y de cloruro de sodio (18%), lo que brinda estabilidad al producto. Actúa por alteración de algunas enzimas del metabolismo energético microbiano. Recomendaciones para la dilución de Hipoclorito de Na: § 500 ppm (partes por millón) de cloro disponible es igual a 0.05% (elimina bacterias gram positivas, gram negativas, virus y hongos) § Se prepara colocando 10cc de cloro por litro e agua § 1000 ppm (partes por millón) de cloro disponible es igual a 0.10% (elimina bacterias gram positivas, gram negativas, virus, hongos y mycobacterias) § Se prepara colocando se prepara colocando 10 cc de cloro en 500 cc de agua Los derivados clorados NO deben usarse como desinfectantes de alto nivel. Persulfato de potasio (PP): Está dentro del grupo de los compuestos peroxigenados. Se lo puede encontrar en la bibliografía con sinónimos como persulfato potásico, peroxidisulfato de dipotasio, peroxidisulfato de potasio, sal dipotásica de ácido peroxidisulfúrico. El agente activo es el monopersulfato de potasio. En los productos comercializados se suman otros agentes auxiliares diseñados para potenciar la eficacia desinfectante y anticorrosiva. La mayoría de los productos comerciales, contienen un tensioactivo que brinda al producto características de limpiador, permitiendo que el desinfectante actúe. Actúa por oxidación de las diferentes estructuras bacterianas lo cual finalmente conlleva a la muerte celular. Es un desinfectante de amplio espectro que de acuerdo a la clasificación del CDC es un desinfectante de hospital (de nivel intermedio) Activo frente a bacterias, hongos y algunos virus. Es menos corrosivo para PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 13. Página 13 de 14 metales que los clorados, de todas formas se debe enjuagar con abundante agua, si se lo utiliza sobre los mismos. Es incompatible con el hipoclorito de sodio y no debe aplicarse sobre alfombras o telas. Durante el almacenamiento debe evitarse la humedad, el calor, y la luz directa. Las formulaciones de Monopersulfato de Potasio poseen ingredientes activos que disminuyen o anulan los efectos corrosivos y la inactivación frente a la materia orgánica. Debe evitarse el contacto con la piel y los ojos. Se deben seguir las instrucciones del fabricante para su dilución y uso y se debe seleccionar formulaciones fáciles de preparar. El PP NO debe usarse como desinfectantes de alto nivel. 6. RESUMEN DE LAS RECOMENDACIONES § Todo el material que se utilizará con el paciente deberá recibir un proceso de desinfección o esterilización. § Antes del mismo, deberá limpiarse exhaustivamente por inmersión y con productos adecuados. § Los elementos críticos deben esterilizarse sin excepción. § Los endoscopios, los fórceps de biopsia y otros elementos cortantes que atraviesan mucosas deben ser esterilizados. Si no es posible hacerlo, necesitarán un proceso de DAN. § Los laparoscopios, artroscopios y otros objetos que atraviesan cavidades estériles se deben esterilizar entre cada uso. Si no es posible, recibirán DAN y enjuague con agua estéril. § Los instrumentos dentales que penetren en tejidos o huesos son clasificados como críticos y deben esterilizarse. § La selección del agente desinfectante debe ser cuidadosa y no debe dejar dudas sobre el espectro microbiano. § La implementación del agente desinfectante y las condiciones de uso estarán a cargo del profesional especializado en control de infecciones (enfermera en control de infecciones u otra persona idónea). § No se debe suponer, imaginar o creer que un desinfectante es útil para cualquier uso. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com
  • 14. Página 14 de 14 BIBLIOGRAFÍA 1. Rutala, W. “Selection and Use of Disinfectants in Health Care”, en Mayhal Hospital Epidemiology and Infection Control. Maryland: G. Baltimore. 1996. 2. Abrutyn, E. M. D. & Saunders, W. B. Saunders Infection Control Reference Service, Environmental Services: Maintenance and Housekeeping, Slater F., 725. 2000. 3. Rhame F.S The Inanimate Environment en: Bennett, J. & Brachman, P. Hospital Infections. Fourth edition Capitulo 20; 299-324: Lippincott-Raven: IV Edition: 1998. 4. Vesley, D. and Streifel, Environmental Services In: Mayhall, Glen M. D. Hospital Epidemiology and Infection Control, 818-826 Williams and Wilkins, 1996. 5. Rutala, W. “Association for Professionals in infection control and Epidemiology Inc. APIC Guidelines for Selection and Use of Disinfectans”, en American Journal Infection Ccontrol 23: 35-67. 1995. 5. Favero, M. & Bond, W. “Sterilization, Disinfection and Antisepsis in the Hospital”, en Manual of Clinical Microbiology, American Society for Microbiology, Washington, D. C.; cap. 24: 83-200. 1991. 6. Spach, D. y col. “Transmission of infection by Gastrointestinal Endoscopy and broncoscopy”, en Annals of Internal Medicine 113: 117-128. 1993. 7. Botoman, V. A. & Surawicz, C. M. “Bacteremia with gastrointestinal endoscopy procedures”, en Gastrointestinal Endosc. 32: 342-6. 1986. 8. Kaczmarek, R. G., Moore, R. M. Jr., McGowan, J. et al. “Multi-state investigation of the actual disinfection-sterilization of endoscopes in health care facilities”, en Am. Journal. Med. 92: 257-61. 1992. 9. Cryam, E. M. G., Falkiner, F. et al. “Pseudomonas aeruginosa following endoscopy retrograde. Cholangiopancreatography”, en J. Hosp. Infect. 5: 371-6. 1984. 10. Dwyer, D., Klein, E. et al. “Salmonella Newport infection transmitted by fiber optic colonoscopy”, en Gastrointestinal Endosc. 33-84. 1987. 11. Rutala, W. A., Clontz, E. P., Webber, D. J. & Hoffmann, K. K. “Disinfection Practices for endoscopes and to her semi critical items”, en Infect. Control Hosp. Epidem. 12: 282-8. 1991. 12. Rutala WA, Clontz EP, Weber DJ, Hoffmann KK. Disinfection practices for endoscopes and other semicritical items. Infect Control Hosp Epidemiol. 1991 May; 12(5):282-8. 13. Bradley, C. & Babb, J. “Endoscope Decontamination Automated VS. Manual”, en Journal of Hospital Infections: 537-542. 1995. 14. Johnson, L. “Two percent glutarldehyde: a disinfectant in arthroscopy and arthroscopy surgery”, en J. Bone Joint Surg. AM. 64: 237-9. 1982. 15. Rutala, W. y col. “Infection Control Practices in Gastrointestinal-Endoscopes, in the U.S.A: A National Survey”, en Infection Control and Hospital Epidemiology 12: 289-298. 1991. 16. Raufman, J. P. & Straus, E. “Endoscopy Procedures in the AIDS patient. Risk, precautions, indications and obligation”, en Gastroenterology Clinics of North America 179: 495-507. 1988. 17. Ascenzi, J. M. Research Division. Surgikos lnc. Important Information Oncoming the Revise of Glutaraldehyde. Based Disinfectants and their Tuberculocidal Activity. October 1984. 18. Kleier, D. & Averbach, R. “Glutaraldehyde No biologic Monitors”, en Infection Control and Hospital Epidemiology 11: 439-441. 1990. 19. Bond, D. W. y col. “Effective Use of Liquid Chemical Germicides on Medical Devices- Instrument Design Problems”, en Block, S. Disinfection, Sterilization, and Preservation: 1097-1106. Philadelphia. 1991. 20. Merianos, J. “Quaternary Ammonium Antimicrobial Compounds”, en Block, S. Disinfection, Sterilization, and Preservation: 225-54. Philadelphia-Londres. 1991. 21. Block, S. “Peroxide Compounds”, en Block, S. Disinfection, Sterilization, and Preservation: 167-81 Philadelphia-Londres. 1991. 22. Alfa, M., “In-hospital evaluation of orthophthaldeyde as a high level disinfectant for flexible endoscopes”, en J. Hosp. Infec. 26: 15-26. 1994. 23. Babb. J. R. & Bradley, C. “Endoscope Decontamination. Where Do We Go From Here?”, en J. Hosp. Infec. 30: 543-551. 1995. 24. European Society of Gastrointestinal Endoscopy (ESGE) “Guidelines for the use of accessories in digestive endoscopy. Endoscopy”, 534. 1996. 25. Rutala, W, Selection and Use of Disinfectants, Mayhall, Glen M. D. Williams and Wilkins 913. 1996. 26. Roy, M. C Prevention and Control of Nosocomial Infections: In: Wenzel, R. P. Third edition, The Operating Theater: a Special Environmental Area, 515 Williams and Wilkins 1997. 27. Centers for disease Control and Prevention. Rutala, Williams, Weber, David and the HIPAC. “Guideline for Disinfection and Sterilization in Healthcare Facilities”. 2002. 28. ASHCSP/ASHES “Guidance Document for CJV. Leaders in the central Services, Sterile Processing Profession. The Care and handling of surgical Instruments an Environmental Recommendation”. Junio 2001. 29. Maimone, S. “Desinfectantes de uso hospitalario”, en www.codeinep.com.ar. 2004. PDF created with pdfFactory Pro trial version www.pdffactory.com