TECNICAS DE TRANSFUSION

2. INTRODUCCIÓN
La transfusión sanguínea es un procedimiento importante que
consiste en utilizar la sangre de un animal en beneficio de
otro, es decir hacer pasar la sangre o alguno de sus
componentes de un donante a un receptor, este se realiza con
el fin de compensar la pérdida de sangre o alguno de sus
componentes en sí. En la práctica veterinaria, en nuestro
medio este procedimiento no se lo realiza con regularidad
pero es importante saber que son numerosas las situaciones
que requieren el uso de transfusiones de sangre o sus
derivados y para poder realizar este procedimiento primero
se necesita realizar una evaluación rigurosa tanto del donante
como del receptor y conocer varios parámetros y procesos
importantes que se darán a conocer a continuación.
(Sheikh, Bhat, Kalyan & Rayees, 2017)

3. ESPECIE EDAD ESTADO DE
SALUD
HEMOGLOBINA g/L HEMATOCRITO
L/L
LEUCOCITOS
x 10 g/L
Perro Adulto Sano 120-180 0.37-0.55 6.0-17.0
Gato Adulto Sano 80-150 0.24-0.45 5.5-19.5
Caballo Adulto Sano 111-190 0.32-0.52 5.5-12.5
Bovino Adulto Sano 80-150 0.24-0.46 4.0-12.0
(Sheikh et al., 2017)

4. Bovino: Caballo:
Venas yugular, mamaria abdominal subcutánea,
caudales y de las arterias carótida, caudal y
braquiales
Vena yugular y de la carótida puede obtenerse
sangre arterial poco más o menos como en la vaca,
pero el procedimiento requiere práctica y no debe
ser intentado en un animal valioso por una persona
inexperta.
(Kumar,2017)

5. Perro: Gato:
Venas cefálica y safena son usadas comúnmente en
el perro
De la vena yugular, y cefálica se toma comúnmente
sangre en el gato, La sangre arterial se obtiene de la
arteria femoral
(Kumar,2017)

6. BOVINO El ganado puede donar 8-14 ml de sangre por kg de peso corporal.
CABALLO
6-8 L de sangre. El donante debe ser negativo para la anemia infecciosa equina
y debe tener concentraciones normales de PCV y proteínas plasmáticas.
(Kumar,2017)

7. PERRO
15 ml de sangre por kg de peso corporal del perro cada 6 semanas. Deben ser
negativos para enfermedades infecciosas transmisibles como babesiosis,
leishmaniasis, brucelosis, ehrlichiosis, anaplasmosis, tripanosomiasis,
bartonelosis y hemoplasmosis y neorickettsiosis
CABALLO
10 y 12 ml de sangre / kg de peso corporal. Deben ser negativos para el virus de
la leucemia felina (FeLV), el virus de la inmunodeficiencia felina (FIV), la
citauxzoonosis, la anaplasmosis, la bartonelosis, la ehrlichiosis y la
neorickettsiosis y la hemoplasmosis
(Kumar,2017)

8. El sitio de punción debe
estar tricotomizado y
debidamente desinfectado
La SC(Sangre completa),
CGR(Concentrado de
globulos rojos) o PFC(Plasma
Fresco Congelado) se deben
descongelar en un baño a
37ºC hasta que alcancen una
temperatura entre 25-35ºC.
Durante la transfusión se
debe mantener la
sangre/plasma a unos 30-
35ºC.
Todos los productos
sanguíneos deben
administrarse
mediante equipos de
infusión con filtro
En neonatos se
pueden administrar
por vía intraósea e
intraperitoneal.
Gato y Perro
(Fragio, Daza & Garcia, 2016)

9. Sangre Completa o Concentrado de GR
(en caso de anemia e hipovolemia)
• Transfundir 2,2 ml/kg de SC produce un incremento del Hcto
del 1%.
• Transfundir 1 ml/kg de CGR produce un incremento del
Hcto del 1%.
• El Hcto. no se estabiliza hasta 24 horas después de la
transfusión,
Plasma
• En coagulopatías el plasma se debe administrar hasta que el
sangrado y los tiempos de coagulación se normalicen, la
dosis de partida es de 6-10 ml/kg.
Concentrado de Plaquetas: • En general las dosis son de una unidad por cada 10 kg de
peso
Antes de la
transfusión de CGR,
se añadirán 50-70 ml
de ClNa 0,9% a la
bolsa para reducir su
viscosidad.
(Fragio et al, 2016)

10.  Anemias normovolémicas: 3ml/kg/h los primeros 30 minutos, después aumentar 5-10ml/kg/h.
 En felinos por tener un volumen vascular menor la velocidad debe ser constante
 Shock hipovolémico: 20ml/kg/h, en cardiópatas no hay que superar los 2-4ml/kg/h.
 Plasma: 6-10ml/kg/h cada 4-12 horas
La TS debe completarse
en un máxima de 4 horas
Monitorizar pulso, frecuencia cardiaca y
respiratoria, temperatura, color de mucosas y
TRC 1-2 horas después de la transfusión.
(Fragio et al, 2016)

11. Se prepara al caballo se
corta la parte del pelaje
del cuello que está encima
de la vena yugular y se
desinfecta la piel
Se requiere un catéter largo
calibre 10 o una aguja calibre
14 para que los glóbulos rojos
no se dañen físicamente al
momento que fluyan
Se debe registrar la FC, FR,
la temperatura corporal y el
color de las mucosas antes de
comenzar la transfusión y a
partir de ahí cada 2 minutos.
Durante los primeros 10
minutos la transfusión se
da lentamente, a una
velocidad de 0,1 ml/kg
Si no aparecen signos de una
reacción, entonces se
incrementa la velocidad de
flujo de 20-30 ml/kg l por
hora.
Esta indicada para equinos que
cursan con anemia severa,
hemorragias masivas producto de
accidentes o traumas
(Silva, 2015)

12. Sangre Completa o Concentrado de GR
(en caso de anemia e hipovolemia)
• Indicada en caballos con un volumen globular menor a 13%
debido a pérdida aguda de sangre o hemólisis.
• La cantidad de sangre a administrar depende del tamaño del
receptor, la naturaleza y severidad del problema.
• El reemplazo del 25 a 30 % de la pérdida de sangre calculada
es suficiente
Antes de la transfusión
de CGR, se añadirán
50-70 ml de ClNa 0,9%
a la bolsa para reducir
su viscosidad.
Plasma
• Utilizado para terapia primaria o de soporte en muchas
enfermedades de equinos.
• Transfundir de 1 a 2 litros de plasma 45 a 50 kg de peso
(Silva, 2015)

13. Primero se debe
mantener las
condiciones asépticas
en todo el proceso.
Se inserta una aguja de
18G de 2 pulgdas en la
vena yugular
Se conecta el frasco o la
bolsa que contiene la
sangre del donante con
la ayuda de un tubo de
infusión estéril
Se debe controlar o
minotorear los signos
vitales antes y mientras
la transfunsión.
Una vaca que esté por
debajo del 20 % del
hematocrito es un
animal que necesita
una transfusión
porque esos niveles
están indicando que
está en riesgo su vida.
El hematocrito normal de
la vaca oscila entre 24 y
43%
(Mullo, 2018)

14. El shock hemorrágico en vacas ocurre cuando se pierde un
volumen de sangre del 30 al 40 % del total rápidamente.
Un animal con un Hto. de 10% tiene una pérdida aproximada de
dos tercios del total de sus eritrocitos.
La administración de sangre a un adulto anémico elevará el
hematocrito en un 0,75% por cada litro de sangre infundido
Se administra a una velocidad que no exceda los 10 ml / kg por
hora.
Pacientes hipovolémicos pueden requerir una velocidad de
infusión de 20 ml / kg por hora
Los pacientes con enfermedad cardíaca, renal o hepática o
terneros caídos pueden requerir una velocidad de infusión de
solo 1 ml / kg por hora.
(Mullo, 2018)

15. Q = P x 88 x (Htc1-Htc2)/Htc3
Q: volumen a transfundir (ml)P: peso del receptor (kg)Htc1:
hematocrito deseadoHtc2: hematocrito del receptorHtc3:
hematocrito del donante
(Kumar,2017)

16.  Para los donantes y receptores se debe realizar un hemograma completo, análisis de
laboratorio para hemoparásitos y realizar las pruebas de Crossmatching mayor y menor
Biometría Hemática Completa (Hemograma)
 La biometría hemática mide las cantidades y características de los tres tipos de cuerpos que
normalmente se encuentran en la sangre, que en orden decreciente de tamaño son:
Leucocitos (glóbulos
blancos)
Eritrocitos
(glóbulos rojos)
Plaquetas
(trombocitos)
(Galan, A & Sanchez, 2019).

17.  El diagnostico definitivo de hemoparásitos se realiza mediante la demostración de la presencia
de los protozoos en el interior de los eritrocitos infectados. Las extensiones sanguíneas es
aconsejable realizarlas de forma inmediata tras la extracción, ya que el almacenamiento de la
sangre extraída al paciente, incluso en refrigeración, puede imposibilitar la visualización de los
parásitos.
(Galan, A & Sanchez, 2019).

18.  Evidencian la compatibilidad serológica entre donador y receptor, demostrando la
presencia en el suero de aloanticuerpos naturales o inducidos. Estos aloanticuerpos
podrían provocar reacciones de hemoaglutinación o hemólisis frente otros grupos
sanguíneos conocidos u otros antígenos eritrocitarios.
Se añade una gota (aproximadamente 50 μl)
de PBS (Solución Salina Amortiguada por
Fosfato) en los 3 pocillos de ensayo, que
contienen: Una lectina aglutinante (pocillo
de control positivo), nada (pocillo de
control negativo)
PROCEDIMIENTO:
(Galan, A & Sanchez, 2019).

19. Una gota de sangre se añade a cada pocillo y
luego se extiende bien sobre el área
La tarjeta se mezcla suavemente durante 1
minuto, y luego es interpretada la aglutinación
Incompatible: Se va a observar que los glóbulos rojos
se unen, se separan del suero y forman un coágulo a
parte y el suero queda a un lado.
Compatible: Se observa una mezcla homogénea de
sangre y sus componentes.
(Galan, A & Sanchez, 2019).

20. Prueba de Cruzamiento
MAYOR MENOR
DONANTE
RECEPTOR
DONANTE
RECEPTOR
En la prueba de
compatibilidad mayor: Se
añade una gota de
glóbulos rojos del donante
en el suero del receptor
En la prueba de
compatibilidad menor: Se
añade una gota de
glóbulos rojos del
receptor en el suero del
donante
Glóbulos rojos
Suero
A 37 grados, por media
hora. (30 min)
(Galan, A & Sanchez, 2019).

21. Prueba menor: Demuestran la existencia de aloanticuerpos en el plasma del donador
contra los eritrocitos del receptor, si esta prueba resultara incompatible, no sería tan
importante porque la cantidad de suero del donante es pequeña.
Prueba mayor: Nos ayudará a predecir si las células transfundidas del donador
serán atacadas por anticuerpos en el plasma del receptor. Si se produce hemólisis
y/o aglutinación en las pruebas mayores no se podrá realizar la transfusión, ya que
el receptor tiene aloanticuerpos contra los eritrocitos del donante.
(Galan, A & Sanchez, 2019).

22.  Mencionado anteriormente esto sucederá cuando el donante y el receptor antigénicamente no
coinciden. Cuando hay incompatibilidad se podrán observa ciertas reacciones adversas
Grupo S. Donante Grupo S. Receptor Reacción
incompatibilidad
A A Ninguna
B B Ninguna
B A Leve
A B Muy grave
• El grupo B tiene aloanticuerpos anti- A altamente aglutinantes y hemolisantes
• El grupo A tiene aloanticuerpos anti- B débiles
(Little, 2015)

23. Grupo S.
Donante
Grupo S.
Receptor
Reacción
incompatibil
idad
DEA 1.1 + Cualquiera Muy grave
DEA 1.2 + Cualquiera Muy grave
DEA 1.3 + Cualquiera Ninguna
DEA 3 + Cualquiera Muy grave
DEA 4 Cualquiera Ninguna
DEA 5 + Cualquiera Muy grave
DEA 6 Cualquiera Ninguna
DEA 7 + Cualquiera Muy grave
DEA 8 Cualquiera Ninguna
• Los grupos DEA 1.1, DEA 1.2, DEA 3, 5, 7 son grupos sanguíneos que son
antigenicamente fuertes y producen reacciones altamente aglutinantes y
hemolisantes . Un donante universal se considera al que sea negativo para
cualquiera de estos grupos.
• Los grupos DEA 1.3,4,6 y 8 son grupos sanguíneos que son antigenicamente débiles
y no producen reacciones aglutinantes y hemolisantes.
IMPORTANTE
Esta especie el no poseer
anticuerpos naturales, no
habrá dificultad en la primera
transfusión, pero en la segunda
transfusión ya es necesario
realizar pruebas para
determinar los grupos
sanguíneos ya que el paciente
ya habrá desarrollado
anticuerpos .
(Little, 2015)

24. Existen 7 grupos sanguíneos principales en el equino :
A,C,D,K,P,Q y U. De los grupos sanguíneos, hay que tener
especial consideración con el sistema A y Q porque están
involucrados en el 98 % de los casos de isoeritrolisis. Se
considera que el tipo sanguíneo de un equino puede compararse a
la huella digital del hombre, por lo cual es necesario realizar
pruebas de compatibilidad antes de la transfusión
Existen 11 grupos sanguíneos en el bovino, al tener 11 tipos de
sangre, los glóbulos rojos de los bovinos van a desarrollar
muchos antígenos y anticuerpos frente a los los glóbulos rojos de
otros bovinos. El tipo de sangre B es el que más capacidad tiene
de reaccionar. De igual manera realizar pruebas de
compatibilidad antes de la transfusión.
(Mullo, 2018)

25. Reacciones
Adversas
Hemolíticas No hemolíticas inmediatas
Reacción antígeno- anticuerpo entre los
anticuerpos plasmáticos del receptor contra el
antígeno eritrocitario del donante por lo que se
produce hemolisis. Hay:
• Fiebre
• Hipotensión
• Disnea,
• Hemoglobinuria
• Hemorragia.
Frecuentes en la transfusión de eritrocitos y
plaquetas por diversos mecanismos
inmunológicos que no causan hemólisis . Hay
cuatro tipos de reacciones no hemolíticas
inmediatas :
• Febril
• Alérgica
• Contaminación bacteriana
• Sobrecarga circulatoria
• Se demoran días o meses en aparecer
• Ocurren como resultado de respuestas inmunológicas a transfusiones previas
• El receptor produce nuevos anticuerpos por los antígenos administrados en transfusiones anteriores.
• Estimula la respuesta inmunológica en las transfusiones subsecuentes lo que se denomina
aloinmunización.
(Silva, 2015)
No hemolíticas tardías

26.  Calcular el volumen de transfusión y la velocidad es de suma importancia ya
que al no controlar esto se puede provocar una sobrecarga circulatoria, Silva
(2015) menciona que ¨administrar un volumen excesivo o transfundir
rápidamente superara la capacidad del sistema cardiopulmonar¨, esto trae como
consecuencia una inadecuada distribución vascular ocasionando congestión
pulmonar y cardiaca observando en el paciente signos como hipertensión,
disnea, tos, mucosas hiperemicas, etc. En lo posible se debería evitar este tipo
de situaciones pero si sucediera una sobrecarga circulatoria lo recomendado es
suministrar un diurético de rápida acción o venodilatadores como la glicerina.
Una forma de prevenir esto es realizar un correcto cálculo del volumen
sanguíneo o a su vez solo administrar el componente que necesita el animal y
no sangre entera de acuerdo al problema o patología que presente el paciente,
por otra parte asegurarnos que la velocidad de administración no supere el
limite.

27.  Las transfusiones sanguíneas en la practica veterinaria son de mucha importancia sobre todo en
las emergencias ya que incluso puede salvar la vida del paciente, pero siempre y cuando se la
realice correctamente y se evalúe adecuadamente al paciente antes, durante y después del
procedimiento. No olvidemos que antes de cualquier procedimiento se deben realizar pruebas
de laboratorio (hemograma), para saber cual es la necesidad del receptor y cual es el estado de
salud del donante y también pruebas de compatibilidad para elegir al donante adecuado para el
receptor.

28.  Silva,M. (2015), Leucorreducción de sangre para trasfusión. Valdivia, Chile,Universidad Austral de Chile. 9-12.
 Mullo, K. (2018). Evaluación de la transfusión sanguínea de bovinos a caninos en el tratamiento de anemia en la universidad técnica de Machala.
Machala, Ecuador. UTMACH.http://repositorio.utmachala.edu.ec/bitstream/48000/13267/1/DE00013_TRABAJODETITULACION.pdf.
 Galan, A & Sanchez, I. (2019). Medicina Interna en pequeños animales. Barcelona, España. ELSEVIER.
 Kumar,R. (2017). Blood transfusión in veterinary medicine. Hematol Transfu Int J. 4 (4): 116-122: DOI: 10.15406/htij.2017.04.00093.
 Fragio, C.,Daza, A., & Garcia, E. (2016). Transfusiones sanguíneas en perros y gatos. Clin.Vet.Peq. 29(4):229-238.
 Sheikh, A., Bhat, S., Kalyan, A., & Rayees, M. (2017). An introduction to blood groups and blood transfusión in domestic animals. Haryana,
India. Animal Physiology División-ICAR.
 Little, S. (2015). Feline Blood Types (transfusión and Neonatal Isoerythrolysis). New Yersey, USA. Winn Feline Foundation.
https://www.winnfelinefoundation.org/docs/default-source/cat-health-library- educational-articles/feline-blood-types-transfusion-and-
nie.pdf?sfvrsn=2