biotecnologia

1. Ciencia y tecnología al servicio del país
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE ESMERALDAS
LUIS VARGAS TORRES
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS Y AMBIENTALES
ESCUELA DE CIENCIAS AGONÓMICAS
CARRERA DE INGENIERÍA AGRONÓMICA
SILLABUS DE BIOTECNOLOGÍA VEGETAL
PRIMER SEMESTRE 2015
Ing. Zoot. Dolores de Lourdes Andrade Benalcázar, Mgs.
JUNIO – OCTUBRE 2015
Esmeraldas – Ecuador
UNIVERSIDAD TECNICA DE ESMERALDAS “LUIS VARGAS TORRES”
VICERRECTORADO ACADEMICO
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS Y AMBIENTALES
CARRERA: INGENIERÍA AGRONÓMICA
INGENIERÍA FORESTAL
1

2. SYLLABUS DE BIOTECNOLOGÍA VEGETAL
1. DATOS INFORMATIVOS:
Facultad: Ciencias Agropecuarias y Ambientales Escuela: Ciencias Agronómicas
Carrera: Ingeniería Agronómica Asignatura: BIOTECNOLOGÍA VEGETAL
Código: 1.24.3.8.1 Prerrequisito: GENÉTICA VEGETAL
Código: 1.31.3.7.4
Correquisitos: Biología (Ingeniería Forestal)
Zoología y microbiología
(Ingeniería Agronómica)Horas
Total de horas: 128
Presenciales: 64 Horas Autónoma: 64
No. Créditos: 4 Período Académico: I Semestre 2015
Junio a Octubre de 2015
Nivel: III Fecha: 5 Junio de 2015
Profesor: Ing. Mg. Dolores Andrade Benalcázar E-mail: dolourand58@yahoo.es
2. JUSTIFICACIÓN
Se han incluido los conocimientos de Biotecnología Vegetal en los pensum de estudio de las
carreras de Ingeniería Forestal e Ingeniería Agronómica que oferta la Facultad de Ciencias
Agropecuarias y Ambientales, con un carácter emprendedor, ya que orienta a llevar a escala
industrial la obtención de productos o bienes a partir del uso de organismos vivos o de los
compuestos obtenidos a partir de ellos; para contribuir al mejoramiento de la producción
agrícola para la seguridad alimentaria, desarrollo de industrias limpias y consecuentemente una
mejor protección del ambiente en beneficio y bienestar de las generaciones actuales y las futuras,
con una actitud responsable y ética.
La Biotecnología como asignatura de la formación profesional, es un tratamiento teórico –
práctico diseñado para capacitar al estudiante en el manejo de cultivo de células y tejidos
vegetales in vitro, orientado hacia la producción masiva de genotipos de interés agrícola,
ornamental o forestal. Por lo que el contenido a tratar aborda temas sobre la Aplicación y
aportes de la biotecnología; estructura, normas y procedimientos de trabajo en el laboratorio;
cultivo in vitro, micropropagación y adaptación de plantas; y obtención de semilla artificial,
contribuye a integrar teoría y práctica en la formulación de medios de cultivos, selección
correcta del material de partida para la micropropagación y adaptación de plantas producidas
en laboratorio. El estudiante debe contar con bases de Fisiología Vegetal y Fitomejoramiento,
ya que los mismos no serán abordados en la presente asignatura.
3. PROBLEMA:
2

3. Enfrentar retos de la industria y toda la sociedad demandante de productos agrícolas y forestales
libres de patógenos, con características organolépticas, fenotípicas y genotípicas de excelente
calidad y resistentes a fitopatógenos y a la variabilidad de las condiciones ambientales para
asegurar producción uniforme y amigable con el ambiente.
4. OBJETO:
La Biotecnología vegetal tiene como objeto de estudio la propagación asexual de plantas y sus
aplicaciones quimúrgicas a gran escala.
5. OBJETIVO GENERAL DE LA ASIGNATURA
Al concluir el semestre los estudiantes estarán preparados en los principios básicos de las
técnicas de propagación masiva de vitro plantas libres de patógenos y con características
genotípicas excelentes para aplicarlos en futuros trabajos de investigación sobre clonación
vegetal, mejoramiento genético y en proyectos de cultivos de alta producción.
5.2 RESULTADOS DE APRENDIZAJE
a) Discriminar la importancia del estudio de la Biología molecular al desarrollo de la
Biotecnología Vegetal para el mejoramiento y/o conservación de germoplasma y del
ambiente.
b) Aplicar las bases teóricas y fisiológicas del cultivo de tejidos vegetales en el mejoramiento
de la producción agrícola y forestal, mediante el uso adecuado de las metodologías de
propagación y conservación de germoplasma, para generar variabilidad e identificación
varietal, con órganos, partes o tejidos vegetales.
c) Estudiar las diferentes técnicas de cultivo de tejidos vegetales: métodos de propagación y
conservación de germoplasma; métodos para generar variabilidad y métodos para
acelerar programas de mejoramiento e identificación varietal.
d) Conocer los criterios para evaluación de Bioseguridad y regulación de organismos
vegetales genéticamente modificados.
e) Vincular los conocimientos aprendidos con materias afines.
6. UNIDADES DE APRENDIZAJE
No. Unidades
Tipos de clase
Total
Horas
C CP L S E
1
Generalidades sobre Biología Molecular y
Biotecnología
8 4 2 4 2 20
3

4. 2 Ingeniería Genética y técnicas de laboratorio 6 2 4 4 2 18
3
Métodos de propagación y conservación de
germoplasma
5 2 4 2 1 14
4
Mejoramiento, variabilidad y biotecnología
aplicada
2 2 2 4 1 12
TOTAL DE HORAS 21 10 12 14 6 64
7. PROGRAMA ANALITICO DE UNIDADES DE APRENDIZAJE
4

5. 5
UNIDAD 1 GENERALIDADES SOBRE BIOLOGÍA
MOLECULAR Y BIOTECNOLOGÍA
No. HORAS: 20
Resultado de aprendizaje: Discriminar la importancia del estudio de la Biología molecular
al desarrollo de la Biotecnología Vegetal para el mejoramiento y/o conservación de
germoplasma y del ambiente.
Contenidos mínimos Metodología Evaluación
1.1 Aspectos generales.
1.1.1 Definición de Biotecnología.
1.1.2 Aspectos económicos,
productivo-empresariales y
éticos.
1.1.3 Relación de biotecnología con
otras ciencias.
1.2 Aportes de la biología
molecular.
1.2.1 Aspectos históricos y
perspectivas de la Biología
Molecular.
1.2.2 Características de las
macromoléculas.
1.2.3 Nociones de proteómica y
genómica.
1.3 Duplicación del DNA en
Procariontes y eucariontes:
1.3.1 Proteínas desenrolladoras,
primers, primasa,
1.3.2 DNA polimerasas, ligasas,
topoisomerasas y telomerasa.
1.3.3 Secuenciación del DNA.
Bases Moleculares. Proliferación
celular y apoptosis. Moléculas
inductoras é inhibidoras.
1.3.4 Modificaciones en el DNA y en
proteínas de membrana.
Protooncogenes y oncogenes.
1.3.5 Agentes virales.
Clase conferencia: Exposición
magistral.
Explicación y aclaración de
dudas.
Mapa conceptual.
Clase Seminario: Desarrollo
taller sobre aplicaciones de la
biología molecular en los
procesos de la biotecnología.
Trabajo preconceptual, y
sustentación.
Clase Conferencia: Clase
magistral y sustentación.
Laboratorio 1: Preparación de
materiales y equipos para uso
biotecnológico
Clase práctica: Lectura
artículo científico sobre bases
moleculares de respuesta a
fitopatógenos.
Clase seminario: Taller sobre
Observación y análisis de la
película de Le Monde Selon
Monsanto
E: Comprobación de los
resultados de aprendizaje
El estudiante:
- Responde Guía de estudio.
Revisa bibliografía.
Prepara para sustentación
grupal.
Consulta bibliografía. Informe
del tema. Elabora power point.
Elaboración de estudio
comparativo.
Informe de laboratorio en
modelo artículo científico
(ILAC).
Argumentación sobre el tema
Bases moleculares.
Presentar un Trabajo
monográfico N° 1 individual

6. 6

7. 7
UNIDAD 2
INGENIERÍA GENÉTICA Y TÉCNICAS DE
LABORATORIO
No. HORAS: 18
RESULTADOS DE APRENDIZAJE
Aplicar las bases teóricas y fisiológicas del cultivo de tejidos vegetales en el mejoramiento de
la producción agrícola y forestal, mediante el uso adecuado de las metodologías de
propagación y conservación de germoplasma, para generar variabilidad e identificación
varietal, con órganos, partes o tejidos vegetales.
Contenidos mínimos Metodología Evaluación
2.1 Aspectos generales. Definición
de Ingeniería Genética:
2.1.1 Distintos tipos de vectores.
2.1.2 Relaciones entre el tamaño
del inserto y el vector.
2.2 Enzimas de restricción.
2.2.1 Producción de cDNA.
2.2.2 Vectores, y plásmidos
2.2.3 Terapia génica.
2.3 Técnicas de laboratorio
2.3.1 DNA EXTRACTION,
2.3.2 PCR,
2.3.3 SOUTHERN BLOT,
2.3.4 WESTERN BLOT, NORTHERN
BLOT.
2.3.6 CLONING A.TUMEFACIENS
2.3.6 análisis de los datos
Recolección de muestras en
campo
Clase conferencia: Exposición
magistral.
Clase práctica: Explicación y
aclaración de dudas.
Revisión de bibliografía de
biblioteca virtual.
Clase seminario: Desarrollo
taller sobre aplicaciones de la
ingeniería genética y
molecular.
Trabajo preconceptual, y
sustentación.
Lectura artículo científico.
Seminario: Crioconservación
Práctica de campo 2꞉
Recolección de muestras.
Preparación materiales,
reactivos y guía de práctica.
El estudiante:
Responde Guía de estudio.
Elabora Mapa conceptual.
Informe del tema.
Argumenta sobre aplicaciones
de ingeniería genética y
molecular
Informe de laboratorio en
modelo artículo científico.
Revisión Bibliográfica
Elaboración de ensayo científico.
Realiza el diagrama de flujo de la
práctica.

8. 8

9. 9
UNIDAD 3 MÉTODOS DE PROPAGACIÓN Y
CONSERVACIÓN DE GERMOPLASMA
No. HORAS: 14
RESULTADOS DE APRENDIZAJE: Hacer uso adecuado de las metodologías de propagación
y conservación de germoplasma en base a la inducción de órganos, partes o tejidos vegetales
en un medio de cultivo libre de patógenos
Contenidos mínimos Metodología Evaluación
3.1 Establecimiento de cultivo de
tejidos.
3.1.1 Totipotencia celular,
3.1.2 Diferenciación y
desdiferenciación;
3.1.3 Factores ambientales y
nutricionales.
3.1.4 Problemas de contaminación
del desarrollo vegetal
3.1.5 Técnicas de desinfección del
material vegetal.
3.2 Métodos de Propagación in
Vitro
3.2.1 Órgano génesis
3.2.2 Cultivo de meristemo
3.2.3 Embriogénesis somática
3.2.4 Obtención de plantas
haploides
3.2.5 Enraizamiento de plantas
in Vitro
- Establecimiento in Vitro:
desinfección-siembra.
3.3 Casos Específicos
repropagación in Vitro
3.3.1 Caso de la Caña de Azúcar
(Cuba). Caso de la papa (Colombia
y Cuba)
3.3.2 Sistemas de Producción de
Semillas con base
Biotecnológica
3.3.3 Biorreactores para la
propagación vía organogénesis y
vía embriogénesis. Ejemplos de
Producción in Vitro-Birreactores.
- Cultivo de Meristemo in Vitro
3.4 Desarrollo en Invernadero
de Plantas in Vitro
3.4.1 Aclimatación de las plantas
in Vitro
3.4.2 Enraizamiento y
endurecimiento del material
vegetal
3.4.3 Factores ambientales y
nutricionales en invernadero.
3.4.4 Contaminantes comunes en
invernadero.
Sustentación grupal,
metacognitiva e interactiva.
Clase magistral
Discusión de video sobre el
tema
Práctica de campo.
Laboratorio 4. Técnicas de
desinfección de explantes
Exposición grupal sobre el
tema Discusión, disipación de
dudas y conclusiones.
Seminario: Embriogénesis.
Transformación genética por
Agrobacterium
Clase magistral.
Laboratorio 5: Siembra de
explantes
Explicación de la práctica
Iniciación de callo a partir de
raíz de zanahoria y tubérculo
de patata u otra especie.
Lectura dirigida, y
autorregulada, mediante
libros y artículos
recomendados,
Explicación de la práctica de
Laboratorio 6: Cultivo de
tejidos in vitro.
Clase magistral.
Práctica de campo.
Observación en Universidad
Técnica de Quevedo las
instalaciones de Invernadero
con plantas in vitro.
Evaluación escrita de la
unidad.
Consulta sobre métodos in vitro
para taller.
Elaboración de informe y
presentación.
Elaboración de Glosario de
términos básicos.
Informe de laboratorio en
modelo artículo científico.
Preparación de ejemplos de
micropropagación
Elaboración de resumen
Informe de práctica. diagrama de
flujo como PRE-informe
laboratorio.
Elaboración de ensayo
heurístico científico (EHC) sobre
cultivos in vitro.
Elaboración de un croquis de
invernadero.

10. 10

11. 11
UNIDAD 4 MEJORAMIENTO, VARIABILIDAD Y
BIOTECNOLOGÍA APLICADA
No. HORAS: 12
RESULTADOS DE APRENDIZAJE: Aplicar los conocimientos de Bioquímica, Biología
molecular y Genética para la comprensión de los procesos de mejoramiento y variabilidad
genética que sirven para obtención de plantas haploides y doblehaploides
Contenidos mínimos Metodología Evaluación
4.1 Mecanismos de evolución:
4.1.1 Mutación.
4.1.2 Recombinación.
Poliploidias.
4.2 Métodos para identificación
varietal.
4.2.1 Variación somaclonal.
4.2.2 Hibridación somática
4.2.3 Sistemas de transformación
vegetal.
4.2.4 Obtención de plantas
doblehaploides
4.2.5 Aplicaciones de los
marcadores moleculares
4.3 Mejoramiento Genético de
Especies Agrícolas
4.3.1 ¿Qué es la ingeniería genética?
4.3.2 Introducción a las técnicas de
Biología Molecular comunes en el
mejoramiento de especies
vegetales
4.3.3 Clonación y transformación
genética
4.3.4 Estrategias de Resistencia a
enfermedades
4.3.5 Estrategias de Resistencia a
insectos
4.3.6 Producción de líneas celulares
útiles
4.3.7 Organismos Vegetales
Modificados Genéticamente
4.6.8 Herramientas moleculares:
Agrobacterium
4.7 Casos Específicos de
Mejoramiento Genético
4.7.1 Casos y perspectivas basadas
en los procesos de producción in
Vitro, masiva y su posterior
introducción en campo: Factores
económicos, ambientales y
agrícolas.
4.7.2 Adaptación de vitro
plantas a condiciones
naturales.
Bioabonos, biopesticidas,
bioprocesos.
4.7.3 Propagación masiva en
biofábricas.
Pérdidas en las biofábricas.
Características constructivas.
4.7.4 Bioseguridad y organismos
genéticamente modificados.
- Criterios científicos para
evaluación de la bioseguridad de
OGMs. Protocolo de Cartagena
Detección de OGMs en la cadena
agroalimentaria.
4.7.5 Obtención de productos de
Clase magistral, sustentación
grupal, metacognitiva e
interactiva.
Acompañamiento
conversacional, orientación
bajo artículos relacionados
Consulta páginas Web,
deducción,
Exposición sobre Aplicaciones
de marcadores moleculares.
Trabajo preconceptual, y
sustentación. Lectura de
artículos de revisión. Tareas.
Exposición magistral
Taller sobre Transgénicos y
clonación.
Consulta páginas Web,
deducción, Causa y efecto,
Seminario: Código de barras.
Aplicaciones y uso en sistema
agrario.
análisis, síntesis, sinapsis de
artículos y conversatorio.
Seminario: Fitorremediación
Seminario: Bioseguridad
Exposición de trabajos sobre
Preparación de exposición sobre
identificación varietal
Revisión de literatura para
Informe sobre identificación
varietal, en modelo artículo
científico (ILAC).
Elaboración de mapa mental
sobre marcadores moleculares.
Glosario de términos básicos.
Elaboración de ensayo
heurístico científico (EHC) sobre
Mejoras genéticas.
Argumentación sobre el tema
OGM.
Argumentación sobre el tema
Informe de Investigación
bibliográfica.

12. 8. FORMAS DE EVALUACION DEL CURSO
El proceso de evaluación será sistemático, donde se incluye evaluaciones frecuentes,
parciales y examen final escrito.
Se aplicarán varias actividades que permitan la producción y construcción del
conocimiento de los estudiantes, tales como:
o Lecturas de sensibilización, mesas redondas sobre temáticas relacionadas con
tópicos de las unidades tratadas.
o Concientización de los estudiantes en la importancia que tiene la producción
intelectual de la comunidad científica.
o Seguimiento de asistencia, entrega y cumplimiento de trabajos asignados en
clase.
o Seminarios sobre temas específicos que pueden ser abiertos a los demás
estudiantes.
o Talleres grupales, sustentaciones orales y escritas con base en la utilización de
mapas conceptuales y mapas mentales.
o Sustentación individual,
o Elaboración de artículo científico,
o Trabajos interactivos (software libre),
o Informe de prácticas de laboratorio.
Estas actividades se concentrarán en cuatro aspectos, representados en el siguiente
cuadro:
ESTRATEGIAS E INSTRUMENTOS
DE EVALUACIÓN
EVALUACIÓN
(%)
TOTAL MEDIO
CICLO
TOTAL FIN DE
CICLO
Examen 40 4 4
Exposiciones y seminarios 20 2 2
Investigación 20 2 2
Trabajos 20 2 2
TOTAL 100% 10 10
12

13. Para determinar el avance y desempeño académico se tomarán en cuenta los siguientes
criterios:
- Portafolio estudiantil para el monitoreo continuo del proceso de aprendizaje de la
asignatura.
- La calificación mínima por medio y fin de ciclo es 7 puntos. Pudiendo aprobar con un
mínimo de 14.
- El estudiante quedará suspenso si alcanza hasta un mínimo de 12 en la suma de medio
y fin de ciclo. En este caso, realizará un examen de recuperación o supletorio que será
calificado sobre 10 puntos. Este se sumará al promedio del medio ciclo para obtener la
calificación final que no será menor de 14 entre ambos parciales.
- Si el (a) estudiante obtiene 11 puntos o menos de 11 puntos en la suma de medio y fin
de ciclo, reprobará la asignatura.
9. COMPROMISO ÉTICO
- Asistencia y puntualidad: La asistencia es obligatoria a todas las actividades
programadas en la asignatura. El estudiante ingresará a clases a la hora programada y solo
por una ocasión se aceptará el retraso de 10 minutos.
El docente asistirá con toda puntualidad a las actividades programadas y los estudiantes
esperarán 15 minutos después de la hora de inicio, en caso de que el docente no se hubiere
comunicado con el representante del curso en este lapso de tiempo los estudiantes se
retirarán y el docente tiene la obligación de recuperar estas horas.
El estudiante deberá justificar al docente su inasistencia o atraso, independiente de la
justificación reglamentaria.
- Respeto: Se observará una comunicación respetuosa entre docente – estudiante y entre
estudiantes en el desarrollo de la asignatura.
El estudiante no utilizará celulares en el aula, igual comportamiento debe tener el docente;
solo cuando se utilice biblioteca virtual en trabajos de aula, se utilizará computadora o
celular que tenga wi-fi.
- Honestidad: En los exámenes y evaluaciones escritas el intento de copia de cualquier
estudiante será sancionado con la calificación de uno. En las exposiciones e informes de
trabajos de investigación, se observará las citas textuales con las reglas de redacción
técnica, para indicar que es copia del original, en el caso que sea necesario tener
13

14. información textual e indicar el nombre del autor consultado en caso de citas contextuales.
- Presentación de trabajos: Los trabajos se presentarán en la fecha programada y con las
exigencias establecidas y no se receptarán en otra fecha. En los trabajos se deberán incluir
las citas y referencias de los autores consultados (de acuerdo a normativas aceptadas, v.g.
APA). Si un plagio es evidenciado, podría ser motivo de la separación del curso del o los
involucrados.
- Vestuario: El estudiante ingresará al aula vestido de forma apropiada, sin gorra, sin arete
(hombres), y no consumirá alimentos dentro del aula. Si antes de la hora de clase ha tenido
práctica de campo, deberá asearse previamente para ingresar al salón de clases o al
laboratorio donde deberá usar el vestuario apropiado para el efecto.
PROGRAMA DE LABORATORIO
SEMANA 03:
Práctica 1: Preparación de los materiales de laboratorio para el cultivo in vitro.
Metodología: Lavado de todos los materiales de vidrio a partir del descarte en autoclave.
SEMANA 05:
Práctica 2. Preparación y esterilización de los medios de cultivo de Murashige-Skoog (MS)
utilizados para todas las prácticas.
Metodología: Preparación de soluciones madre de macro y micronutrientes y obtención del
medio MS. Esterilización en autoclave 20 min a 121°C.
SEMANA 06:
Práctica 3. Selección y preparación de muestras.
Metodología: Colectar las muestras de especies vegetales en campo para propiciar el brote de
yemas.
SEMANA 07:
Práctica 4. Germinación de semillas in vitro.
Metodología: Esterilizar materiales, equipos y desinfectar las semillas. Siembra en los medios
indicados e incubación.
SEMANA 09:
Práctica 5. Organogénesis en plántulas.
Metodología: Usando el medio preparado en la práctica anterior, se aíslan, desinfectan y
siembran explantes en placas petri.
SEMANA 10:
Práctica 6. Introducción al cultivo in vitro de plántulas
Metodología: Preparación y esterilización de explantes. Siembra de los esquejes en tubos
sobre medio MS.
SEMANA 11:
Observar los cultivos y realizar la toma de los resultados. Evaluaciones de los cultivos.
14

15. SEMANA 12:
Observar los cultivos y realizar la toma de los resultados. Evaluaciones de los cultivos.
SEMANA 13:
Observar los cultivos y realizar la toma de los resultados. Evaluaciones de los cultivos.
SEMANA 14:
Entrega de los Informes Finales de Laboratorio de todos los grupos.
SEMANA 16:
Exposición de los trabajos prácticos de laboratorio.
VISITAS A LABORATORIOS DE BIOTECNOLOGÍA
Lugar: Universidad Técnica de Quevedo
Lugar: Quevedo
Áreas: Laboratorio de Biotecnología
Día: 28 de Agosto 2015
Hora: 8:00 – 16:00
Lugar: INIAP
Lugar: Quevedo
Áreas: Suelos, Fitopatología
Día: 27 de Agosto
Hora: 08:00 - 14:00
REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS
1. ARAMENDIS R. 1999. BIOSEGURIDAD. Un nuevo escenario de confrontación internacional
entre las consideraciones comerciales, medioambientales y socioeconómicas.
COLCIENCIAS.
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WALTER. 2006. Introducción a la Biología Celular. Editorial Médica Panamericana.
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4. Bhatia, S. C. 2005. Textbook of Biotechnology. Atlantic Publishers
5. Barnum, Susan . 2001. An introduction to Biotechnology. Cambridge University Press
6. FERREIRA M. Y GRATTAPAGLIA D. 1998. Introducción al uso de marcadores moleculares
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16. en el análisis genético. EMBRAPA.CENARGEN. Brasil.
7. GARCÍA M., QUINTERO R. y LÓPEZ MUNGUÍA A. 1993. Biotecnología Alimentaria. Editorial
Limusa S.A.
8. Glick, Bernard R., Pasternak. 2003. Molecular biotechnology: principles and applications of
recombinant DNA. Washington, DC,ASM Press publishers. Printed in the United States of
America.
9. KARP G. 2006. Biología Celular y Molecular. Conceptos y experimentos. McGraw-Hill
Interamericana. Editores, S.A. de C.V. México.
10. Kreuzer, Helen, Massey, Adrianne. 2001. ADN recombinante y biotecnología: guía para
estudiantes. Zaragoza, Acribia.
11. MAATEN, J.; & SADAVA, D. 2003. Plants, genes and crop biotechnology. Jones and Bartlett
12. MIKKELSEN T., HAUSER, T., BAGGER R. La huida de los genes. Las plantas transgénicas
transmiten sus genes a sus primas silvestres. Mundo científico 1178. 323-325.
13. MILLER J., ENGELBERG S., BROAD W. 2003. Guerra bacteriológica. Ediciones B, S.A.
14. OLD R., PRIMROSE S. 1985. Principles of Gene Manipulation. BLACKWELL SCIENTIFIC
PUBLICATIONS. Great Britain.
15. PEÑA ROJAS, GILMAR. 2002. Biotecnología, Clonación e Ingeniería Genética. Auspiciado
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17. Ratledge, Colin and B. Kristiansen. 2006. Basic Biotechnology. John Wiley, New York, USA
18. Renneberg, Reinhard.2008. Biotecnología para principiantes. Edit. Reverté. Barcelona.
España.
19. Singleton, Paul. 2004. Bacterias en Biología, Biotecnología y Medicina. Zaragoza. Edit.
Acribia. España.
20. Sánchez, M. y Ríos D. (Eds.). 2005. Biotecnología vegetal en especies leñosas de interés
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21. Sánchez, M. y Ríos D. (Eds.) 2004. II Curso Internacional de Postgrado en Biotecnología
Forestal. Desde el Microinjerto a la Embriogénesis Somática. Fac. de Ciencias Forestales.
Universidad de Concepción.
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23. Fondo de Cultura Económica. México. Ciencias N° 145.
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26. Yuan Kun, Lee ed. 2006. Microbial Biotechnology: principles and applications Danvers.
World Scientific.
REVISTAS ESPECIALIZADAS
American Journal of Botany
Annals of Botany
In Vitro Cellular and Development Biology Plant
Journal of Experimental Botany
Plant Cell
Plant Cell Tissue and Organ Culture
Plant Growth Regulation
16

17. Plant Cell Reports
Plant Physiology
Plant Physiology and Biochemestry
Physiologia Plantarum
Plant Science
Plant Biology
Plant Molecular Biology
Plant Molecular Biology Reporter
Linkcografía
http://es.scribd.com/doc/43485405/BIOTECNOLOGIA
 OCDE.
http://www.oecd.org/ehs/
 Base de datos de la bibliografía en los Estados Unidos
http://patents.cos.com/
 Registro de patentes de Europa (on-line)
http://www.eurpean-patent-office.org/epidos/epr.htm
 Patentes. Universidad de Stanford
http://www-sul.stanford.edu/depts/swain/patent/puttop.html
 Base de datos de Canadá.
http://www.Patents1.ic.gc.ca/intro-e.html
www.redbio.org
Otras web
http://www.ibmcp.upv.es/lab16.htm
http://www.xtec.es/~jsanfeli/concurs/castella/quees.htm
http://www.tierradelfuego.org.ar/cadic/proveg.htm
17

18. http://www.coacade.uv.mx/iiesca/revista2/aceves2.html
http://www.geocities.com/rainforest/andes/3026/medios.htm
http://www.etsea.udl.es/invitro
www.cirad.fr/presentation/programmes/biotrop/resultats/biositecirad/embryo/coffeees.ht
m
www.ecu.edu/biology/facultyframes/BiologyFaculty/Newton/NewtonWebpage/SomaticEmb
ryogenesis.htm
http://www.inia.cl/cobertura/quilamapu/at/espanol/v57n2/art11_e_2_1997.htm
http://ww2.grn.es/avalls/
http://www.geocities.com/ResearchTriangle/Lab/2513/
http://www.internatura.uji.es/opinion/agri.html
http://www.foarbi.org.ar/
https://www.youtube.com/watch?v=5B4xP2DQv1s
Ing. Mg. Dolores Andrade
PROFESORA
UNIVERSIDAD TECNICA DE ESMERALDAS “LUIS VARGAS TORRES”
VICERRECTORADO ACADEMICO
FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS Y AMBIENTALES
CARRERA: INGENIERÍA AGRONÓMICA
INGENIERÍA FORESTAL
SYLLABUS DE BIOTECNOLOGÍA VEGETAL
1. DATOS INFORMATIVOS:
Facultad: Ciencias Agropecuarias y Ambientales Escuela: Ciencias Agronómicas
Carrera: Ingeniería Agronómica Asignatura: BIOTECNOLOGÍA VEGETAL
Código: 1.24.3.8.1 Prerrequisito: GENÉTICA VEGETAL
Código: 1.31.3.7.4
18

19. Correquisitos: Biología (Ingeniería Forestal)
Zoología y microbiología
(Ingeniería Agronómica)Horas
Total de horas: 128
Presenciales: 64 Horas Autónoma: 64
No. Créditos: 4 Período Académico: I Semestre 2015
Junio a Octubre de 2015
Nivel: III Fecha: 5 Junio de 2015
Profesor: Ing. Mg. Dolores Andrade Benalcázar E-mail: dolourand58@yahoo.es
RESULTADOS DE
APRENDIZAJE DE LA
CARRERA
CONTRIBUCIÓN
(ALTA, MEDIA BAJA)
EL ESTUDIANTE DEBE
Planifica, ejecuta y gerencia
proyectos agrícolas.
Realiza observaciones,
pruebas e investigaciones en
los sistemas de producción
agrícola, mediante métodos y
técnicas adecuadas.
Genera tecnologías de
producción de bienes y
servicios a la colectividad en
base de los recursos
disponibles para el desarrollo
agrícola, considerando los
resultados provenientes de
las investigaciones científicas.
ALTA Estudiar las diferentes técnicas de
cultivo de tejidos vegetales: métodos
de propagación y conservación de
germoplasma; métodos para generar
variabilidad y métodos para acelerar
programas de mejoramiento e
identificación varietal.
Aplica tecnologías
sustentables en condiciones
edafoclimáticas presentes.
Se apropia de tecnologías y
conocimientos ancestrales del
sector agrícola.
Emprende e innova procesos
y tecnologías de avanzada en
la producción directa.
ALTA Aplicar las bases teóricas y
fisiológicas del cultivo de tejidos
vegetales en el mejoramiento de la
producción agrícola y forestal,
mediante el uso adecuado de las
metodologías de propagación y
conservación de germoplasma, para
generar variabilidad e identificación
varietal, con órganos, partes o tejidos
19

20. vegetales.
Promueve y difunde valores
morales y éticos en el
ejercicio de la profesión.
BAJA Conocer los criterios para evaluación
de Bioseguridad y regulación de
organismos vegetales genéticamente
modificados.
Garantiza el beneficio,
conservación y
comercialización de las
producciones agropecuarias
limpias.
MEDIA Discriminar la importancia del
estudio de la Biología molecular al
desarrollo de la Biotecnología
Vegetal para el mejoramiento y/o
conservación de germoplasma y del
ambiente.
20

21. PLAN DE LECCIÓN SEMANAL
CARRERA: INGENIERÍA
AGRONÓMICA. INGENIERÍA
FORESTAL
ASIGNATURA: BIOTECNOLOGÍA
VEGETAL
CICLO: 8
CÓDIGO: 1.24.3.8.1
CRÉDITOS: 4 HORAS CLASE SEMANALES: 4 TOTAL HORAS POR CICLO: 64
PROFESOR: ING.MSC. DOLORES DE LOURDES ANDRADE BENALCÁZAR PERIODO ACADÉMICO :
JUNIO A OCTUBRE 2015
Nº SEMANA
TIPO
DE CLASE
CONTENIDO(S)
RESULTADOS DE
APRENDIZAJE
ACTIVIDADES CONTROL
1 1
8-12-junio-
2015
C1 Aspectos generales.
Definición de Biotecnología.
Aspectos económicos, productivo-
empresariales y éticos. Relación de
biotecnología con otras ciencias.
Emite criterios de valor de
la aportación de la
biotecnología en las
diferentes áreas biológicas
y específicamente en las
ciencias agropecuarias.
-Desarrolla definiciones
Diagnóstico académico de los
estudiantes.
Motivación sobre la materia.
Trabajo autónomo
Consultas. Mapas mentales y
conceptuales.
Portafolio de tareas
Evaluación de
mapas y
portafolio
Responder a
cuestionario
2 1
8-12-junio-
2015
CP1 Aportes de la biología molecular.
Aspectos históricos y perspectivas
de la Biología Molecular.
Características de las
macromoléculas. Nociones de
proteómica y genómica.
Caracteriza los
constituyentes químicos de
la materia viva de simples a
complejos.
Elaboración de gráficos de
moléculas.
Preparación de seminario
Metabolismo y metabolitos.
Análisis de los
trabajos
3 2
15-19-
junio-2015
S1 Duplicación del DNA en
Procariontes y eucariontes:
Proteínas desenrolladoras, primers,
primasa, DNA polimerasas, ligasas,
topoisomerasas y telomerasa.
Secuenciación del DNA.
Identifica las etapas del
proceso nutritivo, por sus
características y sus
reacciones.
Discrimina reacciones,
rutas y ciclos metabólicos.
Revisión bibliográfica sobre
el tema. Elabora un mapa
conceptual.
Lección escrita.
Revisión de
mapa
conceptual y
Portafolio.
21

22. Nº SEMANA UNIDAD
TIPO
DE
CLASE
CONTENIDO(S)
RESULTADOS DE
APRENDIZAJE
ACTIVIDADES CONTROL
4 2
15-19-junio-
2015
1 C2
S2
Bases Moleculares.
Proliferación celular y
apoptosis. Moléculas
inductoras é inhibidoras.
Modificaciones en el DNA y
en proteínas de membrana.
Proto- oncogenes y
oncogenes. Agentes virales.
Identifica la función de los
cofactores y
transportadores celulares.
Consulta del tema
Lluvia de ideas sobre
lo consultado
Elaboración de mapa
conceptual
Revisión de
tareas
5 3
22-26-junio-
2015
1 E1 Realiza
conceptualizaciones y
resuelve problemas tipos
sobre la unidad.
Lección escrita de 10
preguntas dicotómicas
y argumentación.
Calificación y
refuerzo
6 3
22-26-junio-
2015
2 C3 Explica las características e
identifica a los aminoácidos
por sus diferentes tipos.
Esquema conceptual
sobre el tema
7 3
22-26-junio-
2015
2 CP3 Identifica péptidos y
aminoácidos
constituyentes
Elabora péptidos con
aminoácidos dados.
Cada estudiante
construirá al menos
dos dipéptidos y un
polipéptidos
mostrando la unión
peptídica.
Revisión de
tareas.
8 4
29 junio-3
julio-015
2 S2 Explica las propiedades de
las proteínas, así como el
rol que cumplen como
componentes de los seres
vivos.
Análisis de video “Las
proteínas los robots de
la vida”. Entrega de
ensayo sobre el tema.
Uso de biblioteca
virtual.
22

23. Nº SEMANA UNIDAD
TIPO
DE CLASE
CONTENIDO(S)
LOGRO(S) O
RESULTADOS DE
APRENDIZAJE
OBSERVACIONES CONTROL
8 4
29 junio-3
julio-015
2 L2 Comprueba la presencia
de las proteínas en
alimentos y aminoácidos
por coloración.
Se realizarán 4
determinaciones con
4 diferentes
alimentos por cada
grupo.
9 5
6-10 julio-
2015
2 S3 Caracteriza las proteínas
enzimáticas.
Interpreta la cinemática y
termodinámica de las
reacciones.
Se entregará tarea en
aula para
interpretación. Uso de
biblioteca virtual.
10 5
6-10 julio-
2015
2 L3 Efectuar aplicaciones
prácticas sobre el tema
Trabajo por grupos de
tres en Laboratorio
Se incluyen preguntas
para revisión
bibliográfica.
11 6
13-17 julio
2015
2 C5 Explica las vías de
descomposición y
utilización de las
proteínas.
Interpreta mecanismos
químicos para la
construcción de las
proteínas.
Realizarán un
esquema conceptual
por grupos en un
cartel.
Consulta. Trabajo
escrito.
Resumen del tema
tratado en base a guía
de estudio y rúbrica.
Calificación
según
rúbrica.
12 6
13-17 julio
2015
2 S4 Interpreta el papel de las
vitaminas y de los
cofactores enzimáticos
así como su importancia
Entrega de un Ensayo. Revisión de
ensayo. El
mejor será
publicado.
23

24. en diversas situaciones
fisiológicas.
Nº SEMANA UNIDAD TIPO
DE CLASE
CONTENIDO(S) LOGRO(S) O
RESULTADOS DE
APRENDIZAJE
OBSERVACIONES CONTROL
13 7
20-24 julio
2015
2 E2 Demuestra dominio de
los conocimientos sobre
Proteínas.
Se atenderá casos
específicos de
estudiantes de bajo
logro
Tutorías
cumplidas.
14 7
20-24 julio
2015
3 C6 Conceptualiza a los
ácidos nucleicos.
Representa las partes del
gen en procariotes y
eucariotes.
Preguntas y
respuestas. Lectura
sobre genoma
Revisión de
tareas
15 8
27-31 julio
2015
3 L4 Aplica técnicas para
extracción de DNA en
frutas.
Se utilizarán
materiales del medio,
con distintas frutas.
16 8
27-31 julio
2015
3 CP4 Expone claramente la
importancia de
nucleótidos libres y como
unidades estructurales
de los ácidos nucleicos.
Grafico explicativo
realizado por los
disertantes.
17 9
3-7 agosto
2015
3 S5 Identifica los procesos de
replicación,
recombinación y
mutación del DNA con
diversidad biológica.
Lectura sobre
transgénicos y video
alusivo al tema
clonación.
18 9
3-7 agosto
2015
3 C7 Identifica los procesos de
replicación,
recombinación y
mutación del DNA con
diversidad biológica.
Video sobre
mutaciones
24

25. 19 9
3-7 agosto
2015
3 E3 Demuestra dominio en el
tema
Entrega de Ensayo Revisión del
ensayo
20 10
10-14
agosto
2015
4 C8 Caracteriza a los
carbohidratos física y
químicamente, como
sustancias energéticas,
estructurales y de otros
usos.
Trabajo colectivo
21 10
10-14
agosto
2015
4 L5 Interpreta los resultados
de laboratorio en base a
los conocimientos
teóricos.
Informe escrito de las
determinaciones
realizadas
22 11
17-21
Agosto
2015
4 C9 Identifica mecanismos de
obtención de la energía
metabólica.
Trabajo grupal según
guía No. 3
23 11
17-21
Agosto
4 S6 Calcula energía que
aportan los
carbohidratos. Compara
procesos anabólicos de
carbohidratos
Realizar ficha
comparativa
24 12
24-28-
agos. 2015
4 C10 Argumenta de la
importancia de la
Fotosíntesis en sus dos
etapas
12
24-28-
agos. 2015
4 L6 Comprueba presencia de
metabolitos específicos
en plantas
Participará del
proyecto de estudio
fotoquímico de
plantas en Mútile.
Revisión de
propuesta
25

26. Nº SEMANA UNIDAD
TIPO
DE CLASE
CONTENIDO(S)
LOGRO(S) O
RESULTADOS DE
APRENDIZAJE
OBSERVACIONES CONTROL
25 12
24-28-
agos. 2015
4 E4 Elabora informe de
actividades del proyecto
Cumplimiento de
actividades
26 13
31 ago- 4
sep. 2015
4 C11 Resaltar las
características que
diferencian a los lípidos
de las demás moléculas.
Análisis crítico de
artículo y video
27 13
31 ago- 4
sep. 2015
4 CP5 Identifica diferentes
clases de lípidos
28 14
7-11 sept
2015
4 S7 Reconoce a los ácidos
grasos como fuente de
energía. Calcula el
balance energético y
material de la
degradación por la β-
oxidación de un ácido
graso determinado.
Desarrollo de Ensayo.
29 14
7-11 sept
2015
4 L4 Determinar las
propiedades de proceso
con sustancias de trabajo
ideal Comprueban la
saponificación de las
grasas
Al menos 2 muestras
de alimentos por
grupo Trabajo por
grupo
30 15
14-18 sept
4 E5 Examen final Demuestran resultados
de aprendizaje
Para estudiantes con
menor puntaje
26

27. 2015
C: Conferencia
CP: Clase Práctica
L : Laboratorio
E : Evaluación
S: Seminario
27