Enfermedad de aujesky Etiología completa, criptograma, distribución, impacto económico, forma de transmisión, signos, eclipse, ciclo de replicación, diagnostico, tecnica, tipo de muestras, forma de envio, vacunas y recomendaciones de control.

1. Enfermedad de Aujeszky
Ana Carolina López López

2. Etiología completa y
criptograma
01

3. HERPESVIRUS PORCINO-1
Familia: Herpesviridae
Subfamilia: Alpha-herpesvirinae, denominado Herpesvirus porcino tipo
I (HVP-I).
Sinonimos: Enf. de Aujeszky, pseudorrabia, parálisis bulbar infecciosa
y “Picor loco”
➔ Tamaño: 180 nm diámetro medio.
➔ Cápside: Icosaédrica de 100 nm de diámetro; engloba el genoma.
➔ Envoltura: Doble envoltura lipídica. Contiene glicoproteínas
virales.
Esenciales: gB, gD, gH, gK y gL
No esenciales: gC, gE, gG, gI y gM

4. GENOMA VÍRICO
Cuenta con una molécula de ADN
lineal de doble cadena. Se forma
por dos segmentos: único largo (ul)
y uno único corto (us) que se
flanquea por dos zonas: invertida
interna y terminal.
Las proteínas en la envoltura
ejercen su función a diferentes
niveles del ciclo replicativo del
virus: adherencia, penetración y
diseminación del virus.
PROTEÍNAS

5. Proteínas del virus

6. GENERALIDADES
La enfermedad de Aujeszky
(conocida también como
pseudorrabia) es una infección
provocada por un Herpesvirus que
afecta de manera esporádica
teniendo prevalencia en especies
porcinas.
➔ Fue descrita por primera vez
en ganado vacuno en 1902 por
Aladar Aujeszky.
➔ Establece infecciones latentes
que se desencadenan por
episodios de estrés, parto.
➔ Se puede transmitir por aire a
varios kilometros de distancia.

7. Criptograma
D/2: 54-150/57 - 74%: S/S,e: V/O,R
● Virus DNA
● Cadena doble
● 54-150 millones de dalton de PM
● 57 - 74% de DNA en el virión
● Forma esférica envuelta
● Afecta a vertebrados
● Transmisión por contacto y respiratorio

8. Distribución e
impacto económico
02

11. Impacto economico
Es una enfermedad altamente contagiosa que afecta a los
cerdos, de gran importancia económica. Esta infección viral
afecta el sistema nervioso central (SNC), presenta índices de
mortalidad elevados en los animales jóvenes; en cerdos adultos
produce afecciones respiratorias.. Esta enfermedad puede
ocasionar restricciones comerciales para las regiones
endémicas.

12. Forma de
transmisión y signos
03

13. Transmisión
DIRECTA:
➔ Oronasal
➔ Veneria
➔ Inseminación
➔ La lactación
➔ Vía transplacentaria
INDIRECTA:
➔ Heces
➔ Fómites
➔ Alimento
➔ Personas
➔ Vehículos
➔ Otros animales

14. Signos
Trastornos
neurológicos letales
Encefalitis aguda Fiebre, anorexia,
convulsiones
Tos, estornudos
,neumonia, descarga
nasal
Lesiones
provocadas por
rascarse y
automutilarse
Movimientos
descoordinados y
parálisis

15. Eclipse y Ciclo de
replicación
04

16. Ciclo de
replicación
La replicación viral se lleva a cabo en
células permisivas, es decir por células
que sirven como transporte del virus
para llegar a los tejidos (tropismo
tisular).
El HVP-1 es un virus neurotrópico.

17. Adherencia/penetración
La entrada a la célula requiere de la
interacción de glicoproteínas de la
membrana viral con receptores de la
superficie (receptores sulfato de
heparina).
La entrada a la célula del HVP-1 se da
por fusión de la envoltura viral con la
membrana celular.

18. Adherencia/penetración
1. Interacción inicial de gC con la superficie celular por “heparan sulfato”
2. La interacción de gD interactúa con nectinas y HVEM
3. gH y gL activa una señal a gB

19. Síntesis
La nucleocápside y las proteínas del tegumento son
transportadas hasta los poros nucleares con ayuda del
esqueleto celular, el DNA es liberado en el núcleo.
La proteína del tegumento VP16 entra al núcleo y transactiva la
transcripción de ARN pol II celular otra proteína importante es
VHS (ARNm).
La transcripción del DNA se lleva a cabo por el mecanismo de
circulo rodante

20. Síntesis
El ADN se transcribe por RNA pol ll celular en varios ciclos.
Se transcribe el ARNm
Se producen las proteínas tempranas y estructurales del virus por
los ribosomas celulares.

21. Transcripción inmediata
La única proteína temprana inmediatamente que se produce es IE180 en el
citoplasma que se transporta al núcleo para activar la transcripción de genes
tempranos por ARN pol II
Principalmente 2 grupos: las
esenciales en la replicación de ADN
viral (UL5,8,9,29,30, Pap y UL52) y las
trans activadoras en la transcripción
(EPO, US1 y UL52)

22. Transcripción tardía
El inicio de la síntesis de ADN señala el inicio de la etapa tardía del ciclo de
replicación del PRV regulada por las proteínas necesarias de la replicación y la
síntesis de proteínas de la cápside se transportan al núcleo

23. Ensamble y liberación
Las cápsides es ensamblada en el núcleo y se transporta
a través del sistema de membranas de Golgi hacia el
espacio extracelular en el
transcurso, la nucleocápside
adquiere las proteínas del
tegumento y su envoltura
membrana definitiva con las
glucoproteínas.
La salida del virión de la célula
generalmente es por lisis.
*El gen UL6 actúa
como un portal para la
inserción del ADN
genómico.

24. Diagnostico: tecnica, tipo
de muestra, forma de
envio
05

25. Tecnicas de laboratorio
➔ Tecnicas serologicas
incluyen la neutralización del virus, aglutinación con
látex y ELISA. Esta última y la neutralización del virus
son las pruebas recomendadas para el comercio
internacional.
➔ Aislamiento viral y detención del ADN viral
por PCR se puede identificar el ADN viral en muestras
de secreciones u órganos.
El virus puede ser aislado de ciertas líneas celulares; las
más utilizadas son las células de riñón porcino (PK-15)
inmunofluorescencia se ha utilizado para la detección de
antígenos virales en muestras de tejido e hisopados
nasales.

26. Para la sujeción del animal
se sugiere utilizar un
lazatrompas.
Limpie y desinfecte la piel del
cerdo a la altura de la vena
yugular, con alcohol al 70%.
Localice la vena yugular e
introducir la aguja
vacutainer con el bisel
hacia arriba
Coloque el tubo sin
anticoagulante y extraiga
de 3 a 5 ml de sangre
La muestra contenida en el tubo
tipo vacutainer debe ser
procesada para separar el suero
con ayuda de un equipo de
centrifugación.
Toma de muestra

27. Una vez separado el suero, utilice
una pipeta desechable por cada
muestra para extraer el suero del
tubo tipo vacutainer.
La apariencia de la muestra de
suero debe presentar un color
amarillo claro
➔ En animales muertos
Se hace la necropsia y se extraen las tonsilas para el diagnostico del virus
en rastros, coloque las muestras obtenidas a partir de 5 animales (5 tonsilas)
provenientes de un mismo lote o UPP en la bolsa estéril y selle la bolsa
utilizando el cierre hermético de la misma.

28. Forma de envio
Una vez introducidas las muestras dentro de
la hielera (identificadas y protegidas), se
coloca el material refrigerante.
Para el mantenimiento de los sueros es
posible utilizar hielo natural, hielo seco o
refrigerante en gel como medios para
favorecer el mantenimiento correcto de la
temperatura durante el envío.
Para los órganos únicamente se permite el
uso de refrigerantes en gel (considere la
cantidad de refrigerantes en función del
tiempo y la distancia).

29. La totalidad de las muestras recolectadas
debe enviarse utilizando un sistema de
empaque en doble caja. La caja interna debe
ser de unicel, debido a que es un material
aislante de temperatura externa. La caja se
debe cerrar herméticamente con cinta
adhesiva. La caja externa se cierra de tal
manera que todas las esquinas y/o tapas
queden selladas con cinta adhesiva (esto
aumenta la resistencia del recipiente y
garantiza el aislamiento de las muestras). En la
parte superior de la caja debe colocarse la
etiqueta que indique el remitente y el
destinatario

30. Vacuna.
06

31. Tipo de vacuna: Viva inactivada
● La vacunación de los cerdos de engorde: debe ser con dos dosis para evitar la excreción viral, está
demostrado que con una sola dosis los animales pueden ser infectados y excretar el virus a los 100 días
de edad.
● Vacunación de los cerdos reproductores: Los cerdos reproductores deben ser vacunados como mínimo
tres veces al año y evaluados serológicamente con eliminación de los seropositivos.

32. ➔ Cerdos de producción: Vacunar al menos dos veces durante el periodo
de crecimiento
➔ Mayores de 6 meses serán vacunados, al menos, con una tercera dosis y
serán revacunados cada cuatro meses, hasta su salida de la explotación.
➔ Para animales mayores de seis meses vacunar, al menos, con una
tercera dosis al cumplir esta edad y revacunar cada cuatro meses hasta
su salida de la explotación.
Pfizer, S.L.
SUVAXYN AUJESZKY
IM + O/W
Vacuna inactivada contra la
enfermedad de Aujeszky
de los cerdos 2ml/dosis
Liofilizado y disolvente
para suspensión
inyectable.
Suvaxyn Aujeszky 783 +
O/W se utiliza para
vacunar a cerdos a partir
de las 10 semanas de vida
contra la enfermedad de
Aujeszky

33. Recomendaciones
de control
07

34. Recomendaciones
● Modelos para reducir la
contaminación, por ejemplo se
puede reducir cuando se modifica el
sistema de producción, con la
formación de grupos con un número
reducidos de cerdos y que se utilicen
casetas donde se establezca un
sistema todo adentro todo afuera,
con este sistema y al formarse grupo
pequeños de animales, casi no hay
reactivación y excreción del virus.
● Medidas de bioseguridad estrictas
● Uso de los análisis serologicos
● Vacunas inactivas
● Medidas de protección
● Cuarentenas obligatoria de animales
nuevos
● Control de los animales ambulantes
(perros, pajaros etc.)

35. Referencias
● Animal, S. (17 de Septiembre de 2020). Enfermedad de Aujeszky. Obtenido de
http://apps.sanidadanimal.info/cursos/enfermedades-infecciosas-porcinas/2/epidemi.htm
● Cura, A. (17 de Septiembre de 2020). Enfermedad de Aujszky. Obtenido de
http://axonveterinaria.net/web_axoncomunicacion/criaysalud/17/cys_17_enfermedad_aujeszky
● Jiménez, H. (18 de Abril de 2016). Enfermedad de Aujeszky. Obtenido de
https://www.slideshare.net/habramjimenezsinecio/enfermedad-de-aujeszky-61034269
● Dewhurst, S., & University of Rochester. (1999). Herpesvirus 1. Introducción a la virología.
http://www.biologia.edu.ar/virologia/herpesviruses1.htm
● E, H., & Smith, G. (2020). Alphaherpesviruses Molecular Biology, Host Interactions and Control (caister ed., Vol. 1) [Libro
electrónico]. Caister Academic Press. https://doi.org/10.21775/9781913652555.02
● Masot, J. A. (2017, 5 enero). Pseudorabies virus infection (Aujeszky’s disease) in an Iberian lynx (Lynx pardinus) in Spain: a
case report. BMC Veterinary Research. https://bmcvetres.biomedcentral.com/articles/10.1186/s12917-016-0938-7
● Laval, K., & Enquist, L. (2020). The Neuropathic Itch Caused by Pseudorabies Virus. MDPI.
https://www.mdpi.com/2076-0817/9/4/254/htm
● Aries, M. Sierra, A. & Sanchez, J. (1992). Evaluation of two ELISA kits for the detection of Aujeszky's disease antibodies pigs.
Obtenido de http://apps.sanidadanimal.info/cursos/enfermedades-infecciosas-porcinas/2/bibliografia.htm
● SENASICA: MANUAL DE OBTENCIÓN Y ENVÍO DE MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE LA ENFERMEDAD DE AUJESZKY
(EA). Obtenido de
https://www.gob.mx/cms/uploads/attachment/file/279218/MANUAL_TOMA_Y_ENV_O_DE_MUESTRAS_DE_LA_ENFERME
DAD_DE_AUJESZKY.pdf