1. Espumas biológicas de
“Candidatus Monilobacter spp”
en la EDAR de Empuriabrava
PRESENTA: Eva Rodríguez – GRUPO BIOINDICACIÓN SEVILLA, gbs@asociaciongbs.com
AUTORES.
Jose Luis Alonso – UPV, jalonso@ihdr.upv.es
Eva Rodríguez - Agua y Gestión -BEFESA-GBS, gbs@asociaciongbs.com
Eva Ciriero – E. M. d’Aigües de la Costa Brava, emciriero@aiguescb.com

2. PARQUE NATURAL DEL AIGUAMOLLS DE L’EMPORDÀ.
ESTÁ GESTIONADA POR LA EMPRESA EMACBSA
(EMPRESA MITXA D’AIGÜES DE LA COSTA BRAVA),

3. EDAR EMPURIABRAVA
MANTENIMIENTO DE LOS HUMEDALES
DEL PARQUE
asde

4. EDAR EMPURIABRAVA
•URBANIZACIÓN EMPURIABRAVA Y
MUNICIPIO DE CASTELLÓ
D’EMPÚRIES.
•EDAR CIRCULAR COMPACTA CON
ELIMINACIÓN DE NITRÓGENO.
Analizador •VOLUMEN REACTOR BIOLÓGICO
Sonda de Sonda de 7500M3
de Amonio
redox oxígeno
•VOLUMEN DECANTADOR 3750M3
•CAUDAL (APROX.)
INVIERNO 3000M3/D
VERANO 8000M3/D
• RECEPCIÓN FOSAS SÉPTICAS
•ELIMINACIÓN DE
N<10PPM
P<2PPM*
Soplantes * ALUMINATO SÓDICO A PARTIR DE NOV. 2009

7. ROBUSTEZ Y LONGITUD.
CARACTERIZACIÓN RAMIFICACIÓN,
ECOLÓGICA ENGROSAMIENTO CELULAR
MORFOTIPO
Nostocoida limícola GRAM Y NEISSER NEGATIVO
con características
especiales
Bulking y foaming-
URBANO E INDUSTRIAL.
(Eikelboom, 2002, Jenkins et al., ALTA VARIABILIDAD PHB +
2004; Zornoza et al., 2008)
RESERVA DE ENERGÍA Y
CARBONO
Información
operacional : SÍNTESIS PHB: EXCESO
Baja carga másica CARBONO Y LIMITACIÓN
Bajo oxígeno disuelto OTRO ELEMENTO
Componente industrial
(Eikelboom, 2002; Jenkins et
al, 2004).

8. Sondas α-Proteobacteria morfotipos Nostocoida limicola (Kragelund et al.
2006)

9. Filamentos de Monilibacter batavus cluster III sonda DF 198,
contraste de fases y epifluorescencia 1000X

10. Filamentos de Monilibacter batavus cluster III sonda DF 198,
contraste de fases y epifluorescencia 1000X

11. Filamentos de Monilibacter batavus cluster III fosfatasa negativos, tinción
Neisser, campo claro y epifluorescencia 1000X

12. Producción de PHA a partir de diferentes sustratos en condiciones aerobias
MAR-FISH (Kragelund et al. 2006)

13. Acumulación de PHB en filamentos de Monilibacter batavus cluster III,
contraste de fases y epifluorescencia 1000X

14. METODOLOGÍA
• Periodo de muestreo: Septiembre de 2009-Mayo de 2010.
• Sistemas de proceso:
– Reactor biológico circular con el decantador en la zona central (Línea nueva),
con extracción de fangos por la zona inferior, por lo que se acumulan las
espumas, dificultando su extracción y zona anóxica/ óxica
– Reactor Carrousel (Línea vieja), en la que la extracción de fangos es por la zona
superior, con lo que se favorece la eliminación de espumas. En este caso el
sistema es óxico completo, controlado por consigna de oxígeno.

15. METODOLOGÍA
• SISTEMAS DE OPERACIÓN DURANTE LOS
MUESTREOS
– PERIODO 1: Septiembre- 2009 / 22 de Febrero
2010 - Reactor biológico circular (Línea
nueva).Consigna por amonio
– PERIODO 2: 23 de Febrero 2010/ 7 de Abril 2010 -
Reactor Carrousel (Línea vieja).
– PERIODO 3: 8 de Abril 2010 / 30 Mayo 2010 -
Reactor biológico circular (Línea nueva). Consigna
por Redox

16. CONDICIONES DEL PROCESO
4000
CONSIGNA POR ANALIZADOR LINEA CONSIGNA
DE AMONIO EN CONTÍNUO CARROUSSEL POR REDOX
3500
3000
2500
m/mL
2000
1500
1000
500
0
Monilibacter batavus Microthrix parvicella T0092 H. hydrosis T0041

17. POSIBLES PAUTAS DE
DESARROLLO
• VERTIDOS DE FOSAS SÉPTICAS
• CONTROL DEL AFLUENTE, ESTRUCTURAS
BIOLÓGICAS Y PARÁMETROS OPERACIONALES
• ALTERNANCIAS ZONAS ANÓXICAS-ÓXICAS

18. VERTIDOS DE CARACTERÍSTICAS
ASOCIADAS:
FOSAS SÉPTICAS INFLUENTES RICOS EN
ÁCIDOS GRASOS DE CADENA
CORTA (AGV)
m/ml Monilobacter
SECTOR PETROQUÍMICO
(Kragelund et a, 2006; Zornoza et al, 2008 )
4000
3500
NAUTICAS: hidrocarburos de
3000
cadena corta (VFA).
VOL: 7 m3. (2-3 cubas/mes)
2500
2000
1500
1000
500
0
30/06/2009
06/07/2009
13/07/2009
20/07/2009
27/07/2009
03/08/2009
10/08/2009
17/08/2009
24/08/2009
31/08/2009
28/09/2009
05/10/2009
15/02/2010
22/02/2010
07/04/2010
12/04/2010
22/04/2010
26/04/2010
10/05/2010
17/05/2010
24/05/2010

19. CONTROL DEL
1
2
3
S
S
S
PARÀM. UT.
DIA
DIA
DIA
AFLUENTE
ME
ME
ME
DBO5 mg O2/l 130 141 125
DQO mg O2/l 459 494 818
S.S. mg/l 226 228 222
pH unitats 7,3 6,9 7,3
COND. μS/cm 5980 5286 3150
ENTRADA -
Cl mg/l 1944 1444 728
N-NH4+ mg/l 38,9 28 37
N-NTK mg/l 54,5 53,4 61,0
P total mg/l 7,7 7,3 12,8
2-
S mg/l 6,7 4,9 5,1
DBO5 mg O2/l 3 4 <3
DQO mg O2/l 46 55 32
S.S. mg/l 8 6 6
pH unitats 7,4 7,5 7,5
COND. μS/cm 5669 6179 3040
-
SALIDA Cl mg/l 1884 1862 675
N-NH4+ mg/l 0,74 8,3 <0,5
-
N-NO2 mg/l 0,53
-
N-NO3 mg/l 7,1 9,6 10,7
N-NTK mg/l 3,01 4,9 2,7
P total mg/l 2,19 1,47 2,39
S.S. REACT mg/l 6887 2362 2316
S.V. RECT % 72,4 63,9 71,1
REACTOR
S.S. RECIRC mg/l 10.991 2.069 7.346
S.V. RECIRC % 72,7 69,6 68,5

20. FLÓCULOS MULTINUCLEADOS TÍPICOS N/DN
ACCESO A MATERIAL SOLUBLE POR ACTIVIDAD EXOENZIMÁTICA
DE BACTERIAS FORMADORAS DE FLÓCULO
CARÁCTER
ESTRUCTURAL
Integración en flóculo
a baja concentración
(Kragelund, et al., 2006)

21. CARACTERIZACIÓN FLOCULAR
CARACTERIZACIÓN FLÓCULO PERIODO 1 IF: 58,3 13,13% 9,77%
TAMAÑO (%)
TAMAÑO (%) PEQUEÑO 9,77% REGULAR
MEDIO 77,10%
GRANDE 13,13%
CONCENTRACIÓN Alta/media TEXTURA Fuerte 77,10%
ESTRUCTURA Abierta/Media FORMA Irregular PEQUEÑO MEDIO GRANDE
CARACTERIZACIÓN FLÓCULO PERIODO 2 IF: 62,5 TAMAÑO (%)
3,86% 21,37%
TAMAÑO (%) PEQUEÑO 21,37% BUENO
MEDIO 74,80%
GRANDE 3,86%
CONCENTRACIÓN Media TEXTURA Fuerte 74,80%
ESTRUCTURA Media FORMA Irregular PEQUEÑO MEDIO GRANDE
CARACTERIZACIÓN FLÓCULO PERIODO 3 IF: 68,5 TAMAÑO (%)
7,20% 12,50%
TAMAÑO (%) PEQUEÑO 12,50% BUENO
MEDIO 80,30%
GRANDE 7,20%
CONCENTRACIÓN Media/Alta TEXTURA Fuerte 80,30%
ESTRUCTURA Media/abierta FORMA Irregular PEQUEÑO MEDIO GRANDE

22. COMUNIDAD FILAMENTOSA
CARACTERIZACIÓN DE BACTERIAS FILAMENTOSAS EN EL PERIODO 1
FILAMENTOS ABUNDANCIA (m/ml)
Monilobacter batavus 1942
T0092/Microthrix parvicella/Haliscomenobacter h. 203
T0041/T0675/Haliscomenobacter h./ T0092/Microthrix p. 88
CARACTERIZACIÓN DE BACTERIAS FILAMENTOSAS EN EL PERIODO 2
FILAMENTOS ABUNDANCIA (m/ml)
Monilobacter batavus
REDUCCIÓN MLSS 854
T0092/Microthrix parvicella/Haliscomenobacter h.
SISTEMA ÓXICO 270
Haliscomenobacter h./ T0092/Microthrix p. 153
CARACTERIZACIÓN DE BACTERIAS FILAMENTOSAS EN EL PERIODO 3
FILAMENTOS ABUNDANCIA (m/ml)
Monilobacter batavus/Microthrix parvicella 412
T0092/Monilobacter batavus
COMPETITIVIDAD 321
Haliscomenobacter h./ T0092/Microthrix p. 197

23. Monilibacter batavus
CARACTERÍSTICAS ASOCIADAS:
Deficiencia de oxígeno.
Baja carga másica
deficiencia de nutrientes
Altas edades de fango
Microthrix parvicella
T0092

24. D
A B C
FANGOS ESTABILIZADOS CON EDADES AVANZADAS
E F G
H I J
In vivo. 400x.A: Nematodo, B: Vorticella convallaria, C: Chilodonella uncinata, D y H: Ameba
desnuda mayor de 50 micras, E: Euplotes sp., F: Periacineta. G: Arcella vulgaris, I: Thurícola
sp. J: Rotifero

25. COMUNIDAD PROTOZOARÍA
CARACTERIZACIÓN BIÓTICA PERIODO 1
CILIADOS METAZOOS
ABUNDANCIA: 3091 (ind/ml) ABUNDANCIA: 71 (ind/ml)
H' (bit) 1,62 PEQ FLAGELADOS Y AMEBOIDES MENORES DE 20 MICRAS
GÉNEROS Y ESPECIES MÁS ABUNDANTES: ABUNDÀNCIA: 96577 (ind/ml)
Caliptotrichia, Dexiotrichia, Plagiocampa, Aspidisca cicada, Coleps PEQ FLAGELADOS Y AMEBOIDES MAYORES DE 20 MICRAS
V aqudulcis, V convallaría, Uronema, Holophriya ABUNDÀNCIA: 245 (ind/ml)
CARACTERIZACIÓN BIÓTICA PERIODO 2
CILIADOS METAZOOS
ABUNDANCIA: 1608 (ind/ml) ABUNDANCIA: 68 (ind/ml)
H' (bit) 2,01 PEQ FLAGELADOS Y AMEBOIDES MENORES DE 20 MICRAS
GÉNEROS Y ESPECIES MÁS ABUNDANTES: ABUNDÀNCIA: 164846 (ind/ml)
V. convallaría, V aquadulcis, Holophrya, Plagiocampa, Dexiotrichía, Holoprya PEQ FLAGELADOS Y AMEBOIDES MAYORES DE 20 MICRAS
Chaetospira, Euplotes. ABUNDÀNCIA: 124 (ind/ml)
CARACTERIZACIÓN BIÓTICA PERIODO 3
CILIADOS METAZOOS
ABUNDANCIA: 5413 (ind/ml) ABUNDANCIA: 103 (ind/ml)
H' (bit) 2,06 PEQ FLAGELADOS Y AMEBOIDES MENORES DE 20 MICRAS
GÉNEROS Y ESPECIES MÁS ABUNDANTES: ABUNDÀNCIA: 79691 (ind/ml)
V convallaría, Euplotes, Caliptotrichia, Aspidisca cicada, Aspidisca lynceus, PEQ FLAGELADOS Y AMEBOIDES MAYORES DE 20 MICRAS
Euplotes, Periacineta, Acineria uncinata, Metacystis, Trochilia minuta ABUNDÀNCIA: 953 (ind/ml)

26. EVOLUCIÓN POBLACIONAL PROTOZOARÍA EN LOS TRES PERIODOS
NADADORES LIBRES REPTANTES SÉSILES SUCTORES ABUNDANCIA TOTAL
18000 CONSIGNA POR
REDOX
16000 CONSIGNA POR ANALIZADOR DE LINEA
CARROUSSEL
AMONIO EN CONTÍNUO
14000
12000
Ind/L 10000
8000
6000
4000
2000
0
9
9
9
9
9
0
0
0
0
0
0
0
00
00
00
00
00
01
01
01
01
01
01
01
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
8/
9/
0/
1/
2/
1/
2/
3/
4/
5/
6/
7/
/0
/0
/1
/1
/1
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
03
03
03
03
03
03
03
03
03
03
03
03

27. VARIACIONES OPERACIONALES EN LOS
TRES PERIODOS
PERIODO 1 ESTRÉS NUTRICIONAL
CARGA MÁSICA CARGA VOLÚMICA
CAUDAL TOTAL CAUDAL MEDIO TRC kg DBO5 kg DBO5 IVF
m3/mes m3/dia días kg MLVSS d m3 aireació d
74.599 2.465 77,0 0,009 0,045 217
PERIODO 2
CARGA MÁSICA CARGA VOLÚMICA
CAUDAL TOTAL CAUDAL MEDIO TRC kg DBO5 kg DBO5 IVF
m3/mes m3/dia días kg MLVSS d m3 aireació d
79.579 2.611 55,0 0,022 0,046 330
PERIODO 3
CARGA MÁSICA CARGA VOLÚMICA
CAUDAL TOTAL CAUDAL MEDIO TRC kg DBO5 kg DBO5 IVF
m3/mes m3/dia días kg MLVSS d m3 aireació d
91.135 2.939 36,6 0,019 0,041 383
MEJOR REPARTO NUTRICIONAL

28. RATIOS NUTRICIONALES
PERIODO 1
KG/DIA DQO KG DIA DBO Kg dia NT Kg dia PT RATIO DBO/DQO RATIO N/DBO RATIO P/DBO RATIO P/N
1131 320 134,34 18,94 0,28 0,42 0,06 0,14
PERIODO 2
KG/DIA DQO KG DIA DBO Kg dia NT Kg dia PT RATIO DBO/DQO RATIO N/DBO RATIO P/DBO RATIO P/N
1289 369 139,34 19,00 0,29 0,38 0,05 0,14
PERIODO 3
KG/DIA DQO KG DIA DBO Kg dia NT Kg dia PT RATIO DBO/DQO RATIO N/DBO RATIO P/DBO RATIO P/N
2403 369 179,25 37,61 0,15 0,49 0,10 0,21
MEJOR COMPENSACIÓN DBO/N/P
DISMINUCIÓN BIODEGRADABILIDAD

29. 4000
CONSIGNA POR ANALIZADOR LINEA CONSIGNA
DE AMONIO EN CONTÍNUO CARROUSSEL POR REDOX
3500
FIL: 412 m/mL
3000 FIL: 1942 m/mL FIL: 854 m/mL
(Monilo/Micrt).
TRC:77 días TRC:55 días
TRC:37 días
CM: 0,0009 Kg CM: 0,022 Kg
2500 DBO/kg MLVSS DBO/kg MLVSS CM: 0,0019 Kg
DBO/kg MLVSS
DQO: 1131 kg/d DQO: 1229 kg/d
m/mL
DQO: 2403 kg/d
2000
MUY BAJA CARGA MÁSICA Y
1500 ALTAS EDADES
1000
500
0
Monilibacter batavus Microthrix parvicella T0092 H. hydrosis T0041

30. RELACIONES CARGA ORGÁNICA-N
LINEA
CONSIGNA POR ANALIZADOR DE AMONIO EN CARROUSSEL
CONSIGNA POR REDOX
CONTÍNUO
8 DQO> DBO: LIMITACIÓN CRECIMIENTO.
7 < BIODEGRADABILIDAD: LIMITACIÓN
6 CRECIMIENTO
5
4
3
2
1
0
09
09
09
09
09
09
10
10
10
10
10
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
6/
7/
7/
8/
8/
9/
2/
4/
4/
5/
5/
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
30
13
27
10
24
28
15
07
22
10
24
DQO/DBO MONILO/1000

31. RELACIONES NH3/P
LINEA
CONSIGNA POR ANALIZADOR DE AMONIO EN CARROUSSEL
CONSIGNA POR REDOX
CONTÍNUO
7 NH3>P: FAVORECE CRECIMIENTO
6 Y ACUMULACIÓN C COMO
RESERVA PHB
5
DISMINUCIÓN P EN PRESENCIA
4 NH3: NO INHIBE
CRECIMIENTO.
3
2
1
0
09
09
09
09
09
09
10
10
10
10
10
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
6/
7/
7/
8/
8/
9/
2/
4/
4/
5/
5/
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
30
13
27
10
24
28
15
07
22
10
24
NH3/P MONILO/1000
POSIBLE DEPENDENCIA DEL AMONIO FRENTE AL
CRECIMIENTO DEL FILAMENTO

32. RELACIONES DBO/NH3
LINEA
CONSIGNA POR ANALIZADOR DE AMONIO EN CARROUSSEL
CONSIGNA POR REDOX
CONTÍNUO
8
DBO> NH3: FAVORECE CRECIMIENTO.
7
LA DISMINUCIÓN DE AMONIO EN
6 PRESENCIA DBO NO INHIBE
5 CRECIMIENTO
4
3
2
1
0
09
09
09
09
09
09
10
10
10
10
10
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
6/
7/
7/
8/
8/
9/
2/
4/
4/
5/
5/
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
/0
30
13
27
10
24
28
15
07
22
10
24
DBO/NH3 MONILO/1000
EN PRESENCIA DE C EN EL MEDIO SE ACTIVA CRECIMIENTO. SE ACUMULA PHB SI
EL AMONIO U OTRO FACTOR ES LIMITANTE

33. LINEA LINEA LINEA
CONSIGNA POR ANALIZADOR DE AMONIO EN CARROUSSEL
CONSIGNA POR REDOX CONSIGNA POR ANALIZADOR DE AMONIO EN CARROUSSEL
CONSIGNA POR REDOX CONSIGNA POR ANALIZADOR DE AMONIO EN CARROUSSEL
CONSIGNA POR REDOX
CONTÍNUO CONTÍNUO CONTÍNUO
7 7 8
6 6 7
5 5 6
5
4 4
4
3 3
3
2 2 2
1 1 1
0 0 0
9
9
9
9
9
9
0
0
0
0
0
9
9
9
9
9
9
0
0
0
0
0
9
9
9
9
9
9
0
0
0
0
0
00
00
00
00
00
00
01
01
01
01
01
00
00
00
00
00
00
01
01
01
01
01
00
00
00
00
00
00
01
01
01
01
01
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/2
/06
/07
/07
/08
/08
/09
/02
/04
/04
/05
/05
/06
/07
/07
/08
/08
/09
/02
/04
/04
/05
/05
/06
/07
/07
/08
/08
/09
/02
/04
/04
/05
/05
30
13
27
10
24
28
15
07
22
10
24
30
13
27
10
24
28
15
07
22
10
24
30
13
27
10
24
28
15
07
22
10
24
NH3/P MONILO/1000 NH3/P MONILO/1000 DBO/NH3 MONILO/1000
• CONDICIONES DE PARTIDA: Monilibacter batavus, ESTÁ ASOCIADO A
AGV- FUNDAMENTALMENTE ACÉTICO Y PROPIÓNICO (Kragelund et
al; 2006). ALTA CAPACIDAD DE ACUMULAR PHB: MEJOR
SUPERVIVENCIA Y COMPETITIVIDAD EN ESTRÉS NUTRICIONAL.
• CONDICIONES LIMITANTES EN TERCER PERIODO:
– MEJOR REPARTO NUTRICIONAL
– DISMINUCIÓN DE LA BIDEGRADABILIDAD AFLUENTE
– VARIACIONES OPERACIONALES: DISMINUCIÓN MLSS-EDAD Y
AUMENTO CM.
• DIMINUCIÓN PROCESOS METABOLISMO ENDÓGENO
• MENOR COMPETENCIA DE LA BIOMASA POR LOS NUTRIENTE
• COMPETENCIA ENTRE Monilibacter batabus Y Microthrix parvicella
• POSIBLE DEPENDENCIA ENTRE FILAMENTO Y DISPONIBILIDAD AMONIO Y
DBO. INTERMEDIARIOS CLAVES METABOLISMO

34. ALTERNANCIAS ZONAS ÓXICAS-ANÓXICA
• DATOS DE PARTIDA:
– DISTINTA DIFERENCIACIÓN: REACTOR CIRCULAR (anóxia-óxica), REACTOR CARROUSEL (óxica) Y DISTINTAS
CONSIGNAS ENTRE PRIMER PERIODO (Amonio) Y EL ÚLTIMO (Redox).
– ACTIVACIÓN CRECIMIENTO BAJO CONSIGNA AMONIO Y RELENTIZACIÓN CRECIMIENTO BAJO CONSIGNA REDOX
– DISPONIBILIDAD CONSTANTE OXÍGENO (Carrousell): LIMITACIÓN DESARROLLO (VARIACIÓN MLSS).
– DINAMICA VARIABLE EN SISTEMA ÓXICO-ANÓXICO.
• POSIBLES VARIABLES:
– DIFERENCIACIÓN AFLUENTES, PARÁMETROS OPERACIONALES Y CONSIGNAS DE TRABAJO AL COMPARAR PERIODOS
UNO Y TRES:
Periodo 1: Consigna de amonio, alto MLSS, muy baja carga másica, alta edad del fango, ratio DQO/DBO bajo y
ratios NH3/P y DBO/NH3 altos.
Periodo 3: Consigna por redox, disminución MLSS, aumento carga másica, disminución edad del fango, ratio
DQO/DBO alto y ratios NH3/P y DBO/NH3 bajos.
• POSIBLES CONDICIONES ASOCIADAS ALAS DISTINTAS FASES:
– ALTA ACTIVIDAD ACUMULADORA PHB: RESERVA DE CARBONO EN CONDICIONES POSIBLES DE LIMITACIÓN DE
AMONIO.
– APORTE O GENERACIÓN EXTRA AL SISTEMA DE AGV.
• POSIBLES FUENTES DE ÁCIDOS GRASOS DE CADENA CORTA:
– ACTIVIDAD ENDÓGENA EN NÚCLEOS FLOCULARES
– APORTE VARIABLE EN EL AFLUENTE (25-30 % DBO)
– PROCESOS FERMENTATIVOS
• CONCLUSIONES:
– LOS CICLOS ANÓXICOS-ÓXICOS NO SON GENERADORES DE AGV. LOS CICLOS ANAEROBIOS-ÓXICOS PUEDEN GENERAR
AGV. SÍNTESIS DE PHB EN ANAEROBIOSIS Y UTILIZACIÓN EN AEROBIOSIS COMO FUENTE DE CARBONO Y ENERGÍA.
– BAJA CONCENTRACIÓN DE ÓXIGENO (SISTEMA CONTROLADO POR AMONIO): ESTRÉS ADAPTATIVO PARA Monilibacter
batavus. FAVORECE SU DESARROLLO AL DISPONER DE PHB Y PODER UTILIZARLO COMO FUENTE DE ENERGÍA BAJO
ESTAS CIRCUNSTANCIAS
– CONTROL REDOX: SISTEMA EXCLUSIVO ANÓXICO-ÓXICO- PERIODO 3 (+50 mV y -150 Mv).
– CONSIGNA AMONIO: PUEDE PROVOCAR IMPORTANTES DISMINUCIONES EN POTENCIAL REDOX (pudiendo llegar a -
400mV durante el periodo 1). CICLOS ANAEROBIOS-ÓXICOS. GENERACIÓN AGV. POTENCIACIÓN DESARROLLO
Monilibacter batavus.

35. CONCLUSIONES
• GENERADORA EPISODIOS FOAMING EN ALTAS
CONCENTRACIONES. (Monilibacter batavus, es poco
hidrofóbica (Kragelund et al, 2006)
• SISTEMAS DE EXTRACCIÓN DE FANGOS SUPERIOR PUEDE
AYUDAR A DISMINUIR BIOMASA.
• COMUNIDAD FORMADA: Monilibacter batavus, Microthrix
parvicella, T0092, T0041 y Haliscomenobacter hydrosis
COMPARTEN CONDICIONES ECOLÓGICAS DE DESARROLLO:
EDADES MUY AVANZADAS, MUY BAJAS CARGAS MÁSICAS Y
ASIMILACIÓN DE MATERÍA ORGÁNICA DISUELTA (AGV).
• CONDICIONES ESTRICTAMENTE ÓXICAS: LIMITAN
CRECIMIENTO DE Monilibacter batavus.
• NO SE HA DETECTADO CAPACIDAD EZOENZIMATICA EN ESTE
FILAMENTO.
• LOS VERTIDOS DE FOSAS SÈPTICAS (NAÚTICAS)EN LA EDAR
Empuriabrava, NO AFECTAN DE MANERA IMPORTANTE AL
DESARROLLO DE ESTE ORGANISMO

36. CONCLUSIONES
• REACTOR CIRCULAR: LA CONSIGA REDOX ES MÁS EFECTIVA
QUE LA DE AMONIO PARA LIMITAR SU CRECIMIENTO Y
PERMITE UNA MEJORA EN LAS CONDICIONES DE LA BIOTA
PRESENTE.
• NECESARIO EVITAR PROCESOS ANAEROBIOS EN EL SISTEMA
• MEJORA DEL REPARTO NUTRICIONAL: CONTROL MLSS,
EDADES DE FANGO Y CM.
• POSIBLE RELACIÓN POSITIVA ENTRE EL FILAMENTO Y EL
AMONIO PRESENTE EN EL AFLUENTE
• LA DISMINUCIÓN DE LA BIODEGRADABILIDAD DEL AFLUENTE
(DQO/DBO) PARECE INHIBIR SU DESARROLLO
• LAS CONDICIONES ESTRUCTURALES DE LA PLANTA
FAVORECEN SU DESARROLLO: ALTO VOLUMEN DE REACTOR
(7500 m3), CAUDAL ESTACIONAL (2500-7500m3/día) Y
DENSIDAD POBLACIONAL DISPAR (Localidad turística).

37. Agradecimientos
A mis compañeros J.L. Alonso (Instituto de Ingeniería
del Agua y Medio Ambiente. Universidad Politécnica
de Valencia, Spain) y E . Ciriero, M.C. Serra , A.
Huguet (Empresa Mixta d’Aigües de la Costa Brava),
sin cuyo aporte no hubiera sido posible este trabajo,
A Dª C. Kragelund por sus aportaciones sobre la
fisiología de Monilibacter batavus
A la organización de este evento especialmente al
profesor C. Poleto por su amabilidad y colaboración en
todo momento
A nuestras empresas, especialmente EMASESA por
su apoyo a las actividades de investigación en las que
participa GBS

38. PARA CUALQUIER CONSULTA:
gbs@asociaciongbs.com