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Determinación de polifenoles
totales por el método de Folin-
Ciocalteu
Apellidos, nombre García Martínez, Eva (evgarmar@tal.upv.es)
Fernández Segovia, Isabel (isferse1@tal.upv.es)
Fuentes López, Ana (anfuelo@upvnet.upv.es)
Departamento Departamento de Tecnología de Alimentos
Centro ETSIAMN. Universitat Politècnica de València
1 Resumen de las ideas clave
El análisis del contenido en compuestos polifenólicos de un alimento es importante
debido a la gran variedad de actividades biológicas que estos compuestos
presentan, considerándose uno de los fitoquímicos alimentarios más importantes
por su contribución al mantenimiento de la salud humana. La actividad biológica
de los polifenoles está relacionada con su carácter antioxidante. Además de los
efectos sobre la salud, muchos compuestos polifenólicos tienen un efecto sobre la
calidad de los alimentos que los contienen, puesto que son responsables de
algunas propiedades sensoriales.
Su determinación puede realizarse por medio de diversos métodos. En este artículo
se describe el ensayo Folin-Ciocalteu que se basa en que los compuestos fenólicos
reaccionan con el reactivo de Folin- Ciocalteu, a pH básico, dando lugar a una
coloración azul susceptible de ser determinada espectrofotométricamente a 765
nm.
2 Introducción
Los compuestos fenólicos constituyen una de las principales clases de metabolitos
secundarios de los vegetales, donde desempeñan diversas funciones fisiológicas.
Se trata de compuestos que intervienen en el crecimiento y reproducción de las
plantas, así como en procesos defensivos contra agentes patógenos,
depredadores o radiación ultravioleta. Tradicionalmente se han considerado
como sustancias antinutritivas debido al efecto adverso de uno de sus
componentes principales, los taninos, en la digestibilidad de proteínas. Sin
embargo, actualmente existe gran interés en estos compuestos debido a la gran
variedad de actividades biológicas que presentan, considerándose uno de los
compuestos fitoquímicos alimentarios más importantes por su contribución al
mantenimiento de la salud humana. La actividad biológica de los polifenoles está
relacionada con su carácter antioxidante, el cual es debido a su habilidad para
quelar metales, inhibir la actividad de la enzima lipooxigenasa y actuar como
atrapadores de radicales libres. De hecho, diversas organizaciones internacionales,
en el ámbito de la nutrición, recomiendan un consumo diario como mínimo de
cinco raciones de fruta o verdura, para asegurar una adecuada ingesta de
antioxidantes y prevenir enfermedades relacionadas con el estrés oxidativo.
Existen numerosos estudios que proporcionan datos que apoyan la correlación
negativa entre la ingestión de compuestos fenólicos y el riesgo de padecer ciertas
enfermedades, incluyendo las enfermedades cardiovasculares, cáncer,
enfermedad de Alzheimer, cataratas y otras disfunciones relacionadas con la
edad. Además de estos efectos beneficiosos para la salud, también se ha
estudiado su efecto antiinflamatorio y su efecto preventivo en el tratamiento de
asma.
La cantidad de compuestos polifenólicos y tipos presentes en un alimento varía en
función de la especie vegetal, variedad y parte del vegetal considerada (fruto,
semillas, brotes, hojas), horas de exposición solar, grado de madurez, condiciones
de cultivo, procesado, condiciones de almacenamiento, etc.
Los compuestos polifenólicos presentan en su estructura química uno o más anillos
de benceno y uno o más grupos hidroxilados con algún elemento común, como
los grupos funcionales de ésteres, ésteres de metilo, glicósidos, etc. Se trata de
moléculas muy reactivas que normalmente se encuentran combinadas con
azúcares, como la glucosa, galactosa, arabinosa, ramosa, xilosa o los ácidos
glucorónicos y galacturónicos. También pueden unirse con ácidos carboxílicos,
ácidos orgánicos, aminoácidos y lípidos. Aunque pueden encontrarse distintas
clasificaciones de polifenoles, dependiendo de su complexidad química, pueden
agruparse en C6, C6-Cn, C6-Cn-C6, siendo n≤3. La tabla 1 muestra los diferentes
grupos de polifenoles y algunos ejemplos de cada grupo y la figura 1 muestra la
estructura química del grupo fenol.
Tabla 1. Clasificación de los polifenoles y ejemplos de ellos.
Estructura química Tipo Ejemplo de polifenol
C6 Fenol simple Eugenol
C6-C1 Ácido fenólico
Ácido benzoico
Ácido gálico
Ácido elágico
(C6-C1)n Taninos hidrolizables
C6-C2 Ácido fenil acético
C6-C3 Ácido hidroxicinámico
Cumarinas
Ácido cafeico
Ácido ferúlico
(C6-C3)2 Lignanos
C6-C1-C6 Benzofenonas
Xantonas
C6-C2-C6 Estilbenos Resveratrol
C6-C3-C6 Flavonoides
Chalconas
Antocinaninas
Flavonoles
Flavonas
Flavanonas
Isoflavonas
Flavanoles
(C6-C3-C6)n Proantocianinas
(taninos 4≤n≤11)
Figura 1. Estructura química del grupo fenol
Además de los efectos sobre la salud, muchos compuestos polifenólicos tienen un
efecto sobre la calidad de los alimentos que los contienen, puesto que son
responsables de algunas propiedades sensoriales. Por ejemplo, las antocianinas
son pigmentos responsables del color rojo-azulado de muchas frutas como las
fresas, uva, ciruelas, etc., los flavonoles aportan el color amarillo característico de
algunas partes externas de frutas o vegetales, las f1avanonas son responsables del
sabor amargo de algunos cítricos (por ejemplo, la naringina en el pomelo o la
neohesperidina en la naranja), el eugenol caracteriza el intenso aroma de los
plántanos o los taninos que confieren la astringencia a algunas frutas. Otros
polifenoles, como los ácidos hidroxicinámicos y sus derivados, pueden ser oxidados
por enzimas presentes en los tejidos vegetales, dando lugar a productos de color
pardo.
3 Objetivos
Con este artículo se persigue que los alumnos adquieran la capacidad de:
 Aplicar el método de Folin-Ciocalteu para determinar el contenido en
polifenoles totales de productos vegetales.
 Cuantificar los compuestos polifenólicos totales de una muestra a partir de
la construcción de una recta patrón de ácido gálico.
4 Desarrollo
A continuación pasamos a describir la determinación del contenido en polifenoles
totales empleando el método espectrofotométrico de Folin-Ciocalteu en una
muestra de zumo de naranja.
4.1 Fundamento del método
El ensayo Folin-Ciocalteu se utiliza como medida del contenido en compuestos
fenólicos totales en productos vegetales. Se basa en que los compuestos fenólicos
reaccionan con el reactivo de Folin-Ciocalteu, a pH básico, dando lugar a una
coloración azul susceptible de ser determinada espectrofotométricamente a 765
nm. Este reactivo contiene una mezcla de wolframato sódico y molibdato sódico
en ácido fosfórico y reacciona con los compuestos fenólicos presentes en la
muestra. El ácido fosfomolibdotúngstico (formado por las dos sales en el medio
ácido), de color amarillo, al ser reducido por los grupos fenólicos da lugar a un
complejo de color azul intenso, cuya intensidad es la que medimos para evaluar el
contenido en polifenoles (Figura 2).
Figura 2. Mecanismo de acción del reactivo de Folin-Ciocalteu.
El mecanismo de reacción es una reacción redox, por lo que además puede
considerarse también, como un método de medida de la actividad antioxidante
total.
La oxidación de los polifenoles presentes en la muestra, causa la aparición de una
coloración azulada que presenta un máximo de absorción a 765 nm, y que se
cuantifica por espectrofotometría en base a una recta patrón de ácido gálico
(Figura 3). Se trata de un método preciso y sensible, que puede padecer
numerosas variaciones, fundamentalmente en lo relativo a los volúmenes utilizados
de la muestra a analizar, concentración de reactivos y tiempo de reacción.
Figura 3. Ácido gálico
También se pueden producir variaciones en el modo de expresar los resultados, sin
embargo, el patrón recomendado es el ácido gálico. Este ensayo de análisis de
los polifenoles totales, se utiliza con frecuencia en el estudio de las propiedades
antioxidantes de alimentos vegetales, como zumos de fruta, al tratarse de un
parámetro que generalmente, muestra una estrecha correlación con los
diferentes métodos de medición de la actividad antioxidante.
4.2 Material y Reactivos
Material e instrumentación
-Espectrofotómetro UV-Visible
-Balanza analítica
-Centrífuga
-Agita tubos (vortex)
-Matraces aforados de 25 mL y 10 mL
-Vasos de precipitados de 50 mL
-Pipetas de 1, 5 y 10 mL
-Tubos de ensayo con tapón
-Tubos de centrífuga
-Cubetas de plástico de 3 mL para espectrofotometría visible
Reactivos químicos
-Ácido Gálico
-Metanol
-Agua destilada
-Reactivo de Folin-Ciocalteau
-Carbonato sódico 7,5%
-Fluoruro de sodio
4.3 Procedimiento experimental
Preparación de disoluciones patrón de ácido gálico
En este ejemplo se hará una disolución de ácido gálico de 100 mg/L (disolución
concentrada o madre), a partir de esta disolución se prepararán 10 mL de
disoluciones diluidas de concentraciones crecientes de ácido gálico entre 0 y 16
ppm, según se detalla en la tabla 2.
Para ello se procederá de la siguiente manera:
1. Preparar los tubos de ensayo numerados.
2. Añadir a cada tubo la cantidad correspondiente de agua destilada (tabla 2).
3. Añadir a cada tubo la cantidad correspondiente de ácido gálico (tabla 2).
4. Agitar en vortex y mantener en oscuridad y en refrigeración.
Tabla 2. Preparación de la curva patrón de ácido gálico a partir de una disolución
concentrada de 100 mg/L.
Reactivos Concentración (mg/L) de la curva patrón de ácido gálico
0 2 4 6 8 10 12 14 16
Ácido gálico (mL) 0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4 1,6
Agua (mL) 10 9,8 9,6 9,4 9,2 9 8,8 8,6 8,4
Preparación del extracto de polifenoles de la muestra de zumo
Para la extracción de los compuestos fenólicos de la muestra de zumo de naranja
se seguirá la metodología propuesta por Tomás-Barberán et al., 2001.
1. En un tubo tomar la cantidad adecuada de muestra de zumo y añadir metanol
en relación 1:2.
2. Adicionar NaF 2mM para inactivar la encima polifenol oxidasa y prevenir la
degradación de los polifenoles durante el ensayo.
3. Homegeneizar el contenido de los tubos en el vortex y centrifugar a 10000 rpm
durante 15 minutos a 10ºC.
4. Recuperar el sobrenadante.
Determinación de polifenoles en la muestra y en los patrones de ácido gálico
1. Tomar 250 μL de cada disolución patrón de ácido gálico o del sobrenadante
procedente de la extracción de los compuestos polifenólicos en la muestra y
colocarlos en matraces aforados de 25 mL.
2. Añadir 15 mL de agua destilada y 1,25 mL de reactivo de Folin-Ciocalteau.
3. Homogeneizar el contenido de los matraces y dejar reposar 8 minutos en
oscuridad.
4. Transcurrido este tiempo, adicionar a cada matraz 3,75 mL de la disolución de
carbonato sódico al 7,5 % y llevar a un volumen de 25 mL con agua destilada.
5. Homogeneizar los matraces y mantener en oscuridad a temperatura ambiente
durante 2 horas.
5. Medir la absorbancia a 765 nm.
4.4 Cuantificación e interpretación de los resultados
A partir de los valores de absorbancia obtenidos de cada concentración de
ácido gálico se construirá la correspondiente recta de calibrado.
Así, siguiendo con el ejemplo anterior, supongamos que se ha obtenido la recta
de calibrado que aparece en la Figura 4.
Figura 4. Ejemplo de recta de calibrado de ácido gálico
¿Cómo se pueden cuantificar los polifenoles en la muestra de zumo con los datos
de la recta patrón?
Para ello hay que sustituir el valor de la absorbancia obtenida para la muestra de
zumo en la ecuación de la recta de calibrado (valor de la ordenada, “y”) y
despejar “x” que corresponde a la concentración de ácido gálico en el zumo.
Veámoslo con un ejemplo: si hemos obtenido un valor de absorbancia de 0,3 →
x=(0,3-0,0328)/0,04651 = 5,74 mg/L de ácido gálico en el extracto de zumo.
Para poder expresar los resultados en mg de ácido gálico por 100 mL de zumo,
hemos de tener en cuenta la cantidad de disolvente empleado en la extracción y
la cantidad de muestra que hemos tomado para realizar el análisis.
Así, en nuestro ejemplo: si se tomaron 5 mL de zumo y se emplearon 10 mL de
metanol en la extracción, se procedería de la siguiente manera:
mg ácido gálico
100 mL zumo
=
5,74 mg
1000 mL
x
10 mL disolvente
5 mL zumo
x 100= 1,15
Absorbancia
mg/L ácido gálico
y = 0,04651x + 0,0328
R = 0,9964
5 Cierre
En este objeto de aprendizaje se ha descrito el fundamento y el procedimiento
experimental del análisis de compuestos polifenólicos empleando el método
espectrofotométrico de Folin-Ciucalteu. Con ayuda de un ejemplo se ha
determinado la concentración de estos compuestos en una muestra de zumo de
naranja.
6 Bibliografía
[1] Andrés-Lacueva, C; Medina-Remon, A; L1orach, R; Urpi-Sarda, M; Khan, N; Chiva-
Blanch, G; Zamora-Ros, R; Rotches-Ribalta, M; Larnuela-Raventós, R. M. (2010).
“Phenolic Compounds: Chemistry and Occurrence in Fruits and Vegelables”, en L. A
De la Rosa; E. Alvarez-Parrilla,; G. A González-Aguilar Eds. Fruit and Vegetable
Phytochemicals: Chemistry, Nutritional Value and Stability (first edition), Blackwell
Publishing lowa, USA.
[2] Kaur, C. y Kapoor, H. C. (2001). “Antioxidants in fruits and vegetables-The
millennium's health”. International Journal of Food Science and Technology, vol. 36,
nº. 7, pp. 703–725,
[3] Klein, P. y Kurilich, A. C. (2000). “Processing Effects on Dietary Antioxidants from
Plant Foods”. HortScience, vol. 35, nº4, p.580.
[4] Pandey, K. B. y Rizvi, S. I. (2009). “Plant polyphenols as dietary antioxidants in
human health and disease”. Oxididative Medicine Cellular Longevity. vol.2, nº5,
p.270.
[5] Tomás-Barberán, FA.; Gil, M.I.; Paedar Cremin, A L.; Waterhouse, B.; Hess-Pierce,
L.; Kader. A. (2001). “HPLC-DAD-ESIMS Analysis of Phenolic Compounds in Nectarines,
Peaches, and Plums”. Journal of Agriculture and Food Chemistry, vol.49, pp.4748-
4760.

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Determinación polifenoles Folin

  • 1. Determinación de polifenoles totales por el método de Folin- Ciocalteu Apellidos, nombre García Martínez, Eva (evgarmar@tal.upv.es) Fernández Segovia, Isabel (isferse1@tal.upv.es) Fuentes López, Ana (anfuelo@upvnet.upv.es) Departamento Departamento de Tecnología de Alimentos Centro ETSIAMN. Universitat Politècnica de València
  • 2. 1 Resumen de las ideas clave El análisis del contenido en compuestos polifenólicos de un alimento es importante debido a la gran variedad de actividades biológicas que estos compuestos presentan, considerándose uno de los fitoquímicos alimentarios más importantes por su contribución al mantenimiento de la salud humana. La actividad biológica de los polifenoles está relacionada con su carácter antioxidante. Además de los efectos sobre la salud, muchos compuestos polifenólicos tienen un efecto sobre la calidad de los alimentos que los contienen, puesto que son responsables de algunas propiedades sensoriales. Su determinación puede realizarse por medio de diversos métodos. En este artículo se describe el ensayo Folin-Ciocalteu que se basa en que los compuestos fenólicos reaccionan con el reactivo de Folin- Ciocalteu, a pH básico, dando lugar a una coloración azul susceptible de ser determinada espectrofotométricamente a 765 nm. 2 Introducción Los compuestos fenólicos constituyen una de las principales clases de metabolitos secundarios de los vegetales, donde desempeñan diversas funciones fisiológicas. Se trata de compuestos que intervienen en el crecimiento y reproducción de las plantas, así como en procesos defensivos contra agentes patógenos, depredadores o radiación ultravioleta. Tradicionalmente se han considerado como sustancias antinutritivas debido al efecto adverso de uno de sus componentes principales, los taninos, en la digestibilidad de proteínas. Sin embargo, actualmente existe gran interés en estos compuestos debido a la gran variedad de actividades biológicas que presentan, considerándose uno de los compuestos fitoquímicos alimentarios más importantes por su contribución al mantenimiento de la salud humana. La actividad biológica de los polifenoles está relacionada con su carácter antioxidante, el cual es debido a su habilidad para quelar metales, inhibir la actividad de la enzima lipooxigenasa y actuar como atrapadores de radicales libres. De hecho, diversas organizaciones internacionales, en el ámbito de la nutrición, recomiendan un consumo diario como mínimo de cinco raciones de fruta o verdura, para asegurar una adecuada ingesta de antioxidantes y prevenir enfermedades relacionadas con el estrés oxidativo. Existen numerosos estudios que proporcionan datos que apoyan la correlación negativa entre la ingestión de compuestos fenólicos y el riesgo de padecer ciertas enfermedades, incluyendo las enfermedades cardiovasculares, cáncer, enfermedad de Alzheimer, cataratas y otras disfunciones relacionadas con la edad. Además de estos efectos beneficiosos para la salud, también se ha estudiado su efecto antiinflamatorio y su efecto preventivo en el tratamiento de asma. La cantidad de compuestos polifenólicos y tipos presentes en un alimento varía en función de la especie vegetal, variedad y parte del vegetal considerada (fruto, semillas, brotes, hojas), horas de exposición solar, grado de madurez, condiciones de cultivo, procesado, condiciones de almacenamiento, etc.
  • 3. Los compuestos polifenólicos presentan en su estructura química uno o más anillos de benceno y uno o más grupos hidroxilados con algún elemento común, como los grupos funcionales de ésteres, ésteres de metilo, glicósidos, etc. Se trata de moléculas muy reactivas que normalmente se encuentran combinadas con azúcares, como la glucosa, galactosa, arabinosa, ramosa, xilosa o los ácidos glucorónicos y galacturónicos. También pueden unirse con ácidos carboxílicos, ácidos orgánicos, aminoácidos y lípidos. Aunque pueden encontrarse distintas clasificaciones de polifenoles, dependiendo de su complexidad química, pueden agruparse en C6, C6-Cn, C6-Cn-C6, siendo n≤3. La tabla 1 muestra los diferentes grupos de polifenoles y algunos ejemplos de cada grupo y la figura 1 muestra la estructura química del grupo fenol. Tabla 1. Clasificación de los polifenoles y ejemplos de ellos. Estructura química Tipo Ejemplo de polifenol C6 Fenol simple Eugenol C6-C1 Ácido fenólico Ácido benzoico Ácido gálico Ácido elágico (C6-C1)n Taninos hidrolizables C6-C2 Ácido fenil acético C6-C3 Ácido hidroxicinámico Cumarinas Ácido cafeico Ácido ferúlico (C6-C3)2 Lignanos C6-C1-C6 Benzofenonas Xantonas C6-C2-C6 Estilbenos Resveratrol C6-C3-C6 Flavonoides Chalconas Antocinaninas Flavonoles Flavonas Flavanonas Isoflavonas Flavanoles (C6-C3-C6)n Proantocianinas (taninos 4≤n≤11)
  • 4. Figura 1. Estructura química del grupo fenol Además de los efectos sobre la salud, muchos compuestos polifenólicos tienen un efecto sobre la calidad de los alimentos que los contienen, puesto que son responsables de algunas propiedades sensoriales. Por ejemplo, las antocianinas son pigmentos responsables del color rojo-azulado de muchas frutas como las fresas, uva, ciruelas, etc., los flavonoles aportan el color amarillo característico de algunas partes externas de frutas o vegetales, las f1avanonas son responsables del sabor amargo de algunos cítricos (por ejemplo, la naringina en el pomelo o la neohesperidina en la naranja), el eugenol caracteriza el intenso aroma de los plántanos o los taninos que confieren la astringencia a algunas frutas. Otros polifenoles, como los ácidos hidroxicinámicos y sus derivados, pueden ser oxidados por enzimas presentes en los tejidos vegetales, dando lugar a productos de color pardo. 3 Objetivos Con este artículo se persigue que los alumnos adquieran la capacidad de:  Aplicar el método de Folin-Ciocalteu para determinar el contenido en polifenoles totales de productos vegetales.  Cuantificar los compuestos polifenólicos totales de una muestra a partir de la construcción de una recta patrón de ácido gálico. 4 Desarrollo A continuación pasamos a describir la determinación del contenido en polifenoles totales empleando el método espectrofotométrico de Folin-Ciocalteu en una muestra de zumo de naranja. 4.1 Fundamento del método El ensayo Folin-Ciocalteu se utiliza como medida del contenido en compuestos fenólicos totales en productos vegetales. Se basa en que los compuestos fenólicos reaccionan con el reactivo de Folin-Ciocalteu, a pH básico, dando lugar a una coloración azul susceptible de ser determinada espectrofotométricamente a 765 nm. Este reactivo contiene una mezcla de wolframato sódico y molibdato sódico en ácido fosfórico y reacciona con los compuestos fenólicos presentes en la muestra. El ácido fosfomolibdotúngstico (formado por las dos sales en el medio
  • 5. ácido), de color amarillo, al ser reducido por los grupos fenólicos da lugar a un complejo de color azul intenso, cuya intensidad es la que medimos para evaluar el contenido en polifenoles (Figura 2). Figura 2. Mecanismo de acción del reactivo de Folin-Ciocalteu. El mecanismo de reacción es una reacción redox, por lo que además puede considerarse también, como un método de medida de la actividad antioxidante total. La oxidación de los polifenoles presentes en la muestra, causa la aparición de una coloración azulada que presenta un máximo de absorción a 765 nm, y que se cuantifica por espectrofotometría en base a una recta patrón de ácido gálico (Figura 3). Se trata de un método preciso y sensible, que puede padecer numerosas variaciones, fundamentalmente en lo relativo a los volúmenes utilizados de la muestra a analizar, concentración de reactivos y tiempo de reacción. Figura 3. Ácido gálico También se pueden producir variaciones en el modo de expresar los resultados, sin embargo, el patrón recomendado es el ácido gálico. Este ensayo de análisis de los polifenoles totales, se utiliza con frecuencia en el estudio de las propiedades antioxidantes de alimentos vegetales, como zumos de fruta, al tratarse de un parámetro que generalmente, muestra una estrecha correlación con los diferentes métodos de medición de la actividad antioxidante.
  • 6. 4.2 Material y Reactivos Material e instrumentación -Espectrofotómetro UV-Visible -Balanza analítica -Centrífuga -Agita tubos (vortex) -Matraces aforados de 25 mL y 10 mL -Vasos de precipitados de 50 mL -Pipetas de 1, 5 y 10 mL -Tubos de ensayo con tapón -Tubos de centrífuga -Cubetas de plástico de 3 mL para espectrofotometría visible Reactivos químicos -Ácido Gálico -Metanol -Agua destilada -Reactivo de Folin-Ciocalteau -Carbonato sódico 7,5% -Fluoruro de sodio 4.3 Procedimiento experimental Preparación de disoluciones patrón de ácido gálico En este ejemplo se hará una disolución de ácido gálico de 100 mg/L (disolución concentrada o madre), a partir de esta disolución se prepararán 10 mL de disoluciones diluidas de concentraciones crecientes de ácido gálico entre 0 y 16 ppm, según se detalla en la tabla 2. Para ello se procederá de la siguiente manera: 1. Preparar los tubos de ensayo numerados. 2. Añadir a cada tubo la cantidad correspondiente de agua destilada (tabla 2). 3. Añadir a cada tubo la cantidad correspondiente de ácido gálico (tabla 2). 4. Agitar en vortex y mantener en oscuridad y en refrigeración.
  • 7. Tabla 2. Preparación de la curva patrón de ácido gálico a partir de una disolución concentrada de 100 mg/L. Reactivos Concentración (mg/L) de la curva patrón de ácido gálico 0 2 4 6 8 10 12 14 16 Ácido gálico (mL) 0 0,2 0,4 0,6 0,8 1 1,2 1,4 1,6 Agua (mL) 10 9,8 9,6 9,4 9,2 9 8,8 8,6 8,4 Preparación del extracto de polifenoles de la muestra de zumo Para la extracción de los compuestos fenólicos de la muestra de zumo de naranja se seguirá la metodología propuesta por Tomás-Barberán et al., 2001. 1. En un tubo tomar la cantidad adecuada de muestra de zumo y añadir metanol en relación 1:2. 2. Adicionar NaF 2mM para inactivar la encima polifenol oxidasa y prevenir la degradación de los polifenoles durante el ensayo. 3. Homegeneizar el contenido de los tubos en el vortex y centrifugar a 10000 rpm durante 15 minutos a 10ºC. 4. Recuperar el sobrenadante. Determinación de polifenoles en la muestra y en los patrones de ácido gálico 1. Tomar 250 μL de cada disolución patrón de ácido gálico o del sobrenadante procedente de la extracción de los compuestos polifenólicos en la muestra y colocarlos en matraces aforados de 25 mL. 2. Añadir 15 mL de agua destilada y 1,25 mL de reactivo de Folin-Ciocalteau. 3. Homogeneizar el contenido de los matraces y dejar reposar 8 minutos en oscuridad. 4. Transcurrido este tiempo, adicionar a cada matraz 3,75 mL de la disolución de carbonato sódico al 7,5 % y llevar a un volumen de 25 mL con agua destilada. 5. Homogeneizar los matraces y mantener en oscuridad a temperatura ambiente durante 2 horas. 5. Medir la absorbancia a 765 nm.
  • 8. 4.4 Cuantificación e interpretación de los resultados A partir de los valores de absorbancia obtenidos de cada concentración de ácido gálico se construirá la correspondiente recta de calibrado. Así, siguiendo con el ejemplo anterior, supongamos que se ha obtenido la recta de calibrado que aparece en la Figura 4. Figura 4. Ejemplo de recta de calibrado de ácido gálico ¿Cómo se pueden cuantificar los polifenoles en la muestra de zumo con los datos de la recta patrón? Para ello hay que sustituir el valor de la absorbancia obtenida para la muestra de zumo en la ecuación de la recta de calibrado (valor de la ordenada, “y”) y despejar “x” que corresponde a la concentración de ácido gálico en el zumo. Veámoslo con un ejemplo: si hemos obtenido un valor de absorbancia de 0,3 → x=(0,3-0,0328)/0,04651 = 5,74 mg/L de ácido gálico en el extracto de zumo. Para poder expresar los resultados en mg de ácido gálico por 100 mL de zumo, hemos de tener en cuenta la cantidad de disolvente empleado en la extracción y la cantidad de muestra que hemos tomado para realizar el análisis. Así, en nuestro ejemplo: si se tomaron 5 mL de zumo y se emplearon 10 mL de metanol en la extracción, se procedería de la siguiente manera: mg ácido gálico 100 mL zumo = 5,74 mg 1000 mL x 10 mL disolvente 5 mL zumo x 100= 1,15 Absorbancia mg/L ácido gálico y = 0,04651x + 0,0328 R = 0,9964
  • 9. 5 Cierre En este objeto de aprendizaje se ha descrito el fundamento y el procedimiento experimental del análisis de compuestos polifenólicos empleando el método espectrofotométrico de Folin-Ciucalteu. Con ayuda de un ejemplo se ha determinado la concentración de estos compuestos en una muestra de zumo de naranja. 6 Bibliografía [1] Andrés-Lacueva, C; Medina-Remon, A; L1orach, R; Urpi-Sarda, M; Khan, N; Chiva- Blanch, G; Zamora-Ros, R; Rotches-Ribalta, M; Larnuela-Raventós, R. M. (2010). “Phenolic Compounds: Chemistry and Occurrence in Fruits and Vegelables”, en L. A De la Rosa; E. Alvarez-Parrilla,; G. A González-Aguilar Eds. Fruit and Vegetable Phytochemicals: Chemistry, Nutritional Value and Stability (first edition), Blackwell Publishing lowa, USA. [2] Kaur, C. y Kapoor, H. C. (2001). “Antioxidants in fruits and vegetables-The millennium's health”. International Journal of Food Science and Technology, vol. 36, nº. 7, pp. 703–725, [3] Klein, P. y Kurilich, A. C. (2000). “Processing Effects on Dietary Antioxidants from Plant Foods”. HortScience, vol. 35, nº4, p.580. [4] Pandey, K. B. y Rizvi, S. I. (2009). “Plant polyphenols as dietary antioxidants in human health and disease”. Oxididative Medicine Cellular Longevity. vol.2, nº5, p.270. [5] Tomás-Barberán, FA.; Gil, M.I.; Paedar Cremin, A L.; Waterhouse, B.; Hess-Pierce, L.; Kader. A. (2001). “HPLC-DAD-ESIMS Analysis of Phenolic Compounds in Nectarines, Peaches, and Plums”. Journal of Agriculture and Food Chemistry, vol.49, pp.4748- 4760.