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Universidad Técnica De Ambato
Facultad De Ciencias Agropecuarias
Carrera De Medicina Veterinaria Y Zootecnia
Patología Médica
TÉCNICAS DE TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA Y
PRUEBAS CRUZADAS
Estudiante: Carolina Zúñiga
Docente: Dr. Marco Rosero
Semestre: 7mo “B”
Mayo – Septiembre 2020
INTRODUCCIÓN
En la práctica clínica veterinaria son muchas las
ocasiones en las que resulta necesario realizar
transfusión sanguínea. Sus importantes beneficios,
han generado una considerable demanda de
transfusiones de sangre y sus derivados. Nuestra
responsabilidad es realizar este procedimiento
correctamente, debido a las complicaciones presentes
durante y después de someter al paciente a este tipo
de terapia (Madriz, 2014).
ELECCIÓN DEL DONANTE
Adulto. Vacunación
y desparasitación
vigentes
Peso mínimo de
perros >25 kg .
Hcto mínimo 40%
Que no haya
recibido
transfusiones
Libre: Ehrlichiosis,
Leishmaniosis,
Filariasis, Babesiosis
(Cáldad, 2019)
PERRO
ELECCIÓN DEL DONANTE
Peso >4 kg
Adulto. Vacunación y
desparasitación vigentes
Libres de: FeLV, FIV, PIF,
Toxoplasmosis, Filariasis. También
Borreliosis, Rickettsiosis, Brucelosis.
Que no hayan recibido
transfusiones
Hcto mínimo 30-35%
GATO
(Cáldad, 2019)
ELECCIÓN DEL DONANTE
Adulto, ojalá no menor de 2
años, ni mayor de 4
Hcto entre 30 y 33%
Peso igual o mayor a 450 Kg
condición corporal de 3.5 en
una escala de 1 a 5
Sano y que no haya tenido
ninguna enfermedad
que no esté en último mes de
gestación, y que no esté lactante
(Mazo, 2019)
BOVINOS
ELECCIÓN DEL DONANTE
Joven, saludable,
castrado
peso de
aproximadamente
500kg
al día en vacunas
y vermifugaciones
De preferencia de
la misma raza
Que no haya
tenido previas
trasfusiones
De preferencia Aa
y Qq negativos
(Peña, 2015)
EQUINOS
PRUEBAS CRUZADAS
Detectan la existencia de
incompatibilidad entre el
donante y el receptor
(Barillas, 2015).
Una prueba cruzada
compatible no debe dar
evidencias de hemólisis o
aglutinación (Madriz, 2014).
Prueba Cruzada Mayor: Se
enfrentan glóbulos rojos del
donante con suero del
receptor (Madriz, 2014).
Prueba Cruzada Menor:
Suero del donante con
glóbulos rojos del receptor
(Madriz, 2014).
PRUEBAS
CRUZADAS
PRUEBAS CRUZADAS
La prueba mayor determina si el receptor tiene
anticuerpos para las células del donante.
La prueba menor determina si el donante tiene
anticuerpos para las células del receptor.
Se debe incluir una reacción control, en la que
se mezclan eritrocitos y plasma del receptor.
(Barillas, 2015).
PRUEBAS CRUZADAS
Se añade un
anticoagulante a las
muestras de sangre del
donante y el receptor
los eritrocitos del
donante se lavan tres
veces con solución
salina al 0.9%
se prepara una
suspensión en suero
salino al 4% con las
células lavadas.
Las muestras se
incuban a 37 °C
durante 15 minutos
Se centrifugan a 1,000
g durante 15 segundos.
El tubo control
contiene suspensión de
eritrocitos del receptor
al 4% y plasma del
receptor.
(Barillas, 2015).
PRUEBAS
CRUZADAS
Para realización de estas pruebas hay que lavar los
eritrocitos de Donante y Receptor varias veces.
Pero en casos de urgencia, se pueden realizar
unas pruebas de compatibilidad simplificadas, sin
lavar los GR, aunque son menos fiables.
Se centrifuga la sangre del Donante y del
Receptor, y se realizan las tres reacciones
(mayor, menor y control) sobre tres
portaobjetos.
Se mezcla en cada uno de ellos 3 gotas de
plasma y 1 gota de GR, dejando incubar 2-5
minutos, y mirando al microscopio si existe
aglutinación.
(Frazío, etal 2015).
INTERPRETACIÓN DE LAS PRUEBAS CRUZADAS
• Una prueba positiva o incompatible puede presentar hemólisis,
hemaglutinación o ambas.
• Cada muestra se agita suavemente hasta que las células del fondo del
tubo vuelven a estar en suspensión.
• Se compara el grado de agregación de la muestra con la del control.
• La prueba es negativa o compatible cuando los eritrocitos se
suspenden fácilmente (Barillas, 2015).
INTERPRETACIÓN DE LAS PRUEBAS CRUZADAS
Aglutinación: cuando se observan
conglomerados de glóbulos rojos suspendidos
en el tubo y sin diluirse en la solución salina
(Vallejo, 2018).
Hemólisis: cuando se observa turbidez en el
líquido en suspensión antes de realizar el
agitado final de la muestra (Vallejo, 2018).
La hemaglutinación se puede clasificar de la siguiente
manera:
4+ Un agregado sólido de células
3+ Varios agregados grandes
2+ Grandes aglutinamientos y agrupamientos más pequeños
1+ Muchos aglutinamientos pequeños y células libres en el
fondo
(Barillas, 2015).
PRUEBAS CRUZADAS EN BOVINOS
Lo ideal es realizar
pruebas de laboratorio. Si
no es posible, se puede
realizar estas pruebas en el
campo.
Se toman muestras del
donante y del receptor en un
tubo con anticoagulante y un
tubo sin anticoagulante
P. Mayor: una gota de
glóbulos rojos del donante
con suero del receptor y
colocarlas sobre una placa de
vidrio.
Por cada gota de sangre al
menos dos o tres gotas de
suero.
La prueba menor consiste
en: una gota de glóbulos
rojos del receptor con suero
del donante.
La auto prueba consiste en
tomar suero y glóbulos
rojos del receptor.
(Mazo, 2019)
Las muestran se tienen que dejar a temperatura ambiente al menos 15
minutos, y luego se debe observar que pasa con la sangre.
En bovinos se pueden dar dos tipos de reacciones inmunológicas: la
hemólisis y la aglutinación.
En la hemólisis hay una destrucción de los glóbulos rojos. El color de la
sangre se torna en un rojo muy brillante, por la liberación de la hemoglobina
que se da en ese momento.
Cuando se genera aglutinación, en la placa se observa que los glóbulos rojos
se unen, se separan del suero y forman un coágulo a parte y el suero queda a
un lado.
(Mazo, 2019)
EFECTOS ADVERSOS / INCOMPATIBILIDADES
Reacciones Hemolíticas:
Provocadas por sangre incompatible
Signos: temblores, fiebre, apnea, vómitos, taquicardia con
hipotensión, hemoglobinemia, hemoglobinuria, fallo renal agudo,
CID (Madriz, 2.014)
EFECTOS INMUNOLOGICOS INMEDIATOS:
Reacciones febriles:
Incremento de un grado (Celsius) o más debe considerarse como una
reacción febril
debido a los anticuerpos de leucocitos, plaquetas o proteínas
plasmáticas
Signos: Fiebre, escalofríos, temblores (Madriz, 2014).
Reacciones alérgicas:
El paciente reacciona a los alérgenos del donador que están en los
eritrocitos, plaquetas, granulocitos, proteínas plasmáticas,
frecuentemente por reacciones de complemento e inmunoglobulinas
Signos: Urticaria, disnea, edema laríngeo (Madriz, 2014).
EFECTOS INMUNOLÓGICOS TARDÍOS:
Reacción hemolítica tardía
Destrucción de eritrocitos y fiebre de 10 a 15 días después de la
transfusión. Esta a menudo es una respuesta inmunológica de memoria
(Madriz, 2014).
Reacción injerto contra Huésped
El injerto contra huésped es una rara complicación posterior a una
transfusión en pacientes severamente inmuno-suprimidos como aquellos
que han sido tratados intensivamente contra una enfermedad inmuno-
mediada, o han sido inmuno-suprimidos con quimioterapia
Signos: Fiebre, urticaria, hepatitis, diarrea, supresión de médula ósea
(Madriz, 2014)
Púrpura post-transfusión
La púrpura post-transfusión es rara y es secundaria al desarrollo de
anticuerpos antiplaquetas. La púrpura post-transfusión ocurre casi
exclusivamente en perras multíparas
Signos: Petequias, púrpura, equimosis, seguida de una caída en el
conteo de plaquetas una semana después de la transfusión. Los
anticuerpos destruyen tanto a las plaquetas transfundidas como a las
propias (Madriz, 2014)
DISCUSIÓN
• Vallejo (2018) realizó una investigación para determinar si la
xenotrasfusion de sangre canina a pacientes felinos es viable. Se
realizaron pruebas de compatibilidad mayor y menor entre sangre de
10 caninos donadores y 20 felinos receptores, dando un total de 200
muestras. Ninguna prueba reaccionó positivamente a hemólisis pero
hubo un alto nivel de aglutinación: 71% en la prueba mayor y 93% en
la prueba menor. Sólo un 3 % de las muestras fueron completamente
compatibles.
• Con los resultados obtenidos en la investigación de Vallejo (2018) se
puede decir que las trasfusiones heterólogas de caninos a felinos no
son muy viables por su bajo nivel de compatibilidad completa. Se
podría intentar realizar estas trasfusiones como tratamiento sólo en
casos de emergencia, en los que no se disponga de sangre felina y
realizando siempre pruebas de compatibilidad previas, teniendo en
cuenta que las probabilidades de encontrar un donador canino 100 %
compatible son mínimas.
• Cayambe (2018) también experimentó con la transfusión heteróloga.
En esta investigación se experimentó con un bovino, que fue el
donador de sangre, y los receptores fueron canes con un hematocrito
inferior al 22 %. Los resultados que se presentaron en esta
investigación demuestran el uso de la sangre de bovino como una
alternativa de transfusión, donde cada paciente canino presentó
únicamente hematuria los primeros 4 días post transfusión, con una
buena recuperación detallando que la sangre de bovino es apta para
subir el hematocrito a caninos que ingresan con un cuadro de anemia
como emergencia.
CONCLUSIONES
• Las trasfusiones sanguíneas son cada vez más aplicadas en la práctica
clínica veterinaria debido a sus significativos beneficios. Por ellos es
de vital importancia conocer y dominar las técnicas de transfusión en
las diferentes especies animales para poder realizar de una manera
correcta este procedimiento, ya que como cualquier otra intervención
médica, las trasfusiones conllevan sus riesgos y efectos adversos que
podrían llegar a ser fatales.
• En algunos casos no es posible encontrar donadores con facilidad o a
tiempo. En otras, el temperamento de los animales, como en el caso de
los gatos, dificulta este proceso. Por estos motivos ha habido
investigaciones en las que se ha optado por experimentar con
trasfusiones heterólogas, es decir, entre especies. Algunas de estas
investigaciones han obtenido resultados viables, por lo que como
médicos veterinarios, es necesario que indaguemos en más alternativas
de donantes para realizar hemoterapia
BIBLIOGRAFÍA
• Barillas, O. (2015). Determinación De Compatibilidad Sanguínea Por Medio De Pruebas Cruzadas
En Perros De La Ciudad De Guatemala Que Hayan Recibido Una Transfusión. (Tesis De Grado).
Universidad De San Carlos De Guatemala.
http://www.repositorio.usac.edu.gt/3144/1/Tesis%20Med%20Vet%20Oscar%20Barillas.pdf
• Calad, M. (2019). Práctica en la clínica de pequeñas especies con un enfoque en la Medicina Interna.
(Tesis de grado). Corporación Universitaria Lasallista. Antioquia, Colombia
http://repository.lasallista.edu.co/dspace/bitstream/10567/2442/1/PRACTICA_CLINICA_PEQUENA
S_ESPECIES.pdf
• Cayambe, K. (2018). Evaluación de la Transfusión Sanguínea de Bovinos a Caninos en el Tratamiento
de Anemia en la Universidad Técnica De Machala. (Tesis de grado). Universidad Técnica de Machala.
Machala, Ecuador.
http://repositorio.utmachala.edu.ec/bitstream/48000/13267/1/DE00013_TRABAJODETITULACION.
pdf?fbclid=IwAR0spz1myU5B_3TbHJce4tbr6oYawjqEd8o_kjuwSpGUIXaabxCZDUESlzY
• Fragío, C.; Daza, M. y García, E. (2015). Transfusiones sanguíneas en perros y gatos. Clin. Vet. Peq.
Anim, 29 (4): 229-238 https://ddd.uab.cat/pub/clivetpeqani/11307064v29n4/11307064v29n4p229.pdf
• Madriz, E. (2014). Manual de Procedimientos para Transfusiones Sanguíneas en Caninos.
Universidad Nacional agraria. Managua, Nicaragua.
https://cenida.una.edu.ni/Tesis/tnl70m183.pdf?fbclid=IwAR2APcldsSWJ3z_UfxczOelVDKm
123yTALG3VLPTa6YOL0fP7h7V6HL1d68
• Mazo. R (2019). Cuándo y cómo realizar una transfusión de sangre a un bovino. Contexto
Ganadero. https://www.contextoganadero.com/reportaje/cuando-y-como-realizar-una-
transfusion-de-sangre-un-bovino
• Peña. L. (2015). Reporte de caso: síndrome de disfunción orgánica múltiple (SDOM) por
hipovolemia en una yegua de la ‘Escuela Militar de Cadetes ’. Universidad de la Salle.
https://ciencia.lasalle.edu.co/cgi/viewcontent.cgi?article=1055&context=medicina_veterinaria
• Vallejo, J. (2018). Evaluación de la seguridad de la xenotransfusión de sangre de caninos en
gatos de Lima, mediante la prueba de compatibilidad. (Tesis de grado).Universidad Peruana
Cayetano Heredia.
http://repositorio.upch.edu.pe/bitstream/handle/upch/1406/Evaluacion_VallejoMontalvan_Jorg
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  • 1. Universidad Técnica De Ambato Facultad De Ciencias Agropecuarias Carrera De Medicina Veterinaria Y Zootecnia Patología Médica TÉCNICAS DE TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA Y PRUEBAS CRUZADAS Estudiante: Carolina Zúñiga Docente: Dr. Marco Rosero Semestre: 7mo “B” Mayo – Septiembre 2020
  • 2. INTRODUCCIÓN En la práctica clínica veterinaria son muchas las ocasiones en las que resulta necesario realizar transfusión sanguínea. Sus importantes beneficios, han generado una considerable demanda de transfusiones de sangre y sus derivados. Nuestra responsabilidad es realizar este procedimiento correctamente, debido a las complicaciones presentes durante y después de someter al paciente a este tipo de terapia (Madriz, 2014).
  • 3. ELECCIÓN DEL DONANTE Adulto. Vacunación y desparasitación vigentes Peso mínimo de perros >25 kg . Hcto mínimo 40% Que no haya recibido transfusiones Libre: Ehrlichiosis, Leishmaniosis, Filariasis, Babesiosis (Cáldad, 2019) PERRO
  • 4. ELECCIÓN DEL DONANTE Peso >4 kg Adulto. Vacunación y desparasitación vigentes Libres de: FeLV, FIV, PIF, Toxoplasmosis, Filariasis. También Borreliosis, Rickettsiosis, Brucelosis. Que no hayan recibido transfusiones Hcto mínimo 30-35% GATO (Cáldad, 2019)
  • 5. ELECCIÓN DEL DONANTE Adulto, ojalá no menor de 2 años, ni mayor de 4 Hcto entre 30 y 33% Peso igual o mayor a 450 Kg condición corporal de 3.5 en una escala de 1 a 5 Sano y que no haya tenido ninguna enfermedad que no esté en último mes de gestación, y que no esté lactante (Mazo, 2019) BOVINOS
  • 6. ELECCIÓN DEL DONANTE Joven, saludable, castrado peso de aproximadamente 500kg al día en vacunas y vermifugaciones De preferencia de la misma raza Que no haya tenido previas trasfusiones De preferencia Aa y Qq negativos (Peña, 2015) EQUINOS
  • 7. PRUEBAS CRUZADAS Detectan la existencia de incompatibilidad entre el donante y el receptor (Barillas, 2015). Una prueba cruzada compatible no debe dar evidencias de hemólisis o aglutinación (Madriz, 2014). Prueba Cruzada Mayor: Se enfrentan glóbulos rojos del donante con suero del receptor (Madriz, 2014). Prueba Cruzada Menor: Suero del donante con glóbulos rojos del receptor (Madriz, 2014). PRUEBAS CRUZADAS
  • 8. PRUEBAS CRUZADAS La prueba mayor determina si el receptor tiene anticuerpos para las células del donante. La prueba menor determina si el donante tiene anticuerpos para las células del receptor. Se debe incluir una reacción control, en la que se mezclan eritrocitos y plasma del receptor. (Barillas, 2015).
  • 9. PRUEBAS CRUZADAS Se añade un anticoagulante a las muestras de sangre del donante y el receptor los eritrocitos del donante se lavan tres veces con solución salina al 0.9% se prepara una suspensión en suero salino al 4% con las células lavadas. Las muestras se incuban a 37 °C durante 15 minutos Se centrifugan a 1,000 g durante 15 segundos. El tubo control contiene suspensión de eritrocitos del receptor al 4% y plasma del receptor. (Barillas, 2015).
  • 10. PRUEBAS CRUZADAS Para realización de estas pruebas hay que lavar los eritrocitos de Donante y Receptor varias veces. Pero en casos de urgencia, se pueden realizar unas pruebas de compatibilidad simplificadas, sin lavar los GR, aunque son menos fiables. Se centrifuga la sangre del Donante y del Receptor, y se realizan las tres reacciones (mayor, menor y control) sobre tres portaobjetos. Se mezcla en cada uno de ellos 3 gotas de plasma y 1 gota de GR, dejando incubar 2-5 minutos, y mirando al microscopio si existe aglutinación. (Frazío, etal 2015).
  • 11. INTERPRETACIÓN DE LAS PRUEBAS CRUZADAS • Una prueba positiva o incompatible puede presentar hemólisis, hemaglutinación o ambas. • Cada muestra se agita suavemente hasta que las células del fondo del tubo vuelven a estar en suspensión. • Se compara el grado de agregación de la muestra con la del control. • La prueba es negativa o compatible cuando los eritrocitos se suspenden fácilmente (Barillas, 2015).
  • 12. INTERPRETACIÓN DE LAS PRUEBAS CRUZADAS Aglutinación: cuando se observan conglomerados de glóbulos rojos suspendidos en el tubo y sin diluirse en la solución salina (Vallejo, 2018). Hemólisis: cuando se observa turbidez en el líquido en suspensión antes de realizar el agitado final de la muestra (Vallejo, 2018).
  • 13. La hemaglutinación se puede clasificar de la siguiente manera: 4+ Un agregado sólido de células 3+ Varios agregados grandes 2+ Grandes aglutinamientos y agrupamientos más pequeños 1+ Muchos aglutinamientos pequeños y células libres en el fondo (Barillas, 2015).
  • 14. PRUEBAS CRUZADAS EN BOVINOS Lo ideal es realizar pruebas de laboratorio. Si no es posible, se puede realizar estas pruebas en el campo. Se toman muestras del donante y del receptor en un tubo con anticoagulante y un tubo sin anticoagulante P. Mayor: una gota de glóbulos rojos del donante con suero del receptor y colocarlas sobre una placa de vidrio. Por cada gota de sangre al menos dos o tres gotas de suero. La prueba menor consiste en: una gota de glóbulos rojos del receptor con suero del donante. La auto prueba consiste en tomar suero y glóbulos rojos del receptor. (Mazo, 2019)
  • 15. Las muestran se tienen que dejar a temperatura ambiente al menos 15 minutos, y luego se debe observar que pasa con la sangre. En bovinos se pueden dar dos tipos de reacciones inmunológicas: la hemólisis y la aglutinación. En la hemólisis hay una destrucción de los glóbulos rojos. El color de la sangre se torna en un rojo muy brillante, por la liberación de la hemoglobina que se da en ese momento. Cuando se genera aglutinación, en la placa se observa que los glóbulos rojos se unen, se separan del suero y forman un coágulo a parte y el suero queda a un lado. (Mazo, 2019)
  • 16. EFECTOS ADVERSOS / INCOMPATIBILIDADES Reacciones Hemolíticas: Provocadas por sangre incompatible Signos: temblores, fiebre, apnea, vómitos, taquicardia con hipotensión, hemoglobinemia, hemoglobinuria, fallo renal agudo, CID (Madriz, 2.014) EFECTOS INMUNOLOGICOS INMEDIATOS:
  • 17. Reacciones febriles: Incremento de un grado (Celsius) o más debe considerarse como una reacción febril debido a los anticuerpos de leucocitos, plaquetas o proteínas plasmáticas Signos: Fiebre, escalofríos, temblores (Madriz, 2014).
  • 18. Reacciones alérgicas: El paciente reacciona a los alérgenos del donador que están en los eritrocitos, plaquetas, granulocitos, proteínas plasmáticas, frecuentemente por reacciones de complemento e inmunoglobulinas Signos: Urticaria, disnea, edema laríngeo (Madriz, 2014).
  • 19. EFECTOS INMUNOLÓGICOS TARDÍOS: Reacción hemolítica tardía Destrucción de eritrocitos y fiebre de 10 a 15 días después de la transfusión. Esta a menudo es una respuesta inmunológica de memoria (Madriz, 2014).
  • 20. Reacción injerto contra Huésped El injerto contra huésped es una rara complicación posterior a una transfusión en pacientes severamente inmuno-suprimidos como aquellos que han sido tratados intensivamente contra una enfermedad inmuno- mediada, o han sido inmuno-suprimidos con quimioterapia Signos: Fiebre, urticaria, hepatitis, diarrea, supresión de médula ósea (Madriz, 2014)
  • 21. Púrpura post-transfusión La púrpura post-transfusión es rara y es secundaria al desarrollo de anticuerpos antiplaquetas. La púrpura post-transfusión ocurre casi exclusivamente en perras multíparas Signos: Petequias, púrpura, equimosis, seguida de una caída en el conteo de plaquetas una semana después de la transfusión. Los anticuerpos destruyen tanto a las plaquetas transfundidas como a las propias (Madriz, 2014)
  • 22. DISCUSIÓN • Vallejo (2018) realizó una investigación para determinar si la xenotrasfusion de sangre canina a pacientes felinos es viable. Se realizaron pruebas de compatibilidad mayor y menor entre sangre de 10 caninos donadores y 20 felinos receptores, dando un total de 200 muestras. Ninguna prueba reaccionó positivamente a hemólisis pero hubo un alto nivel de aglutinación: 71% en la prueba mayor y 93% en la prueba menor. Sólo un 3 % de las muestras fueron completamente compatibles.
  • 23. • Con los resultados obtenidos en la investigación de Vallejo (2018) se puede decir que las trasfusiones heterólogas de caninos a felinos no son muy viables por su bajo nivel de compatibilidad completa. Se podría intentar realizar estas trasfusiones como tratamiento sólo en casos de emergencia, en los que no se disponga de sangre felina y realizando siempre pruebas de compatibilidad previas, teniendo en cuenta que las probabilidades de encontrar un donador canino 100 % compatible son mínimas.
  • 24. • Cayambe (2018) también experimentó con la transfusión heteróloga. En esta investigación se experimentó con un bovino, que fue el donador de sangre, y los receptores fueron canes con un hematocrito inferior al 22 %. Los resultados que se presentaron en esta investigación demuestran el uso de la sangre de bovino como una alternativa de transfusión, donde cada paciente canino presentó únicamente hematuria los primeros 4 días post transfusión, con una buena recuperación detallando que la sangre de bovino es apta para subir el hematocrito a caninos que ingresan con un cuadro de anemia como emergencia.
  • 25. CONCLUSIONES • Las trasfusiones sanguíneas son cada vez más aplicadas en la práctica clínica veterinaria debido a sus significativos beneficios. Por ellos es de vital importancia conocer y dominar las técnicas de transfusión en las diferentes especies animales para poder realizar de una manera correcta este procedimiento, ya que como cualquier otra intervención médica, las trasfusiones conllevan sus riesgos y efectos adversos que podrían llegar a ser fatales.
  • 26. • En algunos casos no es posible encontrar donadores con facilidad o a tiempo. En otras, el temperamento de los animales, como en el caso de los gatos, dificulta este proceso. Por estos motivos ha habido investigaciones en las que se ha optado por experimentar con trasfusiones heterólogas, es decir, entre especies. Algunas de estas investigaciones han obtenido resultados viables, por lo que como médicos veterinarios, es necesario que indaguemos en más alternativas de donantes para realizar hemoterapia
  • 27. BIBLIOGRAFÍA • Barillas, O. (2015). Determinación De Compatibilidad Sanguínea Por Medio De Pruebas Cruzadas En Perros De La Ciudad De Guatemala Que Hayan Recibido Una Transfusión. (Tesis De Grado). Universidad De San Carlos De Guatemala. http://www.repositorio.usac.edu.gt/3144/1/Tesis%20Med%20Vet%20Oscar%20Barillas.pdf • Calad, M. (2019). Práctica en la clínica de pequeñas especies con un enfoque en la Medicina Interna. (Tesis de grado). Corporación Universitaria Lasallista. Antioquia, Colombia http://repository.lasallista.edu.co/dspace/bitstream/10567/2442/1/PRACTICA_CLINICA_PEQUENA S_ESPECIES.pdf • Cayambe, K. (2018). Evaluación de la Transfusión Sanguínea de Bovinos a Caninos en el Tratamiento de Anemia en la Universidad Técnica De Machala. (Tesis de grado). Universidad Técnica de Machala. Machala, Ecuador. http://repositorio.utmachala.edu.ec/bitstream/48000/13267/1/DE00013_TRABAJODETITULACION. pdf?fbclid=IwAR0spz1myU5B_3TbHJce4tbr6oYawjqEd8o_kjuwSpGUIXaabxCZDUESlzY • Fragío, C.; Daza, M. y García, E. (2015). Transfusiones sanguíneas en perros y gatos. Clin. Vet. Peq. Anim, 29 (4): 229-238 https://ddd.uab.cat/pub/clivetpeqani/11307064v29n4/11307064v29n4p229.pdf
  • 28. • Madriz, E. (2014). Manual de Procedimientos para Transfusiones Sanguíneas en Caninos. Universidad Nacional agraria. Managua, Nicaragua. https://cenida.una.edu.ni/Tesis/tnl70m183.pdf?fbclid=IwAR2APcldsSWJ3z_UfxczOelVDKm 123yTALG3VLPTa6YOL0fP7h7V6HL1d68 • Mazo. R (2019). Cuándo y cómo realizar una transfusión de sangre a un bovino. Contexto Ganadero. https://www.contextoganadero.com/reportaje/cuando-y-como-realizar-una- transfusion-de-sangre-un-bovino • Peña. L. (2015). Reporte de caso: síndrome de disfunción orgánica múltiple (SDOM) por hipovolemia en una yegua de la ‘Escuela Militar de Cadetes ’. Universidad de la Salle. https://ciencia.lasalle.edu.co/cgi/viewcontent.cgi?article=1055&context=medicina_veterinaria • Vallejo, J. (2018). Evaluación de la seguridad de la xenotransfusión de sangre de caninos en gatos de Lima, mediante la prueba de compatibilidad. (Tesis de grado).Universidad Peruana Cayetano Heredia. http://repositorio.upch.edu.pe/bitstream/handle/upch/1406/Evaluacion_VallejoMontalvan_Jorg e.pdf?sequence=1&isAllowed=y