Hemoderivados en especies animales

1. TRANSFUSIÓN SANGUÍNEA
VETERINARIA

2. *
1492
• Primera transfusión al Papa Inocencio VIII que poseía insuficiencia renal
crónica.
• Los donantes eran 3 jóvenes que fallecieron y al igual el receptor
1665
1667
• Richard Lower practicó una transfusión entre dos caninos el donante murió
desangrado mientras el receptor sobrevivió.
• Practicó la transfusión de sangre de un cordero a un humano fue exitosa pero se
realizó otras transfusiones que fue un desastre.
1901
Karl Landsteiner
• El impulso para la aceptación de transfusiones es el descubrimiento de los tipos
sanguíneos en humanos.
• Describe las reacciones adversas por causa de incompatibilidad.
(Murillo, G.; 2019) y
(Valenzuela, A.; 2015)

3. GRUPOS
SANGUÍNEOS
EN:
DEA 1.1 y DEA 1.2 son
donantes universales es decir
importante para la transfusión.
Receptor universal es el tipo AB.
Poseen aloanticuerpos naturales.
El tipo B y J toman una reacción
adversa en la transfusión.
Reacciones de incompatibilidad
por los tipos Aa y Qa.
(Miguez, M. ; 2017), (Kirk & Bistner; 2015), (Perlado,M. & Viñals,L.; 2020)
y (Universidad de Chile, 2015)

4. Sangre fresca completa
Sangre completa almacenada
Concentrado de glóbulos rojos
Plasma fresco o congelado
(Madriz, E.; 2016)

5. Síndrome de anemia
Hemoparásitos
Anemia severa (menor al 20% HCTO)
Hipovolemia (pérdidas agudas de sangre)
Problemas de médula ósea
Hemólisis idiopática.
(Mesa, I., Galán, A.; 2015)

6. Reacciones adversas
de mediación
inmunitaria.
No inmunitarias.
(Fragío, C., García, E.; 2019)

7. *
Principalmente es necesario tipificar la
sangre por medio de pruebas cruzadas
(compatibilidad sanguínea)
Posteriormente saber si existe
compatibilidad se realiza la extracción
y manejo de la sangre.
Finalmente la administración de la
transfusión y saber las reacciones
adversas.
(Pulido, I., Sunyer, I.; 2017)

8. Verifica si es
incompatible
Determina la
presencia de
anticuerpos en el
plasma (donante/
receptor)
Tipos de P.C.
• Mayor: Determina si el
receptor posee anticuerpos
frente a los antígenos
eritrocitarios del donante.
• Menor: Determina si el
plasma del donante
contiene anticuerpos
frente a los antígenos de
los eritrocitos del receptor.
Reacción:
• Cruzada mayor: Si
produce hemólisis y
aglutinación no se
transfunde.
• Cruzada menor: Si
produce hemólisis y
aglutinación se puede
transfundir pero bajo
control médico al
paciente.
(López, A.; 2018)

9. Adultos jóvenes y carnet de vacunación completo
No hayan recibido transfusiones
Peso mínimo: caninos ( mayor 25 Kg) y felinos ( mayor o igual a 4Kg).
Libres de enfermedades transmisibles por vía hematógena
Hemograma completo y perfil renal, hepático y glucosa.
En caso de los felinos es necesaria la sedación
Bolsas comerciales
simples
Bolsas dobles (bolsa
principal con
anticoagulante y sin
anticoagulante)
Bolsas triples (bolsa
principal y dos para
separación de
criopreservado o
concentrado de plaquetas)
( Saavedra, Z.; 2017)

10. CANINOS
Extraer sangre de la vena yugular (decúbito
lateral)
Canular con la aguja acoplada a la bolsa
(bolsa comercial humana)
Bolsa debe estar baja y en agitación continua
(aprox. 500g)
FELINOS
Extracción de la vena yugular con una
palomilla acoplada a jeringas de 20 mL que se
han llenado con CPDA (1mL/9mL de sangre)
Las jeringas se introduce en la bolsa
previamente vaciada del resto de
anticoagulante, de la cual se transfundirá.
La sangre no debe estar almacenada +24 h.
CPDA: citrato- fosfato- dextrosa- adenina
(Miguez, M. ; 2017) y (Kirk
y Bistner; 2015)

11. Sangre fresca completa
Obtenida directo del donador
Sin seleccionar ningún componente
Se puede eliminar leucocitos por
filtración
Posee todos los componentes
sanguíneos
Concentrado de G.R.
Obtiene de centrifugar sangre completa
a 4-5 °C
Aporta glóbulos rojos al paciente
Aumenta el transporte de O2 sin causar
hipervolemia
(Madriz, E.; 2016)

12. Sangre completa
almacenada
Aporta hematíes y componentes del
plasma.
Su duración depende del anticoagulante
(1- 35 días)
Se refrigera a una temp. de 4- 8 °C
Plasma fresco
Centrifugar sangre entera a 3500 r.p.m
durante 20 min.
Se toma la fracción de plasma
Conservar a 18-25°C
El plasma es fresco sin exceder las 6
horas desde su extracción.
(Madriz, E.; 2016)

13. Plasma fresco congelado
Congelado -20°C
Antes de 8 horas posteriores a su extracción
Los factores de la coagulación son viables 1 año
y la albúmina 2 años conservados a -20°C.
Concentrado de plaquetas
Obtiene de otra centrifugación
VM de 3- 5 días.
Conserva con aigitación constante a 22°C.
Causa inmunización en el paciente.
Crioprecipitado
Obtiene de la descongelación del plasma fresco
congelado (4-6°C)
Al descongelar forma un precipitado blanco en
el plasma.
(Madriz, E.; 2016)

14. Para anemias no hipovolémicas
Antes de la transfusión de CGR, se añade 50- 70 mL de NaCl 0.9% (reduce la
viscosidad)
Transfundir 2.2 mL/Kg de SC, causa incremento del 1% Hcto.
Transfundir 1 mL/Kg de CGR, produce un incremento del Hcto. del 1%
Realizar el Hcto. antes y 1- 2 h. posterior a la transfusión (Hcto. no se estabiliza
hasta 24 h. post-transfusión)
El 70% de los GR transfundidos deben estar intactos tras 24 h. (conviente hacer
otro Hcto. Tras 24- 48 h. pos-transfusión)
Los eritrocitos transfundidos poseen una VM de unos 21- 48 días.
*Sangre Completa o
Concentrado de GR:
( Saavedra, Z.; 2017)

15. Uso en coagulopatías
Hasta que se normalicen
los tiempos de coagulación
Dosis de 6- 10 mL/Kg
( Saavedra, Z.; 2017)

16. DOSIS
1mL/ 10Kg
Paciente ha recibido transfusiones SC
Probable que desarrolle Ac. contra antígenos
plaquetarios y destruye las plaquetas transfundidas.
DOSIS
1mL/ 10Kg
Viabilidad
4-6 horas tras su descongelación.
( Saavedra, Z.; 2017)

17. Anemias
normovolémicas
Usa una velocidad lenta (3 ml/ Kg/ h) durante los 30 min. en caso de no existe reacción adversa; incrementar a
5- 10 ml/Kg/h el resto de la transfus.
El vol. vascular en la especie felina es menor que en la canina, por lo tanto la velocidad se limita en gatos.
La transfusión se completa en 4 h. (preveer desarrollo de microorganismos)
Shock
hipovolémico
Se puede llegar a 20ml/Kg/h
Sobrecarga de
volumen
(cardiópatas)
No superar los 2-4 ml/Kg/h
El plasma se infunde de 6-10 ml/Kg/h cada 4-12 h.
( Saavedra, Z.;
2017)

18. COMPONENTE INDICACIONES
Sangre completa fresca Anemia, hipovolemia,
trombocitopenia, coagulopatía
Sangre completa almacenada Anemia, hipovolemia
Concentrado de hematíes Anemia
Plasma fresco congelado Hipoproteinemia, coagulopatía
Plasma fresco Hipoproteinemia, coagulopatía
Concentrado de plaquetas Trombocitopenia
Crioprecipitado Coagulopatía
(Pulido, I., Sunyer, I.; 2017)

19. REACCIONES
ADVERSAS
REACCIONES
INMUNOMEDIADAS
REACCIONES
INMUNOMEDIADAS
AGUDAS
REACCIONES
INMUNOMEDIADAS
RETARDADAS
REACCIONES NO
INMUNOMEDIADAS
(Madriz, E.; 2016)

20. Agudas
Hipersensiblidad tipo I: Shock anafiláctico (admin. epinefrina)
Hipersensibilidad tipo II: Hemólisis intravascular
Signos (1-2 h)
Temblor, taquicardia, taquipnea, hipertermia, vómito y hemoglobinuria
Tratamiento
Suspende la transfusión, fluidoterapia, y antihistamínicos.
(Madriz, E.; 2016)

21. RETARDADAS
Produce 3- 15 días
Signos
Descenso de Hcto., fiebre y
anorexia
Tratamiento
Corticoesteroides y
antibióticos.
(Madriz, E.; 2016)

22. Reacciones no- inmunomediadas
Sobrecarga de
volumen presenta
aumento de la
presión venosa
central, taquipnea-
disnea, tos y
congestión de
mucosas.
Mayor riesgo en
cardiópatas o
anemias
normovolémicas
crónicas y gatos.
Tratamiento
Reducir la
velocidad o
suspender la
transfusión
Diuréticos
Oxigenoterapia
(Madriz, E.; 2016)

23. *
Administración
de la sangre
En felinos y caninos se usan filtros sanguíneos que previenen los coágulos.
El almacenamiento de productos que contengan plaquetas y factores de
coagulación debe realizarse con materiales libres de látex.
En cachorros se usa la vía intraósea (buena permeabilidad de hematíes a la
circulación) y se utiliza la vía intravenosa de forma común; opcionalmente se
puede mezclar con NaCl 0.9% e intraperitoneal (plasma)
La administración conjunta de fluidos que estén contenidos de Ca está
contraindicada porquee precipita la coagulación del hemocomponente.
El valor a transfundir de sangre se calcula así:
(Mesa, I., Galán, A.;
2015)

24. *
Hemocomponente calentado en un baño a 37°C.
Mayor temperatura produce lisis celular
Productos plaquetarios conservar a 22-24°C (agitación)
• Pre-transfusión
0.25-0.5 ml/Kg/min. (primeros 30 min.) para determinar si hay reacciones
adversas.
Considerar al paciente su peso y enfermedades concomitantes.
• Administración inicial
Temperatura, FC, FR, mucosas y TLLC.
Antes de iniciar la transfusión a los 15, 30 y 60 minutos.
• Registrar del paciente
(Mesa, I., Galán, A.; 2015)

25. *
En el Ecuador, existe
carencia de Bancos
de sangre en especies
animales.
No hay comercialización de
pruebas para determinar la
incompatibilidad.
Existe riesgos al extraer la sangre,
limitación de donantes, presupuesto para
el costo a cada unidad de sangre y carencia
en las bolsas para conservar los
hemocomponentes.

26. *
La transfusión salva vidas y es un
recurso terapéutico
Incrementar el
conocimiento de la
transfusión en los
médicos
Inversión y
creación de
Bancos de sangre
en animales

27. *
* Fragío, C., García, E. (2019) Transfusiones sanguíneas en perro s y gatos. Rev. Cli. Vet. Peq. Anim.
Madrid: Vol. 29 (4).
* Kirk & Bistner; (2015) Urgencias en veterinaria. Madrid: Elsevier
* López, A. (2018) Terapia transfusional. Revista Médica.. Madrid: Vol. 15 (3).
* Madriz, E. (2016) Manual de Procedimientos para Transfusiones Sanguíneas en Caninos. Universidad
Nacional Agraria. Managua.
* Mesa, I., Galán, A. (2015) Transfusión sanguínea en el perro. Universidad de Córdoba. Vol. 12 (4).
* Miguez, M. ; (2017) Transfusión sanguínea en el paciente quirúrgico canino y felino. Universidad de
Buenos Aires.
* Murillo, G. (2019) Breve historia de la transfusión sanguínea. Revista Hematol. México: Vol. 20 (1)
pp. 1-3
* Perlado,M. & Viñals,L.; (2020) Los grupos sanguíneos en otras especies. Axón Comunicación.
* Pulido, I., Sunyer, I.; (2017) Transfusiones de sangre en la clínica de pequeños animales. Revista
AVEPA. Barcelona: Vol. 23 (3)
* Saavedra, Z. (2017) Nueva alternativa en transfusiones sanguíneas en caninos con sangre heteróloga.
Revista Electrónica de Veterinaria. Vol. 18 (10), pp. 1-7.
* Universidad de Chile, (2015) Marcadores genéticos. Medicina Veterinaria. Volumen 9 (2).
* Valenzuela, A. (2015) Invento de la transfusión sanguínea. Revista Redalyc. Vol. 34 (4)pp. 34-36