Este documento proporciona información sobre la infección del tracto urinario (IVU), incluidos los patógenos más comunes, los requisitos para las muestras de orina, el procesamiento de urocultivos y la interpretación de resultados. La Escherichia coli es el agente causal más frecuente de IVU, seguido de Klebsiella pneumoniae y otros. Los recuentos bacterianos superiores a 105 UFC/ml indican una infección significativa, mientras que los recuentos intermedios requieren considerar factores clínicos y

1. Sammanta Elizabeth García Muñoz

2.  IVU- Generalmente monobacteriana.
 Gérmen más frecuente- Escherichia coli
(85%), seguido por Klebsiella
pneumoniae, Proteus mirabilis, Candida
sp., Enterobacter sp .
 Con menos frecuencia es causada por
otras enterobacterias, Pseudomonas
aeruginosa, Enterococcus spp.
 Staphyloccocus saprophyticus es un
agente relativamente frecuente de IVU
baja.

3.  Staphylococcus aureus
puede observarse en
pacientes con sonda vesical
o en IVU hematógena.
 Staphylococcus epidermidis
se considera como un
contaminante de la piel y
raramente causa IVU.
Hasta en 15% de personas
con síntomas de IVU no se
aísla germen en el
urocultivo.

4.  Las muestras deben venir
acompañadas de su respectiva
hoja de pedido donde deben
llenarse todos los datos
solicitados por el laboratorio:
 Nombre y Apellido completo.
 Nº de Historia Clínica.
 Edad.
 Sexo.
 Servicio y cama.
 Tipo de muestra: catéter,
suprapúbica, etc.
 Recibió antibióticos en los últimos
7 días, si es así anotar nombre del
ATB y dosis.
 Control o sospecha de algún
germen anterior.

5.  Los viales, tubos o frascos
donde se colocan las
muestras deben ser estériles
con tapón hermético.
 Las muestras se deben
obtener antes de iniciar el
tratamiento antibiótico, si no
es así registrar que
tratamiento antimicrobiano
sigue el paciente, o 72 horas
de finalizado el tratamiento.

6.  Si las solicitudes y/o las
muestras no cumplen los
requisitos mínimos
indispensables para su
correcto procesamiento el
laboratorio deberá aclarar las
discrepancias con el servicio
que el envío, previo a su
realización y en algunos casos
será imposible su
procesamiento hasta que se
envíe la muestra correcta.

7.  Primera orina de la mañana. De no
ser posible, el paciente debe
abstenerse de orinar durante las 3
horas previas al examen para
disminuir los falsos negativos.
 No forzar la ingestión de líquidos, ya
que con ello se diluye la orina,
alterando el recuento.
 Volumen recomendado a recolectar:
25 a 50 ml.
 Volumen mínimo: Es suficiente un
volumen de orina de 5-10 ml.

8.  Si un lactante menor de 2 años tiene
fiebre de causa inexplicada y
aparenta lo suficientemente enfermo
como para necesitar una terapia
antimicrobiana inmediata, debe
tomarse una muestra de orina por
cateterización vesical o punción
suprapúbica.
 Si el estado clínico del paciente,
determina que el mismo no requiere
medicación antibiótica inmediata, la
muestra puede tomarse por métodos
no invasivos.

9.  Se considera una etapa
crucial en el procesamiento
de los urocultivos ya que la
posibilidad de contaminación
con bacterias de la flora
comensal de piel, periné y
uretra distal, es muy alta e
induce a la generación de
resultados falsamente
positivos.

10.  Una muestra puede mantenerse
refrigerada, sin que se altere el
recuento bacteriano, durante 24 horas.
 Los preservantes que inhiben la
multiplicación bacteriana no han
resultado mejores que la refrigeración,
son de alto costo y tienen el
inconveniente de interferir con algunas
determinaciones de la tira reactiva de
orina.

11.  Los medios usados son:
− Placas con agar sangre de carnero
(AS)
− Placas con agar Mc Conkey (McC)
Otros medios: para hongos si es
necesario Agar Sabouraud
 Asa calibrada: asas de de platino o
descartable , se pueden usar las
siguientes medidas:
0.001 ml ( 1ul) para detectar
colonias mayores de 1000 UFC/ml
0.01 ml (10ul) para detectar
colonias entre 100 – 1000 UFC/ml

12. 1. Microscopia y otros métodos
directos
Tinción de Gram y Examen directo de la
muestra
 Método rápido, económico, sensible y
específico para dx bacteriuria, derminar el
tipo y conteo de bacterias y células en la
orina.
 Debe aplicarse a la muestra recién agitada
sin centrifugar, con el mismo asa de 1µl (o
de 10 µl) empleado en la siembra del
urocultivo, depositando este volumen en
un portaobjetos.
 Se tiñen y pueden ser observadas cuando
existen discordancias entre el urocultivo y
el examen directo.

13. La metodología de la inoculación de la muestra en medios
de cultivo o siembra microbiológica depende de la forma
de obtención de la muestra:
 Orinas de segunda micción, recolector y catéter a
permanencia- Asa de 1 µl, Agar Sangre y medio
selectivo-diferencial: Agar Mac Conkey.
 Desarrollo de una colonia en el cultivo X 1000.
 Cateterización vesical- Asa de 10µ (1 colonia = 100
ufc/ml) y 1 µl (1 colonia = 1000 ufc/ml).
 Punción vesical- Agar sangre y selectivo-diferencial para
bacilos Gram negativos o siembra directa de 100 µl (1
colonia = 10 ufc/ml).

14.  Usar asa calibrada, flamear, dejar
enfriar, mantener en posición
vertical introducir lsolo el aro
debajo del nivel de la orina previa
mezcla de la orina sin centrifugar.

15. Estriar en las placas de cultivo de la
siguiente manera:
 Estriar de arriba hacia el centro de
la placa y estriar la orina en una
serie de pasos de ángulo de 90º a
través del inóculo (solo para el
método de 0.001 ml).
 Otra forma es dejar la muestra
con el asa en el primer cuadrante
y estriar en V, luego proceder con
los otros cuatro cuadrantes
siguientes.

16. Sin flamear el asa estriar atravesándola línea del inoculo
en el sentido de las flechas.
Incubación
Una vez sembradas las placas deben incubarse durante 24
horas a 35 - 37° C. Incube 48 horas aquellos urocultivos
negativos con sedimento urinario alterado.
Si es conveniente incubar en atmósfera de CO2 5% las
placas de Agar Sangre si se requiere para el crecimiento de
gram positivos.

17.  Al momento de informar los
urocultivos, se recomienda revisar
el resultado del sedimento para
que ambos informes sean
concordantes.
 Piocitos: > 10 /ul ó > de 5-6 por
campo de 40x
 Leucocitos: > 10 /ul ó > de 5-6 por
campo de 40x
 Bacterias: Regular o abundante
cantidad
 La presencia de células
descamativas y/o mucus en una
paciente mujer, sugiere que la
muestra está contaminada con
secreción vaginal.

18.  Examinar los cultivos que han sido incubados toda la
noche para una lectura final de mínimo 18 horas al
menos que la muestra requiera otras recomendaciones.
 Reincubar el cultivo por 48 horas ,de ser posible,
solicitar nueva muestra si sigue alguno de estos
criterios:
La muestra ha sido obtenida por una técnica invasiva,
como PSP o por Cateterización.
Pequeñas o pocas colonias que hacen una lectura
discernible.

19.  Los resultados no correlacionan con la tinción gram o
la sintomatología clínica.
 Paciente inmunosuprimido incluye pacientes que han
sido transplantados.
 Se requiere cultivo para hongos o levaduras.
 Comunicarse con el médico tratante ya que existen
otras causas de sedimento urinario alterado que no
corresponden a IVU o para saber si el paciente está
recibiendo antibióticos.

20.  Recuento de colonias de acuerdo al asa calibrada
usada, multiplicar según la dilución.
0.001 mL 1 colonia = 1000 UFC/ml
0.01 mL 1 colonia = 100 UFC/ml
 Cuando las colonias son tan numerosas para el
recuento, tener en cuenta que el máximo de una asa de
0.001 es
> 10⁵ UFC/ml y el máximo para el asa de 0.01 es >10⁴
UFC/ml.
 Mantener la cepa de Streptococcus grupo B por 7 días
a temperatura ambiente por si la susceptibilidad sea
requerida más adelante.
 Mantener los cultivos de levaduras por 7 días a
temperatura ambiente por si sea requerida más
adelante.

21. Reporte de Resultados
a) Reporte de la Tinción Gram:
resultados de bacterias y
células.
b) Cultivos Negativos,
Reportar: de acuerdo al asa
calibrada utilizada.
Negativo dil 1/100UFC/ml o
Negativo dil 1/1000 UFC/ml.
por 24 o 48 horas.

22. c) Cultivos positivos, reportar:
 Si solo se observa flora microbiota de piel o urogenital:
10000 UFC/ml microbiota urogenital normal.
 Cultivos mixtos reportar: Rcto. UFC/ml seguido
 Multiples morfotipos presentes, posible contaminación y
nueva muestra en condiciones adecuadas.
 Reportar el recuento de colonias de cada patógeno
separadamente seguido por la identificación presuntiva o
definitiva con la susceptibilidad.
 Cuando se observa inhibición por antimicrobianos,
reportar: Se detectó inhibidor antimicrobiano con su
recuento respectivo.
 Si no hay crecimiento en la zona primaria pero si en
inóculo diluído , no reportar recuento pero si “Rcto.
disminuído debido a inhibición antimicrobiana”.
 Notificar al clínico posibles hallazgos inusuales (Ejm:
Salmonella tiphy o Burkholderia pseudomallei).

23. Recuento de
colonias
(UFC/ml)
Condición
clínica
o método de
recolección
Sedimento
urinario
Microorganismo
aislado
Interpretación/
Conducta
recomendable
0 - Independiente
del resultado
- Urocultivo negativo
Cualquier
recuento
Punción
suprapúbica
Independiente
del resultado
Cualquier
microorganismo
Identificación y
estudio de
susceptibilidad
1.000 Cateterización
transitoria
Independiente
del resultado
< 2 especies
uropatógenas
Idem
> 10.000 Segunda
micción en
paciente
especial*
Independiente
del resultado
< 2 especies
uropatógenas
Idem
> 10.000 Orina por
catéter
permanente
Patológico < 2 especies
uropatógenas
Idem
> 10.000 Segunda
micción
Patológico < 2 especies
uropatógenas
Idem

24. Recuento de
colonias
(UFC/ml)
Condición
clínica
o método de
recolección
Sedimento
urinario
Microorganismo
aislado
Interpretación/
Conducta
recomendable
> 100.000 Segunda micción Patológico 2 uropatógenos +
otra bacteria con
recuento 10 veces
menos
Identificación y
susceptibilidad
sólo de los
uropatógenos
> 100.000 Segunda micción Sin antecedente
del sedimento
< 2 especies
uropatógenas
Identificación y
estudio de
susceptibilidad
> 100.000 --- --- > 3
microorganismos,
sin predominio de
alguno
Polimicrobismo.
Solicite nueva
muestra

25. a)En pacientes sin sonda vesical, la cuenta significativa
de bacterias en orina es la presencia de mas de 10⁵
UFC / ml de un solo germen, se confirma en 92% de
casos si el germen aislado es gram negativo y en 70%,
si es gram positivo.
 Recuentos entre 10⁵ y 10₃ UFC/ml, si el paciente es
sintomático o si el germen es S. saprophyticus o
Enterococcus spp. hacen diagnóstico de IVU.
b) Los recuentos intermedio de 10₃- 10⁴ UFC / ml indican
infección si el procedimiento de recolección de orina fue
realizado correctamente. Gérmenes normalmente
encontrados en la piel o genitales externos e internos.
Pero en ciertas circunstancias recuentos de 10₂
UCF/ml o más especialmente por Salmonella o Shigella
pueden ser considerados significativos

26. c) Generalmente, el aislamiento de tres o más especies
bacterianas indican que la muestra se ha contaminado por
recolección inadecuada o demora en la siembra.
d) En pacientes con sonda vesical, cuentas bacterianas
menores de 10⁵ UFC / ml pueden tener significado, así
también se pueden encontrar bacteriurias polimicrobianas
hasta en casi 15% de enfermos.
e) En pacientes sin catéter se puede comprobar si el
procedimiento de obtención de muestra fue realizado
correctamente observando la frecuencia con la cual se
informan recuentos de colonias intermedias entre 103 -
104 UFC / ml. En pacientes sin infecciones del tracto
urinario, el recuento es nulo o se reduce a pocas colonias.

27. f) En muestras obtenidas por punción suprapúbica, el
desarrollo de una sola colonia en el medio de cultivo
indica infección del tracto urinario.
g) Si en el urocultivo desarrolla flora polimicrobiana,
sospechar contaminación y repetir el estudio. Sin
embargo hay situaciones en que la flora puede ser
polimicrobiana: portador de sonda vesical, vejiga
neurógena , fístula vésico-intestinal o vésico-vaginal
h) Cuando el urocultivo es positivo y el paciente está
asintomático, es necesario repetir el estudio.
i) Proceso del antibiograma de la orina directa no se
recomienda.

28.  IVU no complicadas, los cultivos
generalmente no están indicados, el curso
de 3 días de terapia es suficiente para la
cura. Los cultivos y susceptibilidad son útiles
en infecciones recurrentes.
 En casos de piuria ésteril , la tinción Gram
es importante. Si el organismo es visto y no
creció en cultivo, cultivo anaeróbico debe
ser indicado.
 Falsos negativos se deben a interferencia de
sustancias, orina diluída, orina con pH bajo y
la interpretación subjetiva de los criterios.

29.  La presentación de IVU puede ser similares a
las infecciones vaginales. El cultivo vaginal N.
gonorrhoea e, Chlamydia y otros agentes de
transmisión sexual deben ser considerados.
Agentes de vaginitis o vaginosis pueden ser
incluídos, como son Gardnerella vaginalis,
Micoplasmas, Candida albicans, otras levaduras
y Trichomonas.