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RECONOCIMIENTO DE PARASITOS
POR: DR. FREDDY MANAYAY LLAGUENTO
I. COMPETENCIAS
1. Explicar los procedimientos de obtención y manejo de materia fecal para realizar estudios microscópicos.
2. Analizar y describir los procedimientos frecuentemente usados en el diagnóstico de parasitosis
intestinales.
3. Realizar el procedimiento para conservar materia fecal con solución de formaldehido.
4. Realizar el examen coproparasitoscópico directo en fresco
INTRODUCCIÓN.
El diagnóstico de las parasitosis intestinales depende del hallazgo de huevos, larvas o adultos de helmintos
y quistes o trofozoítos de protozoos en heces, por lo tanto, la recolección y el manejo adecuado de las
muestras fecales son indispensables para la identificación correcta de los parásitos en el laboratorio. Son
factores que interfieren con el examen de las heces, la ingestión de medicamentos previa a su recolección y
las muestras viejas o conservadas de manera inadecuada. La cantidad de materia fecal suficiente para un
examen rutinario, es una muestra del tamaño de una nuez o de dos o tres cucharadas soperas. La materia
fecal se deposita en un recipiente de boca ancha con tapa hermética y limpia; no debe contaminarse con
agua, orina o cualquier otro material extraño; no debe obtenerse de la taza del baño ni del suelo En
lactantes, la muestra se obtiene mediante la cucharilla rectal, si el examen requerido es el microscópico en
fresco. Las muestras, deben ser etiquetadas con el nombre del paciente, número de muestra, fecha y hora
de colección. Generalmente, se recomienda examinar tres muestras, en días sucesivos, durante un periodo
de siete a diez días.
Dependiendo de la consistencia de la materia fecal, se elige el procedimiento para la búsqueda de
trofozoítos, quistes, ooquistes, huevos o larvas (ver esquema). Si las heces son blandas, diarreicas y
líquidas, deben examinarse dentro de las dos primeras horas de haber sido recolectadas; si esto no es
posible, se adiciona una solución conservadora, por ejemplo: alcohol de polivinilo (PVA), merthiolate-iodo-
formol (MIF) o Schaudin. Las heces formadas pueden ser examinadas durante el mismo día de su
colección; si no es posible, pueden ser refrigeradas durante 24-48 h o conservadas en solución de
formaldehido 10%. La proporción en que se usan las soluciones conservadoras, es de una parte de materia
fecal y tres de la solución; las heces pueden mantenerse así durante semanas o meses. Otras muestras
útiles en la búsqueda de parásitos intestinales son el contenido duodenal, raspado perianal, aspirado rectal
o material obtenido por rectosigmoidoscopia. Existe una diversidad de exámenes útiles en el diagnóstico de
parasitosis intestinales, la selección del examen adecuado, dependerá de la consistencia de la materia fecal
o de los síntomas del paciente. Los exámenes frecuentemente utilizados son el directo en fresco y los de
concentración, que se basan en los principios físicos de flotación o sedimentación. El examen en fresco es
el más sencillo y se recomienda para la búsqueda de trofozoítos de protozoos, en muestras pastosas,
diarreicas o líquidas. Los exámenes de concentración se recomiendan para la demostración de quistes,
ooquistes, huevos o larvas
II.MATERIALES Y MÉTODOS.
MATERIAL DE LABORATORIO:
1. Para realizar el examen coproparasitoscópico en fresco: a. Frascos gotero con lugol. b. Frascos
gotero con solución de NaCl a 0.85%. c. Aplicadores de madera. d. Portaobjetos de 26 x 76 mm. e.
Cubreobjetos de 22 x 22 mm. f. Microscopio. 2. Para la conservación de materia fecal a. Frascos de
vidrio b. Formaldehido al 5%
MATERIAL BIOLOGICO:
 Heces bien recién recogidas o bien conservadas.
REACTIVOS:
 NaCl 0.85%.
 Lugol 1%
 Azul de metileno.
PROCEDIMIENTO
1. Conservación de materia fecal en solución de formaldehido: a. Con un abatelenguas, colocar
aproximadamente 5 g de materia fecal en el frasco de vidrio. b. Añadir 15 ml de solución de
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formaldehido caliente y mezclar con el abatelenguas hasta obtener una suspensión homogénea. c.
Etiquetar el frasco, con el nombre del paciente, número de muestra y fecha.
2. Coproparasitoscópico microscópico en fresco: a. Colocar una gota de solución NaCl al 0.85%, en
un portaobjetos. b. Con un aplicador obtener aproximadamente 2 mg de la materia fecal y mezclarla
en la gota de solución salina. c. Hacer una suspensión uniforme y retirar los detritos macroscópicos.
d. Colocar un cubreobjetos y hacer la observación microscópica inmediatamente con los objetivos
10X y 40X. e. En otro portaobjetos colocar una gota de lugol y continuar como con la gota de
solución salina.
III. RESULTADOS y DISCUCIÓN
IV. CONCLUSIONES.
CUESTIONARIO
Con el apoyo de la información recibida en el laboratorio conteste las siguientes preguntas:
1. ¿Cuál es el examen de laboratorio de elección para la búsqueda de huevos, quistes o larvas en
heces?
2. ¿Cuál es el examen de laboratorio de elección para la búsqueda de trofozoítos en heces?:
3. ¿Cuáles son las indicaciones para el uso de la cucharilla rectal?:
4. ¿Por qué se recomienda qué en los exámenes coproparasitoscópicos por concentración se
estudien tres muestras seriadas de materia fecal?:
5. ¿Cuál es la función de las sustancias conservadoras como el alcohol polivinílico o el merthiolate-
iodo-formol en los estudios coproparasitoscópicos?:
6. ¿Qué entiende por examen coproparasitoscópico cualitativo?:
V. REFERENCIAS:
1. Koneman, E. Diagnostico microbiológico, Editorial médico panamericana,
2. OMS, Manual de Bioseguridad en el laboratorio, Tercera Edición, Ginebra 2005
3. Jawetz Ernest, Microbiología médica, 17ª edición en español, Manual moderno, México, México
2002.
4. Instituto Nacional de Cancerología, Manual de bioseguridad, Bogotá, Colombia, 2010
http://www.cancer.gov.co/documentos/Sistema%20de%20Desempe%C3%B1o%20Intituciona
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Tema 19. Inmunología y el sistema inmunitario 2024
 

3. reconocimiento de parasitos

  • 1. GOBIERNO REGIONAL DE LAMBAYEQUE UNIDAD DE GESTIÓN EDUCATIVA LOCAL CHICLAYO “AÑO DE LA DIVERSIFICACIÓN PRODUCTIVA Y DEL FORTALECIMIENTO DE LA EDUCACIÓN” DIRECCIÓN DE GESTIÓN PEDAGÓGICA-UGEL CHICLAYO 1 RECONOCIMIENTO DE PARASITOS POR: DR. FREDDY MANAYAY LLAGUENTO I. COMPETENCIAS 1. Explicar los procedimientos de obtención y manejo de materia fecal para realizar estudios microscópicos. 2. Analizar y describir los procedimientos frecuentemente usados en el diagnóstico de parasitosis intestinales. 3. Realizar el procedimiento para conservar materia fecal con solución de formaldehido. 4. Realizar el examen coproparasitoscópico directo en fresco INTRODUCCIÓN. El diagnóstico de las parasitosis intestinales depende del hallazgo de huevos, larvas o adultos de helmintos y quistes o trofozoítos de protozoos en heces, por lo tanto, la recolección y el manejo adecuado de las muestras fecales son indispensables para la identificación correcta de los parásitos en el laboratorio. Son factores que interfieren con el examen de las heces, la ingestión de medicamentos previa a su recolección y las muestras viejas o conservadas de manera inadecuada. La cantidad de materia fecal suficiente para un examen rutinario, es una muestra del tamaño de una nuez o de dos o tres cucharadas soperas. La materia fecal se deposita en un recipiente de boca ancha con tapa hermética y limpia; no debe contaminarse con agua, orina o cualquier otro material extraño; no debe obtenerse de la taza del baño ni del suelo En lactantes, la muestra se obtiene mediante la cucharilla rectal, si el examen requerido es el microscópico en fresco. Las muestras, deben ser etiquetadas con el nombre del paciente, número de muestra, fecha y hora de colección. Generalmente, se recomienda examinar tres muestras, en días sucesivos, durante un periodo de siete a diez días. Dependiendo de la consistencia de la materia fecal, se elige el procedimiento para la búsqueda de trofozoítos, quistes, ooquistes, huevos o larvas (ver esquema). Si las heces son blandas, diarreicas y líquidas, deben examinarse dentro de las dos primeras horas de haber sido recolectadas; si esto no es posible, se adiciona una solución conservadora, por ejemplo: alcohol de polivinilo (PVA), merthiolate-iodo- formol (MIF) o Schaudin. Las heces formadas pueden ser examinadas durante el mismo día de su colección; si no es posible, pueden ser refrigeradas durante 24-48 h o conservadas en solución de formaldehido 10%. La proporción en que se usan las soluciones conservadoras, es de una parte de materia fecal y tres de la solución; las heces pueden mantenerse así durante semanas o meses. Otras muestras útiles en la búsqueda de parásitos intestinales son el contenido duodenal, raspado perianal, aspirado rectal o material obtenido por rectosigmoidoscopia. Existe una diversidad de exámenes útiles en el diagnóstico de parasitosis intestinales, la selección del examen adecuado, dependerá de la consistencia de la materia fecal o de los síntomas del paciente. Los exámenes frecuentemente utilizados son el directo en fresco y los de concentración, que se basan en los principios físicos de flotación o sedimentación. El examen en fresco es el más sencillo y se recomienda para la búsqueda de trofozoítos de protozoos, en muestras pastosas, diarreicas o líquidas. Los exámenes de concentración se recomiendan para la demostración de quistes, ooquistes, huevos o larvas II.MATERIALES Y MÉTODOS. MATERIAL DE LABORATORIO: 1. Para realizar el examen coproparasitoscópico en fresco: a. Frascos gotero con lugol. b. Frascos gotero con solución de NaCl a 0.85%. c. Aplicadores de madera. d. Portaobjetos de 26 x 76 mm. e. Cubreobjetos de 22 x 22 mm. f. Microscopio. 2. Para la conservación de materia fecal a. Frascos de vidrio b. Formaldehido al 5% MATERIAL BIOLOGICO:  Heces bien recién recogidas o bien conservadas. REACTIVOS:  NaCl 0.85%.  Lugol 1%  Azul de metileno. PROCEDIMIENTO 1. Conservación de materia fecal en solución de formaldehido: a. Con un abatelenguas, colocar aproximadamente 5 g de materia fecal en el frasco de vidrio. b. Añadir 15 ml de solución de
  • 2. GOBIERNO REGIONAL DE LAMBAYEQUE UNIDAD DE GESTIÓN EDUCATIVA LOCAL CHICLAYO “AÑO DE LA DIVERSIFICACIÓN PRODUCTIVA Y DEL FORTALECIMIENTO DE LA EDUCACIÓN” DIRECCIÓN DE GESTIÓN PEDAGÓGICA-UGEL CHICLAYO 2 formaldehido caliente y mezclar con el abatelenguas hasta obtener una suspensión homogénea. c. Etiquetar el frasco, con el nombre del paciente, número de muestra y fecha. 2. Coproparasitoscópico microscópico en fresco: a. Colocar una gota de solución NaCl al 0.85%, en un portaobjetos. b. Con un aplicador obtener aproximadamente 2 mg de la materia fecal y mezclarla en la gota de solución salina. c. Hacer una suspensión uniforme y retirar los detritos macroscópicos. d. Colocar un cubreobjetos y hacer la observación microscópica inmediatamente con los objetivos 10X y 40X. e. En otro portaobjetos colocar una gota de lugol y continuar como con la gota de solución salina. III. RESULTADOS y DISCUCIÓN IV. CONCLUSIONES. CUESTIONARIO Con el apoyo de la información recibida en el laboratorio conteste las siguientes preguntas: 1. ¿Cuál es el examen de laboratorio de elección para la búsqueda de huevos, quistes o larvas en heces? 2. ¿Cuál es el examen de laboratorio de elección para la búsqueda de trofozoítos en heces?: 3. ¿Cuáles son las indicaciones para el uso de la cucharilla rectal?: 4. ¿Por qué se recomienda qué en los exámenes coproparasitoscópicos por concentración se estudien tres muestras seriadas de materia fecal?: 5. ¿Cuál es la función de las sustancias conservadoras como el alcohol polivinílico o el merthiolate- iodo-formol en los estudios coproparasitoscópicos?: 6. ¿Qué entiende por examen coproparasitoscópico cualitativo?: V. REFERENCIAS: 1. Koneman, E. Diagnostico microbiológico, Editorial médico panamericana, 2. OMS, Manual de Bioseguridad en el laboratorio, Tercera Edición, Ginebra 2005 3. Jawetz Ernest, Microbiología médica, 17ª edición en español, Manual moderno, México, México 2002. 4. Instituto Nacional de Cancerología, Manual de bioseguridad, Bogotá, Colombia, 2010 http://www.cancer.gov.co/documentos/Sistema%20de%20Desempe%C3%B1o%20Intituciona l/ManualBioseguridad.pdf