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Técnicas de
Transfusión Sanguínea
Pruebas Cruzadas e
incompatibles
Nombre: Marjori Calo
Semestre: 7° “B”
Docente: Dr. Marco Rocero
UNIVERSIDAD TÉCNICA DE AMBATO
FACULTAD DE CIENCIAS
AGROPECUARIAS
MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
La transfusión de sangre entera o de algunos de sus componentes
específicos es una herramienta terapéutica beneficiosa para el paciente, los
eritrocitos pueden mejorar la capacidad de transporte de oxígeno a los
tejidos, mientras que el plasma es una fuente importante de factores de
coagulación (Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
Su aplicación se extiende desde pacientes que presentan patologías
específicas como anemia, trombocitopenia, deficiencia del factor Von
Willebrand, hemofilia A, hasta intervenciones quirúrgicas en las cuales los
pacientes requieran de transfusión sanguínea. (Kumar,2017)
INTRODUCCIÓN
Seleccción
del donante
TÉCNICAS DE TRANSFUSIÓN
SANGUÍNEA
1-8 años de edad
Mas de 25 kg de peso
Hematocrito superior al 40
Donante canino
2-8 años de edad
Mas de 5kg de peso
Hematocrito superior al 35 %
Donante felino
Vacunado, Libre de enfermedades
infecciosas y No haber recibido
transfusiones previas
(Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
Donantes en perros y gatos según su
tipo sanguíneo
-
 Grupo A sólo recibirán sangre de gatos Tipo A
 Grupo B sólo recibirán sangre de gatos Tipo B.
 Grupo AB pueden recibir sangre de cualquier grupo
sanguíneo.
 Donante universal: DEA 1.1, 1.2, 3, 5 y 7 negativos.
DEA 4 positivo o negativo.
 Posibles donantes: todos los animales DEA 1.1 negativos
(Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
Test rápido de tipificación
(Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
Es imprescindible tipificar el
grupo sanguíneo del donante y
del receptor antes de la
transfusión, ya se de sangre
entera, concentrado de eritrocitos
o productos plasmáticos
GATOSPERROS
PRUEBAS
COMPATIBILIDAD
MAYOR
Detecta si en el plasma del receptor existen
anticuerpos frente a los eritrocitos del
donante.
Si la prueba de compatibilidad mayor
presenta aglutinación no debe realizarse
nunca la transfusión.
MENOR
Determina la presencia de anticuerpos en el
plasma del donante frente a los eritrocitos
del receptor.
En el perro, si la compatibilidad menor
presenta aglutinación se podrían transfundir
los eritrocitos, pero no el plasma.(Kumar,2017).
Procedimiento
❏Procedimiento resumido
1. Recoger sangre del donante y del receptor en
EDTA
2. Centrifugar y separar el plasma de los eritrocitos,
e identificar adecuadamente los tubos.
3. Rotular tres portaobjetos: mayor, menor y control.
4. Poner una gota de los hematíes y dos gotas de
plasma en cada portaobjetos:
 Mayor: hematíes del donante + plasma del
receptor.
 Menor: hematíes del receptor + plasma del
donante.
 Control: hematíes y plasma del receptor.
5. Incubar 2 minutos a temperatura ambiente.
6. Evaluar la aglutinación macroscópica y
microscópica
(Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
Pruebas de incompatibilidad en gatos
Grupo sanguíneo
Reacción de
incompatibilidad
Donante Receptor
A A Ninguna
B B Ninguna
B A Leve
A B Muy grave
(Yokeiry , 2018)
TÉCNICA DE ADMINISTRACIÓN
1. Producto
Bolsa de sangre congelada
debe someterse a baño
maria a 37°
2. Utilizar el Kit de
extracción
Incluye la bolsa, que
dispone de un filtro
para eliminar coágulos
y desechos
3. Vías de
Administración
 Catéter intravenoso
 Vía interósea
 Neonatos: La vía interósea
mediante un catéter calibre 20
 Y en el caso del plasma la vía
intraperitoneal (Pellegrino, Et al 2018)
Concentrado de
hematíess
• Anemias
• CID
• Isoeritrólisis neonatal
Plasma congelado
• Intoxicación por
raticidas
• Hipoproteinemia
• Hipovolemia
• Isoeritrólisis neonatal
Plasma fresco congelado
• Coagulopatías
• Pancreatitis,
Hipovolemia,
Hipoproteinemias
Isoeritrólisis
neonatal
• Déficit de
antitrombina III
sangrecongelada
• CID
• Pancitopenia
• Anemia
• Hipoproteinemias
Sangre fresca
• CID
• Pancitopenia
• Anemia
• Coagulopatias
• Hipoproteinemias
Plasma rico
en plaquetas
Criosobrenadante Crioprecipitado
• CID
• Enfermedad de
von Willebrand
• Déficit de
factores VIII y
XIII, fibrinógeno
• Trombocitopenia
• Déficit de
factores II, VII y
IX,
• Intoxicación por
anticoagulantes
Hemofilia B
• Hipoproteinemia
• Déficit ATII(Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
Hemoderivado indicado según su patología
Normalmente: 20 ml/kg de sangre total aumenta el Htc un
10%.
Fórmula Volumen a administrar (ml)= peso x (88 ml
(perros) o 66 ml (gato)) x ((Htc deseado - Htc del paciente) /
Hto del donante).
El Htc deseado suele ser un 10% superior al Htc que
presenta el receptor antes de la transfusión; generalmente,
debe ser de 25-30% en perros y 20-25% en los gatos.
El volumen total transfundido no debe exceder 22 ml/kg/día.
CÁLCULO DEL VOLUMEN A TRANSFUNDIR
(Pellegrino, Et al 2018)
VELOCIDAD DE
ADMINISTRACIÓN
 En los primeros 15-30 minutos a velocidad lenta (0,25 ml/kg/h)
con el fin de evaluar posibles reacciones transfusionales.
 Shock hipovolémico por hemorragia aguda no se debe iniciar
con velocidad inicial más baja.
 En perros normovolémicos la velocidad debe ser 5-10 ml/kg/h
durante 2-4 h, y en gatos 3-5 ml/kg/h, durante 2-3 horas.
 En hipovolémicos por hemorragia aguda se puede utilizar una
velocidad de hasta 22 ml/kg/h. Sin embargo, pueden producirse
arritmias por hipocalcemia, por lo que es aconsejable controlar
el ECG y los niveles séricos de calcio.
(Pellegrino, Et al 2018)
Evita caballos donantes del grupo sanguíneo A, C o Q.
Pueden estimular una respuesta de los anticuerpos si el
receptor no es del mismo grupo.’’
Buscar caballos donantes del tipo sanguíneo D, K, P o U.
. De manera que si los caballos del grupo D necesitan una
transfusión de sangre, es aceptable un donante de los grupos D,
K, P o U; ya que son clasificados como donantes universales
(Martín, & García, 2017).
Transfusion sanguinea en equinos
Selección de Donante
CARACTERÍSTICAS DEL DONANTE
caballo Dato
Edad Adulto
Sexo H/M
Talla A
Estado Sano/excelente
Hematocrito 40%
Leucocitos 6.000 y 10.000 u/ml
Hemoglobina
111-190 G/L
Peso
Variando según su
función (380-1000kg)
Martín, M., & García, R. (2017).
● Se administran a los potros neonatales para tratar el fracaso de la
transferencia de la inmunidad pasiva
● Para el tratamiento de deficiencias de factor de coagulación,
hipoalbuminemia y coagulación intravascular diseminada en caballos.
● El plasma se puede considerar plasma fresco congelado (FFP) cuando se
congela dentro de las 8 horas posteriores a la recolección. FFP contiene
inmunoglobulinas, factores de coagulación y cofactores, así como las
proteínas anticoagulantes antitrombina, proteína C y proteína S.
Hemoderivado indicado para transfusiones según
su patología
Plasma
(Kumar 2017).
● Por pérdida aguda de sangre: traumatismo,
cirugía
● Afecciones: Ruptura esplénica o hemorragia de
la arteria uterina.
● Caballos que tienen un volumen sanguíneo
normal con anemia severa, los glóbulos rojos
empaquetados serían el producto más
apropiado, aunque las transfusiones de ST a
menudo se administran cuando el
procesamiento del producto sanguíneo no está
disponible o también se necesitan factores de
coagulación.
Glóbulos rojos
(Kumar 2017).
PRUEBAS CRUZADAS
MAYOR Detecta la aglutinación entre los glóbulos rojos del
donante y el plasma del receptor.
MENOR
Detecta la aglutinación entre el plasma del donante y
los glóbulos rojos del receptor.
Las pruebas cruzadas equinas pueden ser
difíciles de interpretar debido a la formación de
rouleaux.
El rouleaux normal debería dispersarse cuando
se mezcla una pequeña cantidad de solución
salina con la sangre, mientras que la
aglutinación no se dispersará
La formación normal de rouleaux de glóbulos rojos equinos (a) se
diferencia de la aglutinación observada con una prueba cruzada
incompatible (b)
(Kumar 2017).
PRUEBAS CRUZADAS
La prueba cruzada de rutina evalúa la
aglutinación, pero no prueba las reacciones
hemolíticas.
Las pruebas de compatibilidad
cruzada tampoco predicen con precisión la
vida útil de los glóbulos rojos transfundidos
o el desarrollo de anticuerpos contra los
glóbulos rojos transfundidos. Como tal, se
han informado reacciones a la transfusión
incluso con una prueba cruzada compatible
(Martín, & García, 2017).
TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA:
Hto: < 12%
Donador: macho castrado no relacionado al potro Aa y Qa negativo capas
de proporcionar por lo menos 5 L de sangre
Cantidad a
administrar:
Fórmula
Infusión lenta : Motorizando a cada momento las constantes fisiológicas
Empleo de un catéter intravenoso doble, y anestesiar al potro
En casos leves de enfermedades hemolíticas pueden requerir solo una
laactacion cuidadosa
Peso en kg del potro x Volumen sanguíneo (ml/kg) (en un
potro de dos días suele ser 150ml/kg) x (Hto deseado –
Hto observado) / Hto del donador
(kumar, 2017)
SELECCION DEL DONANTE
4- 5 años de edad
y fácil de manejar
Sano
Ninguna enfermedad
Ningún tratamiento
No gestante ni
lactante
Condición coorporal
Nivel de Hto: 30-33 %
11 GRUPOS:
A, B, C, J, M, R, S,
y Z
Grupos sanguíneos
B: tiene mas de 60
Antígenos
J: no es un Verdadero
Antígenos eritrocitario
Pesar alrededor de 450 kg
Además el grupo B tiene
mas capacidad de causar
una reacción transfuncional
BOVINO
(kumar, 2017; Cayambe, 2018)
TRANSFUSIÓN DE SANGRE EN
BOVINOS CON PATOLOGÍAS
John Doe
Here you can talk a
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person
Jenna Patterson
Here you can talk a
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person
Helena James
Here you can talk a
bit about this
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Anemia por
hemoparásitos:
Babesia
Anaplasma,
Tripanosoma
Vacas lecheras:
úlcera de abomaso
Pérdida de sangre:
Traumatismo interno o
externo
(Cayambe, 2018)
Prueba Cruzada
MayorSe enfrentan Glóbulos
rojos del donante con
suero del receptor
Si existe una leve incompatibilidad evidenciada en el Cross Match menor y ante una
emergencia se podría realizar la transfusión, ya que los anticuerpos del donante se diluirán
rápidamente en el torrente sanguíneo del receptor
IncompatibleLa presencia de
aglutinación o hemólisis
revelea anticuerpo en el
suero del receptor contra
los glóbulos rojos del
doanate
Menor Suero del donante con
glóbulos rojos del
receptor
Un Cross Match compatible no debe dar
evidencias de hemólisis o aglutinación .
Menor
Detecta anticuerpos en
el suero del donante
contra los glóbulos
rojos del receptor
(Cayambe, 2018)
TIPOS DE REACCIONES
INMUNOLÓGICAS
01
Los bovinos generalmente generan una reacción de aglutinación. En la
placa de vidrio se va a observar que los glóbulos rojos se unen, se
separan del suero y forman un coágulo a parte y el suero queda a un lado.
02
En la reacción de hemólisis hay una destrucción de los glóbulos rojos
entonces el color de la sangre se torna en un rojo muy brillante, por la
liberación de la hemoglobina que se da en ese momento.
Pruebas incompatibles
AGLUTINACIÓN
HEMOLISIS
Pruebas Compatibles
(Kumar 2017).
TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA
Bovinos
.
.
Una vez realizadas las pruebas de rigor se determina compatibilidad
y se pasa a realizar el cálculo de sangre a trasfundir según la formula:
 Volumen a transfundir = Volemia (ml) x Hematocrito del receptor
– hematocrito deseado /hematocrito del donante
Una vez calculada la cantidad se debe, preparar al receptor con
corticoides y antihistamínicos y pasar la sangre con un catéter
intravenoso al inicio lentamente para poder observar algún signo de
reacción.
Al final el animal deberá estar bajo supervisión y estricto
seguimiento por parte del médico veterinario, lo que permitirá
detectar reacciones tardías y terminar con éxito el procedimiento
(Cayambe 2018)
DISCUSIÓN
Según los hallazgos de las investigaciones los perros y los gatos cuenta con un donador
universal. (Muñoz, Morgas, & Galan, 2015) , a diferencia de las especies mayores tiene un sistema
de grupos sanguíneos mas complejos ya que se estima que sobre pasa el numero en combinaciones
(kumar,2017). Al momento de realizar transfusiones sanguíneas compatibles es necesario determinar
los grupos sanguíneos implicado en las reacciones transfuncionales, tanto del donante como del
receptor. Según (Kumar, 2017) existen métodos para realizar una prueba de compatibilidad mediante
en cruzamiento de sangre del donante y del receptor que puede ser mayor o menor, es efectivo en
todas las especies .
CONCLUSIÓN
Se determinó la importancia de realizar las
pruebas cruzadas y la búsqueda de
anticuerpos en animales domésticos, ya que
permiten que los antígenos y anticuerpos
puedan ser detectados y estudiados a nivel de
laboratorio, en general nos ayuda a verificar
la compatibilidad sanguínea de donantes y
receptores para las transfusiones a realizar,
que de la misma manera proveen al paciente
de máxima seguridad y beneficio ante
situaciones clínicas.
● Coppo, J. A. (2019). Interpretación de análisis clínicos en perros y gatos. Ediciones Universidad
Católica de Salta.
● Kumar, R. (2017). Blood transfusion in veterinary medicine. Hematoly Transfusion International
Joournal, 4(4), 116-122.
● Yokeiry, D. (2018). Determinación de Eficiencia entre Prueba Rápida de Tipificación Sanguínea y La
Prueba de Cruzamiento de Sangre en Felinos Domésticos(Trabajo de grado)..Univerdiad Nacional
Pedro Hernriquez Ureña. República Dominicana
● Pellegrino, F. J., Irala, R. L., Marchionni, M., Risso, A. L., & Corrada, Y. A. (2018). Transfusión
sanguínea en caninos. Revista del Colegio de Veterinarios de la Provincia de Buenos Aires; 23 (72),;
39-43
● Martín, M., & García, R. (2017). Identificación equina III. ExtremaduraPRE: la revista de la
Asociación Extremeña de Criadores de Caballos de Pura Raza Española, (26), 59-68.
● Muñoz, P., Morgas, J., &Galán, A., (2015). Manual Clínico del perro y el gato. Madrid España:
Elsevier
● Cayambe, M. (2018). Evaluación de la transfusión sanguínea de bovinos a caninos en el
tratamiento de anemia en la Universidad Técnica de Machala (Trabajo de titulación). UTMACH,
Unidad Académica de Ciencias Agropecuarias, Machala, Ecuador.
.
BIBLIOGRAFÍA
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Técnicas de transfusión sanguínea en animales

  • 1. Técnicas de Transfusión Sanguínea Pruebas Cruzadas e incompatibles Nombre: Marjori Calo Semestre: 7° “B” Docente: Dr. Marco Rocero UNIVERSIDAD TÉCNICA DE AMBATO FACULTAD DE CIENCIAS AGROPECUARIAS MEDICINA VETERINARIA Y ZOOTECNIA
  • 2. La transfusión de sangre entera o de algunos de sus componentes específicos es una herramienta terapéutica beneficiosa para el paciente, los eritrocitos pueden mejorar la capacidad de transporte de oxígeno a los tejidos, mientras que el plasma es una fuente importante de factores de coagulación (Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015). Su aplicación se extiende desde pacientes que presentan patologías específicas como anemia, trombocitopenia, deficiencia del factor Von Willebrand, hemofilia A, hasta intervenciones quirúrgicas en las cuales los pacientes requieran de transfusión sanguínea. (Kumar,2017) INTRODUCCIÓN
  • 3. Seleccción del donante TÉCNICAS DE TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA 1-8 años de edad Mas de 25 kg de peso Hematocrito superior al 40 Donante canino 2-8 años de edad Mas de 5kg de peso Hematocrito superior al 35 % Donante felino Vacunado, Libre de enfermedades infecciosas y No haber recibido transfusiones previas (Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
  • 4. Donantes en perros y gatos según su tipo sanguíneo -  Grupo A sólo recibirán sangre de gatos Tipo A  Grupo B sólo recibirán sangre de gatos Tipo B.  Grupo AB pueden recibir sangre de cualquier grupo sanguíneo.  Donante universal: DEA 1.1, 1.2, 3, 5 y 7 negativos. DEA 4 positivo o negativo.  Posibles donantes: todos los animales DEA 1.1 negativos (Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
  • 5. Test rápido de tipificación (Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015). Es imprescindible tipificar el grupo sanguíneo del donante y del receptor antes de la transfusión, ya se de sangre entera, concentrado de eritrocitos o productos plasmáticos GATOSPERROS
  • 6. PRUEBAS COMPATIBILIDAD MAYOR Detecta si en el plasma del receptor existen anticuerpos frente a los eritrocitos del donante. Si la prueba de compatibilidad mayor presenta aglutinación no debe realizarse nunca la transfusión. MENOR Determina la presencia de anticuerpos en el plasma del donante frente a los eritrocitos del receptor. En el perro, si la compatibilidad menor presenta aglutinación se podrían transfundir los eritrocitos, pero no el plasma.(Kumar,2017).
  • 7. Procedimiento ❏Procedimiento resumido 1. Recoger sangre del donante y del receptor en EDTA 2. Centrifugar y separar el plasma de los eritrocitos, e identificar adecuadamente los tubos. 3. Rotular tres portaobjetos: mayor, menor y control. 4. Poner una gota de los hematíes y dos gotas de plasma en cada portaobjetos:  Mayor: hematíes del donante + plasma del receptor.  Menor: hematíes del receptor + plasma del donante.  Control: hematíes y plasma del receptor. 5. Incubar 2 minutos a temperatura ambiente. 6. Evaluar la aglutinación macroscópica y microscópica (Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015).
  • 8. Pruebas de incompatibilidad en gatos Grupo sanguíneo Reacción de incompatibilidad Donante Receptor A A Ninguna B B Ninguna B A Leve A B Muy grave (Yokeiry , 2018)
  • 9. TÉCNICA DE ADMINISTRACIÓN 1. Producto Bolsa de sangre congelada debe someterse a baño maria a 37° 2. Utilizar el Kit de extracción Incluye la bolsa, que dispone de un filtro para eliminar coágulos y desechos 3. Vías de Administración  Catéter intravenoso  Vía interósea  Neonatos: La vía interósea mediante un catéter calibre 20  Y en el caso del plasma la vía intraperitoneal (Pellegrino, Et al 2018)
  • 10. Concentrado de hematíess • Anemias • CID • Isoeritrólisis neonatal Plasma congelado • Intoxicación por raticidas • Hipoproteinemia • Hipovolemia • Isoeritrólisis neonatal Plasma fresco congelado • Coagulopatías • Pancreatitis, Hipovolemia, Hipoproteinemias Isoeritrólisis neonatal • Déficit de antitrombina III sangrecongelada • CID • Pancitopenia • Anemia • Hipoproteinemias Sangre fresca • CID • Pancitopenia • Anemia • Coagulopatias • Hipoproteinemias Plasma rico en plaquetas Criosobrenadante Crioprecipitado • CID • Enfermedad de von Willebrand • Déficit de factores VIII y XIII, fibrinógeno • Trombocitopenia • Déficit de factores II, VII y IX, • Intoxicación por anticoagulantes Hemofilia B • Hipoproteinemia • Déficit ATII(Muñoz, Morgaz, & Galán, 2015). Hemoderivado indicado según su patología
  • 11. Normalmente: 20 ml/kg de sangre total aumenta el Htc un 10%. Fórmula Volumen a administrar (ml)= peso x (88 ml (perros) o 66 ml (gato)) x ((Htc deseado - Htc del paciente) / Hto del donante). El Htc deseado suele ser un 10% superior al Htc que presenta el receptor antes de la transfusión; generalmente, debe ser de 25-30% en perros y 20-25% en los gatos. El volumen total transfundido no debe exceder 22 ml/kg/día. CÁLCULO DEL VOLUMEN A TRANSFUNDIR (Pellegrino, Et al 2018)
  • 12. VELOCIDAD DE ADMINISTRACIÓN  En los primeros 15-30 minutos a velocidad lenta (0,25 ml/kg/h) con el fin de evaluar posibles reacciones transfusionales.  Shock hipovolémico por hemorragia aguda no se debe iniciar con velocidad inicial más baja.  En perros normovolémicos la velocidad debe ser 5-10 ml/kg/h durante 2-4 h, y en gatos 3-5 ml/kg/h, durante 2-3 horas.  En hipovolémicos por hemorragia aguda se puede utilizar una velocidad de hasta 22 ml/kg/h. Sin embargo, pueden producirse arritmias por hipocalcemia, por lo que es aconsejable controlar el ECG y los niveles séricos de calcio. (Pellegrino, Et al 2018)
  • 13. Evita caballos donantes del grupo sanguíneo A, C o Q. Pueden estimular una respuesta de los anticuerpos si el receptor no es del mismo grupo.’’ Buscar caballos donantes del tipo sanguíneo D, K, P o U. . De manera que si los caballos del grupo D necesitan una transfusión de sangre, es aceptable un donante de los grupos D, K, P o U; ya que son clasificados como donantes universales (Martín, & García, 2017). Transfusion sanguinea en equinos Selección de Donante
  • 14. CARACTERÍSTICAS DEL DONANTE caballo Dato Edad Adulto Sexo H/M Talla A Estado Sano/excelente Hematocrito 40% Leucocitos 6.000 y 10.000 u/ml Hemoglobina 111-190 G/L Peso Variando según su función (380-1000kg) Martín, M., & García, R. (2017).
  • 15. ● Se administran a los potros neonatales para tratar el fracaso de la transferencia de la inmunidad pasiva ● Para el tratamiento de deficiencias de factor de coagulación, hipoalbuminemia y coagulación intravascular diseminada en caballos. ● El plasma se puede considerar plasma fresco congelado (FFP) cuando se congela dentro de las 8 horas posteriores a la recolección. FFP contiene inmunoglobulinas, factores de coagulación y cofactores, así como las proteínas anticoagulantes antitrombina, proteína C y proteína S. Hemoderivado indicado para transfusiones según su patología Plasma (Kumar 2017).
  • 16. ● Por pérdida aguda de sangre: traumatismo, cirugía ● Afecciones: Ruptura esplénica o hemorragia de la arteria uterina. ● Caballos que tienen un volumen sanguíneo normal con anemia severa, los glóbulos rojos empaquetados serían el producto más apropiado, aunque las transfusiones de ST a menudo se administran cuando el procesamiento del producto sanguíneo no está disponible o también se necesitan factores de coagulación. Glóbulos rojos (Kumar 2017).
  • 17. PRUEBAS CRUZADAS MAYOR Detecta la aglutinación entre los glóbulos rojos del donante y el plasma del receptor. MENOR Detecta la aglutinación entre el plasma del donante y los glóbulos rojos del receptor. Las pruebas cruzadas equinas pueden ser difíciles de interpretar debido a la formación de rouleaux. El rouleaux normal debería dispersarse cuando se mezcla una pequeña cantidad de solución salina con la sangre, mientras que la aglutinación no se dispersará La formación normal de rouleaux de glóbulos rojos equinos (a) se diferencia de la aglutinación observada con una prueba cruzada incompatible (b) (Kumar 2017).
  • 18. PRUEBAS CRUZADAS La prueba cruzada de rutina evalúa la aglutinación, pero no prueba las reacciones hemolíticas. Las pruebas de compatibilidad cruzada tampoco predicen con precisión la vida útil de los glóbulos rojos transfundidos o el desarrollo de anticuerpos contra los glóbulos rojos transfundidos. Como tal, se han informado reacciones a la transfusión incluso con una prueba cruzada compatible (Martín, & García, 2017).
  • 19. TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA: Hto: < 12% Donador: macho castrado no relacionado al potro Aa y Qa negativo capas de proporcionar por lo menos 5 L de sangre Cantidad a administrar: Fórmula Infusión lenta : Motorizando a cada momento las constantes fisiológicas Empleo de un catéter intravenoso doble, y anestesiar al potro En casos leves de enfermedades hemolíticas pueden requerir solo una laactacion cuidadosa Peso en kg del potro x Volumen sanguíneo (ml/kg) (en un potro de dos días suele ser 150ml/kg) x (Hto deseado – Hto observado) / Hto del donador (kumar, 2017)
  • 20. SELECCION DEL DONANTE 4- 5 años de edad y fácil de manejar Sano Ninguna enfermedad Ningún tratamiento No gestante ni lactante Condición coorporal Nivel de Hto: 30-33 % 11 GRUPOS: A, B, C, J, M, R, S, y Z Grupos sanguíneos B: tiene mas de 60 Antígenos J: no es un Verdadero Antígenos eritrocitario Pesar alrededor de 450 kg Además el grupo B tiene mas capacidad de causar una reacción transfuncional BOVINO (kumar, 2017; Cayambe, 2018)
  • 21. TRANSFUSIÓN DE SANGRE EN BOVINOS CON PATOLOGÍAS John Doe Here you can talk a bit about this person Jenna Patterson Here you can talk a bit about this person Helena James Here you can talk a bit about this person Anemia por hemoparásitos: Babesia Anaplasma, Tripanosoma Vacas lecheras: úlcera de abomaso Pérdida de sangre: Traumatismo interno o externo (Cayambe, 2018)
  • 22. Prueba Cruzada MayorSe enfrentan Glóbulos rojos del donante con suero del receptor Si existe una leve incompatibilidad evidenciada en el Cross Match menor y ante una emergencia se podría realizar la transfusión, ya que los anticuerpos del donante se diluirán rápidamente en el torrente sanguíneo del receptor IncompatibleLa presencia de aglutinación o hemólisis revelea anticuerpo en el suero del receptor contra los glóbulos rojos del doanate Menor Suero del donante con glóbulos rojos del receptor Un Cross Match compatible no debe dar evidencias de hemólisis o aglutinación . Menor Detecta anticuerpos en el suero del donante contra los glóbulos rojos del receptor (Cayambe, 2018)
  • 23. TIPOS DE REACCIONES INMUNOLÓGICAS 01 Los bovinos generalmente generan una reacción de aglutinación. En la placa de vidrio se va a observar que los glóbulos rojos se unen, se separan del suero y forman un coágulo a parte y el suero queda a un lado. 02 En la reacción de hemólisis hay una destrucción de los glóbulos rojos entonces el color de la sangre se torna en un rojo muy brillante, por la liberación de la hemoglobina que se da en ese momento. Pruebas incompatibles AGLUTINACIÓN HEMOLISIS Pruebas Compatibles (Kumar 2017).
  • 24. TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA Bovinos . . Una vez realizadas las pruebas de rigor se determina compatibilidad y se pasa a realizar el cálculo de sangre a trasfundir según la formula:  Volumen a transfundir = Volemia (ml) x Hematocrito del receptor – hematocrito deseado /hematocrito del donante Una vez calculada la cantidad se debe, preparar al receptor con corticoides y antihistamínicos y pasar la sangre con un catéter intravenoso al inicio lentamente para poder observar algún signo de reacción. Al final el animal deberá estar bajo supervisión y estricto seguimiento por parte del médico veterinario, lo que permitirá detectar reacciones tardías y terminar con éxito el procedimiento (Cayambe 2018)
  • 25. DISCUSIÓN Según los hallazgos de las investigaciones los perros y los gatos cuenta con un donador universal. (Muñoz, Morgas, & Galan, 2015) , a diferencia de las especies mayores tiene un sistema de grupos sanguíneos mas complejos ya que se estima que sobre pasa el numero en combinaciones (kumar,2017). Al momento de realizar transfusiones sanguíneas compatibles es necesario determinar los grupos sanguíneos implicado en las reacciones transfuncionales, tanto del donante como del receptor. Según (Kumar, 2017) existen métodos para realizar una prueba de compatibilidad mediante en cruzamiento de sangre del donante y del receptor que puede ser mayor o menor, es efectivo en todas las especies .
  • 26. CONCLUSIÓN Se determinó la importancia de realizar las pruebas cruzadas y la búsqueda de anticuerpos en animales domésticos, ya que permiten que los antígenos y anticuerpos puedan ser detectados y estudiados a nivel de laboratorio, en general nos ayuda a verificar la compatibilidad sanguínea de donantes y receptores para las transfusiones a realizar, que de la misma manera proveen al paciente de máxima seguridad y beneficio ante situaciones clínicas.
  • 27. ● Coppo, J. A. (2019). Interpretación de análisis clínicos en perros y gatos. Ediciones Universidad Católica de Salta. ● Kumar, R. (2017). Blood transfusion in veterinary medicine. Hematoly Transfusion International Joournal, 4(4), 116-122. ● Yokeiry, D. (2018). Determinación de Eficiencia entre Prueba Rápida de Tipificación Sanguínea y La Prueba de Cruzamiento de Sangre en Felinos Domésticos(Trabajo de grado)..Univerdiad Nacional Pedro Hernriquez Ureña. República Dominicana ● Pellegrino, F. J., Irala, R. L., Marchionni, M., Risso, A. L., & Corrada, Y. A. (2018). Transfusión sanguínea en caninos. Revista del Colegio de Veterinarios de la Provincia de Buenos Aires; 23 (72),; 39-43 ● Martín, M., & García, R. (2017). Identificación equina III. ExtremaduraPRE: la revista de la Asociación Extremeña de Criadores de Caballos de Pura Raza Española, (26), 59-68. ● Muñoz, P., Morgas, J., &Galán, A., (2015). Manual Clínico del perro y el gato. Madrid España: Elsevier ● Cayambe, M. (2018). Evaluación de la transfusión sanguínea de bovinos a caninos en el tratamiento de anemia en la Universidad Técnica de Machala (Trabajo de titulación). UTMACH, Unidad Académica de Ciencias Agropecuarias, Machala, Ecuador. . BIBLIOGRAFÍA