1. Ingeniería Ambiental y Sanitaria
Universidad de Nariño
Cabrera Jhon Wilmer
Cuaspud Marybel
Patiño Marcela

2. CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL
ACUÍFERO DE ZACATEPEC,
MORELOS, MÉXICO
Elizabeth RAMÍREZ, Esperanza ROBLES, Ma. Guadalupe SAINZ, Reynaldo AYALA y Emelia CAMPOY
Facultad de Estudios Superiores, Iztacala, Universidad Nacional Autónoma de
México, Av. de los Barrios 1, Los Reyes Iztacala, Tlalnepantla 54090, Estado de
México, México. Correo electrónico: erf@servidor.unam.mx
Rev. Int. Contam. Ambient. 25 (4) 247-255, 2009

3. INTRODUCCIÓN
Los mantos subterráneos constituyen una de las
principales fuentes de abastecimiento de agua potable
en México. Por lo general, albergan sólo a ciertos
organismos debido a su bajo contenido en materias
nutritivas. Sin embargo, las actividades humanas y el
crecimiento urbano son los principales factores para la
contaminación de los acuíferos.

4. METODOLOGÍA
 Las muestras de agua se
tomaron antes del proceso de
cloración, mensuales durante
un año.
 Para las determinaciones
bacteriológicas se tomaron
las muestras en bolsas
estériles de 250 mL
 Para el análisis de las amibas
de vida libre potencialmente
patógenas, se tomaron las
muestras de agua en envases
estériles de 1000 mL

5.  En el laboratorio se determinaron dos parámetros
bacteriológicos: coliformes totales y fecales.
 Para las amibas se filtraron 1000 mL de la muestra a
través de membranas de 5 mm de poro en condiciones
estériles. Las membranas se colocaron hacia abajo en
placas de medio agar no nutritivo con la bacteria
Enterobacter aerogenes (NNE).
 La identificación de las amibas se realizó tomando en
cuenta las características morfológicas.

6. RESULTADOS
Con
los
resultados
obtenidos se calculó la
media geométrica, valor
mínimo y valor máximo
de los coliformes totales y
fecales

7. En relación a la variación espacial, se observó con las
medias geométricas (Fig. 2) que el pozo más
contaminado fue el número 3, seguido por los pozos 1,
2, 7 y 12. Los menos contaminados fueron 4, 5, 8, 9 y 10.

8. De acuerdo a la variación temporal, se notó que la
contaminación por coliformes totales y fecales más
alta se presentó en los meses de abril y julio.

9. Con respecto a las amibas de vida libre, solamente en
18.9 % del total de muestras analizadas no se
detectaron estos microorganismos.

10. Se aislaron 22 especies pertenecientes a 16 géneros; el
género amibiano que más se presento fue
Hartmannella con 38 % de frecuencia.

11. En el pozo 2 se encontró el mayor número de
aislamientos amibianos, en tanto que en los pozos 4, 5
y 10 se presentaron los más bajos.

12. Con respecto a la variación temporal de las AVL, se
observaron los números más altos en diciembre y
enero y el más bajo en abril.

13. Los parámetros fisicoquímicos tuvieron muy poca
variación durante el período de estudio. No se encontró
ninguna correlación significativa entre las AVL con los
coliformes totales y fecales.

14. CONCLUSIONES
 En general, el agua de los pozos presentó contaminación
bacteriológica: en todos los pozos se encontraron coliformes
totales y en 9 de ellos se detectaron coliformes fecales.
 La presencia de coliformes y amibas en el acuífero, aunque sea
en bajo número, indica que los microorganismos pueden estar
presentes en el agua subterránea profunda y que estos sistemas
acuáticos pueden soportar una comunidad microbiológica.
 A pesar de que la mayoría de las amibas aisladas del acuífero
no han sido reportadas como patógenas, hay que tener
precaución con aquéllas en que existe duda acerca de su papel
como patógenos, como es el caso de Hartmannella,
Vahlkampfia y Vannella,

15. CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL AGUA DE
UN ÁREA AGRÍCOLA-GANADERA DEL
CENTRO SUR DE CHILE Y SU POSIBLE
IMPLICANCIA EN LA SALUD HUMANA
Eduardo Valenzuela, Roberto Godoy, Leonardo Almonacid y Mónica Barrientos
Universidad Austral de Chile.Facultad de Ciencias, Instituto de Bioquímica
yMicrobiología (EV, LA). Instituto de Ciencias Ambientales y Evolutivas (RG,
MB). Correspondencia a: evalenzu@uach.cl
Rev Chilena Infectol 2012; 29 (6): 628-634

16. INTRODUCCIÓN
En Chile, 40% del agua para consumo humano
corresponde a agua subterránea, alcanzando un 80%
en áreas rurales, donde los pozos profundos son la
única fuente de agua de bebida para consumo humano
y animal. La calidad del agua puede variar con gran
rapidez, por ejemplo, la lluvia puede hacer aumentar la
contaminación microbiana en aguas de origen y son
frecuentes los brotes de enfermedades después de
periodos de precipitaciones, circunstancia que debe
tenerse en consideración al interpretar los resultados
de los análisis.

17. METODOLOGÍA
 El área de estudio corresponde a un predio destinado a




actividad agrícola y ganadera.
La recolección de muestras de agua se realizó
mensualmente.
A cada una de las muestras de agua se le determinó la
presencia de Ct y E. Coli. (Quanti-Tray).
Se le midió la temperatura in situ, con un termómetro de
mercurio.
A los resultados biológicos (Cf y E. coli) y físico-químicos
de cada mes, se les determinó el promedio.

18. RESULTADOS

22. CONCLUSIONES
 El máximo promedio anual de Ct y E. coli en las aguas superficiales
se determinó en el ES. Además, el agua del ES al atravesar el predio
agrícola-ganadero produce lixiviación de las praderas arrastrando
minerales, purines y fecas de los vacunos y otros animales.
 Los valores máximos de Ct y E. Coli determinados en el agua de los
esteros son menores a los registrados en el estero Piduco.
 En cuanto a la calidad microbiológica del agua del PB y PL, en la
mayoría de los meses superaron ampliamente los valores máximos
establecidos por la norma chilena de calidad del agua.
 Desde el punto de vista epidemiológico, los purines pueden
contener un amplio rango de microorganismos patógenos tales
como Salmonella spp., Campylobacter spp., Cryptosporidium y virus
entéricos que pueden causar enfermedades en humanos.

23. CALIDAD MICROBIOLÓGICA DEL
AIRE DE UNA UNIDAD DE
PREPARADOS FARMACÉUTICOS
ESTÉRILES
Beatriz Caorsi P., Andrea Sakurada Z., M. Teresa Ulloa F., Marcela Pezzani V. y Paz Latorre O.
Hospital Clínico Universidad de Chile, Santiago, Chile Servicio de Farmacia (BCP, MPV,
PLO). Servicio de Laboratorio Clínico (ASZ). Universidad de Chile Facultad de Medicina
Instituto de Ciencias Biomédicas Programa Microbiología-Micología (MTUF).
Correspondencia a: bcaorsi@redclinicauchile.cl
Rev. chil. infectol. v.28 n.1 Santiago feb. 2011

24. INTRODUCCIÓN
La elaboración de preparados farmacéuticos estériles
requiere áreas limpias que deben cumplir estándares
internacionales para minimizar la contaminación
microbiana. El aire presente en el interior de cualquier
ambiente (hospitales, escuelas, casas, etc) contiene
una carga microbiana que es aportada en gran parte,
por las personas que están presentes en estos sitios.

25. La norma para la producción de preparados farmacéuticos
estériles contempla el control microbiológico ambiental,
tanto del aire como de las superficies en distintos puntos,
establece un recuento bacteriano aceptable expresado en
unidades formadoras de colonias (UFC). Para esta norma
existen diversas clasificaciones, tal como se indica en
la Tabla 1.

26. METODOLOGÍA
 Se
monitorearon ocho
puntos representativos de
la unidad, diariamente
entre enero y febrero de
2005 y bisemanal-mente de
junio a febrero de 2006.
 Se
estudiaron
839
muestras
de
aire,
recolectadas mediante el
método de impacto en
placa (equipo MAS-100).

27. RESULTADOS
De las muestras estudiadas, 474 (56,5%) fueron
positivas; de éstas, sólo 17 (3,5%) estuvieron fuera del
rango permitido, porcentaje que representa el 2% del
total.

28. Las muestras de los sitios 1 y 2 (flujo laminar grande y
pequeño), que corresponden al área de preparación de
preparados estériles fueron negativas.

29. Los sitios 3 (mesón) y 4 (transfer) presentaron ocasionalmente
valores superiores a los límites. Los microorganismos más
frecuentes
fueron
Staphylococcus
coagulasa
negativa, Micrococcus spp y Corynebacteriumspp, agentes de la
microbiota de la piel y, menor porcentaje, Bacillus spp, agente de
la microbiota ambiental.

30. CONCLUSIONES
 Los resultados obtenidos nos han permitido establecer que la
calidad microbiológica del aire dentro de la unidad.
 El equipo utilizado (MAS-100 de Merck®) es portátil, de fácil
manejo y se puede localizar con facilidad en cada uno de los
sitios a muestrear.
 De la totalidad de las cepas aisladas la gran mayoría
correspondió a géneros grampositivos de la microbiota
humana, Staphylococcus coagulasa negativa Micrococcus spp
y Corynebacterium spp, y en menor cantidad, del aire y del
suelo.
 La
implementación del programa de monitoreo microbiológico ambiental en nuestra unidad de elaboración de
preparados farmacéuticos estériles nos ha permitido
implementarun control microbiológico permanente sobre un
área limpia

31. REFERENCIAS BIBLIOGRAFICAS
CAORSI P, Beatriz et al. Calidad microbiológica del aire de una
unidad de preparados farmacéuticos estériles. Rev. chil.
infectol. 2011, vol.28, n.1, pp. 14-18. ISSN 0716-1018.
RAMIREZ, Elizabeth et al. Calidad microbiológica del acuífero
de Zacatepec, Morelos, México. Rev. Int. Contam. Ambient.
2009, vol.25, n.4, pp. 247-255. ISSN 0188-4999.
VALENZUELA, Eduardo; GODOY, Roberto; ALMONACID,
Leonardo y BARRIENTOS, Mónica. Calidad microbiológica
del agua de un área agrícola-ganadera del centro sur de Chile
y su posible implicancia en la salud humana. Rev. chil.
infectol. 2012, vol.29, n.6, pp. 628-634. ISSN 0716-1018.

32. GRACIAS…