Vigilancia entomologica de vectores

1. M b lg o . Z A F R A
H AR O , Lu i s

3. conjunto de actividades que constituyen un proceso
descentralizado, permanente, organizado,
programado y orientado al registro sistemático de
información sobre las poblaciones de insectos vectores,
y su medio ambiente, con la finalidad de predecir,
prevenir y/o controlar los daños y molestias
ocasionadas por los vectores causantes de las
enfermedades.

4. conocer la distribución de las especies que son
vectores de enfermedades o que causan molestias a
la población de una determinada zona.
Establecer los índices de infestación o reinfestación
en cada localidad.
Generar y sistematizar información para establecer
las medidas de prevención y control oportunas según
los índices entomológicos encontrados mediante la
vigilancia de los vectores.

5. •Vigilancia pasiva: es aquella en la que el especialista no ejecuta
personalmente la acción para obtener la información, esta se
obtiene directamente de los registros ya establecidos.
•Vigilancia activa: es cuando el especialista ejecuta
personalmente la búsqueda de la información específica, objeto
de la vigilancia.
•Vigilancia especializada: Es un tipo de vigilancia para una
enfermedad específica. es sobre todo, para enfermedades
transmisibles de notificación individual. peste, dengue, chagas u
otras enfermedades causadas por artrópodos.

6. ETAPA PREOPERATORIA
determina la amplitud del problema en un ecosistema.
En esta etapa las encuestas entomológicas son importantes para
obtener información ,poder planificar las actividades antivectoriales.
ETAPA OPERATORIA
Se dirige hacia las vías de propagación de los vectores.
En esta segunda etapa se establecen los métodos de vigilancia para
determinar los grados de infestación y detectar nuevas infestaciones
ETAPA POST- OPERATORIA:
Permitirá tomar medidas radicales de control de los vehículos o del vector
de los focos de infección.
En esta etapa los datos recopilados y que están en las fichas de registro,
deberán ser ingresados a la base de datos del programa del SVARP.
FASE DE MANTENIMIENTO:
Se vigila la presencia del vector, mientras la enfermedad existe en
otras partes del mundo

7. VENTAJAS. DESVENTAJAS:
•Establecer •Periodo de duración
prioridades largo
• Diseñar estrategias •No toda la población
está dispuesta a
• Movilizar recursos colaborar
•Hacer pronósticos •Requiere control
integrado

8. Enfermedad vector
Leshmaniasis Lutzomyia spp.
Enfermedad de Carrión Lutzomyia spp.
Malaria Anopheles spp.
Dengue Aedes aegypti
Fiebre amarilla Aedes aegypti y Haemagogus Sabethes
Chagas Triatominos
Peste Xenopsylla cheopis

10. es una enfermedad viral aguda transmitida por vectores artrópodos
del género Aedes, principalmente por A.aegypti, que se cría en el
agua acumulada en recipientes y objetos en desuso.
Esta enfermedad se caracteriza por una fiebre de aparición súbita
que dura 3 a 7 días acompañada de dolor de cabeza, articulaciones
y músculos.
Una variedad grave de la fiebre es el Dengue Hemorrágico que cursa
con pérdida de líquido y sangre

12. COMPORTAMIENTO DEL ADULTO:
El adulto aedino tiene comportamiento
básicamente diurno, es activo en horas de la
mañana y en la tarde, aunque también es posible
encontrarlos activos durante la noche

13. ETAPA PRE OPERATORIA:
Sensibilizar a la población y las autoridades de diferentes sectores sobre
la importancia de la presencia del Aedes aegypti.
Desarrollar una adecuada organización del sistema de vigilancia
entomológica.

14. ETAPA OPERATORIA O DE ATAQUE
ESCENARIO I: localidades sin
vector y con riesgo de
introducción
ESCENARIO II: localidades
infestadas y sin presencia de casos
autóctonos
ESCENARIO III : localidades
infestadas con Aedes aegypti y
endémica de Dengue Clásico y
Dengue Hemorrágico

15. FASE POST OPERATORIA
La vigilancia entomológica se efectuara
periódicamente en forma activa y pasiva.
Encuestas entomológicas de periodicidad anual.

16. ADULTOS:
La colecta de los adultos se realiza de día, en intradomicilio, se puede
hacer una búsqueda activa, por toda la casa o una colecta con
cebo humano por todo el día.

17. INMADUROS
La búsqueda de larvas se hace casa por casa, en todos los recipientes
de agua

18. INMADUROS

21.  Las leishmaniasis son enfermedades zoonoticas
con un patron de transmision predominante
silvestre.
 Las leishmaniasis son zoonosis que afectan la piel,
las mucosas o las vísceras, resultantes del
parasitismo de los macrófagos por un protozoario
flagelado del género Leishmania, introducido al
organismo por la picadura de un insecto
flebotomíneo, que en el nuevo
 continente pertenece al género Lutzomyia.

22.  Leishmaniasis cutanea
 Leishmaniasis visceral
Leishmaniasis muco –
cutánea

25. En el Peru: los vectores tienen diferentes nombres:
 “titira” o “manta blanca” (HUANUCO).
 “angelillo” o “capa blanca” (AYACUCHO)
 “pumamanchi” o “chuspi” (ANCASH).
 “lalapo” (CAJAMARCA).
 “quitis” (CUZCO).
Se sospecha que los vectores existentes en los valles occidentales
son los mosquitos lutzomyia peruensis y lutzomyia verrucarum.

27.  Equipo necesario para la Colecta:
Antes de cada salida de campo es necesario
programar los tipos de colectas que se van a realizar y
los vectores que se pretende buscar, para llevar todos
los materiales necesarios para la colecta y para tomar
datos meteorológicos y geográficos si dispone del
equipo necesario.
 Equipo necesario para todas las salidas de campo:
 Termohigrómetro .
 Altímetro .
 Receptor del Sistema de Posicionamiento Global
(GPS) .
 Formatos de Registro de Campo.

28.  FASE PRE-OPERATIVA:
Estrategias aplicativas:
Liderazgo y la normatividad
Técnico – económico – social de calidad
Desarrollar el enfoque de estratificación
Eficiencia de la vigilancia y control entomológico
Política financiera
Incorporar a la comunidad e instituciones de la sociedad.
 FESE OPERATIVA O DE ATAQUE:
Pasos a seguir:
Encuesta muestral
Inspección de viviendas
Recolección de adultos
Vigilancia vectorial en instalaciones fronterizas, portuarias y
aéreas.

29.  FASE POST-OPERATIVA:
Según el lugar se clasifica en intra, peri o extradomiciliarios ya sea
por realizarse en el interior, exterior o alrededores de los domicilios
de captura. Trampas manuales, con atrayentes o sin atrayentes,
consideraciones como:
› Conocer el vector, tomando en cuenta las siguientes
características:
› Formas evolutivas
› Comportamiento
› Fototropismo
› Hematofagia
› Geotropismo
› Viabilidad del vector, es decir si se lo desea vivo o muerto,
completo o parte de él, etc.

30. ADULTOS:
 Índice de captura hombre noche (ICHN):
Este indicador se toma como el número de insectos colectados durante toda la noche
por colector, la captura se inicia a las 6 pm y termina a las 6 am del día siguiente. Esta
captura se realiza con el sebo humano dentro de una trampa tipo Shannon.
 Índice de captura hombre hora (ICHH):
Este se obtiene del numero de Lutzomyia sp. colectadas por hora de colecta por
colector esta captura se inicia a las 6 pm y termina a las 10 pm y se realiza con la trampa
Shannon en peridomicilio y extradomicilio, los datos de ICHN también sirven para obtener
datos de ICHH.
 Índice de captura por trampa de luz CDC (ICT):
Este método mide el número de Lutzomyia sp. colectadas por trampa colocada. Este
método se aplica para las colectas intradomiciliares, se cuelga la trampa en un
dormitorio a 1.80 m a 2 m del suelo, se utiliza esta trampa ya que los insectos son muy
pequeños y es difícil de capturarlos si no se obtiene una superficie blanca donde se las
pueda distinguir.

32.  DEFINICION:
Es una antropozoonosis parasitaria causada por el
esporozoarios del Genero Plasmodium (Plasmodium
falciparum, Plasmodium vivax, Plasmodium
malariae, Plasmodium ovale o Plasmodium knowlesi)
transmitidos por la picadura de mosquito del Genero
Anopheles. Clínicamente se caracteriza por el acceso
palúdico (escalofríos, fiebre y sudoración).
 VECTOR:
Estos insectos son comúnmente llamados “zancudos”, son
de amplia distribución a nivel nacional, desde la costa,
hasta la llanura amazónica, pasando por los valles
interandinos hasta una altitud de 2700 msnm
aproximadamente.

33.  Tienen cuatro estadios larvarios acuáticos, uno de pupa activa (que no se
alimenta), y el imago o adulto. Los sitios escogidos como criaderos de las larvas
pueden variar mucho de especie a especie, pero generalmente prefieren cuerpos
de agua con vegetación emergente (arrozales, pozas, cursos lentos de riachuelos
o drenes, etc.) sean permanentes o temporales, inclusive los huecos de los arboles,
brácteas, hojas de bromeliáceas.
 Usualmente todo el desarrollo, desde huevo a adulto, dura alrededor de unos 8 a
14 días o mas, dependiendo de las condiciones de temperatura y disponibilidad
de alimento.

34. INMADUROS

35.  EQUIPO NECESARIO PARA LA COLECTA:
Antes de cada salida de campo es necesario programar los tipos
de colectas que se van a realizar y los vectores que se pretender
buscar, para llevar todos los materiales necesarios para la colecta
y para la colecta y para tomar datos meteorológicos y
geográficos si dispone del equipo necesario.
Equipo necesario para todas las salidas de campo:
 Termohigrómetro.
 Altímetro.
 Receptor del sistema de posicionamiento global (GPS).
 Formatos de registro de campos.

36.  Adultos:
El método que se utiliza es el de captura con Cebo Humano solo (CH), los
tipos de colecta usados son Intradomicilio y Peridomicilio; la colecta en
extradomicilio, nos puede proporcionar la fauna de estos culícidos que
usualmente no se acercan a las viviendas, pero que sí existen en la
localidad, lo que completaría el estudio de la fauna existente ahí.
Lo importante en las capturas intradomiciliares y peridomiciliares es que
nos permite determinar el comportamiento del insecto en relación a las
habitaciones humanas y las personas, nivel de antropofilia y densidad de
la población de vectores en ese momento.
 Materiales para colecta de adultos:
 Capturador o aspirador manual de insectos
 Vasos colectores etiquetados (uno por horade colecta)
 Linterna con pilas
 Reloj.

37. Índice de Picadura Hombre Noche (IPHN):
Este indicador se toma de colectas de 12 horas continúas por hombre, comenzando a
las 18:00 horas y terminando a las 06:00 horas de la mañana siguiente. Se aconseja que
el trabajo sea realizado por dos personas como mínimo (mejor 3) y trabajar en turnos
rotativos de 4 horas hasta completar las 12 horas de colecta.
Índice de Picadura Hombre Hora (IPHH):
Esta colecta se hace por horas, desde las 18:00 horas hasta las 22:00, con cebo
humano solo y se realiza en Intradomicilio y Peridomicilio. Obviamente que los datos de
la colecta de toda la noche también pueden tomarse para el IPHH.
Larvas y Criaderos:
Hacer un croquis de la localidad, y luego proceder a la búsqueda de los cuerpos de
agua, criaderos de larvas o no, ubicando cada uno dentro del croquis, y utilizando el
formato de Registro de Cuerpos de Agua, tomar datos de cada uno, incluyendo
dimensiones, vegetación, fauna (peces y artrópodos), etc., de acuerdo a las variables
indicadas.
Una vez elegido un punto de colecta, acercarse a la orilla, sin que se proyecte su
sombra sobre el agua (esto ahuyenta las larvas), y con un movimiento rápido introducir
el cucharón y sacarlo de inmediato, eliminar el agua de exceso fuera del criadero y
hacer el conteo y clasificación según estadios larvales, o si no, colocar la muestra en
viales, para hacer el conteo posterior, colocar la etiqueta con los datos de colecta en
los viales antes de colocar la muestra.

38.  Media de Larvas por Cucharonada (L/Cu):
Promedio de larvas encontradas por cada cucharón de muestra
tomado. La unidad de muestra o “punto” es un metro cuadrado,
y se toman 5 cucharonadas por punto (ver tabla 2). Se elige un
punto por cada 5 metros del perímetro. En criaderos muy
grandes, que exceden 100 m de perímetro total aproximado, tipo
piscigranjas, arrozales, cochas o lagunas, se elegirá 10 puntos
como máximo, con unos 10 metros aproximadamente entre cada
punto donde se tomarán las muestras. Tomar en cuenta que
cada punto equivale a un área de 1 m2 aproximadamente, y
dentro de esa área se toman las 5 cucharonadas, una en cada
esquina y una al centro del punto.

39.  TRANSPORTE DE LARVAS DE ANOPHELES:
Una vez colectadas las larvas se las pasa a un vial con alcohol
comercial o etanol 75%, se prepara una etiqueta apuntando todos
los datos de la colecta: Departamento, Provincia, distrito, localidad,
altitud, tipo y clasificación del criadero (nombre o código), fecha,
colector.
NIVELES DE RIESGO ENTOMOLOGICO:
PARA LA ABUNDANCIA DE MOSQUITO: Anopheles

40.  DESCRIPCIÓN
La peste en una infección zoonotica bacteriana aguda que afecta
principalmente a los roedores, quienes puedan transmitirla a otros
mamíferos y accidentalmente al ser humano a través de la picadura de
la pulga.
 AGENTE ETIOLÓGICO:
Yersenia pestis
 VECTOR
PÚLIDOS (pulgas, vectores de peste)
Las pulgas son los vectores de Peste, y mantienen el ciclo de transmisión
entre sus reservorios que son los ratones. Hay varias especies de pulgas
consideradas como vectores, la principal es Xenopsylla cheopis (Fig. 20),
la pulga de las ratas.

41.  CICLO DE VIDA:
 Las larvas viven entre el polvo y los residuos de suciedad de las
madrigueras de ratones o en una casa, se alimentan de estos residuos,
insectos muertos o restos de sangre eliminados por las pulgas adultas,
pasan por 2 ó 3 estadíos larvales (depende del género de pulga) y luego
forma una pupa, y así permanece latente hasta que la presencia de un
animal o humano lo estimula para salir y alimentarse.

42.  Modo de transmisión
La transición del agente etiológico se produce por la picadura
de la pulga infectante de la especie xenopsilla cheopis. En el
campo y en el laboratorio se produce rara vez por contacto
directo de heridas o mucosas con tejidos de animales
infectado.
 Vigilancia entomológica
Vigilar la densidad poblacional de pulgas en forma
tridimensional, para conocer como varia la tendencia. La
vigilancia se debe realizar mediante los siguientes indicadores.

43.  Vigilancia en vectores
 Las pulgas son los principales vectores de peste bubónica y también son
importantes vectores enzoóticos de la enfermedad en poblaciones de
roedores synantrópicos, domésticos y silvestres.
 La capacidad de llegar a infectarse y de transmitir la peste varía
sustancialmente de una especie a otra. Si bien no se puede pasar por
alto la importancia de ninguna especie, son relativamente pocas las que
tienen capacidad de iniciar y mantener epizootias de peste murina que
den por resultado epidemias generalizadas de peste bubónica en el ser
humano.
 De allí la necesidad de conocer su distribución geográfica y lo que es
más, su especificidad en relación con su hospedero, pues no todos los
géneros y especies de roedores tienen como vector útil la misma pulga.
 Así se da el caso que entre los cricétidos (roedores silvestres) el género de
pulgas más frecuentes para los géneros: Akodon, Oryzomys y otros, son
las pulgas del género Polygenes y Craneopsylla. Entre los múridos (ratas
synantrópicas) la pulga más común es la Xenopsilla cheopis; infestando
al hombre se encuentra frecuentemente el Pulex irritans, el mismo que
puede infestar al roedor que cohabita en la vivienda y al cuy (género
Cavia); aunque este último tiene como pulga específica el Tiamastus
cavícola.

44.  COLECTA DE PÚLIDOS:
 Pulgas:
Las pulgas pueden obtenerse de roedores vivos o muertos, de la vivienda, mamíferos
domésticos y ropa de cama. Para las pruebas de cultivo y susceptibilidad a insecticidas, los
especímenes deben ser colectados vivos. Para la determinación de Y. pestis, las pulgas
colectadas se colocarán en frascos con capacidad de 2 ml. conteniendo solución salina
estéril mas Tween 80; para el estudio taxonómico se colocarán en viales conteniendo alcohol
de 70º.
 Adultos:
Para el caso de las pulgas de roedores, se debe atrapar primero a los roedores vivos (ratas,
ratones vivos), dormirlos o anestesiarlos (éter o Promazil), y luego sobre una bandeja de fondo
claro, “peinar” el pelaje, sujetando al animal por la cola, de modo que las pulgas caigan al
fondo de la bandeja, se recuerda que las personas que hacen la búsqueda deben usar
guantes, mascarilla y mandil como protección, se sigue el mismo procedimiento para buscar
pulgas en las mascotas domésticas (perros, gatos), de preferencia tratar de conseguir
colaboración de los dueños para evitar reacciones agresivas de los animales. Las pulgas
capturadas se ponen directamente en un vial con alcohol 75% o en un vial vacío para
preservarlos en seco. También se puede buscar pulgas en la ropa de cama, especialmente
las frazadas, la que se expone al sol para ahuyentar a las pulgas y capturarlas.

45. En un foco de peste pueden observarse muchas fluctuaciones en la densidad de la
población de pulgas; debido principalmente a la irregular distribución de las pulgas en
los roedores, a variaciones estacionales, a concentraciones anormales en huéspedes
individuales como resultado de epizootias de peste y otros factores no muy bien
definidos.
 Indicé Específico (I.E):
Se calcula dividiendo el número de pulgas de una especie particular entre el número
total de roedores de una especie particular.
N° pulgas por especie
I.E = --------------------------------
N° roedores por especie
I.E. > 1 Con relación a la X. cheopis es Indicativo de situación de riesgo.
 Sin embargo es muy posible que índices inferiores de 1 con respecto a la X. cheopis representen
riesgo en zona endémica al comienzo de la estacionalidad de peste y que índices superiores a 1
no indiquen una situación abiertamente peligrosa en áreas no endémicas

46. Indicé porcentual
Se calcula dividiendo el número de huéspedes roedores específicos encontrados
infestados de una especie de pulga particular por 100, entre el número total de los
roedores específicos capturados.
N°. De roedores específicos
Infestados de espécie de pulga específica
I.P = -----------------------------------------------------x 100
N°. De roedores específicos capturados
También resulta de gran utilidad poder determinar otros índices como son:
Indicé General de pulgas:
La gran mortalidad de la población de ratas hospederas por epizootias o intervenciones
de control resultará en un incremento en el índice de pulgas por rata.
N°. de pulgas colectadas
I.G.P = -------------------------------------
N°. de roedores capturados

47. Indicé de Infestación de pulgas por vivienda:
Que nos permite medir el grado de infestación de una vivienda y la efectividad
de la desinsectación en la misma.
N° pulgas colectadas
Indicé de Infestación = ----------------------------------------
de pulgas por vivienda N° de especies* espulgadas

48.  Índice Infestación Domiciliar de Pulgas (IIDPu):
Este índice es el porcentaje de casas positivas a la presencia de pulgas
sobre el número de casas inspeccionadas. Para revisar la casa es
importante tener la cooperación de los dueños, después se procede a la
revisión de la ropa de cama, y los animales domésticos que suelen
encontrarse o que viven dentro de la casa.
 Índice Específico de Xenopsylla cheopis (IEXe):
Este índice se obtiene del promedio de pulgas de la especie X. cheopis,
por cada roedor atrapado.
 Especies: Animales domésticos y otros objetos
La experiencia indica que cuando el índice de infestación de pulgas por
vivienda es mayor o igual que 10 se trata de viviendas con alto grado de
hacinamiento. Se deberá buscar pulgas en rincones, corrales, frazadas,
animales, piso, refugio de animales domésticos y otros.
La presencia de X. cheopis y/o P. litargus intradomiciliario, indicarían
factores de riesgo para la transmisión de peste

49. .
 El Riesgo Entomológico está dado por la medida de la posibilidad
de causar un daño o la transmisión de una enfermedad al hombre,
este riesgo depende del nivel de las poblaciones de artrópodos
antropofílicos, y se incrementa cuando se incrementan sus
poblaciones.
 La Vigilancia de los Indicadores Entomológicos nos permitirá
detectar los cambios estacionales que ocurren en las poblaciones
de los artrópodos y su mayor contacto con el hombre. Esto ocurre
cuando se crea condiciones favorables para el desarrollo de sus
estadíos inmaduros.

50.  Descripción
 La enfermedad de chagas es producida por el Trypanosoma cruzi
en cuya transmisión está implicada la presencia de los
triatominos.
 Agente etiológico:
 Trypanosoma cruzi
 Vector
 TRIATOMINOS (Vectores de la Enfermedad de Chagas o
Tripanosomiasis americana= Trypanosoma cruzi)
 Los triatominos o “chirimachas” incluyen a varios géneros que se
encuentran en el Perú, los más comunes son Triatoma infestans,
Panstrogylus spp. Y Rhodnius spp.

51.  Ciclo de Vida:
Los estadíos inmaduros de las chirimachas se denominan
ninfas; éstas presentan 5 etapas y mudan directamente de
ninfa 5 a adulto. La duración de su ciclo completo es muy
variable, puede tomar de 4 meses a 1 ó 2 años, esto
depende básicamente de la disponibilidad de alimentarse
de sangre, pues todos, ninfas y adultos macho y hembra se
alimentan exclusivamente de sangre, y pueden pasar meses
sin alimentarse.

52.  La vigilancia entomológica (o vectorial) es un
conjunto de acciones que suministran información
necesaria que permita la implementación de
acciones tendientes a la eliminación de las
infestaciones por Triatoma infestans en la vivienda
humana y sus anexos peridomiciliarios en forma
permanente, así como impedir la colonización de
otras especies de triatominos.

53.  El sistema de vigilancia debe considerar como objetivo inmediato la
reducción de infestación domiciliaria por T. infestans u otras especies con
la meta de interrupción de la transmisión vectorial. Desde el punto de
vista metodológico el sistema de vigilancia debe definir quién vigila (i.e.,
efectores) donde se vigila (i.e. áreas; domicilio, peridomicilio), cómo se
vigila (i.e. notificación, hora – hombre, rociado, etc.), cuando se vigila
(i.e. período estival, continuo = frecuencia y regularidad) así como el
sistema de información con que se registrarán estos eventos y el método
de supervisión del sistema completo de vigilancia.

54.  Queda muy claro que la vigilancia
entomológica de la enfermedad de Chagas
tiene grandes tipos de eventos a vigilar:
- Vigilancia vectorial
- Infestación (intra- y peridomiciliaria)
- Dispersión
- Colonización
- Infección Natural
 - Se debe incluir la vigilancia con participación
comunitaria en los puestos de identificación de
vinchucas.

55.  Las estrategias de la Vigilancia Entomológica
permanente están directamente relacionadas con el
nivel de compromiso y de organización de la
comunidad, el componente educativo de los
programas, el control en el peridomicilio, la captura
de triatominos en baja densidad y riesgo de
domiciliación de especies secundarias (silvestres).
 Toda Vigilancia Entomológica deberá ser en lo
posible canalizada a través de los Sistemas de Salud
existentes en los países, de modo de facilitar el trabajo
de los efectores locales y la incorporación
comunitaria en las actividades de la Vigilancia.

56. La Vigilancia de Artrópodos involucra a todos aquellos artrópodos
que de una u otra forma causan daños al hombre.
 COLECTA DE TRIATOMINOS:
Adultos y Ninfas:
En este caso hay que diferenciar si es Triatoma infestans u otro
tipo de triatomino como Panstrongylus, Rhodnius y otros géneros y
especies. Sin embargo hay que tomar en cuenta que si bien T.
infestans es domiciliado, también es posible encontrarlos en
ambientes extradomiciliares.
En el caso de los otros géneros y especies de triatominos, la
búsqueda se hace dentro de la casa y ambientes peridomiciliares
también, pero usualmente se las encuentra en el extradomicilio,
en plantas de palmeras y plátano, escondidas en la base de las
hojas, y en nidos de aves y madriguera de algunos animales.

57.  Este método usa los biosensores, que se cuelgan en la
pared de los dormitorios (2-3 en cada uno), y son
revisados periódicamente, e inclusive es posible
realizar la revisión por los mismos habitantes de la
casa. Este biosensor está hecho de una caja de
cartón rectangular con los lados abiertos, en el interior
se coloca un papel plegado en zig-zag, con orificios
para simular un escondite. Para revisar el biosensor, se
descuelga cuidadosamente la caja, se abre y se
colecta los triatominos que haya, se cuentan las
mudas encontradas, se marcan y cuentan las
manchas de los excrementos este método es muy útil
especialmente para detectar casas con bajos niveles
de infestación. Para evaluar casas después de una
fumigación. Se coloca los biosensores después de 7
días

58.  La vigilancia entomológica debe proveer aquellos datos
necesarios para la construcción de los indicadores de uso más
corriente. En orden de importancia, tasas de:
a) infestación.
b) infestación discriminada por lugar de captura (intra y
peridomicilio)
c) Dispersión
d) colonización
e) infección natural
 Dependiendo de la(s) especie(s) presente(s), introducidas
(estrictamente domiciliarias) o autóctonas (nativas) y
dependiendo de los objetivos o metas del control, la relevancia,
mayor o menor de esos indicadores será distinta. En el caso de
pretender la completa eliminación de la especie (como T.
infestans en Cono Sur) la simple presencia (infestación) puede ser
suficiente en la demostración de los resultados.

59.  En estados avanzados del control es recomendable la
construcción de mapas de riesgo de la transmisión del T.
cruzi integrando las diferentes formas de transmisión. En la
construcción de los índices, considerar junto a la prevalencia
de infección, la presencia de acciones de control de la
transmisión:
 Se recomienda la construcción, revisión y validación de
indicadores de proceso, resultados e impacto que abarquen
todas las instancias de vigilancias de la transmisión no
vectorial.

61. El Riesgo Entomológico está dado por la medida de la
posibilidad de causar un daño o la transmisión de una
enfermedad al hombre, este riesgo depende del nivel de
las poblaciones de artrópodos antropofílicos, y se
incrementa cuando se incrementan sus poblaciones.
La Vigilancia de los Indicadores Entomológicos nos
permitirá detectar los cambios estacionales que ocurren en
las poblaciones de los artrópodos y su mayor contacto con
el hombre. Esto ocurre cuando se crea condiciones
favorables para el desarrollo de sus estadíos inmaduros.