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UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR
FACULTAD DE FILOSOFÍA, LETRAS Y CIENCIAS DE
LA
EDUCACIÓN
CARRERA DE PEDAGOGIA DE LAS CIENCIAS
EXPERIMENTALES PEDAGOGÍA DE LA QUÍMICA Y
BIOLOGÍA
FAUNA DEL ECUADOR
INTEGRANTES:
 Velastegui Diana
 Villalba Priscila
METODO DE TRABAJO EN
CAMPO PARA PECES
CARTILAGINOSOS DEL
ECUADOR
TEMA:
MÉTODOS DE CAMPO E
IDENTIFICACIÓN DE PECES
CARTILAGINOSOS
Involucra un conocimiento teórico y práctico
mismo que validara al investigador al proveerse
de un cantidad de datos y muestras biológicas de
calidad.
TRABAJO DE CAMPO
GEORREFERENCIACIÓN
Registrar la localidad de
colecta de datos, muestras
o ejemplares
para su georreferenciación,
lo mejor y más útil es
utilizar un GPS portátil
La identificación a nivel de especie de los elasmobranquios se
da generalmente al ser desembarcados por los pescadores
artesanales
TOMA DE DATOS
Identificar las especies
(claves taxonómicas)
Registrar: el número de
individuos por especie.
Los ejemplares colectados
deben llevar una etiqueta
de campo con los
siguientes datos:
Localidad, fecha y hora,
nombre de la especie y/o
nombre común, colector,
código numérico de
referencia, talla, peso,
sexo, estado de madurez,
zona de pesca y equipo
con que se capturó,
además se registraran las
medidas morfo métricas
de las especies colectadas
MEDIDAS MORFOMÉTRICAS
Fig B; Rayas,tiburones, LT, longitud total; LD, longitud de disco;
AD, ancho de disco, LPc, longitud precaudal; LA, Longitud
alterna, clareps o forceps (solo en machos de elasmobranquios),
Sexo y Madurez Sexual
Se propone utilizar la escala de Stehmann (2002) para las
rayas y tiburones
TOMA DE DATOS PESQUEROS
La información de la pesquería deberá de recapitular las unidades de esfuerzo que
se utilizaron para la captura, tales como las medidas de la lancha ,medidas de las
artes de pesca .También las horas de trabajo efectivo de las artes, así como el
número de pescadores en la faena son datos indispensables para el análisis de las
pesquerías
MUESTRAS BIOLÓGICAS ESTRUCTURAS DURAS
Se utilizan las vértebras como estructuras
duras para su análisis, en el caso de los
tiburones, las vértebras se deben tomar de
la zona de la canastilla branquial y las de las
rayas se extraen de la parte anterior de la
cola.
Toma de muestras en estructuras duras
B.Rayas;C,tiburones
COLECTA DE ORGANISMOS Y FIJACIÓN
Previo a la fijación, es necesario FOTOGRAFIAR a los
ejemplares en fresco
Las fotografías son importantes para la identificación
taxonómica y para analizar algún dato de importancia
anexa.
Preservación en formaldehído
(formalina) 40% , cuándo la especie
es de pequeño tamaño
Para especies de mayor tamaño
Deposite el espécimen en una bolsa
plástica gruesa, a prueba de
filtraciones de líquido, o en un
contenedor de tamaño adecuado.
Diluya la formalina concentrada, en
proporción 1:9, en agua y agregue
esta solución al ejemplar en el
contenedor, cerrándolo firmemente.
MÉTODOS DE PRESERVACIÓN
En el caso de tiburones y mantas de
gran tamaño, extraer la mandíbula y
dejarla escurrir para transportarla
seca envuelta en papel y embolsada
con su respectiva etiqueta
Las mandíbulas de tiburón y mantas, así
como los dientes deben ser envueltos en
papel periódico, y colocados en cajas de
cartón donde serán trasportados al
laboratorio
Pasos de extracción y limpieza de una mandíbula de
tiburón, hasta la puesta en bastidor para posterior
secado.
Durante este proceso es recomendable validar los ejemplares
taxonómicamente para realizar la toma de fotografías de los
organismos fijados
Chimaeriformes-Rhinochimaeridae–Quimeras picudas
ORDEN: Lamniformes
Orden: Carcharhiniformes
Familia: Scyliorhinidae
Pejegatos
ORDEN: Hexanchiformes
Zona ventral del cuerpo, flancos y cola usualmente con
fotomarcas negras y órganos bioluminiscentes (fotóforos);
segunda aleta dorsal más grande que la primera, altura
de la espina de la segunda aleta dorsal es más del doble
del tamaño de la espina de la primera aleta dorsal
ORDEN: Squaliformes
Tollo lija
Sapata negra
Squaliformes-Somniosidae – Tiburones dormilones
Bruja terciopelo Tollo meridional dormilón
Cabeza aplanada, redondeada
y cónica; hocico cónico. Sin
espinas dorsales
Orden: Squaliformes
Familia: Dalatiidae
Orden: Torpediniformes
Familia: Torpedinidae – Tremielga
Orden: RAJIFORMES
Rostro blando, flácido y
flexible, debido a su cartílago
rostral delicado y flexible
Rostro rígido, firme,
inflexible, debido a su
cartílago rostral firme
Aletas pectorales
completamente fusionadas
con la cabeza, muy aplanadas
dorso ventralmente para
formar un disco grande.
La cola está bien diferenciada
del resto del cuerpo, es
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Métodos de trabajo en campo para peces cartilaginosos del Ecuador

  • 1. UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR FACULTAD DE FILOSOFÍA, LETRAS Y CIENCIAS DE LA EDUCACIÓN CARRERA DE PEDAGOGIA DE LAS CIENCIAS EXPERIMENTALES PEDAGOGÍA DE LA QUÍMICA Y BIOLOGÍA FAUNA DEL ECUADOR INTEGRANTES:  Velastegui Diana  Villalba Priscila METODO DE TRABAJO EN CAMPO PARA PECES CARTILAGINOSOS DEL ECUADOR TEMA:
  • 2. MÉTODOS DE CAMPO E IDENTIFICACIÓN DE PECES CARTILAGINOSOS
  • 3. Involucra un conocimiento teórico y práctico mismo que validara al investigador al proveerse de un cantidad de datos y muestras biológicas de calidad. TRABAJO DE CAMPO
  • 4. GEORREFERENCIACIÓN Registrar la localidad de colecta de datos, muestras o ejemplares para su georreferenciación, lo mejor y más útil es utilizar un GPS portátil La identificación a nivel de especie de los elasmobranquios se da generalmente al ser desembarcados por los pescadores artesanales
  • 5. TOMA DE DATOS Identificar las especies (claves taxonómicas) Registrar: el número de individuos por especie. Los ejemplares colectados deben llevar una etiqueta de campo con los siguientes datos:
  • 6. Localidad, fecha y hora, nombre de la especie y/o nombre común, colector, código numérico de referencia, talla, peso, sexo, estado de madurez, zona de pesca y equipo con que se capturó, además se registraran las medidas morfo métricas de las especies colectadas
  • 7. MEDIDAS MORFOMÉTRICAS Fig B; Rayas,tiburones, LT, longitud total; LD, longitud de disco; AD, ancho de disco, LPc, longitud precaudal; LA, Longitud alterna, clareps o forceps (solo en machos de elasmobranquios),
  • 8.
  • 9. Sexo y Madurez Sexual Se propone utilizar la escala de Stehmann (2002) para las rayas y tiburones
  • 10. TOMA DE DATOS PESQUEROS La información de la pesquería deberá de recapitular las unidades de esfuerzo que se utilizaron para la captura, tales como las medidas de la lancha ,medidas de las artes de pesca .También las horas de trabajo efectivo de las artes, así como el número de pescadores en la faena son datos indispensables para el análisis de las pesquerías
  • 11. MUESTRAS BIOLÓGICAS ESTRUCTURAS DURAS Se utilizan las vértebras como estructuras duras para su análisis, en el caso de los tiburones, las vértebras se deben tomar de la zona de la canastilla branquial y las de las rayas se extraen de la parte anterior de la cola.
  • 12. Toma de muestras en estructuras duras B.Rayas;C,tiburones
  • 13. COLECTA DE ORGANISMOS Y FIJACIÓN Previo a la fijación, es necesario FOTOGRAFIAR a los ejemplares en fresco Las fotografías son importantes para la identificación taxonómica y para analizar algún dato de importancia anexa.
  • 14. Preservación en formaldehído (formalina) 40% , cuándo la especie es de pequeño tamaño Para especies de mayor tamaño Deposite el espécimen en una bolsa plástica gruesa, a prueba de filtraciones de líquido, o en un contenedor de tamaño adecuado. Diluya la formalina concentrada, en proporción 1:9, en agua y agregue esta solución al ejemplar en el contenedor, cerrándolo firmemente. MÉTODOS DE PRESERVACIÓN
  • 15. En el caso de tiburones y mantas de gran tamaño, extraer la mandíbula y dejarla escurrir para transportarla seca envuelta en papel y embolsada con su respectiva etiqueta Las mandíbulas de tiburón y mantas, así como los dientes deben ser envueltos en papel periódico, y colocados en cajas de cartón donde serán trasportados al laboratorio
  • 16. Pasos de extracción y limpieza de una mandíbula de tiburón, hasta la puesta en bastidor para posterior secado.
  • 17. Durante este proceso es recomendable validar los ejemplares taxonómicamente para realizar la toma de fotografías de los organismos fijados
  • 18.
  • 22.
  • 24. Zona ventral del cuerpo, flancos y cola usualmente con fotomarcas negras y órganos bioluminiscentes (fotóforos); segunda aleta dorsal más grande que la primera, altura de la espina de la segunda aleta dorsal es más del doble del tamaño de la espina de la primera aleta dorsal ORDEN: Squaliformes
  • 25. Tollo lija Sapata negra Squaliformes-Somniosidae – Tiburones dormilones Bruja terciopelo Tollo meridional dormilón
  • 26. Cabeza aplanada, redondeada y cónica; hocico cónico. Sin espinas dorsales Orden: Squaliformes Familia: Dalatiidae
  • 28.
  • 29. Orden: RAJIFORMES Rostro blando, flácido y flexible, debido a su cartílago rostral delicado y flexible Rostro rígido, firme, inflexible, debido a su cartílago rostral firme Aletas pectorales completamente fusionadas con la cabeza, muy aplanadas dorso ventralmente para formar un disco grande. La cola está bien diferenciada del resto del cuerpo, es delgada y, cuando están presentes, las aletas dorsales y caudal son muy pequeñas o rudimentarias
  • 30. inaugura primer laboratorio de biología molecular para la identificación de tiburones en la región