Informe del estado del proyecto de cultivo de tejidos del CTP de Turrubares semestre 2014

LOGROS, ALCANCES Y PERSPECTIVAS
LABORATORIO WILLIAM VARGAS JIMENEZ
Ing. Jose Rafael Herrera Mesen
LABORATORIO DE CULTIVO DE TEJIDOS WILLIAM VARGS JIMENEZ |
CTP DE TURRUBARES

INFORME DE LABORES DEL
PROYECTO 2014

PARCELAS
DEMOSTRATIVAS
EXTENSION AGRICOLA

PARCELAS DEMOSTRATIVAS DE MATERIAL IN VITRO
Las parcelas demostrativas de materia in vitro, se establecieron por medio de un convenio de
extensión agropecuaria entre el CTPT (Colegio Técnico Profesional de Turrubares) y el
INTA (Instituto de Innovación y Transferencia de Tecnología Agropecuaria, Ministerio de
Agricultura de Costa Rica).
Las parcelas demostrativas nacen con tres objetivos claros:
Validar la variedad de (Musa
AAB cv. ‘Curraré enano’) en
cuatro distritos del canton de
Turrubares.
Facilitar la comercialización
de semilla asexual de (Musa
AAB cv. ‘Curraré enano’),
mediante el establecimiento
de parcelas demostrativa.
DESCRIPCIÓN DE LA ACTIVIDAD:
• Se establecieron parecelas demostrativas
en San Pablo, San Pedro, Lagunas y San
Rafael de Turrubares
Brindar a los
estudiantes el CTP de
Turrubares un lugar de
exprimentación y
trabajo en el campo.
Uno de los aspectos más importantes del proyecto es la colaboración técnica entre el CTP de
Turrubares y el INTA, para el establecimiento de cuatro parcelas demostrativas. El cantón de
Turrubares presenta diferentes microclimas, debido a su extensión y diferencias de altitud,
por tal razón se quiere evaluar la semilla asexual de plátano de la variedad curraré enano en
cuatro diferentes zonas del cantón.
La primera parcela se estableció en la finca del CTP de Turrubares, con la ayuda de los
estudiantes de talleres exploratorios y de las especialidades agropecuarias. Las demás
parcelas están ubicadas en los distritos San Rafael, San Pedro y Lagunas de Turrubares. Esto
con el fin de observar el comportamiento de la variedad en diferentes condiciones
agroecológicas del cantón de Turrubares.
Establecimiento in vitro de la variedad: En la actualidad el laboratorio de cultivo de tejidos
cuenta con un pequeño stock de material in vitro de plátano; sin embargo, la cantidad de
semilla no es suficiente para la demanda del cantón. El espacio del cuarto de crecimiento del
CTP de Turrubares es amplio y esta acondicionado para mucha más cantidad de plantas, lo

cual se pretende lograr a partir de los hijuelos de las plantas sembradas en las parcelas
demostrativas.
Grupo meta beneficiario del proyecto: “Establecimiento de parcelas demostrativas del
CTP de Turrubares-INTA-Clubes 4S:
A.) Estudiantes del CTP de Turrubares: con este proyecto se pretende que los
estudiantes, tanto de especialidad, como de talleres exploratorios, se familiaricen con
las técnicas de manejo de una parcela sembrada con plátano, así como de su manejo
agronómico en el campo y biotecnológico en el laboratorio. Con este proyecto, el
estudiante, va a contar con herramientas específicas para empezar su entrenamie nto
en su formación técnica agropecuaria. Además puede realizar sus prácticas de
especialidad en la misma institución y con supervisión de especialistas de otras
instituciones como por el ejemplo el INTA y el MAG. El proyecto por sí mismo atrae
la curiosidad de los estudiantes y favorece el ingreso de los mismos a especialidades
técnicas-agropecuarias. Se pretende que los plátanos obtenidos en la siembra de la
parcela sean utilizados en la dieta diaria del estudiante en el comedor estudiantil.
B.) Asociaciones productores de agricultores en el cantón: Las asociaciones
productoras de café de la zona de San Rafael de Turrubares, se van a ver beneficiadas
con la semilla asexual de plátano, ya que pueden diversificar sus plantaciones y su
producción. En la actualidad el café está consolidado en la zona y la introducción de
nuevos cultivos fomenta la incursión en agroindustria y diversificación de la actividad
agrícola. La Asociación específica con la que se han entablado convenios de
colaboración se llama APROCETU y se ubica en San Rafael de Turrubares, en donde
existen altitudes de 1200 msnm.
C.) Asociaciones de mujeres rurales del cantón: Estas asociaciones se han contactado
mediante un convenio de colaboración entre la FUNAC y el CTP de Turrubares. Se
pretende que mediante el establecimiento de parcelas en la comunidad de Lagunas de
Turrubares, el grupo de mujeres rurales, podrá manejar y comercializar el cultivo de
plátano. Estos grupos de mujeres rurales se han dedicado al cultivo de hortalizas y
legumbres, con la inclusión de parcelas de plátano de buena calidad podrán
diversificar su producción y gestionar proyectos de agroindustria del plátano.

PARCELA DEMOSTRATIVA DEL CTP DE TURRUBARES
Ubicación
San Pablo de Turrubares, 200 metros oeste del Plantel del MOPT. Finca del CTP de
Turrubares.
Descripción
Parcela demostrativa de material in vitro de plátano (Musa AAB cv. ‘Curraré enano’). La
parcela cuenta con 200 plantas, las plantas fueron transportadas de Guápiles a Turrubares el
6-9-13 y fueron sembradas el 11-09-13. Se utilizó la técnica de “pata de gallo”. Se pone en
práctica la utilización de enmiendas orgánicas, abono 10-30-10 y una nitrogenada antes del
verano. El riego es por goteo. No se encuentran síntomas de infección por Sigatoka negra ni
daño provocado por nematodos (Radophulis similis, Platilenchus sp y Meloidogyne). Las
chapeas se realizan regularmente, dejando siempre una cobertura que ayude a que la
plantación mantenga la humedad. Las plantas tienen una altura de 250 cm en promedio.
Observaciones
La parcela demostrativa se maneja en colaboración de dos funcionarios del CTP de
Turrubares, el encargado del proyecto: Jose Rafael Herrera Mesen y el profesor Alfonso Siles
González. Por medio de una coordinación entre ambos funcionarios se planea la participación
de los estudiantes de talleres exploratorios y de los estudiantes de especialidades
agropecuarias. Debido a un incendio parcial de la parcela, se sustituyó una cantidad de
material vegetal dañado por el fuego, con material de la misma genética, proveniente de una
finca ubicada en Santiago de Puriscal.
Informe de actividades realizadas
Datos obtenidos con la medición de las alturas en la plantación de plátano del CTP de
Turrubares
Cuadro 1. Distribución del número de plantas de plátano por rangos de altura en
centímetros del total de plantas sembradas en el 2013, fecha de medición 06/06/2014
0-24,9 25-49,9 50-74,9 75-99,9 100-124,9 125-149,9 150-174,9 175-199,9 Total
10 30 30 16 32 14 3 2 137

Cuadro 2. Distribución porcentual del número de plantas de plátano por rangos de altura
en centímetros, del total de plantas sembradas en el 2013, fecha de medición 06/06/2014
0-24,9 25-49,9 50-74,9 75-99,9 100-124,9 125-149,9 150-174,9 175-199,9
7.299 21.898 21.898 11.679 23.358 10.219 2.190 2.190
Cuadro 3. Distribución del número de plantas de plátano por rangos de altura en
centímetros del total de plantas, sembradas en el 2014, fecha de medición 06/06/014
0-24,9 25-49,9 50-74,9 75-99,9 100-124,9 Total
13 57 39 3 3 115
Cuadro 4. Distribución porcentual del número de plantas de plátano por rangos de altura
en centímetros, del total de plantas sembradas en el 2014, fecha de medición 06/06/2014
0-24,9 25-49,9 50-74,9 75-99,9 100-124,9
11.304 49.565 33.913 2.609 2.609
Cuadro 5. Crecimiento promedio en altura en cm, de las plantas de plátano sembradas en
setiembre del 2013 y los cormos de plátano sembradas en abril del 2014.
Altura promedio de las plantas sembradas en el
2013
Altura promedio de las plantas sembradas en
el 2014
79.956 cm 45.835 cm
ANALISIS DE LOS RESULTADOS
En el cuadro 1 y 2 se muestran los resultados de las mediciones de las plantas de plátano
sembradas en setiembre del 2013, que a la fecha del 06/06/ 2014 el mayor porcentaje de
plantas se encuentran por debajo de un metro de altura con un 62.77% con 86 plantas, un
33.58% de las plantas son mayores a un metro, pero menores a 1.5 m de altura y mayores a
1.5 metros corresponde solo a un 4.38% con 5 plantas.
En el cuadro 3 y 4 se destaca resultados de las mediciones de las plantas de plátano sembradas
en abril del 2014, que a la fecha del 06/06/ 2014 el mayor porcentaje de plantas se encuentran
por debajo de un metro de altura con un 97.4% con 112 plantas, y mayores a un metro
de altura corresponde a un 2.61% con 5 plantas.

En el cuadro número 5 se muestran los resultados de crecimiento promedio en altura en cm,
de las plantas de plátano sembradas en setiembre del 2013 y los cormos de plátano
sembradas en abril del 2014. Cabe destacar que las plantas de plátano nuevas presentan en
excelente crecimiento y vigor, tal como se muestra en las imágenes.
Con respecto al crecimiento promedio de las plantas establecidas en el 2013, se ha mantenido
muy bajo en un 86.1% de las plantas, debido a que en el verano el riego no fue uniforme,
además de que muchas de ellas han sido afectadas por el picudo negro. Otras razones del
crecimiento bajo puede deberse a las características de textura del suelo, sombra etc.
RECOMENDACIONES
 Sustituir las plantas con crecimiento bajo y poco desarrollo y enfermas, con plantas
nuevas.
 Realizar fertilizaciones a base de nitrógeno
 Realizar control de malezas manuales alrededor de la planta (Rodajas).
 Sembrar plantas de cobertura que fijen nitrógeno.

Registro Fotográfico de la parcela demostrativa del CTP de Turrubares

PARCELA DEMOSTRATIVA DE LAGUNAS DE TURRUBARES
Ubicación
Lagunas de Turrubares, al frente de la escuela, parcela manejada por el club 4S de Lagunas.
Descripción
 Cantidad de plantas por parcela: 60 plantas
 Distancia de plantas en cada parcela: 3 X 3
 Prácticas de manejo: existe riego por aspersión en la parcela.
 Programa de fertilización: Se han realizado hasta el momento tres abonadas con
nitrógeno.
 Al mes de agosto la mayoría de las plantas de plátano han desarrollado racimos.
Observaciones
La parcela demostrativa de Lagunas de Turrubares se maneja de una manera especial, ya
que los insumos agrícolas y asistencia técnica los aporta el Club 4S.
Registro Fotográfico de la parcela demostrativa de Lagunas de Turrubares

PARCELA DEMOSTRATIVA DE SAN PEDRO DE TURRUBARES
Ubicación
Ubicación: Finca: “Hacienda: La trinidad”, propiedad del Dr. Manuel Charpentier Rojas.
Descripción
Fecha de siembra: 02-10-2013
Cantidad de plantas por parcela: 100 plantas
Distancia de plantas en cada parcela: 4 x 2
Prácticas de manejo: existe riego por aspersión en la parcela.
Programa de fertilización: Se ha realizado hasta el momento cinco abonadas con 10-30-10.
Observaciones
La parcela demostrativa de San Pedro de Turrubares se desarrolla en una finca autosuficie nte,
en donde se utiliza riego y enmiendas orgánicas con abono producido en la finca. Los suelos
de esta región son pobres en nutrientes, por lo cual la nutrición ha sido uno de los aspectos
más cuidados en esta parcela demostrativa.
Registro Fotográfico de la parcela demostrativa de San Pedro de Turrubares

PARCELA DEMOSTRATIVA DE SAN RAFAEL DE TURRUBARES
Ubicación
Finca Propiedad de Mainor Chavarria, ubicada en el centro de San Rafael de Turrubares,
200 mts este del antiguo acopio de café.
Descripción
Fecha de siembra: 11-10-2013
Cantidad de plantas por parcela: 40 plantas
Distancia de plantas en cada parcela: 4 x 4
Observaciones
Prácticas de manejo: esta parcela esta manejada junto con el café que se produce en la finca
del propietario, por lo que se comparten las enmiendas nitrogenadas del cultivo de café, la
parcela no tiene riego, ya que está situada en una parcela que tiene dificultad para instalar lo.
Este sitio de Turrubares es el más alto del cantón y sus condiciones climáticas son totalmente
diferentes a las demás parcelas. No se cuenta con registro fotográfico por la dificultad de
acceso de la parcela demostrativa.

TRABAJO CON LOS ESTUDIANTES: DOCENCIA
PARTICIPACION EN FERIA EXPOJOVEN Y FERIA CEINTIFICA
Los estudiantes de undécimo año de la especialidad de agroecología participaron con un
proyecto de orquídeas, enfocado en la comercialización y la producción de material vegetal
proveniente del laboratorio de Micropropagación del CTP de Turrubares.
Lo realmente positivo de este proyecto es que cuenta con los permisos respectivos de
funcionamiento y se desarrolla de manera comercial a lo largo del año 2014. Dentro del
trabajo que se ha desarrollado en el laboratorio se ha estimulado la creación de
microempresas y proyectos productivos.
Existen cuatro estudiantes de la especialidad agropecuaria que han constituido dos viveros
de aclimatización y venta de orquídeas. Estos proyectos funcionan con una materia prima
esencial, la cual la constituye las plantas in vitro producidas en el Laboratorio de Cultivo de
Tejidos del Colegio Técnico Profesional de Turrubares.

A continuación se muestran imágenes de la puesta en marcha del proyecto de los
estudiantes de la especialidad de agroecología.

TRABAJO CON LOS ESTUDIANTES DE UNDECIMO AÑO
Con los estudiantes de undécimo se ha realizado un trabajo práctico en donde se han
capacitado en los siguientes aspectos:
Transferencia
de plantas
Preparacion
de medios de
culivo
Trabajos en
invernadero
Tutores de
estudiantes de
talleres

El currículo de la sub-área de Sistemas de Producción Sostenible se ha modificado, con el
fin que el estudiante adquiera habilidades y destrezas relacionadas con aspectos de manejo
de laboratorio. Esta modificación en el programa no afecta la el currículo establecido por
educación técnica, en cuanto a los contenidos y temas que se deben de cubrir, lo que pretende
es que el estudiante posea una mayor cantidad de trabajo especializado y practico.
Los estudiantes han mostrado una aceptación muy positiva por ser parte del proyecto del
laboratorio de cultivo de tejidos vegetales del CTP de Turrubares. Muchos de los estudiantes
han adquiridos roles de asistentes en diferentes áreas de trabajo del laboratorio.
TRABAJO CON LOS ESTUDIANTES DE TALLERES EXPLORATORIOS
El taller exploratorio de Reproduzcamos nuestras plantas, es en donde se desarrollan las
primeras habilidades y destrezas en los estudiantes de octavo año. El taller funciona para
involucrar al estudiante por medio de prácticas que tienen que ver con el manejo de asepsia
en el laboratorio, la elaboración de medio de cultivo para la siembra de vitroplantas, la
desinfección e introducción de explantes, la transferencia de plantas y la aclimatización de
las mismas.
En el año 2013 se realizaron avances muy importantes en cuanto al establecimiento de
prácticas de laboratorio, por medio de la creación de un folleto de prácticas de laboratorio.
Este folleto contiene prácticas con diferentes clases de tejidos vegetales de diferentes tipos
de plantas (ver anexo 19).

El taller reproduzcamos nuestras plantas, cuenta con un programa de estudio que se presta
para la implementación de prácticas de Micropropagación. En la siguiente imagen se
muestran las subunidades de estudio del taller:
Micropropagación
Viveros
Rep. de
plantas
Unidades de estudio del taller RNP
A continuación se muestran imágenes de estudiantes de talleres exploratorios trabajando en
el laboratorio y en la parcela demostrativa en diferentes prácticas realizadas alrededor del
año 2014. Estos grupos son los semilleros de estudiantes que se van a desarrollar en las
especialidades agropecuarias en el futuro

CREACION DE TALLERES EXPLORATORIO Y UNA ESPECIALIDAD ENFOCADA EN LA
BIOTECNOLOGIA: AGROBIOTECNOLOGÍA
Talleres Exploratorios
En el siguiente cuadro se muestra las propuestas de talleres exploratorios para fortificar el
área biotecnológica en los colegios técnicos que cuentan con laboratorios de cultivo de
tejidos o de producción de hongos entomopatógenos.
NOMBRE NIVEL UNIDADES DE ESTUDIO
Explorando la
Biotecnología
SETIMO
Generalidades de la biotecnología
Áreas de la biotecnología
Infraestructura y equipos utilizados
Medios de cultivo y soluciones madres
Cultivemos Tejidos
Agrícolas
OCTAVO
Generalidades de micropropagación
Técnicas de micro propagación
Micropropagación de especies agrícolas
Manejo de especies micro propagadas
Transgénesis en la Agricultura
Produzcamos
Biocontroladores
NOVENO
Generalidades sobre biocontroladores
Técnicas de producción de
biocontroladores
Manejo de los bio controladores
Transgénesis en la Agricultura
Estos talleres se están desarrollando y representan borradores, aun así cada uno de los
biotecnólogos encargados de proyectos, realizan un trabajo de redacción de unidades de
estudio y contenidos. En la actualidad se trabaja en el establecimiento del mapa curricular,
unidades de estudios y contenidos de talleres exploratorios, trabajo que se realiza con el fin
de brindar al estudiante oportunidades claras y conocimiento en áreas en donde se puede

formar, no solo en el área biotecnológica, sino en áreas de conocimiento científicas y técnicas
agropecuarias.
Especialidad de Agrobiotecnologíaa
La creación de una nueva especialidad en el área agropecuaria, denominada Agro-biotecnología
nace por la necesidad de modernizar la oferta académica en Colegio Técnicos
que cuentan con laboratorios de Micropropagación de plantas.
A lo largo del año se han sostenido reuniones con colegas biotecnólogos de otras instituciones,
encargados de laboratorios de micropropagación de plantas, con el fin de redactar un plan de
estudios para una nueva espacialidad, la cual va a ofrecer a los estudiantes del CTP de
Turrubares la oportunidad de especializarse en aspectos biotecnológicos.
Además de la especialidad se están pensando en talleres exploratorios, que fomenten la
practica dentro del laboratorio y que fortalezcan el área de docencia en estos proyectos
institucionales.
En la actualidad se ha trabajado en el desarrollo de contenidos y programas de estudio de las
diferentes unidades de estudio. La especialidad contiene un componente de inglés técnico, el
cual es muy necesario en las especialidades técnicas, para la modernización de las mismas y
para bridarle al estudiante mayor cantidad de herramientas. Por el momento lo que se cuenta
es con una propuesta que se entregará al consejo de educación para que sea analizada y que
cuente con una organización lógica. A continuación se muestra la propuesta que se está
trabajando en el presente año:
ESTRUCTURA CURRICULAR
ESPECIALIDAD: AGRO BIOTECNOLOGIA
ÁREA TECNOLÓGICA
SUB-ÁREAS X NIVEL XI NIVEL XII NIVEL
Fundamentos de Agro biotecnología 8 - -
Gestión Administrativa 8 8 12
Elementos de Producción
Agrobiotecnológico
4 12 8
English for communication 4 4 4
TOTAL HORAS 24 24 24

Perspectivas de la Especialidad
En la actualidad contamos con un proyecto de punta, que lidera los procesos de inserción de
la biotecnología en la educación técnica costarricense, el cual posee una extensión de
proyectos a nivel comunitario y estudiantil. El proyecto pretende servir de puente para unir
diferentes áreas académicas con el área técnica, mediante la estimulación de proyectos para
las diferentes ferias que propone el Ministerio de Educación. El trabajo en el laboratorio se
ha transformado paulatinamente en un modelo educativo con la metodología “aprender
haciendo”.
Es de suma importancia rescatar el gran esfuerzo que se ha realizado actualizando
constantemente la forma de comunicarse con los estudiantes, tomando en cuenta redes
sociales, estímulos visuales y trabajo en equipo y cooperativo; con la constante ayuda de las
tecnologías de la información y de la comunicación para el aprendizaje.
El trabajo que se ha realizado en la comunidad con las capacitaciones a personas de la
comunidad en el 2012, el trabajo de manos a las obra desde el 2012 y la capacitación de
padres de familia en labores de laboratorio, ha demostrado ser una forma efectiva de
involucrar paulatinamente a una parte muy importante de comunidad. En este aspecto falta
más trabajo y es uno de los aspectos que más se van a trabajar en el futuro, tendiendo al
emprendedurismo y a la formación de empresas basadas en técnicas biotecnológicas de
producción.
En este año se pudo hilvanar un proyecto de grandes alcances que ha logrado involucrar de
una manera especial a los estudiantes de especialidad de agroecología de undécimos año.
Este proyecto es de carácter productivo e involucra una cantidad de conocimiento técnicos
importantes en el desarrollo de destrezas y habilidades del estudiante. Además cuenta con
factores de mercadeo y de comercialización que tanto se buscan en las especialidades técnicas.
Dentro de las expectativas que generan estos esfuerzos que venimos realizando los
biotecnólogos alrededor del país, se encuentran las siguientes:
 Establecer el laboratorio como un espacio que genere investigación y conocimie nto
por descubrimiento, en donde el alumno logre desarrollar destrezas y habilidades
encaminadas a que en un futuro lo empoderen y sea capaz de desarrollar
emprededurismo o encontrar un empleo en donde pueda desarrollar estas habilidades
adquiridas.
 Poner a disposición del alumno de tercer ciclo talleres exploratorios que sean de un
gran valor a nivel cognitivo, que prepare estudiantes en el campo científico y que
logre despertar su interés y sus habilidades.
 Desarrollar una especialidad que le permita al estudiante de cuarto nivel, desarrollar
conocimientos, habilidades y destrezas que fomenten su conocimiento científico y su
emprendedurismo. Una especialidad que cubra las necesidades del país en el

mejoramiento de la agricultura, con unas unidades de estudio que realmente
satisfagan las políticas del país en el campo agropecuario.
 Incorporar la comunidad en el desarrollo biotecnológico del centro educativo,
capacitándolo y sirviendo como una unidad productiva que fomente la formación de
pequeñas y medianas empresas en el país. Empresas enfocadas en la producción de
insumos biotecnológicos que solucionen aspectos ambientales y de importancia para
el sector económico y productivo del país.
 Fomentar la participación de estudiantes en general en las actividades del laboratorio.
Entrelazar especialidades técnicas y materias académicas en el mejoramiento de la
calidad de la educación.
 Procurar una mayor participación en ferias científicas y tecnológicas promovidas por
el Ministerio de Educación.
 Involucrar a los demás docentes con actividades del laboratorio, especialmente a los
de afinidad agropecuaria, para que vean el laboratorio y el módulo de invernadero y
macro túneles como una oportunidad de aprendizaje para sus estudiantes y no como
una amenaza.
Es importante que el establecimiento de la especialidad en agrobiotecnología se vea como
una forma de mejorar el involucramiento de estudiantes a especialidades a la parte
agropecuaria. Que sirva como una forma de involucrar un nivel más alto al estudiante y
que los demás docentes apoyen la iniciativa y se sientan parte de la misma.
La especialidad de agrobiotecnología se está planteando tomando como principal
beneficiado el estudiante y el ambiente productivo de la institución. Con la incorporación
de un componente tecnológico importante y un inglés técnico focalizado en responder a
las necesidades de los estudiantes en este campo.
La formación de esa especialidad está abierta a recomendaciones por parte de docentes y
administrativos que vayan de la mano con el mejoramiento de la calidad de la educación
técnica de los estudiantes.
Es cierto que se han alcanzado muchos de los objetivos del proyecto inicial, pero aún
queda mucho trabajo cooperativo tanto dentro de la institución como interinstitucional.
La producción de plantas va encaminada, pero se necesita consolidar muchos aspectos
relacionados con la comercialización de las plantas producidas en el laboratorio.
El entrenamiento que se está dando actualmente a muchos estudiantes, está dirigido a
buscar asistentes en un futuro cuando el proyecto pueda autoabastecerse.
Para finalizar quiero agradecer profundamente el esfuerzo que ha realizado la
administración y la junta directiva del Colegio Técnico Profesional de Turrubares para
consolidar este proyecto.

UNIDADES DE ESTUDIO POR NIVEL. ESPECIALIDAD AGROBIOTENOLOGIA. AREA TECNOLOGICA
SUB- ÄREA UNIDADES DE ESTUDIO POR NIVEL
DECIMO HORAS UNDECIMO HORAS DUODECIMO HORAS
Fundamentos de
Agro biotecnología
Principios de Agro
biotecnología
Botánica general
Fundamentos de genética
Fundamentos Anatomía y
Fisiología Vegetal
Fundamentos de Microbiología
80
60
40
80
60
TOTAL 320
Gestión
Administrativa
Gestión de la Calidad
Salud Ocupacional
Code
Agro mática
Fundamentos de
Administración
60
20
80
80
80
Inocuidad
Práctica Empresarial
Tecnologias de
información y
comunicación
Labora
80
80
80
80
Formulación, Ejecución y
Evaluación de Proyectos
Agrobiotecnologicos
Gestión Ambiental
Mercadeo y
comercialización
Agronegocios
100
60
40
100
TOTAL 320 TOTAL 320 TOTAL 300
Elementos de
Producción
Agrobiotecnologica
Fundamentos de Laboratorio
Producción en ambientes
controlados
80
80
Sanidad Vegetal
Cultivo de Tejidos
Compuestos Orgánicos
Manejo biotecnológico de
la agricultura
120
120
120
120
Seguridad alimentaria
Manejo y conservación de
germoplasma
Recursos fitogenéticos
40
80
80
English for
comunication
English for
Communication in Biotecnology
160
English for
Communication in
Biotecnology
160
English for
Communication in
Biotecnology
100

PRODUCCION DEL LABORATORIO DE CTP DE
TURRUBARES
A. PRODUCCION DE PLATANO IN VITRO
 En el año 2014 se realizó una venta de material in vitro de plátano, por la suma de 40
mil colones, en el mes de Julio.
 En la actualidad existen 50 plantas de plátano en el invernadero aclimatizándose.
 En setiembre del 2014 empieza la colecta de hijuelos de plátano en las parcelas
demostrativas y el proceso de introducción en el laboratorio.
 Se está redactando un proyecto en conjunto al MAG, el INTA, la PITTA de musáceas
y FITTACORI, con el fin de conseguir el financiamiento para el establecimiento de
un banco de germoplasma constituido para la zona central sur del país. La primera
reunión de esta comisión se realizara el 05 de setiembre.
 Se ha realizado un proceso de divulgación por medio de página web y redes sociales,
que han generado clientes para el laboratorio de cultivo de tejidos del CTP de
Turrubares. En la actualidad se está empezando un set de producción para dos clientes
que han traído el material para ser propagado en el laboratorio.
 Se está trabajando en la construcción de los macro túneles de aclimatización con el
fin de contar con instalaciones para la producción clonal masiva de plantas. Se
iniciaran en setiembre los procesos de licitación.
 En la actualidad se cuenta con dos variedades diferentes de plátanos in vitro
provenientes del laboratorio de cultivo de tejidos de la estación experimental los
diamantes del INTA de la Rita de Guápiles.
A continuación se presentan imágenes relacionadas con la producción de plátano in vitro

B. PRODUCCION DE ORQUIDEAS IN VITRO
El laboratorio de Cultivo del CTP de Turrubares se encuentra en la actualidad en un 75%
ocupado por un proyecto de orquídeas institucional y estudiantil, el cual pretende servir de
proveedor de plantas para viveros de la zona y para los viveros establecidos por los
estudiantes de la especialidad de agroecología.
Las orquídeas in vitro que se tienen en el laboratorio, provienen de la siembra de semillas
por la técnica de capsula abierta y capsula cerrada. Se tienen orquídeas en dos etapas de su
crecimiento, multiplicación y enraizamiento. Los dos grupos de estudiantes que tienen
proyectos de aclimatización de plantas están realizando ensayos para medir el éxito de esta
fase.
A continuación se muestran fotografías que reseñan el trabajo realizado:

4. PRODUCCION DIDACTICA Y DE CONTROL
INTERNO DEL LABORATORIO
En la actualidad el laboratorio cuenta con los siguientes documentos de control interno y de
divulgación de las actividades del laboratorio.
DOCUMENTOS DE LA BITÁCORA DEL LABORATORIO DE CULTIVO DE TEJIDOS
VEGETALES DEL CTP DE TURRUBARES
 Boleta de programación semanal (Anexo 1)
 Control de preparación de medios de cultivo (Anexo 2)
 Autorización de salidas de productos, equipos y materiales (Anexo 3)
 Control de manejo in vitro de cada registro (Anexo 4)
 Entrega de materiales del laboratorio (Anexo 5)
 Manejo plantas de invernadero y vivero (Anexo 6)
 Hoja de visitas (Anexo 7)
 Solicitud de compra de plantas in vitro (Anexo 8)
 Boleta de recolección de semillas (Anexo 9)
 Manejo de la limpieza del laboratorio (Anexo 10)
DOCUMENTOS PRODUCIDOS PARA LA DIVULGACION DEL TRABAJO REALIZADO EN
EL LABORATORIO DE CULTIVO DE TEJIDOS DEL CTP DE TURRUBARES
 Boletín Informativo (Anexo 11)
 Infografías del trabajo de laboratorio (Anexo 12)
 Broshure del laboratorio de cultivo de tejidos vegetales del CTP de
Turrubares (Anexo 13)

DOCUMENTOS PRODUCIDOS PARA EL CONTROL INTERNO DE LAS ACTIVIDADES
DEL LABORATORIO DEL CTP DE TURRUBARES.
 Perfiles de personal para asistentes de laboratorio (Anexo 14)
 Reglamento interno del Laboratorio de cultivo de tejidos del CTP de
Turrubares (Anexo 15).
 Reglamento para el invernadero de aclimatización de vitroplantas y
otras coberturas para el endurecimiento de plantas (Anexo 16).
 Manual de control preventivo del equipo del laboratorio de cultivo de
tejidos del CTP de Turrubares (Anexo 17).
 Manual de seguridad ocupacional del laboratorio de cultivo de tejidos
del CTP de Turrubares (Anexo 18).

PERSPECTIVAS DEL PROYECTO
Investigacion
Produccion Docencia

INVESTIGACIÓN Y MEJORA CONTINUA
La clave para garantizar el éxito de todo proyecto, es la mejora continua y la optimización de
las condiciones involucradas en los procesos de producción. En el caso del laboratorio de
cultivo de tejidos del CTP de Turrubares, existen cuatro principales aspectos que se deben de
optimizar:
 Mejora de la calidad y el gasto energético de la iluminación de los estantes: En la
actualidad se utilizan fluorescentes de 40W, los cuales poseen una serie de
desventajas en cuanto a la calidad de la iluminación, al ahorro energético y a su
contenido de mercurio, que puede resultar toxico para los estudiantes, en caso de que
se rompan.
En el año 2013 se planteó un proyecto de “energías limpias” a educación técnica que
fue rechazado. Para el año 2015 como encargado de laboratorio propongo que se
reforme, con la adquisición de paneles solares para la alimentación de una nueva y
mejorada iluminación del cuarto de crecimiento con control automatizado de la luz y
con la sustitución de los fluorescentes convencionales a tecnología LED, la cual
disminuye el gasto energético y los costos de operación del laboratorio.
 Automatización del control de luz en el cuarto de crecimiento: Como parte del
punto anterior, en donde el cuarto de crecimiento se va a optimizar para mejorar la
calidad de luz y por lo tanto la calidad de material vegetal, el segundo punto trata otro
problema que se ha venido dando en el cuarto de crecimiento y que afecta la calidad
de las plantas, el fotoperiodo. Con la automatización de la iluminación se garantiza
que todas las plantas reciban la cantidad de luz adecuada, la utilización de un “timer ”
programado se puede controlar este aspecto que interfiere en procesos fisiológicos
fundamentales de la planta.
 Automatización del riego y mejora de las condiciones internas del invernade ro
de aclimatización: Una de las áreas más críticas y de mayor cuidado, para el éxito
en el proceso de obtención de plantas in vitro aclimatizadas, es la que ocurre en el
invernadero, con el endurecimiento de las plantas. Este proceso aún no ha obtenido
resultados positivos, por la falta de condiciones físicas dentro del invernadero que no
se están controlando por falta del equipo necesario. Para lograr plantas con buenas
características se necesita de riego automatizado y de lograr una mejor ventilac ión
dentro del invernadero.
 Adquisición de equipo de importancia en el laboratorio (autoclave, agitador
magnético y balanzas): La producción del laboratorio de cultivo de tejidos del CTP
de Turrubares aumento considerablemente y durante el año 2013 y 2014 se demostró
que se puede producir a gran escala. Esta producción requiere de cambios para
mejorar la calidad y la cantidad de medio de cultivo y de plantas producidas. Para un
futuro próximo se recomienda adquirir dos balanzas: una analítica y otra granataria,
ya que se cuenta con una balanza que es inestable y no da valores confiables para la

formulación de medios de cultivo. Se recomienda adquirir otro agitador magnético
para aumentar el volumen de medio de cultivo producido. Como plan a mediano plazo
se recomienda adquirir una autoclave de mayor volumen y dejar la actual para la
esterilización de sustrato para el invernadero.

DOCENCIA
En el campo de la docencia se viene siguiendo un proceso muy interesante, ya que se ha
venido formando estudiantes con excelentes habilidades y destrezas en el trabajo de
laboratorio, los cuales se van a convertir en la materia prima para futuros gestores de
proyectos en la zona, por medio de viveros reproductores de material proveniente de
laboratorio. A su vez, la existencia de egresados y alumnos altamente calificados para hacerse
cargo de las actividades diarias del laboratorio, facilitan a la junta administrativa la
contratación de mano de obra a medio tiempo para trabajar el laboratorio con una proyección
más a futuro y a una mejor producción de plantas in vitro.
El proceso que se ha venidos trabajando desde el año 2011, ha tenido mucho éxito en lo que
se refiere a la formación integral de estudiantes con conocimiento de trabajo en laboratorio
y trabajo de campo, en las parcelas demostrativas de material in vitro.
Los encargados de laboratorios de biotecnología del país estamos trabajando en sacar
adelante una especialidad técnica, que utilice de la mejor forma los beneficios del estudio de
la biotecnología y del uso óptimo de los laboratorios. Una especialidad que se ajuste a los
retos que va a enfrentar la agricultura en el futuro y que forme estudiantes con una alta
capacidad de adaptarse a las nuevas empresas biotecnológicas que se incorporarán al marco
productivo costarricense.
La especialidad de Agrobiotecnología pretende ser una realidad en el año 2015-2016, y el
CTP de Turrubares está dentro de un selecto grupo de colegio técnicos que cuentan son las
instalaciones el personal y la capacidad administrativa para desarrollar un proyecto de esta
envergadura.
En cuanto a la producción de trabajos para las ferias Expojovem, feria científica y Expo
ingeniería, con el pasar de los años, ha aumentado la calidad y la cantidad de estos trabajos
que se gestan dentro del laboratorio y los cursos que son parte del módulo biotecnológico.

PRODUCCION
PROYECTOS DE BIEN SOCIAL
Para aumentar la producción del laboratorio de cultivo de tejidos del CTP de Turrubares y
para mejorar las condiciones de asepsia y control de contaminación microbiana del mismo,
se han logrado diferentes convenios entre instituciones, en los cuales el laboratorio de cultivo
de tejidos del CTP de Turrubares se ha convertido en una razón de peso para que muchos de
los pobladores del cantón puedan realizar trabajo comunal remunerado bajo diferentes
modalidades (Proyecto Manos a las Obras del IMAS o por medio del PRONAE del
Ministerio de Trabajo).
En los años 2012 y 2013, se estableció un proyecto de Manos a las obras, el cual facilito la
carga de trabajo y permitió condiciones de asepsia de alta calidad. Para el año 2014 se intentó
realizar un proyecto similar con el Ministerio de Trabajo, el cual no se logro por falta de
presupuesto por parte del Ministerio de Trabajo.
AMPLIACION DE LA OFERTA AL PRODUCTOR
Oferta del Laboratorio del Cultivo de Tejidos del CTP de Turrubares:
Plantas que se
producen en el
Laboratorio del
cultivo de tejidos del
CTP de Turrubares
Platano
Orquideas
El Laboratorio de Cultivo de Tejidos del CTP de Turrubares a mediano plazo debe de
consolidar estas dos especies de plantas en el área de producción, sin embargo está abierto a
producir plantas previas a pedido de productor. Además debe de empezar a impleme ntar
sistemas de producción que garanticen una mayor cantidad de volumen de plantas como los
sistemas de inmersión temporal.

PROYECCION DE LAS ACTIVIDADES DEL LABORATORIO DE CULTIVO DE TEJIDOS WILLIAM VARGAS JIMENEZ DEL 2015
Área Descripción
Docencia  Finalizar los procesos de redacción y aprobación de la especialidad de agrobiotecnología y talleres exploratorios en
educación técnica.
 Participar con dos proyectos en las tres ferias: Expojovem, Feria científica y Expo ingeniería.
 Coordinar con profesores académicos al menos tres sesiones de laboratorio en donde se analicen datos (matemáticas), se
observen procesos biológicos y químicos (biología y química) y en donde se traduzcan artículos científicos realizados
por los estudiantes (ingles)
Investigación
y Extensión
 Dar seguimiento a la segunda generación de hijuelos en las parcelas demostrativas ya establecidas.
 Establecer al menos tres parcelas de estudio en otras zonas geográficas del cantón de Turrubares.
 Abrir al público talleres de aclimatización de plantas, en donde los estudiantes participen como instructores de los temas
que han aprendido en sus correspondientes cursos.
 Realizar en noviembre exposiciones de los proyectos realizados a través del año en los talleres exploratorios. En una
actividad que se denomine “encuentro de investigaciones estudiantiles del CTP de Turrubares”, en donde los estudiantes
realizan un cartel con sus investigaciones, las cuales van a ser el semillero para participar en las ferias en noveno año.
Con esto se pretende fomentar una cultura de participación en ferias y en el desarrollo de investigaciones de interés
científico relacionadas con el quehacer diario del laboratorio de cultivo de tejidos vegetales.
Producción  Convertir el Laboratorio de Cultivo de tejidos del CTP de Turrubares, en un banco de germoplasma de musáceas, en
donde se coordiné con el INTA y el PITTA de musáceas los clones que se van a propagar.
 Entregar y redactar proyecto de “optimización y automatización de las condiciones el cuarto de crecimiento del
laboratorio de cultivo de tejidos del CTP de Turrubares”, con el fin de controlar de mejor manera el fotoperiodo y mejor
las calidad de la luz.
 Como meta de producción en el 2015, vender al menos 500 000 mil colones en plantas in vitro e insumos provenientes
del laboratorio.
 Gestionar con el IMAS o con el ministerio de trabajo un proyecto de trabajo comunal remunerado para contar con un
asistente de laboratorio y de limpieza del mismo.
 Realizar un seguimiento de los proyectos de producción y aclimatización de orquídeas que se generaron en el año 2014.

INFORMACION DE ENCARGADO DE LABORATORIO
(506) 88114896
facebook.com/LCTCTPT
joseherreramesen@gmail.com
jose.herrera.mesen@mep.go.cr
https://adminmepcr-my.sharepoint.com/personal/jose_herrera_mesen_mep_go_cr/Blog
cr.linkedin.com/pub/jose-rafael-herrera-mesen/8a/776/a82/
@joheme18

ANEXOS
1. DOCUMENTOS DE LA BITACORA DEL LABORATORIO DE CULTIVO DEL
CTP DE TURRUBARES. WILLIAM VARGAS JIMENEZ
# Anexo Nombre del Anexo # de Paginas
Anexo #1. Boleta de programación semanal 1
Anexo #2. Control de preparación de medios de cultivo 1
Anexo #3. Autorización de salida de productos, equipos y materiales 1
Anexo #4. Control de manejo in vitro 1
Anexo #5. Entrega de plantas 1
Anexo #6. Manejo de plantas de invernadero y vivero 1
Anexo #7. Hojas de Visitas 1
Anexo #8. Solicitud de compra de plantas in vitro 1
Anexo #9. Boleta de recolección de semillas 1

Laboratorio de Cultivo de Tejidos del CTP de Turrubares
William Vargas Jiménez
Versión: 01
LCTCTPT-01 Boleta de programación semanal Página 1
Semana:____________ Fecha:______________ Responsable:___________________________
A.M. LUNES MARTES MIÉRCOLES JUEVES VIERNES SÁBADO
Actividad
Material
Apoyo
P.M.
Actividad
Material
Apoyo

Versión: 01
LCTCTPT-02 Control de preparación de medios de cultivo Página 2
Semana Cantidad Código Especificaciones Cultivar Responsable Realizado

Versión: 01
LCTCTPT-03 Autorización de salida de producto, equipo y materiales Página 3
Fecha Cantidad Placa Especificaciones Observaciones Responsable Autorizado

Versión: 01
LCTCTPT-04 Control de Manejo in vitro Página 4
Cultivar:
Origen:
Recolector:
Proyecto:
Observaciones:
Fecha Actividad Contaminación Multiplicación Enraizamiento Salida a
Invernadero

Versión: 01
LCTCTPT-05 Entrega de Plantas Página 5
Información General Fecha Cultivar
Cantidad plantas solicitadas Cantidad plantas entregadas
Información del
Productor
Nombre del solicitante Teléfono
e-mail Dirección de finca
Persona que retira
Nº cédula del transportista Nº de placa
Facturación Nº de Boleta de Salida Nº de Factura
Monto de la Factura
Control Firma persona que entrega
Firma persona que revisa
Firma persona que recibe

Versión: 01
LCTCTPT-06
Manejo de Plantas de invernadero y macro túneles
Página 6
Fecha Responsable Descripción de la
actividad
Sustrato/fertilización Plantas vivas Plantas muertas

Versión: 01
LCTCTPT-07 Hoja de Visitas Página 7
Fecha de la visita: Cultivar:
Fecha de compra de las plantas: Factura: Boleta:
Nombre del productor:
Organización o grupo:
Teléfonos: Email:
Dirección de la plantación
OBSERVACIONES Y RECOMENDACIONES:
______________________________________________________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________________________________________________________________
__________________________________________________________________________________________________________________________________
________________________________________________ __________________________________________________
Nombre y cedula del funcionario Firma del productor

Versión: 01
LCTCTPT-08 Solicitud de compra de plantas in vitro Página 8
Colegio Técnico Profesional de Turrubares N° Solicitud
Responsable: Fecha de recepción
Telefax 24190256 correo: joseherreramesen@gmail.com
Cantidad de plantas Dirección exacta de la finca
Fecha estimada de
entrega

Versión: 01
LCTCTPT-09 BOLETA DE RECOLECCION DE SEMILLA Página 9
Nombre del Agricultor
Nombre de la Organización, finca
o asociación
Dirección de la plantación
Provincia
Cantón/Distrito:
Fecha de la cosecha
Fecha de entrega
Nombre del cultivar
Cantidad de semilla
Edad de la plantación
Características del terreno
Manejo de la plantación
Estado fitosanitario
Incidencia de Sigatoka negra (1-5)
Picudo:

Laboratorio de Cultivo de Tejidos del CTP de Turrubares William Vargas Jiménez
Cronograma anual de actividades relacionadas con el manejo y la prevención del equipo de laboratorio.
LCTCTPT-10 Manejo de la limpieza del laboratorio
Actividades/Mes Feb Mar Abr May Jun Jul Ago Set Oct Nov Dic
Limpieza de cristalería, pisos y estantes X X X X X X X X X X X
Revisión general del equipo X X X X X X
Limpieza de lentes de los microscopios y
estereoscopios, armarios y refrigeradora
X X X X X X
Revisión de los microscopios y estereoscopios X X X
Limpieza de gabachas X X X X X X
Monitoreo de cámaras de flujos laminar X X X X
Limpieza de autoclaves y destiladores de agua X X X X X
Limpieza de estantes y cuartos de crecimiento X X X X X X X X X X X
Inventarios de equipo y reactivos X X X X
Renovación de equipos de limpieza X X X

2. DOCUMENTOS PARA LA DIVULGACION DEL TRABAJO REALIZADO EN
EL LABORATORIO DE CULTIVO DEL CTP DE TURRUBARES. WILLIAM
VARGAS JIMENEZ
# Anexo Nombre del Anexo # de Paginas
Anexo #11. Boletines informativos (virtuales) 1
Anexo #12. Infografías del trabajo de laboratorio 1
Anexo #13. Broshure del laboratorio de cultivo de tejidos vegetales del
CTP de Turrubares
1
Anexo #11. Disponibles en los siguientes links:
http://www.youblisher.com/p/765319-Laboratorio-de-Cultivo-de-Tejidos-del-CTP-de-Turrubares/
http://www.youblisher.com/p/910510-Laboratorio-de-cultivo-de-tejidos-vegetales/
http://issuu.com/joserafaelfelloherreramesen/docs/periodico_lab.docx

INFOGRAFIAS Y DISEÑOS
GRAFICOS
(Anexo # 12)

BROSHURE DEL
LABORATORIO DE
CULTIVOS DE TEJIDOS
DEL CTP DE TURRUBARES
(Anexo # 13)

Plantas in vitro de Platano (Musa
AAB cv ‘Curraré Enano’)
NOVEDADES
 Prácticas en el laboratorio con
los estudiantes de octavo año,
en el taller Reproduzcamos
nuestras plantas.
 Establecimiento y siembra de
parcelas demostrativas de
(Musa AAB cv ‘Curraré Enano’)
en el CTP de Turrubares, en
Lagunas, Potenciana y San
Rafael de Turrubares.
 Remodelación y
establecimiento de dos nuevas
áreas en el laboratorio de
cultivo de tejidos vegetales:
aula didáctica y oficina.
 Puesta en marcha del proyecto
manos a la obra IMAS-CTPT.
Quiénes somos
El laboratorio de Cultivo de Tejidos es un
proyecto basado en la investigación,
produccion y docencia. Pretende servir como
un proyecto productivo que fomente el
emprededurismo en la zona y facilite la
obtención de semilla asexual libre
enfermedades.
Contacto
Telefono: 24190256
Correo electronico:
ctpturrubares@gmail.com
Encargado del Proyecto:
Jose Rafael Herrera Mesen
Email: joseherreramesen@gmail.com
Cel. 88114896
https://www.facebook.com/LCTCTPT
Colegio Tecnico Profesional
de Turrubares

3. DOCUMENTOS PARA EL CONTROL INTERNO DE
LAS ACTIVIDADES DEL LABORATORIO DEL
CTP DE TURRUBARES
Anexo #14: Perfiles de personal para asistentes del LCTCTPT
Anexo #15: Reglamento interno del LCTCTP
Anexo #16: Reglamento para el invernadero de aclimatización
de plantas del CTPT
Anexo #17: Manual de limpieza del LCTCTPT
Anexo #18: Manual de control preventivo del LCTCTP
Anexo #19: Manual de seguridad ocupacional del LCTCTP

MINISTERIO DE EDUCACIÓN PÚBLICA
COLEGIO TECNICO PROFESIONAL DE TURRUBARES
LABORATORIO DE CULTIVO DE TEJIDOS VEGETALES
WILLIAM VARGAS JIMENEZ
“PERFIL DE PERSONAL PARA ASISTENTES DE LABORATORIO”
ANEXO 14.
Elaborado por: Ing. Jose Rafael Herrera Mesen

OPERARIO DEL ÁREA DE ELABORACIÓN DE MEDIOS DE CULTIVO.
Sector/es de actividad socio productiva: AGROPECUARIO/PRODUCCION IN
VITRO.
Denominación del perfil profesional: ENCARGADO DE MEDIOS DE CULTVO
Familia Profesional: ACTIVIDADES AGROPECUARIAS
Cargo: Encargado de medios de cultivos y limpieza.
Criterio de selección: Determinado vía diagnóstico.
Resumen del cargo: Operar eficiente los equipos e instrumentos, velar y controlar el
cumplimiento de calidad en la producción, las buenas prácticas de laboratorio, las
normas establecidas de salud ocupacional y el aprovechamiento adecuado de los
insumos del laboratorio. El encargado deberá saber realizar monitoreo de bacterias e
interpretarlos, por medio de la capacitación inicial. Deberá de entender los
procedimientos para la elaboración de medio de cultivo, de asepsia, y demás
relacionadas con el uso efectivo de reactivos. El trabajo requiere una gran
concentración y orden para llevar registros de información. El medio de cultivo
deberá de ser preparación con una antelación de cuatro días, para que tenga una un
tiempo de cuarentena
Funciones básicas:
 Limpieza optima del área asignada: el encargado deberá iniciar y terminar su
jornada con una limpieza exhaustiva del lugar de trabajo. El trabajo en laboratorio
requiere altas demandas de asepsia, por lo que se debe entender la importancia de la
desinfección de los lugares de trabajo, el constante lavado de manos y sobretodo la
importancia de permanecer dentro del laboratorio y salir solo cuando realmente lo
amerite. Se debe entender que el proceso requiere de la menor cantidad de
microrganismos presente, y que éste contamina el medio de cultivo y retrasa el
proceso en que la planta es exitosamente aclimatizada.
 Utilización adecuada del equipo e instrumentos según los criterios dados en una
previa inducción: tanto el equipo como las herramientas e instrumentos del
laboratorio tienen una forma correcta de uso. Al encargado se le capacitará para que
adquiera las habilidades y destrezas necesarias para operar estos equipos. Una vez
capacitado el encargado deberá de atender todas las disposiciones del uso adecuado
del equipo. Cualquier equipo dañado por el mal uso de mismo, será responsabilidad
del trabajador.

 Lavado de toda la cristalería y frascos contenedores de plantas: como producto
de la actividad desarrollada en el laboratorio de micropropagación de plantas, se
utiliza una gran cantidad de frascos tipo gerber, chonky, week, entre otros. Estos
frascos una vez que se trabajen las plantas y por jornada, deberán de quedar limpios
y estériles para su uso el día siguiente. El lavado y esterilización de estos frascos es
responsabilidad directa del trabajador y su incumplimiento afectará sensible la
producción de plantas in vitro.
 Elaboración de la soluciones madres con los reactivos indicados por el encargado
del laboratorio: el correcto almacenamiento y la elaboración a tiempo de las
soluciones madres para la realización de medios de cultivo permite una producción
fluida y sin retrasos. El encargado de laboratorio le asignara una lista de actividades
diarias en la cual se debe prestar un cuidado primordial a la preparación de soluciones
madres.
 Funciones Adicionales, permanentes o laborales: el encargado de medios de
cultivo también tiene a cargo actividades de embellecimiento de las zonas verdes del
laboratorio y de limpieza exterior, según se le solicite o funciones de oficina como
redacción de documentos o archivado de documentación de laboratorio. Además
deberá de llevar un control de temperatura en el cuarto de crecimiento al entrar y al
salir todos los días.
Capacitaciones
Cada uno de los candidatos al puesto va a recibir una capacitación, antes de un diagnóstico
del cual va a depender su ingreso al puesto.
Los temas que se van a evaluar en la capacitación son los siguientes:
 Uso de equipo de laboratorio y cristalería.
 Elaboración de soluciones madres y medio de cultivo.
 Lavado de cristalería.
 Utilización de software básico.
 Utilización de reactivos químicos, riesgos y uso adecuado.
Diagnostico
El diagnostico consta de una prueba de habilidades y destrezas que se realizara con los
candidatos al puesto.
Carga horaria mínima
Se requiere un horario de 7 am a 3 pm, tres días por semana.
Referencial de ingreso
El aspirante deberá poseer un dominio de capacidades para el cálculo matemático básico,
gran capacidad de precisión, observación y motora fina. Estos saberes pueden haber sido

adquiridos dentro del Sistema Educativo o fuera de él. La valoración y acreditación se
realizará a través de una evaluación relativa de dichas capacidades por parte de la instituc ión,
sin necesidad de solicitar certificado educativo alguno.
OPERARIOS DEL ÁREA DE TRANSFERENCIA.
VITRO.
Denominación del perfil profesional: OPERARIOS DE TRANSFERENCIA
Cargo: Operarios de Transferencia de plantas.
Resumen del cargo: Realizar las labores de corte, preparación y siembra de los
explantes. El trabajo requiere un alto grado de concentración y de seguimiento de
normas de asepsia. El operario es el responsable directo del corte y de la
contaminación de los explantes. El trabajo requiere una alta habilidad motora fina y
el uso constante de las manos, por lo que se estará escogiendo personal que tenga un
grado de experiencia en labores manuales.
Funciones básicas:
 Limpieza optima del área asignada: En esta zona es imprescindible la asepsia y la
limpieza. Por tal motivo dentro de las funciones del operario están las de lavarse
correctamente las manos antes y después de entrar al laboratorio. Se debe de
desinfectar la cámara de flujo tal y como se le mostrará en la capacitación. Los
instrumentos de trabajo también deben de desinfectarse así como el constante
aplicación de una solución desinfectante cada vez que se introduzca algo a la cámara
de flujo laminar.
 Limpieza optima del área asignada: el encargado deberá iniciar y terminar su
jornada con una limpieza exhaustiva del lugar de trabajo. El trabajo en laboratorio
requiere altas demandas de asepsia, por lo que se debe entender la importancia de la
desinfección de los lugares de trabajo, el constante lavado de manos y sobretodo la
importancia de permanecer dentro del laboratorio y salir solo cuando realmente lo
amerite. Se debe entender que el proceso requiere de la menor cantidad de
microrganismos presente, y que éste contamina el medio de cultivo y retrasa el
proceso en que la planta es exitosamente aclimatizada.

 Utilización adecuada del equipo e instrumentos según los criterios dados en una
previa inducción: tanto el equipo como las herramientas e instrumentos del
laboratorio tienen una forma correcta de uso. Al encargado se le capacitará para que
adquiera las habilidades y destrezas necesarias para operar estos equipos. Una vez
capacitado el encargado deberá de atender todas las disposiciones del uso adecuado
del equipo. Cualquier equipo dañado por el mal uso de mismo, será responsabilidad
del trabajador. En el caso del operario deberá de acatar un orden del proceso de
siembra de explantes dentro de la cámara de flujo laminar.
 Funciones Adicionales, permanentes o laborales: el operario de transferencia tiene
a cargo actividades de embellecimiento de las zonas verdes del laboratorio y de
limpieza exterior, según se le solicite o funciones de oficina como redacción de
documentos o archivado de documentación de laboratorio.
Capacitaciones
 Uso de equipo de laboratorio y cristalería.
 Elaboración de soluciones madres y medio de cultivo.
 Lavado de cristalería.
 Utilización de reactivos químicos, riesgos y uso adecuado.
 Asepsia en el trabajo dentro de las cámaras de transferencia.
 Cortes de explantes de diferentes especies de vegetales.
Diagnostico
Se requiere un horario de 7 am a 3 pm.
El aspirante deberá poseer una gran capacidad de precisión, observación y motora fina. Estos
saberes pueden haber sido adquiridos dentro del Sistema Educativo o fuera de él. La
valoración y acreditación se realizará a través de una evaluación relativa de dichas
capacidades por parte de la institución, sin necesidad de solicitar certificado educativo alguno.
Se tomara como un factor positivo el hecho de que el operario posesa una experiencia previa
en labores manuales.

OPERARIOS DEL ÁREA DE INVERNADERO.
VITRO.
Denominación del perfil profesional: SUPERVISOR DE INVERNADERO.
Cargo: Encargado de Invernadero.
Resumen del cargo: Los operarios de invernadero deben velar por el estado de las
plantas y por su estado fisiológico. Son los encargados del correcto proceso de
endurecimiento o aclimatización de las micro plantas.
Funciones básicas:
 Limpieza optima del área asignada: En esta zona es imprescindible la asepsia y la
limpieza. Por tal motivo dentro de las funciones del operario deberá cumplir el
protocolo de entrada y salida.
 Monitoreo: El supervisor del invernadero debe estar atento a cualquier cambio
extremo de temperatura, alguna abertura o daño que sufra tanto la herramienta como
la infraestructura física y lo más importante el estado de las plantas, tanto en su
estructura como su estado fitosanitario.
 Preparación de sustrato y abonos orgánicos: el supervisor deberá velar por que
exista la cantidad adecuada de sustrato para el llevado de almácigos o bolsas, según
se encuentre en la programación semanal.
 Siembra de almácigos y mantenimiento: una de las labores más importantes es la
de la aclimatización de plantas provenientes del laboratorio. El supervisor deber a
monitorear el estado de las plantas que se están aclimatizando y reportar
inmediatamente cualquier problema. Deberá realizar los almácigos hidropónicos y
velar por el correcto funcionamiento del riego
 Funciones Adicionales, permanentes o laborales: el encargado de medios de
cultivo también tiene a cargo actividades de embellecimiento de las zonas verdes del
laboratorio y de limpieza exterior, según se le solicite o funciones de oficina como
redacción de documentos o archivado de documentación de laboratorio. Además
deberá de llevar un control de temperatura en el invernadero al entrar y al salir todos
los días.

Capacitaciones
 Siembra y mantenimientos de plantas.
 Riego y drenaje.
 Técnicas asépticas
 Utilización de químicos, riesgos y uso adecuado.
Diagnostico
Se requiere un horario de 7 am a 3 pm.
El aspirante deberá poseer un dominio de capacidades para el cálculo matemático básico,
gran capacidad de precisión, observación y motora fina. Estos saberes pueden haber sido
adquiridos dentro del Sistema Educativo o fuera de él. La valoración y acreditación se
realizará a través de una evaluación relativa de dichas capacidades por parte de la instituc ión,
sin necesidad de solicitar certificado educativo alguno. A los aspirantes que posean una
experiencia en el área agropecuaria.

“REGLAMENTO INTERNO DEL LABORATORIO DE CULTIVO DE TEJIDOS
DEL COLEGIO TECNICO PROFESIONAL DE TURRUBARES”
ANEXO 15.

MEDIDAS DE CONTROL DE HIGIENE
1.1 .La persona que ingresa al laboratorio debe tener las manos y los zapatos limpios
1.2 .Las puertas de las Cabinas de Amortiguamiento (área de cambio) siempre deben estar
cerradas. Cuando circula la gente, una puerta de las Cabinas de Amortiguamie nto
podrá abrirse sola si la otra puerta está cerrada.
1.3 .Las personas deben evitar conversar dentro del laboratorio
1.4 .No se permite comer ni fumar.
1.5 .Los alimentos deben mantenerse protegidos dentro de bolsas plásticas o recipientes
dentro de la refrigeradora y área de cocina
1.6 .Mientras se está trabajando, no se permite conversar por teléfono celular. El celular
solo será permitido para tomar evidencias de procesos.
LIMPIEZA DEL LABORATORIO
2.1 .Las áreas de transito como pasillos y áreas de trabajo se limpian todos los días
2.2 .Los Cuartos de Cultivo se limpian y sacuden dos veces por semana
LIMPIEZA DEL EQUIPO
3.1. Las Cámaras de Transferencia se limpian y desinfectan todos los días antes de
usarse.
3.2. Las balanzas deben limpiarse después de usarse
3.3. El electrodo del pH-Metro debe enjuagarse con agua destilada después de usarse
LAVADO DE CRISTALERÍA
4.1 Eliminación de desechos.
4.2 Lavado con agua y jabón
4.3 Desinfección y orden de frascos
MANEJO DE DESECHOS
5.1 Desechos orgánicos
5.2 Desechos inorgánicos
5.3 Desechos de vidrios y otros materiales reciclables

ORDEN DE LABORATORIO, VIVERO Y BODEGAS
6.1 Plan para el ordenamiento de materiales en laboratorio y vivero
6.2 Control de inventario
6.3 Procesos de registro para el ingreso y salida de materiales
NORMAS OPERATIVAS DE UN LABORATORIO DE BIOTECNOLOGÍA
El laboratorio debe ser un lugar seguro para trabajar donde no se deben permitir descuidos o
bromas. Para ello se tendrán siempre presente los posibles peligros asociados al trabajo con
materiales peligrosos. Nunca hay excusa para los accidentes en un laboratorio bien equipado
en el cual trabaja personal bien informado.
 Este terminante prohibido realizar bromas a las personas presentes en laboratorio.
 Se deben de evitar los descuidos, principalmente cuando se estén operando los
equipos o realizando mediciones.
 Durante la estancia en el laboratorio el alumno debe de estar provisto de gabacha,
gafas de seguridad, tapabocas y guantes de latex. Los lentes y los guantes se deben
de utilizar cuando se esté trabajando con reactivos peligrosos o cuando se esté
trabajando en la cámara de flujo laminar.
 Los alumnos se deben de quitar todos los accesorios personales que puedan
comprender riesgos de accidentes mecánicos, químicos o por fuego, como son anillos,
pulseras, collares, aretes, celulares, aparatos electrónicos, entre otros.
 Terminantemente prohibido fumar, beber y comer en el laboratorio, así como dejar
encima de la mesa del laboratorio alguna tipo de prenda.
 Para hacer ingreso al laboratorio debe de mantener las uñas recortadas. El pelo largo
se llevara recogido, cuando realice la siembra del material vegetal u otro en la cámara
de flujo laminar.
 Debe de conocer la toxicidad y riesgos de todos los compuestos con los que se trabaje.
Debe de convertirse en una práctica común consultar las etiquetas de los reactivos en
busca de información sobre seguridad.

 No se debe pipetear nunca con la boca. Los volúmenes de ácidos, bases concentradas
y disolventes orgánicos se medirán con probetas, en el caso de que se deban medir
los volúmenes exactos, succionaran empleando micropipetas o pipeteadores.
 Los frascos y envases de reactivos deben de permanecer en los estantes respectivos,
solo tomar las medidas necesarias para la realización del medio requerido.
 Se debe de mantener limpia la zona de trabajo y libre de objetos innecesarios.
 Los frascos de los reactivos deben de cerrarse inmediatamente después de su uso,
durante su utilización los tapones deben depositarse siempre boca arriba sobre la
mesa.
 No deben manipularse jamás productos o disolventes inflamables cerca de los
mecheros.
 Si algún reactivo se derrama, debe retirarse inmediatamente dejando el lugar
perfectamente limpio. Las salpicaduras de sustancias básicas deben de neutralizarse
con ácido débil (por ejemplo: ácido cítrico) y las de sustancias ácidas con una base
débil (bicarbonato sódico).
 No deben verterse residuos sólidos en los fregaderos, deben emplearse los recipientes
para residuos que se encuentran en el laboratorio.
 Los ácidos y bases concentrados se encuentran en la vitrina del laboratorio. En ningún
caso deben sacarse de la vitrina, cuando se requiera un volumen de estos reactivos se
llevara el recipiente adecuado a la vitrina para tomar allí mismo la cantidad necesaria.
 Cuando se tengan dudas sobre las precauciones de manipulación de algún producto
debe consultarse al encargado del laboratorio antes de proceder a su uso.
 Los recipientes utilizados para almacenar disoluciones deben limpiarse previame nte,
eliminando cualquier etiqueta anterior y rotulando de nuevo inmediatamente.
 Las disoluciones y recipientes deben de manipularse con cuidado. Para la
introducción y extracción de recipientes de hornos y estufas deben utilizarse las
pinzas y guantes adecuados.
 Las heridas y quemaduras deben de ser tratadas inmediatamente, en el caso de
salpicaduras de ácidos sobre la piel, lavar inmediatamente con agua abundante,
teniendo en cuenta que en el caso de ácidos concentrados la reacción con el agua

puede producir calor. Es conveniente retirar la ropa para evitar que el corrosivo quede
atrapado entre la ropa y la piel.
 Deben conocerse la situación específica de los elementos de seguridad (extintor,
salidas de emergencia, entre otros) en el laboratorio así como todas las indicaciones
sobre seguridad expuestas en el laboratorio.
 No debe llevarse a la boca ningún material del laboratorio; si algún reactivo es
accidentalmente ingerido, avise de inmediato al encargado del laboratorio.
 Cuando se trabaje en equipo, cada uno de los integrantes es responsable por el
material y equipo que se le asigne (por ejemplo, balanzas, peachimetro, estufas, entre
otros), en caso de pérdida o daño, deberá responder por ello, y llenar la
correspondiente ficha. Antes de empezar con el procedimiento experimental o utilizar
un algún equipo se debe revisar todo el material y su manual de funcionamiento.
 Al finalizar cada sesión de practicas el material y la mesa de laboratorio deben de
dejarse perfectamente limpios y ordenados.
 Está prohibido fumar, beber o comer en el laboratorio, así como dejar encima de la
mesa del laboratorio algún tipo de prenda.
 Mantenga las uñas recortadas. El pelo largo se llevará siempre recogido, cuando
realice la siembra de material vegetal u otro en la cámara de flujo laminar.
 Las disoluciones de reactivos, que no sean patrones ni muestras, se almacenan en
botellas de vidrio o plástico que deben limpiarse y rotularse perfectamente
 Los reactivos sólidos deben devolverse al lugar de donde se tomaron inmediatame nte
después de su uso
 Las balanzas deben dejarse a cero y perfectamente limpias después de finalizar la
pesada
 Cerca de las balanzas sólo deben permanecer los estudiantes que se encuentren
pesando (uno por balanza)
 El material asignado a cada práctica debe permanecer en el lugar asignado a dicha
práctica. No se debe coger material destinado a prácticas distintas a la que se está
realizando. Bajo ningún concepto se sacarán reactivos o material de prácticas fuera
del laboratorio.

Calentar y destilar
 Para recoger recipientes calientes como cápsulas, crisoles, vasos, etc., utilizar las
correspondientes pinzas. También nos podremos ayudar de un paño del laboratorio
 Cuando se calienten líquidos, evitar que la posible proyección pueda alcanzar a
cualquier persona o reactivo incompatible. Al calentar una solución en un tubo de
ensayo, debe hacerse bajo el nivel del líquido y constantemente agitando. No debe
apuntarse con el tubo al compañero o a sí mismo, pues puede proyectarse
 Al calentar vidrio, dejar enfriar antes de cogerlo. Colocarlo sobre un material
térmicamente aislante, el vidrio caliente tiene el mismo aspecto que el vidrio frío
 No manipular productos inflamables (benceno, tolueno, éter, etc.) en presencia de
mecheros encendidos. No destilar éter con llama o en presencia de mecheros
encendidos.
Gases
 Las reacciones en las que se prevea un desprendimiento de gases, deben realizarse
siempre en una cámara extractora
 Cuando se va a oler un gas, no hacerlo nunca directamente, sino abanicando hacia sí
con la mano.
Puesto de trabajo
 Conservar siempre limpios los aparatos y el puesto de trabajo. Evitar derrames de
sustancias, pero si cayera alguna, recogerla inmediatamente
 Todas las prácticas deberán realizarse con limpieza y, al terminar, toda el área de
trabajo deberá quedar ordenada y limpia.
Manejo de sustancias
 No tocar los productos químicos con las manos. Usar papel, espátulas, etc. Usar
guantes para el manejo de reactivos corrosivos y/o altamente tóxicos. No comer y no
fumar en el laboratorio, y antes de hacerlo fuera del mismo, lavarse las manos
 Al usar cualquier tipo de reactivos, asegúrese que es el deseado y lea su etiqueta. Si
es transferido de recipiente etiquételo de nuevo

 Todos los reactivos deberán manejarse con el equipo perfectamente limpio. Al
pipetear líquidos transfiéralos a otro recipiente para su uso. Los reactivos no usados
no se devuelven a los frascos. Nunca pipetee directamente del frasco
 Dilución de ácidos: añadir lentamente el ácido al agua contenida en un vaso, agitando
constantemente y enfriando el vaso receptor. Nunca añadir agua al ácido.
 Al agitar moderadamente un tubo de ensayo golpee con la punta del dedo la base del
tubo. Cuando requiera una agitación vigorosa por inversión del recipiente, tápelo con
un tapón de vidrio esmerilado o papel ParaFilm o vinilpel. Nunca lo haga con la mano.
Residuos
 Los desperdicios líquidos no contaminantes se deben tirar por los desagües, dejando
correr suficiente agua, pues muchos de ellos son corrosivos. Los Residuos
denominados contaminantes deberán verterse a los recipientes correspondientes que
estarán indicados en el laboratorio
 Todos los desperdicios sólidos como agar y papeles deberán colocarse en los
recipientes de basura, el material de vidrio roto deberá descartarse en el recipiente
especial para ese efecto, pues es material de inventario.

“REGLAMENTO PARA EL INVERNADERO DE ACLIMATIZACION DE
VITROPLANTAS”
ANEXO 16.

1. Se permitirá la entrada sólo al personal con previa autorización del responsable.
2. Es obligación de estudiantes, visitantes y usuarios, registrarse en la bitácora
correspondiente.
3. Queda prohibida la introducción de material vegetal ajeno al desarrollo del proyecto
en curso; así como la extracción de materiales, sin autorización del profesor.
4. Queda totalmente prohibido las bromas o juegos dentro del invernadero o alguna
cobertura.
5. Se debe de cumplir estrictamente la desinfección previa a la entrada en el invernadero.
6. Todas las herramientas para realizar cortes o propagar plantas deben ser previame nte
esterilizadas.
7. Está prohibido introducir y/o ingerir alimentos dentro del invernadero.
8. Todo usuario del invernadero tiene la obligación de acondicionar el espacio de
acuerdo a sus necesidades; posterior al término de su proyecto, deberá retirar
desechos y limpiar el espacio utilizado; así mismo, deberá colaborar con la limpie za
y mantenimiento general cotidianos de la unidad.
9. Queda estrictamente prohibida la entrada al invernadero después de haberse aplicado
cualquier agroquímico, de acuerdo con las recomendaciones del fabricante
correspondiente.
10. Es obligación del personal a cargo de la aplicación de agroquímicos observar las
normas de seguridad requeridas.
11. Durante la aplicación de agroquímicos (insecticidas, fungicidas, etc.) queda prohibida
la permanencia de personal ajeno al proyecto.
12. Queda prohibido el ingreso al invernadero, después de haber realizado actividades
como la aplicación de agroquímicos, deshierbes, cosecha, entre otros.
13. Es compromiso de (de los) responsable (s) de proyectos, en caso de producir
alimentos, ya sea para consumo humano o animal, respetar los intervalos de seguridad
entre la última aplicación del agroquímico y la cosecha del cultivo.
14. Cualquier daño realizado a adrede deberá ser repuesto en su totalidad, ya sea a la
estructura o a las herramientas.

“MANUAL DE LIMPIEZA DEL LCTCTP”
ANEXO 17.

INTRODUCCION
El objetivo de este manual es establecer una serie de procedimientos para llevar a cabo el
programa de limpieza y desinfección del Laboratorio de cultivos de tejidos vegetales del CTP
de Turrubares, con el fin de mantener el laboratorio libre de contaminación ambiental y
proporcionar un área de trabajo limpia, saludable y segura.
El cumplimiento de estos procedimientos asegurara la reducción de la contaminación del
producto, mayor calidad y menos devoluciones de los medios de cultivos elaborados.
Este documento menciona algunos términos relacionados con el proceso de limpieza y
desinfección, compuestos utilizados y los procedimientos básicos de limpieza y desinfección
de las áreas que conforman el centro de preparación de medios, la zona de lavado, el cuarto
de transferencia y el cuarto de crecimiento de plantas.
Un programa de limpieza y desinfección, es un conjunto de actividades que son aplicadas a
cada una de las áreas de proceso para eliminar o disminuir a un mínimo aceptable la carga
microbiana presente en los equipos, personal, planta física y en el ambiente donde se realiza
el proceso; además de mejorar la atmósfera de trabajo, haciéndola, más agradable, y
optimizar la calidad sanitaria de las plantas in vitro.
Es importante mantener el laboratorio y el material limpios, ya que el propio trabajo crea un
flujo microbiano.
Estos microorganismos vienen del exterior:
· Con materias u objetos contaminados
· Con el aire, el agua
· Con el hombre mismo, que se comporta como reservorio natural de las bacterias
La implementación del programa de limpieza y desinfección debe responder a las
necesidades y exigencias de la empresa, por tanto es muy importante conocer los principios
de limpieza y desinfección para evitar la contaminación de los productos.
Este programa de limpieza y desinfección debe permitir:
1. Definir lo que se debe hacer y los fundamentos de los métodos que se van a aplicar
in situ.
2. Asignar a cada uno sus funciones y responsabilidades, así como el tiempo necesarios
para cada operación
3. Asegurarse de que se ha realizado lo que se ha anotado en el registro
Limpieza y desinfección
La limpieza y la desinfección tienen como fin asegurar una buena higiene, tanto a nivel de
los locales, los materiales, el personal y el ambiente.
La limpieza regular y periódica permite mantener una flora microbiana ambiental reducida
necesaria y suficiente para ciertas actividades.
A continuación se mencionan algunas definiciones relacionadas con el proceso de limpie za
y desinfección:
1. Desinfección: Es el conjunto de operaciones que tiene como objetivo la reducción
temporal del número total de microorganismos vivos y la destrucción de los
patógenos y alterantes; sin embargo , la esterilización busca la obtención definit iva
de un medio completamente exento de gérmenes

2. Desinfectante: Cualquier agente que limite la infección matando las vegetativas de
los microorganismos.
3. Detergente: Material tenso activo diseñado para remover y eliminar la contaminac ión
indeseada de alguna superficie de algún material.
4. Eficiente: Que produce realmente un efecto satisfactorio
5. Esterilización: Es la destrucción o eliminación de todas formas de vida. Puede
llevarse a cabo por procesos físicos o químicos.
6. Higiene: Todas las medidas necesarias para garantizar la sanidad e inocuidad
7. Limpieza: Es el conjunto de operaciones que permiten eliminar la suciedad visible o
microscópica. Estas operaciones se realizan mediante productos detergentes elegidos
en función del tipo de suciedad y las superficies donde se deposita
8. Solución: Combinación de un sólido o de un producto concentrado con agua, para
obtener una distribución homogénea de cada uno de los componentes.
La suciedad
El objetivo de la limpieza es la eliminación de la suciedad, se debe llevar a la naturaleza de
esta y a la manera en cómo se adhiere a la superficie que se desea limpiar.
Estado de la suciedad
Se consideran:
· Suciedad Libre: Impurezas no fijadas en una superficie, fácilmente eliminables.
·Suciedad adherente: Impurezas fijadas que precisan una acción mecánica o química para
desprenderlas del soporte
· Suciedad incrustada: Impurezas introducidas
Etapa de la limpieza y de la desinfección
Limpieza
 Recoger y desechar los residuos del producto, polvo o cualquier otra suciedad
presentes en el lugar a limpiar.
 Humedecer con suficiente agua potable el lugar o superficie que se va a limpiar.
 Preparar la solución de detergente que se va a usar.
 Enjabonar la superficie por limpiar, esparciendo la solución de detergente con esponja
o cepillo.
 Restregar la superficie fuertemente con ayuda de un paño o cepillo, eliminando toda
la suciedad posible.
 Dejar la solución de detergente aplicada por un tiempo corto para que este actúe.
 Enjuagar con suficiente agua asegurándose de que todo el detergente se elimine.
 Observar detenidamente el lugar que se limpió para verificar que haya sido eliminada
toda suciedad.

Desinfección
 Asegurarse de que la superficie este limpia, si no es así limpiar como se explicó
anteriormente
 Antes de proceder a desinfectar se debe tener lista la solución desinfectante
 Aplicar la solución desinfectante sobre el lugar o superficie que se va a desinfectar
 La solución desinfectante se deja sobre el lugar que se está desinfectando por un
tiempo mínimo de un minuto, dependiendo de la sustancia utilizada
 Durante este tiempo, se está logrando eliminar la mayor cantidad posible de
microorganismos, de modo que la superficie a limpiar queda bien desinfectada
Productos de Limpieza
Composición de la
suciedad
Familia Ejemplos de
Productos
Características
principales
Azucares solubles Alcalinos Potasa Solubilizante
Saponificante
Otros hidratos de
carbono
Alcalinos
Productos
enzimáticos
Hidrolizante
Desengrasante
Proteínas Alcalinos
Productos
enzimáticos
Potasa
Proteasas
Solubilizante
Saponificante
Materias Grasas Tensoactivos
Productos
enzimáticos
Anionicos
Catiónicos
No iónicos
Lipasas
Humectante
Emulsificante
Minerales Ácidos
Secuestrante
EDTA
Polifosfatos
Gluconato
Secuestrante
Agentes desinfectantes
Agente
Desinfectante
Mecanismo de
acción
Mecanismo de acción Usos
Alcoholes Los alcoholes actúan
destruyendo la
membrana celular y
desnaturalizando las
proteínas. Su acción es
rápida, incluso desde
los 15 segundos,
aunque no tiene efecto
persistente. Sus efectos
biológicos de daño
microbiano permanecen
por varias horas.
Los alcoholes poseen una
rápida acción y amplio
espectro de actividad,
actuando sobre bacterias
gramnegativas y
grampositivas, incluyendo
micobacterias, hongos y
virus pero no son
esporicidas. El etanol al
70% destruye alrededor
del 90% de las bacterias
cutáneas en dos minutos
El alcohol se utiliza
muy
frecuentemente
para la desinfección
o limpieza de la piel,
Su aplicación está
también indicado en
la desinfección de
material no crítico
como termómetros

Aldehídos /
Formaldehidos
Actúan mediante la
alquilación de los
grupos químicos de las
proteínas y ácidos
nucleicos de las
bacterias, virus y
hongos. El
formaldehído actúa
sobre las proteínas por
desnaturalización.
El glutaraldehído actúa
de forma similar en pH
alcalino. Sobre la pared
celular, el
glutaraldehído actúa al
nivel de los puentes
cruzados del
peptidoglicano
Los aldehídos tienen un
amplio espectro de
actividad contra
microorganismos y virus.
El formaldehído es
bactericida,
esporicida y virucida,
pero trabaja más
lentamente que el
glutaraldehído.
El formaldehído es un
producto químico
extremadamente reactivo
y que interactúa con
proteínas, ADN y ARN in
vitro.
Esterilización de
objetos inanimados,
como instrumentos.
Desinfección de
material de metal,
caucho y plástico.
Desinfección de alto
nivel de
hemodializadores
Al 20% a 30% es
astringente.
Glutaraldehídos El glutaraldehido,
cuando la solución es
alcalina (pH 7,5 a 8,5)
se activa y posee
actividad esporicida. El
glutaraldehído alcalino
al 2% es bactericida,
fungicida, virucida, en
cortos periodos de
tiempo, pero necesita 6
horas de contacto para
destruir las esporas
bacterianas. Tiene una
acción moderada frente
a micobacterias.
Su actividad biocida se
debe a la alteración del
ARN, ADN y síntesis de
proteínas.
Desinfección y
esterilización de
plásticos y caucho de
equipos de anestesia
Desinfecta en 45
Min. a 25ºC,
eliminando gérmenes
patógenos y
vegetativos, incluyendo
M. tuberculosis,
Pseudomonas
aeruginosa y VIH 1 y
2. Esteriliza en 10
horas, destruyendo
todas las esporas.
Activo contra virus en
10 minutos a 20ºC.
Halogenados
Hipoclorito
El mecanismo de
acción sobre los
microorganismos es
poco conocido, pero se
postula que actúan
inhibiendo las
reacciones
enzimáticas y
desnaturalizando las
proteínas
Los hipocloritos tienen un
extenso espectro de
actividad, son
bactericidas, virucidas,
fungicidas y esporicidas,
pero actividad variable
frente a micobacterias,
según la concentración en
que se use.
El hipoclorito de
sodio se presenta
en solución a una
concentración de
5,25%. Para las
desinfecciones, las
diluciones en uso
son entre 0,1% y
1%. Limpieza de
vajilla. Lavado de ropa
en general. Cloración
del agua. Desinfección
de algunos alimentos.
Desinfección de
desechos líquidos
contaminados

Compuestos
yodados
Los compuestos
yodados son agentes
oxidantes, se combina
irremediablemente con
residuos tirosina de las
proteínas.
Precipitan las proteínas
bacterianas y ácidos
nucleicos.
Alteran las membranas
celulares al unirse a los
enlaces C=C de los
ácidos grasos.
Actúa disminuyendo
los requerimientos de
oxígeno de los
microorganismos
aerobios, interfiriendo
la cadena respiratoria
por bloqueo del
transporte de electrones
a través de reacciones
electrolíticas con
enzimas.
El yodo tiene una
poderosa actividad
germicida, ataca bacterias
grampositivas y
gramnegativas,
micobacterias, esporas,
hongos, virus, quistes y
protozoos.
La desinfección de la
piel sana.
El tratamiento de
afecciones de la piel
causadas por bacterias
y hongos.
La limpieza de las
heridas, en solución
acuosa.
Yodoforos Tienen amplio espectro
de actividad contra
bacterias y hongos y
presentan el mismo
mecanismo de acción y
espectro de actividad de
los yodados. El
más conocido de los
yodóforos es la
yodopovidona
compuesta de yodo y
polivinil-pirrolidona
La yodopovidona es
activa contra bacterias
grampositivas,
gramnegativas, hongos,
virus y micobacterias. Es
efectiva contra el S.
aureus MRSA y especies
de enterococo.
Resistencia significativa a
yodopovidona no ha sido
reportada
El lavado de las manos,
como antiséptico.
La limpieza de la
piel sana en
procedimientos
quirúrgicos.
La limpieza de objetos
de superficie dura.
Fenoles Son bactericidas a bajas
concentraciones,
causando daño
a las membranas con
pérdida de
los constituyentes
citoplasmáticos,
inactivando
irreversiblemente las
oxidasas y
deshidrogenasas de
membrana
y produciendo
desnaturalización de las
proteínas.
Los fenoles se utilizan
más
como desinfectantes,
tienen
propiedades
antibacterianas
frente a estreptococos,
estafilococos y
Escherichia coli,
y también propiedades
antifúngicas y antivirales
En la actualidad,
sólo se emplea para
la desinfección de
puntos críticos en la
industria,
aplicándolo a
superficies, ropa
blanca,
instrumentos,
sanitarios y excreta

Oxidantes Los oxidantes
(peroxígenos) son
productos que liberan
oxígeno naciente.
Considerados como
compuestos
bactericidas útiles,
su mecanismo de
acción consiste en la
inactivación de
proteínas enzimáticas
actuando sobre los
grupos -SH de las
proteínas de estructura
y de las proteínas de
función de las bacterias.
Su espectro de actividad
es
sobre bacterias
vegetativas,
virus, micobacterias y
esporas.
Su espectro de
actividad es sobre
bacterias
vegetativas, virus,
micobacterias y
esporas.
Peroxido de
hidrogeno
El peróxido de
hidrógeno tiene
efectos oxidantes por
producir
OH y radicales libres,
los cuales
atacan a los
componentes
esenciales de los
microorganismos como
lípidos, proteínas y
ADN.
Es un agente oxidante
de efecto fugaz por ser
descompuesto por
las catalasas de los
tejido
Es activo frente a
bacterias y virus, según la
concentración y
condiciones de
utilización.
Estudios in vitro de
soluciones de peróxido de
hidrógeno al 3% han
mostrado amplio espectro
de eficacia, con mayor
actividad frente a
bacterias grampositivas
Antiséptico tópico en
solución al 3%.
Compuestos
custernarios
Son sustancias que
lesionan la
membrana celular
debido a que
desorganizan la
disposición de
las proteínas y
fosfolípidos, por
lo que se liberan
metabolitos
desde la célula,
interfiriendo con
el metabolismo
energético y el
transporte activo.
Activos para eliminar
bacterias grampositivas y
gramnegativas, aunque
éstas últimas en menor
grado. Son bactericidas,
fungicidas y virucidas,
actuando sobre virus
lipofílicos pero no sobre
los hidrófilos. No tiene
acción sobre las
micobacterias, ni son
esporicidas.
Desinfección de
superficies no críticas.
Acción desodorante.
Limpieza de
superficies ásperas o
difíciles.

Recomendación de concentraciones a emplear según el elemento a desinfectar
Elemento a desinfectar Partes por Millon (PPM)
Agua potable 0.2
Desinfección de manos 50
Desinfección de mesas e instrumental de acero
inoxidable
200
Desinfección de pisos, mesones en baldosín,
ropa, útiles
de aseo y material plástico
500
Desinfección de material orgánico 5000
OBJETIVOS
General
 Describir los procedimientos de limpieza y desinfección que deben aplicarse en las
instalaciones del laboratorio de cultivo de tejidos vegetales del CTP de Turrubares
para garantizar la inocuidad de los procesos realizados.
Específicos:
 Explicar los procesos de limpieza y desinfección de instalaciones, equipos y
materiales del laboratorio de cultivo de tejidos vegetales del CTP de Turrubares.
 Disponer de un documento de consulta permanente para todos los auxiliares que
colaboren con el laboratorio de cultivo de tejidos vegetales del CTP de Turrubares.
 Establecer dosificación de detergentes y agentes desinfectantes para la adecuada
realización de los protocolos de limpieza y desinfección

Procesos generales de limpieza del laboratorio
Desinfección y limpieza de laboratorios en el día a día
Antes de iniciar la jornada con las actividades diarias, es preciso realizar una limpieza del
laboratorio:
 Mobiliario: Se debe lavar el mobiliario por fricción mecánica, con jabón y solución
de hipoclorito. Además, se deben higienizar las ruedas y soportes de las mesas, sillas
y demás mobiliario se deben limpiar perfectamente sin dejar hilos de suturas, de
gasas, papeles o desechos adheridos. Para mantener una adecuada limpieza de los
laboratorios también hay que lavar los gabinetes y puertas deben mantenerse limpios,
especialmente las agarraderas y placas de empujar, ya que son lugares donde se
originan focos de infección.
 Suelo: Lavar periódicamente con agua abundante y solución de jabón e hipoclorito,
con el fin de eliminar los depósitos y las películas acumuladas.
 Paredes: Revisar que estén limpias.
Desinfección y limpieza de laboratorios semanalmente
Además de la desinfección diaria, se debe realizar una limpieza del laboratorio cada semana:
Recipientes: La contaminación microbiana puede transmitirse a través de los recipientes
contaminados. Para asegurar una correcta desinfección y limpieza del laboratorio hay que
verter el contenido de los recipientes cada semana, lavar las probetas y rellenarlas de nuevo.
Paredes: Limpiarse cada semana. Las juntas deben higienizarse con más ahínco.
Los cestos de ropa sucia o de basura: Lavar y desinfectar con abundante agua y jabón o
hipoclorito de sodio.
Áreas de almacenamiento: Limpiar semanalmente para evitar la acumulación de polvo.
Material necesario para el aseo exclusivo dentro del laboratorio
 Guantes caucho/latex calibre 35
 Avisos o señales de seguridad para pisos húmedos
 Gafas
 Tapabocas
 Detergente líquido limpia vidrios a base de alcohol
 Detergente Liquido para Pisos
 Desinfectante o Hipoclorito de sodio al 5,25 diluido entre 1000 a 2000 ppm, debido
a la presencia de sangre y fluidos en general, para mesones y para pisos.
 Cepillos para piso, escoba y trapero.
 Esponjillas y escobillones
 Toallas desechables
 Gabacha color blanco.
 Balde

 Escurridor mecánico
 Gorro
 Delantal que cubra desde la base el cuello hasta más abajo de las rodillas, manga
larga hasta la muñeca con puño elástico (en casos especiales)
Características del desinfectante
Para la elección de los detergentes y desinfectantes se ha priorizado que cumplan los
siguientes requisitos:
- Amplio espectro: inactiva bacterias, virus, hongos, esporas, entre otros
- Elevada potencia detergente y/o microbicida
- Acción rápida y sostenida
- No inactivado por materia orgánica
- Compatible con detergentes
- Estable a la concentración y dilución recomendadas
- No tóxico
- No potencial alergénico
- No corrosivo (compatible con cualquier material)
- Fácil de preparar y de usar
- Inodoro o de olor agradable
- Tensión superficial baja
- Con efecto residual
- Económico (buena relación coste/eficacia)
- No dañino para el medio ambiente
- Anulación de la contaminación residual después de su aplicación.
- Alto porcentaje de biodegradación
- Baja toxicidad.
- Rápida y fácil eliminación de las superficies sobre las que sean aplicados.

Se deberán realizar los lavados específicos según el tipo de práctica realizada y desinfección
del área trabajada. Para la manipulación de los elementos de limpieza y desinfección del
laboratorio se deben utilizar los elementos de protección personal EPP como guantes, gafas,
tapabocas, mascarillas entre otros.
- Una vez utilizados, los elementos, equipos y materiales de aseo para el laboratorio se
deberán mantener organizados y guardados en un lugar que garantiza que no van a ser
utilizados en otra labor
Protocolo de desinfección de superficies
Sin importar que tipo de superficies se vayan a desinfectar siempre se deberá seguir de
manera secuencial el siguiente proceso, con el fin de disminuir la carga bacteriana de las
superficies tratadas.
1.- Eliminar la suciedad más gruesa y visible de las superficies, con ayuda de cepillos o
similares.
2.- Aplicar solución detergente (jabón diluido en agua) sobre las superficies, con el fin de
realizar la limpieza de la suciedad orgánica.
3.- Realizar acción mecánica, con ayuda de cepillos, escobillones, esponjas o similares.
4.-Enjuagar o aclarar la solución sucia resultante, con suficiente agua limpia, cuidando de
que no queden residuos de jabón ni suciedad que podrían inactivar los desinfectantes cuando
estos se apliquen.
5.- Aplicar solución desinfectante, diluida según las concentraciones necesarias para reducir
la carga bacteriana.
Hipoclorito de sodio.
El cloro es un desinfectante universal, activo contra todos los microorganismos. Excelente
bactericida, es inestable y disminuye su eficiencia en presencia de luz, calor y largo tiempo
de preparación. Ideal para remojar el material usado antes de ser lavado, e inactivar
secreciones corporales. Es altamente corrosivo.
6.- Deje actuar la solución desinfectante por un tiempo mínimo de 5 a 10 minutos, con el fin
de que exista el tiempo suficiente para que el producto actúe sobre los microorganismos,
reduciendo su núcleo.
7.- Enjuagar o aclarar la solución, con suficiente agua limpia, cuidando de que no queden
residuos que podrían ocasionar la oxidación de superficies metálicas o similares.

8.-Dejar lo más seco posible, recuerde que los ambientes húmedos y calurosos son propicios
para el caldo de cultivo de los microorganismos, por tanto, si se deja muy seco evitaremos
su rápida reproducción.
Procedimiento de limpieza y desinfección diaria
• Haga uso de los elementos de protección personal, tales como guantes, botas, gafas entre
otros.
• Retirar basuras de sus correspondientes cestos de basura, teniendo cuidado de que vayan en
sus respectivas bolsas plásticas.
• Limpiar superficies, recordando siempre guardar el principio de la técnica aséptica,
iniciando por partes altas (1.-De arriba hacia abajo, 2.-De adentro hacia afuera, 3.-De lo más
limpio a lo más sucio o contaminado, y 4.- Dejar lo más seco posible).
Barrer en húmedo minuciosamente los pisos.
• Preparar la solución detergente (mezcla de agua y jabón) en el balde, y sumergir la esponja
que será usada durante el aseo de cada área.
• Aplicar la solución detergente sobre paredes y mesas de trabajo, haciendo uso de esponja,
cepillo. Recuerde que cuando enjuague la esponja, está la deberá lavar en un balde con agua
limpia y no en la solución, pues contaminaría el resto de producto que utilizará en el resto de
las superficies.
• Una vez lavado y secado las partes altas, se procede a la aplicación de la solución sobre los
pisos. De ser posible el uso de maquina rotatoria, utilizar pad rojo o café, para ayudar a
desprender la suciedad.
• Al trapear las superficies lavadas, evitar dejar zonas húmedas, pues son un caldo de cultivo
para los microorganismos, como también representan riesgo de caída para los usuarios de
estas áreas.
• Lavar los tarros de basura con esponja dos veces al mes con agua, jabón y desinfecta nte,
dejarlos escurriendo, una vez secos colocarlos de nuevo en su sitio con sus respectivas bolsas.
• Llevar los utensilios usados en el área al sitio dispuesto para guardar los elementos de aseo,
previa limpieza y desinfección para el siguiente uso.
• Dejar materiales y utensilios usados en el aseo de esta área organizados en su respectivo
lugar.
• Revisar el área de trabajo que haya quedado limpia y a satisfacción.

Limpieza y desinfección de pisos
• Levantar las sillas de laboratorio.
• Recoger todos los objetos que obstaculicen la realización adecuada del procedimiento.
• Barrer minuciosamente en húmedo, con el fin de no esparcir la suciedad y microorganismos
a zonas altas donde ya se realizó la desinfección.
• Aplicar solución detergente (diluida según ficha técnica u hoja de seguridad del producto)
y refregar. Recuerde retirar muy bien los restos de jabón, pues podría ocasionar una reacción
química con la solución de hipoclorito de sodio.
• Una vez enjuagado la solución de jabón sucia, aplicar solución desinfectante de hipoclor ito
sodio con el fin de realizar la desinfección de estas superficies.
• Enjuagar con suficiente agua y secar con el trapero limpio.
Procedimiento para limpieza de las mesas de trabajo
Por la naturaleza de las sustancias y de los elementos que allí se manipulan, este
procedimiento está a cargo del auxiliar de laboratorio.
Procedimiento para la limpieza de paredes
• Limpiar el polvo y toda suciedad de las paredes con escoba, forrada en bayeta o whypall,
con el fin de evitar esparcir la suciedad o contaminación a otros lugares.
• Aplicar solución detergente, en caso de existir manchas, realizar acción mecánica con
esponja.
• Refregar la solución en las paredes con esponja limpia y enjuagar. Este procedimiento se
deberá de realizar al menos una vez por semana.
Procedimiento para la limpieza de vidrios
• Para la parte externa del laboratorio, preparar una solución limpiavidrios y aplicar con ayuda
de un cepillo, limpiar con escoba o cepillo suave, luego enjuagar y secar con paño seco.
• Para la parte interna, utilizar limpiavidrios, vinagre, alcohol industrial o una solución con
limpiavidrios y limpiar con toallas de papel.
• La limpieza de vidrios debe realizarse semanalmente en las zonas internas y de manera
general mensualmente.

Informe del estado del proyecto de cultivo de tejidos del CTP de Turrubares semestre 2014

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