Este documento proporciona información sobre procedimientos de necropsia veterinaria. Explica los equipos necesarios, la importancia de realizar necropsias, los objetivos de este procedimiento y los pasos a seguir, incluido el examen externo e interno del animal, la recolección y almacenamiento de muestras, y la preparación del informe. También cubre consideraciones generales como el lugar y manejo de material biológico, y técnicas para tomar y conservar muestras para análisis microscópicos.

1. NECROPSIAS.
Patología Veterinaria.
2011
MVZ. Alexandra Henao Díaz.
A. Henao D.

2. Definiciones
• Eutanasia (“Eu - thanatos”: buena muerte):
sacrificio humanitario, sin dolor ni sufrimiento.
• Autopsia: Examen anatómico de un cadáver.
• Necropsia (necros: muerto, ops: ver): Disección
anatómica, ordenada y sistemática de un
cadáver.

3. Equipo para necropsias
• Vestimenta: botas, guantes, mandil, overol, tapabocas.
• Instrumentos: cuchillo, estuche de disección.
Frascos tamaño medio:
boca ancha, vidrio o
plástico, con tapa.
Jeringas, portaobjetos,
hojas de bisturí,
bolsas, etc.

4. Por obligación y bioseguridad…

5. Importancia de la necropsia
Determinar las causas involucradas en el proceso patológico
que provocó la muerte del animal.
El diagnóstico preciso y rápido de las enfermedades que
afectan a los animales en un sistema de producción.
Evaluación: personal, MVZ, alimento, etc..
Medidas correctivas y preventivas.

6. Objetivos
• Identificar los focos de anormalidades o enfermedad.
• Análisis de lesiones para explicar resultados clínicos y
de laboratorio.
• Descifrar y describir la secuencia de los eventos de una
enfermedad.
Mejor labor del médico Veterinario.
Llegar a un Dx Proponer medidas

7. Ejecución de la necropsia - a conciencia.
Disección y observación sistémica.
Colección y conservación de muestras
(histología, citología, microbiología,
serología, parasitología, etc)
Registro de análisis de resultados.
Interpretación:
• Causa de muerte.
• Factores que contribuyeron.
• Otros aspectos de importancia clínica o hallazgos
incidentales.

8. Consideraciones Generales
• Tiempo: inmediato tras la muerte para evitar
cambios posmortem  Dx errado: bacterias,
descomposición, desaparición del agente causal (virus).
• Lugar: luz adecuada, agua, ventilación, drenaje,
contenedores para material biológico, etc.
LEJOS DE FUENTES DE ALIMENTACIÓN, EVITANDO
VECTORES (moscas, roedores, cucarachas, etc).

9. • Manejo de material biológico: preferiblemente
incinerar.
Se puede enterrar pero tener en cuenta:
– Profundidad para no ser desenterrado por predadores.
– Lejos de cultivos y fuentes de agua.
Consideraciones Generales

10. Muerte del animal.
Tener en cuenta:
• Seguridad.
• Bienestar animal.
• Costo.
• Limitaciones: especie.
• Técnico: conservación de muestras.
AMERICAN ASSOCIATION OF SWINE VETERINARIANS

11. Electrocución…
Verificar el fallecimiento:
• Reflejos.
• Respiración.
• Función cardiaca.
AMERICAN ASSOCIATION OF SWINE VETERINARIANS

12. Procedimiento estándar de necropsia
Pre-
necropsia
Identificar al animal
Leer historia clínica
Diagnóstico presuntivo: ¿Qué busco?
Llenar 2/3 partes del frasco con formalina
10%
Marcar contenedores para muestras
Pesar el animal.

13. Procedimiento estándar de necropsia
Examen
externo
Condición corporal: rigor mortis, grasa, etc
Piel, plumas, pelo: parásitos, deshidratación, etc
Descargas: vaginal, nasal, etc
Ojos: hemorragia, opacidad, etc
Orejas: parásitos, tumores, ulceras, etc
Mucosas: color, úlceras, etc

14. Posición y técnica para abrir el cadáver: varía de
persona a persona, de animal a animal.
Procedimiento estándar de necropsia
Posición de cúbito lateral izquierdo
Abrir extremidades: cortar piel hasta articulaciones. (retirar cabeza femoral del
acetábulo)
Corte medial desde sínfisis mandibular hasta ano.
Retraer la piel dorsalmente.
Abrir cavidad abdominal: seguir corte por el borde costal.
Punzar el diafragma: buscar escape de aire, neumotórax.
Abrir tórax, retirar las costillas.

16. Remoción y examen de vísceras torácicas:
Procedimiento estándar de necropsia
Separar la sínfisis mandibular y Retraer la lengua distalmente.
Cortar el H. Hioides. Retraer esófago, tráquea, laringe…
Retirar y examinar tiroides y paratiroides.
Remover pulmones, corazón y timo: corar margen espinal, esternal y
craneal, vena cava y esófago.
Cortar longitudinalmente el esófago: lesiones.
Cortar longitudinalmente la laringe: seguir corte por la tráquea,
bronquios, bronquiolos: edemas, parásitos, tumores, trombos, etc
Examinar linfonódulos bronquiales, mediastínicos, corazón y pericardio.

17. Remoción y examen de vísceras abdominales:
Procedimiento estándar de necropsia
Observar apariencia, desplazamientos, etc.
Remover hígado y examinar (presionar vesícula biliar): infartos, color,
parásitos, etc.
Remover tracto entérico y sus linfonódulos. examinar: mucosa,
contenido, lesiones, parásitos, hemorragias, etc
Remover, seccionar y examinar glándulas adrenales, riñones y vejiga
Remover y examinar el tracto genital y reproductor (incluir glándula
mamaria.

18. Examen de musculatura y anexos:
– Examinar músculos largos y tendones.
Examen de cerebro y cordón espinal:
– Diferentes técnicas de extracción.
Procedimiento estándar de necropsia
De la correcta toma y conservación de la muestra
depende el resultado.
• Muestra representativa y Cortes delgados.
• Proporción tejidos / formalina.
• Fijación a temperatura ambiente por 24-48 horas, antes del corte.
• Siempre etiquetar o identificar las muestras.

19. Correcto corte y conservación de muestras
Proporción
formalina - tejidos
Lesión
Corte0.5 cm grueso
Corte de tejidos.

20. Buen reporte de resultados.
Órganos sólidos:
• Órgano, tejido involucrado.
• Posición, relación con tejidos
adyacentes.
• Tamaño y forma.
• Peso y color.
• Apariencia y consistencia.
• Textura o superficie.
• Olor.
Órganos huecos:
• Órgano, tejido involucrado.
• Apariencia.
• Textura y superficies abiertas
• Contenido: volumen,
naturaleza, consistencia,
color, olor, transparencia,
etc.
Describir con pocas palabras pero precisas, usando un
sistema de medidas claro.
Siempre, en lo posible, tomar fotos.

21. Descripción de lesiones.
• Rugoso-suave-granular…
• Firme-friable-esponjoso…
• Homogéneo-moteado…
• Rojo-amarillo-rosa-negro…
• Etc…

22. DIAGNÓSTICO FINAL

23. ¿Cuál es su diagnóstico tras ver esta lesión?
Reporte esta lesión con menos de 7
palabras.

24. TOMA DE MUESTRAS Y ELABORACIÓN
DE LAMINILLAS PARA DX
HISTOPATOLÓGICO.
MVZ. Alexandra Henao Díaz.
http://webs.uvigo.es/mmegias/inicio.html

25. Necesidad del muestreo
¿Como médicos qué debemos averiguar?
• ¿Qué contiene?
• ¿Qué tejido esta involucrado? –
histopatología.
• ¿Qué lo esta causando? – etiología.
• ¿Cuál fue el proceso? – patogenia.
• ¿Qué puede pasar después? – pronóstico.
HERRAMIENTAS
Y TENICAS PARA
LLEGAR AL
DIAGNÓSTICO

26. Necesidad del muestreo
• Etiología.
• Patogenia.
• Pronóstico.
• Tratamiento y
prevención.
• MENOR PERDIDA DE $$$

27. Necropsia

28. Necropsia
Técnica de disección correcta:
• Sistematización = orden.
• Fácil identificación de los órganos.
• Mejor muestreo.
• Mejor distribución del trabajo.
MANUAL DE TECNICAS DE NECROPSIA PATOLOGIA GENERAL.
QUIRON. email.

29. ¿Qué órganos muestrear?
• ¿Cuáles son los principales órganos?
• ¿Cuál puede estar relacionado con los signos?
• ¿Cuál tiene una apariencia anormal o sospechosa?
• ¿Qué órganos me pueden dar pistas de lo
ocurrido?
• ¿Cuáles están en buen estado para el proceso?
• Entre otros…

30. ¿Qué zona muestrear?
• ¿Cuál tiene una apariencia anormal?
• ¿Qué zona puede estar relacionada con los
signos?
• SIEMPRE TOMAR PARTE NORMAL + PARTE
ANORMAL PARA COMPARAR TEJIDOS.

31. Cómo tomar la pieza.
• Grueso conforme al tejido para que sea fijado;
si la muestra es muy gruesa no estará fijado en el
interior.
• Órganos tubulares, ligar ambos extremos e
inyectar fijador.
•Tener siempre en cuentas QUÉ SE QUIERE
OBSERVAR en el microscopio.

32. Autolisis

33. Fijación de la muestra
Cada cajita será una laminilla.
La relación formalina – órganos
es muy importante para la
calidad de las laminillas.

35. Inclusión

36. Corte en microtomo

37. Montaje a las laminillas

38. Tinción

39. Laminillas para microscopía

40. Microscopía.
http://webs.uvigo.es/mmegias/7-micro-virtual/flash/inicio-flash-todas.html
MICROSCOPIO VIRTUAL.