SILABO

1. UNIVERSIDAD ALAS PERUANAS
FACULTAD DE MEDICINA HUMANA Y CIENCIAS DE LA SALUD
ESCUELA PROFESIONAL DE TECNOLOGÍA MÉDICA
SILABO
I. DATOS INFORMATIVOS
1.1. Asignatura : Bacteriología
1.2. Código : 2601-26301
1.3. Área : Laboratorio Clínico y Anatomía Patológica.
1.4. Requisito : Biología General
1.5. Periodo Académico : 2015- II B (Agosto - Diciembre)
1.6. Ciclo Académico : V
1.7. Créditos : 06
1.8. Horas semanales : 09
1.8.1 Horas de teoría : 03
1.8.2. Horas de práctica : 06
1.9. Carácter : Obligatorio.
1.10 Profesor de la Asignatura : Mg. Benites Azabache Juan Carlos
1.11 Profesores de prácticas: Mg. Benites Azabache Juan Carlos
II. SUMILLA:
La asignatura de Bacteriología está incluida dentro del área de Ciencias de la Salud;
es un curso teórico – práctico; que desarrolla un conjunto de actividades para que los
alumnos adquieran habilidades y destrezas en el manejo de los diferentes agentes
patógenos bacterianos y comprende desde la toma de muestra, aislamiento
primario, identificación y realización de pruebas de susceptibilidad antimicrobiana
de los diferentes bacterias causantes de enfermedades en el hombre y animales.
El manejo de las bacterias debe hacerse en forma responsable, haciendo uso de las
medidas universales de bioseguridad a fin de evitar la contaminación en los alumnos
así como del medio ambiente.
Los contenidos del curso han sido organizados en tres (3) unidades temáticas de
aprendizaje:

2. Programación de Áreas Temáticas:
I. Generalidades de Bacteriología; Coloraciones de Bacterias, Métodos de
Siembra, Bacterias Gram Positivas.
II. Bacterias Gram negativas y Bacterias fastidiosas
III. Pruebas de Susceptibilidad Antimicrobiana y Microbiología Automatizada
III. OBJETIVO GENERAL:
Desarrollar las competencias para aislar e identificar las bacterias de interés clínico
utilizando sus características taxonómicas, morfológicas, fisiológicas y genéticas; así
como realizar las pruebas de susceptibilidad antimicrobiana reconociendo sus
mecanismos de patogenicidad relacionándolos con la enfermedad infecciosa.
IV. COMPETENCIAS:
 Competencias Cognitivas.- El alumno describe las características de los
diferentes grupos bacterianos, analiza sus mecanismos de patogenicidad y
resistencia a los antibióticos y los relaciona con la enfermedad infecciosa que
provocan, interpreta las pruebas de identificación bioquímica empleadas.
 Competencias Procedimentales.- El alumno Identifica las bacterias de interés
clínico mediante procedimientos microbiológicos y medidas de bioseguridad
correspondientes, reconociendo los mecanismos de patogenicidad y
resistencia a los antibióticos que le permiten su participación en la
enfermedad infecciosa.
 Competencias Actitudinales.- El alumno se interesa en la problemática de
salud de su país, muestra iniciativa por desarrollar procedimientos
microbiológicos que contribuyan a mejorar el diagnóstico de enfermedades;
trabaja en equipo y respeta la opinión de sus compañeros.

3. V. PROGRAMACION DE UNIDADES TEMÁTICAS
5.1 PRIMERA UNIDAD: I. Generalidades de Bacteriología; Coloraciones, Métodos de Siembra, Bacterias Gram Positivas
LOGRO: Al finalizar la unidad el estudiante identifica las bacterias gram positivas de interés clínico, utilizando los procedimientos
microbiológicos y medidas de bioseguridad correspondientes, reconociendo los mecanismos de patogenicidad que le permiten su
participación en la enfermedad infecciosa.
SEMANA
CONTENIDOS
CONCEPTUAL PROCEDIMENTAL ACTITUDINAL
1°SEMANA
07/03/16
1. Presentación del curso: Contenido y
objetivos, metodología de la enseñanza,
organización, formación de grupos y
mesas de trabajo, sistema de evaluación
y recomendaciones generales
2. Procariontes y eucariontes. Estructura
bacteriana. Conceptos básicos, Historia
de la microbiología.
 Prepara medios de cultivo y
realiza coloraciones simples y
compuestas reconociendo la
diferencia entre procariontes y
eucariontes.
Participa activamente en
las actividades
programadas.
Comparte sus
conocimientos e ideas
con sus compañeros.
Respeta y valora las
distintas opiniones.
Participa activamente en
la discusión de las
lecturas.
Respeta las normas de
bioseguridad.
2°SEMANA
14/03/16
3. Clasificación, taxonomía e identificación
bacteriana, Fisiología, nutrición,
Metabolismo y Genética bacteriana.
 Utiliza los diferentes métodos de
siembra y aislamiento
bacteriano, reconociendo las
colonias bacterianas y las
relaciona con sus características
taxonómicas, fisiológicas.
3°SEMANA
21/03/16
4. Género Staphylococcus: Staphylococcus
aureus. Otras especies de estafilococos:
S. epidermidis y S. saprophyticus. Género
Micrococcus
 Realiza el aislamiento e
identificación de
Staphylococcus, diferenciando
características particulares del
género.
4°SEMANA 5. Streptococcus: S. pyogenes, S.
 Realiza el aislamiento e
identificación de Streptococcus,

4. 28/03/16
agalactiae. Grupo viridans. S.
pneumoniae. Género Enterococcus: E.
faecalis y otras especies.
diferenciando características
particulares del género.
5°SEMANA
04/04/16
6. Bacilos gram positivos aerobios y
facultativos: Bacillus anthracis,
Gardnerella vaginalis
 Realiza el aislamiento e
identificación de Bacillus,
diferenciando características
particulares del género
6°SEMANA
11/04/16
7. Bacilos gram positivos aerobios y
facultativos: Listeria monocytogenes.
 Realiza el aislamiento e
identificación de Listeria,
diferenciando características
particulares del género.
7°SEMANA
18/04/16
8. Género Mycobacterium: M. tuberculosis.
Micobacterias atípicas. M.leprae.
 Realiza una baciloscopía
empleando procedimientos
estandarizados
5.2 SEGUNDA UNIDAD: Bacterias Gram negativas y Bacterias de difícil crecimiento.
LOGRO: Al finalizar la unidad el estudiante identifica las bacterias gram negativas de interés clínico, utilizando los procedimientos
microbiológicos y medidas de bioseguridad correspondientes, reconociendo los mecanismos de patogenicidad que le permiten su
participación en la enfermedad infecciosa.
8°SEMANA
25/04/16
9. Género Neisseria: N. meningitidis, N.
gonorrhoeae y Moraxella catarrhalis.
10. Bacilos gram negativos con
requerimientos nutricionales especiales:
Haemophilus, Brucellas, Bartonella y
Bordetella.
 Realiza el aislamiento e
identificación de Neisseria,
diferenciando características
particulares del género.
Respeta y valora las
distintas opiniones.
Participa activamente en
la discusión de las
lecturas.
Participa activamente en
la ejecución e
interpretación de las
pruebas de laboratorio.
9°SEMANA
02/05/16
EXAMEN PARCIAL

5. 10°SEMANA
09/05/16
11. Enterobacterias. Grupos patógenos de E.
coli, Salmonella, Shigella,Plesiomona .
Enterobacterias oportunistas
 Realiza el aislamiento e
identificación de enterobacterias,
diferenciando características
particulares de cada género.
Cumple con las normas
de bioseguridad.
Participa activamente en
las actividades lúdicas y
discusión del seminario.
11°SEMANA
16/05/16
12. Bacilos gram negativos no
fermentadores:Pseudomonas aeruginosa,
Acinetobacter, Stenotrophomona.
 Realiza el aislamiento e
identificación de no
fermentadores, diferenciando
características particulares de
estos.
12°SEMANA
23/05/16
13. Bacilos gram negativos curvos y
fermentadores oxidasa positivos: Vibrio
(V.cholerae, V.parahaemolyticus),
Aeromona , Campylobacter y
Helicobacter
 Realiza el aislamiento e
identificación de V. cholerae y V.
parahaemolyticus, diferenciando
características particulares del
género.
13°SEMANA
30/05/16
14. Bacterias anaerobias: Anaerobios no
esporulados. Género Bacteroides.
Anaerobios esporulados: Género
Clostridium: C.tetani. C. botulinum. C.
perfringens. C. difficile.
15. Espiroquetas: Género Treponema: T.
pallidum. Géneros Borrelia y Leptospira.
 Realiza el aislamiento e
identificación de anaerobios.
 Realiza la observación de
espiroquetas en campo oscuro,
diferencia características
particulares del género
Treponema
5.3 TERCERA UNIDAD: Pruebas de Susceptibilidad Antimicrobiana, Microbiología Automatizada.
LOGRO: Al finalizar la unidad el alumno habrá realizado correctamente las pruebas para determinar la sensibilidad antibiótica
bacteriana empleando el método de Kirby-Bauer interpretando los resultados obtenidos y detallando el hallazgo de algún
mecanismo de resistencia de la bacteria en estudio.

6. 14°SEMANA
06/06/16
16. Antimicrobianos, Clasificación,
mecanismos de acción en las bacterias
17. Pruebas de Susceptibilidad
antimicrobiano por el método de Difusión
en Disco
 Realiza la prueba de
susceptibilidad antimicrobiana
por el método de difusión en
disco según metodología de
Kirby- Bauer.
Participa activamente en
la discusión de las
lecturas.
Participa activamente en
la ejecución e
interpretación de las
pruebas de laboratorio.
Cumple con las normas
de de bioseguridad.
Participa activamente en
las actividades lúdicas y
discusión del seminario.
15°SEMANA
13/06/16
18. Mecanismos de resistencia bacteriana a
los antibióticos
 Emplea las pruebas fenotípicas
para la detección de los
principales mecanismos de
resistencia de las bacterias:
BLEES, MBLS, D-TEST.
16°SEMANA
20/06/16
19. Microbiología automatizada:
Automatización en el aislamiento primario; y
en las pruebas de identificación y
susceptibilidad antimicrobiana.
 Reconoce las ventajas y
desventajas del empleo de
equipos automatizados
17°SEMANA
27 /06/16
EXAMEN FINAL
17 ½
SEMANA
04-6/07/16
EXAMENES SUSTITUTORIOS

7. VI. METODOLOGÍA Y MEDIOS DIDACTICOS:
VI. METODOLOGÍA:
El desarrollo del curso de Bacteriología, se llevará acabo mediante una metodología
activa, a través de trabajos prácticos individuales y grupales de manera que los alumnos
construyen sus propios conocimientos a través del, autoaprendizaje.
6.1. En las clases prácticas el profesor cumplirá la función de guía o asesor; el alumno
tendrá participación activa en los trabajos prácticos grupales o individuales incluyendo la
búsqueda de la información.
6.2. Exposiciones – diálogos (docentes – discentes).
6.3. Trabajos individuales y grupales.
6.4. Exposiciones individuales y/o grupales sobre temas investigados.
Medios y materiales didácticos:
 Aula para teoría
 Aula para prácticas
 Proyector multimedia
 Fotocopias de artículos científicos
 Trabajos iconográficos
 Manual de prácticas
 Cepas de los diferentes grupos de bacterias.
 Medios de cultivo
 Antibióticos
 Insertos de insumos y kits usados en Bacteriología
 Láminas coloreadas con diferentes bacterias
 Tablas de identificación bioquímica de bacterias.
 Tablas con medida de halos de los antibióticos
 Pizarra, mota y plumones
VII. EVALUACIÓN:
 La evaluación es permanente a fin de identificar el grado de competencia y
conocimiento previo de los temas incluidos en el silabo.

8.  Se evaluará a los alumnos considerando la naturaleza de los contenidos de
acuerdo a las normas y disposiciones propuestas por la Universidad Alas Peruanas,
siendo ésta evaluación diagnóstica, formativa, sumativa, permanente e integral.
 También se considera en la evaluación las actitudes del alumno para convertirse en
un profesional idóneo: capacidad de observación, razonamiento, espíritu crítico,
responsabilidad, iniciativa, colaboración, asistencia y puntualidad.
 La asistencia a las clases teóricas y prácticas es OBLIGATORIA, se pasara lista
en ambas clases. Se dará 10 minutos de tolerancia.
 Se rinden dos exámenes teórico práctico de tipo cancela torios, que se llevarán a
cabo en las fechas programadas en el silabo.
 Los alumnos que tengan 30% de inasistencias o más de las actividades lectivas del
curso, independientemente de las calificaciones obtenidas en las evaluaciones
rendidas, serán DESAPROBADOS. Para ello se contabiliza por separado las
inasistencia a las clases teóricas y a las clases prácticas, sumando entre ambas
30%; la inasistencia deberá ser justificada mediante documentos probatorios.
 La evaluación de los conocimientos teóricos será mediante pruebas escritas:
exámenes parciales, exámenes de recuperación y exámenes sustitutorios. La
prueba escrita consistirá en una prueba de 30 a 40 preguntas con respuesta de
selección múltiple, La calificación es de 00 a 20, excepto en el examen sustitutorio,
en el cual la nota máxima no excederá de 14. Los exámenes teóricos son dos.
 En cuanto a la evaluación del trabajo académico, este se realizará mediante
exámenes prácticos escritos, asistencia, evaluación del desempeño del alumno en
las actividades prácticas, según una lista de cotejo, seminarios, lecturas, y
desarrollo de trabajos. El examen práctico escrito es una prueba de 20 preguntas
con respuestas para elaborar conceptos. La evaluación del seminario comprende
dos actividades: evaluación escrita (50%) y la participación activa (50%), tanto para
el grupo ponente como para los alumnos del auditorio. La evaluación del seminario
se considera la exposición, la organización y calidad del contenido del trabajo, y la
entrega del trabajo en CD. La calificación del trabajo académico es de 00 a 20.
 De los dos exámenes teóricos programados, sólo se podrá sustituir uno (1) de ellos.
El de menor puntaje
 Sólo tendrán derecho a examen sustitutorio los alumnos que hayan aprobado por lo
menos un (01) examen práctico o un examen teórico.
 El examen sustitutorio se rendirá dentro de los 03 días útiles de haber sido
publicada el total de calificaciones del curso.
 Los exámenes prácticos no tendrán exámenes sustitutorios.

9.  Para aprobar las asignaturas teórico-practicas es requisito indispensable aprobar
por lo menos un 1 examen teórico y 1 examen práctico y tener promedio de 11
 La nota final del curso se obtiene de las notas de Evaluación Parcial, Evaluación
Final y Trabajo académico, considerando los porcentajes de la tabla adjunta.
EVALUACIÓN
PARCIAL
30%
ACTITUDINAL
(10%)
CONOCIMIENTOS
(60%)
PROCEDIMENTAL
(30%)
EVALUACIÓN
FINAL
30%
ACTITUDINAL
(10%)
CONOCIMIENTOS
(60%)
PROCEDIMENTAL
(30%)
TRABAJO
ACADÉMICO
40%
EVALUACIÓN
PRACTICA
1
ACTITUDINAL
(10%)
CONOCIMIENTOS
(40%)
PROCEDIMENTAL
(50%)
EVALUACIÓN
PRACTICA
2
ACTITUDINAL
(10%)
CONOCIMIENTOS
(40%)
PROCEDIMENTAL
(50%)
VIII. FUENTES DE INFORMACIÓN:
General
VIII. FUENTES DE INFORMACIÓN
8.1. General:
1. Lennette E.H. Manual of Clinical Microbiology. Nineth edition. American Society for
Microbiology. Washington, D.C. USA. Año, 2010.
2. Jawetz E. Melnick y Adelberg; de Microbiología Médica. México. Ed. Manual Moderno.
Veinticinco ava Edición. Año, 2012.

10. 8.2. Complementaria:
1. Koneman E.W., Allen S.D., Dowell S.R.Jr., Sommers H.M. Diagnóstico. Microbiológico. 6th
edition. Ed. Panamericano, B. Aires. Año, 2012
2. MacFaddin J.F. Pruebas Bioquímicas para la Identificación de Bacterias de Importancia .
Tercera Edición. Editorial Médica. Panamericana. Buenos Aires, Argentina., Año 2003.
4. Agurto T., Mariazza J. Suares J. Manual de Técnicas en Microbiología, 1a. parte. Lima, 1989.
5. Agurto T., Guerra A. Microbiología Básica. Lima 2004. Universidad Ricardo Palma. 158 pp.
6. Difco Laboratorios. Manual de Medios de Cultivo. Detroit, DIFCO, 10° Edición, 1986.
Recursos en Internet
1. British Medical Journal.
2. Clinical Microbiology Reviews, American Society for Microbiology. www.asm.org
3. Journal of Clinical Microbiology, American Society for Microbiology. www.asm.org
4. Journal of Clinical Pathology.
5. Journal of Medical Microbiology. Society for General Microbiology.
6. New England Journal of Medicine. www.nejm.org
7. Revista Chilena de Infecto logia. www.freemedicaljournals.com
8. Revista Peruana de Medicina Experimental y Salud Pública, Instituto Nacional de
Salud. www.ins.gob.pe
9. Emerging infectious diseases. Centers for Disease Control. www.cdc.gov
10. Bibliteca Virtual en salud Peru (BVS). http./www.bvs.org.pe