Avibacterium

1. Avibacterium
Balderas Sánchez José Pedro
Espinosa González Marco David
Nava Monroy Monserrat
Palma Díaz Hilda Susana
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL
ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS
BIOLÓGICAS
Departamento de Microbiología
Microbiología Veterinaria
NAVA MONROY MONSERRAT

2. Avibacterium paragallinarum
Avibacterium paragallinarum es el agente causal de la coriza infecciosa, una enfermedad del tracto
respiratorio superior de pollos y gallinas.
Sinonimos:
● Rinitis contagiosa
● Coriza bacilar
● Muermo de las aves
● Moquillo
● Coriza mixto infecciosa
Clasificación:
➢ Phylum: proteobacteria
➢ Clase: Gammaproteobacteria
➢ Orden: Pasteurellales
➢ Familia:Pasteurellaceae
➢ Género: Avibacterium

3. ● La hemaglutinina de Av. paragallinarum es clasificada serológicamente en tres serogrupos (A,
B y C) y nueve serovariedades (A-1, A-2, A-3, A-4, B-1, C-1, C-2, C-3, C-4), mediante la técnica
de inhibición a la hemaglutinación
● A la fecha, en México se han identificado las serovariedades A-1, A-2, B-1, C-1 y C-2, siendo
el país con mayor número de serovariedades de hemaglutinina de esta bacteria

4. IMPORTANCIA ECONÓMICA
● En las gallinas en producción: causa alta morbilidad y aunque baja o nula mortalidad si genera
una importante pérdida en la producción de huevos, la que generalmente oscila entre 10% y
40%
● En aves destinadas a carne: genera altas pérdidas debido al retraso del crecimiento, pérdida de
peso e incremento en el número de aves que deben ser eliminadas

5. ● Bacilo Gram negativo
● Microaerofílico
● Tamaño 1-3 um de largo y 0.4-0.8 un
ancho
● Dependiente de Factor V (la mayoría)
● No esporulado
● No móvil
● Catalasa y Oxidasa negativos
● Tendencia formar filamentos
● Fermentadores de glucosa
Fig 1. Morfología microscópica de Avibacterium gallinarum,
observada en lámina teñida con tinción de gram, 100x
CARACTERÍSTICAS

6. ESPECIES

7. MECANISMO DE PATOGENICIDAD
● Presencia de
hemaglutininas
● Fimbrias
● Endotoxinas
termoestables Y
termolábiles
● Proteínas de superficie
● Incubación de 1-3 días
● Colonización del tracto respiratorio
superior
● Inflamación catarral de senos
paranasales
● Edema e inflamación de la zona
periorbital
● Sinusitis
● Conjuntivitis

8. Hospederos y reservorios
● Gallinas
● Pollos
● Predisposición a la enfermedad crónica complicada en gallinas de postura
Las aves de todas las edades son susceptibles, tanto a la infección como a la enfermedad,
aunque hay evidencia de que el periodo de incubación es más corto y curso de la enfermedad
es más prolongado a medida de que aumenta la edad de las aves
Fig 2 . Lesiones macroscópicas provocadas por Avibacterium gallinarum en aves

10. SIGNOS CLÍNICOS
● Exudado nasal seroso o mucoso
● Lagrimeo
● Inflamación de la periferia ocular y
barbilla
● Ojos cerrados y párpados pegados
● Estornudos
● Pérdida de apetito (anorexia)
● Hacinamiento
● Cabeza hinchada o de búho,
principalmente cuando hay
infecciones secundarias como
Mycoplasma gallisepticum,
Pasteurella o incluso E.coli
Fig 3. Gallina ponedora de 18 semanas de edad con ligero edema facial y con descarga
nadal

13. Fig 3.1. Esquema de sistema respiratorio superior de aves de corral.

14. NECROPSIA
Fig 4. Edema facial, senos infraorbitarios expuestos con material seroso

15. Fig 5. Inflamación catarral del seno infraorbitario

16. Fig 6. Inflamación fibrinopurulenta de los pasajes nasales y senos infraorbitales

18. HISTOPATOLOGÍA
● Las lesiones se observan más frecuentemente en tracto respiratorio
superior
● Las áreas afectadas son el epitelio de la cavidad nasal, los senos
infraorbitarios y la tráquea que sufre pérdida de cilios, desprendimiento
celular e hiperplasia
● Se observa edema, infiltración con células inflamatorias en lámina propia del
epitelio afectado
● Un exudado fibrino-supurativo ocurre comúnmente en la cavidad nasal
alrededor de los cornetes y septos nasales y en el lumen de los cornetes
posteriores (dorsales) y senos infraorbitales

19. Fig 7.- inflamación linfocítica de la mucosa de la tráquea (Izquierda. Hematoxilina-Eosina, 10X) indica que existe una coinfección viral no
definible en la evaluación histopatológica. cuerpos de inclusión intranucleares contenidos en un grupo de células exfoliadas de la mucosa
traqueal (derecha)

21. MORBILIDAD - MORTALIDAD
● Se caracteriza por alta morbilidad y baja mortalidad
● Morbilidad 20-50% (condiciones deficientes de manejo 90%)
● Mortalidad: Por lo general del 2-5%, en casos graves o
asociación con otros microorganismos puede aumentar hasta
el 15%

22. AISLAMIENTO
● Agar gelosa sangre 10% (S. aureus)
● Agar chocolate + polienriquecimiento
● Agar base Columbia con sangre equina
hemolizada (5-7%)
● Agar Levinthal
● Tood - Hewitt + polienriquecimiento
● MacConkey

23. MORFOLOGÍA COLONIAL
● Colonias circulares
● Borde entero
● Convexas
● Lisas
● Húmedas
● Sin pigmento difusible
● Luz transmitida translúcida
● Luz reflejada brillante
● Consistencia mucoide
● Hemolíticas
- En medio sangre no hemolizada,
las colonias crecen pequeñas
(“gotas de rocío”) creciendo en
satelitismo con S. aureus
- cuando la sangre es hemolizada
las colonias alcanzan los 3-5 mm
Fig 8. Cultivos de Avibacterium paragallinarum en base de agar con 10% de sangre de ovino con
colonia nodriza de Staphylococcus epidermidis. Colonias dependientes de NAD (a) o independientes
de NAD (b).

24. IDENTIFICACIÓN BIOQUÍMICA, MOLECULAR
Y SEROLÓGICA
● Técnica para la tipificación serológica de aislamientos de Av.
paragallinarum es la inhibición de la hemoaglutinación (IH)
● PCR
● ELISA
● Inhibición de la hemaglutinina

25. PRUEBAS BIOQUÍMICAS

26. Fig 9. Productos de PCR específico (aproximadamente 500 pb) de Avibacterium paragallinarum encontrados en cepas de Jalisco. A) marcador de
peso molecular (1 kb); B) Avibacterium paragallinarum cepa de referencia 0083 (serovariedad A-1); C) y D) aislamientos NAD dependientes
(serovariedad C-1); E) aislamiento NAD independiente (serovariedad C-1); y F) testigo negativo.
https://www.medigraphic.com/pdfs/vetmex/vm-2013/vm131e.pdf

27. PREVENCIÓN Y CONTROL
● Bacterinas bivalentes
(serovariedades A-1 y C-1) o
trivalentes (A-1, B-1, C2)
según la incidencia en
distintas regiones
● Sanitización de superficies y
utensilios, suelen usarse sales
de amonio y cuaternarias
● evitar el hacinamiento y la
presencia de aves silvestres o
de origen desconocido
● Ventilación adecuada y agua
potable
Fig 10. Metodos de prevencion y control de coriza infeciosa

28. TRATAMIENTO
● Amoxacilina
● Estreptomicina
● Estreptomicina
● Sulfadimetoxina-trimetroprim