El crecimiento normal de las plantas es ocasionado en forma armónica por sustancias que funcionan como hormonas. Los principales grupos de ellas son las Auxinas, Giberilinas, Citoquininas, Etileno e inhibidores de crecimiento. Estos compuestos actúan en bajas proporciones. Durante el desarrollo fenológico de las plantas, estas varían de acuerdo con el estado de desarrollo, mediante un delicado balance hormona-inhibidor. Una forma de ataque del patógeno consiste en alterar ese equilibrio, ya sea mediante la obtención de reguladores de crecimiento, para aumentar su concentración y así crear los inhibidores de esas hormonas (Aguilar-Piedras, J.J. 2008). Las Giberilinas (GAs), como reguladores de crecimiento están estrechamente asociadas a la promoción de la germinación de las semillas, crecimiento del tallo, inducir la brotación de yemas y el desarrollo de los frutos. Existen varios tipos de Giberilinas, siendo las más comunes: Giberelina A1 (GA1), ácido Giberelíco (GA3), Giberelina A4 (GA4), Giberelina A7 (GA7) y Giberelina A9 (GA9). Químicamente son un grupo de diterpenoides que se definen más por su estructura que por su actividad biológica, contrario a lo que ocurre con las auxinas y las citoquininas (Yamaguchi y Kamiya 2000).

1. EVALUACIÓN DE LA PRODUCCIÓN DE ÁCIDO GIBERELÍCO A PARTIR DE
BACTERIAS NATIVAS DEL GENERO Azospirillum sp AISALADA DE SUELOS
DEL DEPARTAMENTO CORDOBA
CARMEN LUCÍA LUNA RAMOS
MIGUEL EDUARDO MONTOYA RAMOS
DIRECTORA:
Ph.D CECILIA LARA MANTILLA
UNIVERSIDAD DE CÓRDOBA
FACULTAD DE CIENCIAS BÁSICAS
DEPARTAMENTO DE QUÍMICA
PROGRAMA DE QUÍMICA
MONTERÍA-2014

2. INTRODUCCIÓN
El crecimiento normal de las plantas es ocasionado en forma armónica por
sustancias que funcionan como hormonas. Los principales grupos de ellas son las
Auxinas, Giberilinas, Citoquininas, Etileno e inhibidores de crecimiento. Estos
compuestos actúan en bajas proporciones. Durante el desarrollo fenológico de las
plantas, estas varían de acuerdo con el estado de desarrollo, mediante un
delicado balance hormona-inhibidor. Una forma de ataque del patógeno consiste
en alterar ese equilibrio, ya sea mediante la obtención de reguladores de
crecimiento, para aumentar su concentración y así crear los inhibidores de esas
hormonas (Aguilar-Piedras, J.J. 2008).
Las Giberilinas (GAs), como reguladores de crecimiento están estrechamente
asociadas a la promoción de la germinación de las semillas, crecimiento del tallo,
inducir la brotación de yemas y el desarrollo de los frutos. Existen varios tipos de
Giberilinas, siendo las más comunes: Giberelina A1 (GA1), ácido Giberelíco (GA3),
Giberelina A4 (GA4), Giberelina A7 (GA7) y Giberelina A9 (GA9). Químicamente son
un grupo de diterpenoides que se definen más por su estructura que por su
actividad biológica, contrario a lo que ocurre con las auxinas y las citoquininas
(Yamaguchi y Kamiya 2000).
Únicamente las Giberilinas biológicamente activas pueden cumplir con estas
funciones, las Giberilinas no bioactivas existen en el tejido vegetal como
precursores de las formas bioactivas o como metabolitos desactivados. Se ha
dilucidado que existe una necesidad estructural, como requerimiento para la
afinidad con el recientemente descubierto receptor de Giberilinas en arroz (GID1),
y sus homólogos en otras especies (Nakajima et ál. 2006). Parece ser que la

3. regulación de la biosíntesis de Giberilinas y de sus receptores, y vías de
señalización dependen de la especie de estudio (Yamaguchi 2008).
Por tal razón, se ha recurrido a la biotecnología que es una herramienta
que permite manipular microorganismos con potencial biofertilizante, debido a
que una de sus principales funciones es suministrar nutrientes como el
nitrógeno, que se hace disponible a las plantas mediante la acción de
bacterias que habitan en el suelo naturalmente con la capacidad de fijar el
elemento presente en la atmósfera y fijarlo en las raíces de las plantas.
Teniendo en cuenta lo anterior es importante el estudio de bacterias nativas
productoras de Giberilinas que a futuro puedan ser utilizadas en la agricultura.

4. ANTECEDENTES
En algunos estudios de campo realizados con cereales se ha llegado a observar
una promoción del crecimiento vegetativo (Kapulnik et al, 1983). También se ha
reportado un efecto a simple vista sobre el crecimiento de varios vegetales como
tomate (Lycopersicon esculentum Mill.), berenjena (Solanum melongena L.),
pimiento (Capsicum annuum) y algodón (Gossypium barbadense) (Bashan et al.
1989)
Bashan & Levanony (1990), Summer (1990), Fages (1994), Okon y Labandera-
González (1994), citados por Dobbelaere et al. (2001), concluyen que la
inoculación con Azospirillum sp. Incrementó significativamente de un 5-30 % en el
rendimiento de materia seca foliar, granos y proteína foliar, así como en el
desarrollo radical, en alrededor de 60 -70 % de los experimentos en campo.
Richards eta, (2001) dice que las Giberilinas son hormonas que regulan el
crecimiento y desarrollo de las plantas; a través de la promoción de la división y
elongación celular Matusa-göttgens y Hedden, (2009).
Weaver (1996) afirma que las Giberilinas son las únicas sustancias químicas
capaces de promover floración en plantas, que de otro modo permanecerían
vegetativas, al remplazar condiciones ambientales específicas que controlan la
formación de flores. Sin embargo, Salisbury y Ross (1994) mencionan que
también las Citoquininas han estimulado la formación de flores en algunas
variedades de crisantemo (Dedranthema sp.) con el empleo de una combinación
de Citoquininas (Benziladenina) y AG5.

5. Ngamau (2001) probó aplicaciones de BAP (Benzilaminopurina) y/o AG3 sobre
plantas de la variedad ´Green Goddess` de Z. aethiopica. Estas promovieron la
emergencia temprana e incrementaron el número de brotes visibles y el desarrollo
de estos. De Pascale et al. (2003) demostró que la Giberilinas adelantó floración
en aproximadamente 100 días respecto al testigo.
Luria y Weiss (2005) concluyeron que se incrementó el número de brotes y se
obtuvo hasta cinco veces más flores con tratamientos combinados de BA y AG3.
Reiser (1998) reportó que aplicaciones de AG3 en Z. aethiopica y Z. ´Green
Goddess` incrementaron el número de flores por planta de 1.3 a 3.4 y de 1.3 a 3.8,
respectivamente.
(Woodger et al. 2004; Balaguera-López et al. 2009a; Balaguera-López et al.
2009b) dice; que existen muchos estudios sobre la estimulación de la germinación
mediante el uso de giberelinas GA3 en semillas de tomate.

6. PLANTEAMIENTO DEL PROBLEMA
La giberelina es un tipo de regulador de crecimiento vegetal que afecta a una
amplia variedad de fenómenos de desarrollo en las plantas, incluidas la elongación
celular, la germinación de las semillas en muchas especies, y en cereales
movilizan reservas para el crecimiento inicial de la plántula, estimulan la división
celular y afecta tanto a las hojas como a los tallos ya que incrementa la
extensibilidad de la pared. Esta se está usando para incrementar el tamaño del
fruto en viñedos de uvas sin pepitas, haciendo que el racimo se elonge y
permitiendo que la uva este más ventilada reduciendo así las probabilidades de
infección por brotitis (Ueguchi-Tanaka et ál. 2007).
Cárdenas (2007), confirmó estos hallazgos al aislar a partir de suelos y pastos
del Valle del Cesar este tipo de microorganismo. Evaluó la inoculación de
esta bacteria en semillas de pasto Panicum máximum Jacq C.V; aislada de
suelos algodoneros del Cesar. Esta inoculación aumentó hasta 20 % en
proteína cruda y 45% en materia seca comparada con las plantas
fertilizadas con fuentes nutricionales químicas bajo condición de invernadero.
Actualmente los altos costos de los fertilizantes químicos, así como de los
problemas de contaminación que ocasionan, han generado otras formas de
producción, en donde se incentiven a la práctica de nuevas tecnologías. Estudios
de costos de producción señalan la reducción en la utilización de agroquímicos por
los agricultores en los últimos ocho años, debido a los altos costos que generan
estos insumos, para lograr el máximo rendimiento de los cultivos (Laria et al.,
2003).
Los fertilizantes químicos han sido benéficos para el sector agrícola; no obstante,
el abuso en su utilización genera residuos que producen salinización, problemas
en el drenaje, compactación del suelo y disminución de la actividad microbiana
comprometida en la nutrición vegetal. Cada año se incrementa la cantidad de
fertilizantes aplicados debido a la menor eficiencia de adsorción en el suelo y

7. absorción por la planta, aumentando los costos de producción. Asimismo, se
genera un problema ambiental debido a la producción de gases tóxicos que se
desprenden de los fertilizantes como los óxidos de nitrógeno que dañan la capa de
ozono (Lara et al, 2007).
Es por esto, que como una alternativa a los fertilizantes químicos está la
posibilidad de utilizar bacterias propias del suelo, que como parte de su
metabolismo incrementan la fertilidad y benefician a las plantas, pueden contribuir
con la disminución de fertilizantes de síntesis química, en la generación de nuevas
técnicas de producción agrícola, enfocada al uso eficiente de los recursos que
tiendan a una agricultura sostenible, limpia y de bajo impacto agrícola,
contribuyendo con el mejoramiento de las condiciones medioambientales,
económicas y sociales. Una alternativa viable que contribuye favorablemente con este
propósito es el uso de los biofertilizantes, los cuales recuperan la fertilidad y productividad
del suelo y permiten darle a las plantas los nutrimentos necesarios para su crecimiento
contribuyendo en este sentido a mejorar la calidad de los cultivos para su producción
agrícola. Desde el punto de vista de una agricultura sostenible, los fertilizantes biológicos
constituyen un medio económicamente viable y ecológicamente aceptable al reducir
costos a los productores con acceso limitado a fertilizantes de síntesis química (Dalla et
al, 2004).
En este trabajo buscamos mostrarles porque no es bueno utilizar agroquímicos o
fertilizantes químicos y si es de gran importancia usar productos de origen natural
como lo es la giberelina, ya que ayuda a minimizar los costos de producción y
maximizar mucho más las ganancias en los agricultores del departamento. Y de
esta manera ayudar a prevenir mucho más la contaminación que dejan estos
agroquímicos por el uso excesivo que se les da.

8. JUSTIFICACIÓN
Debido a la problemática mundial existente hoy en día por el uso indiscriminado de
productos fertilizantes de síntesis química, se han implementado con el paso de
los años soluciones amigables y sostenibles que permitan disminuir el efecto
adverso generado por dichas aplicaciones; de allí que nació el uso de productos
biofertilizantes basados en la potencialización de procesos naturales donde los
actores principales son los microorganismos promotores de crecimiento vegetal
(Aguilar-Piedras, 2008).
Las plantas para su desarrollo, no solo realizan procesos fotosintéticos o toman
sustancias minerales del suelo, también llevan a cabo en su interior una serie de
procesos fisiológicos que ayudan a dicho desarrollo. De la misma manera, las
plantas también se ven afectadas y de cierta forma reguladas por algunos de los
procesos que ocurren en el suelo, la mayoría de los cuales se llevan a cabo por
los microorganismos (Pedraza et al. 2008; Molina-Favero et al. 2008).
El desarrollo normal de una planta depende de la interacción de factores externos:
luz, nutrientes, agua y temperatura, e internos: hormonas. Una definición global
del termino hormona, es considerar bajo este nombre a cualquier producto
químico de naturaleza orgánica, que sirve de mensajero y que es producido en
una parte de la planta, tiene como “blanco” otra parte de ella (Conney & Nonhebel,
1991).
Dentro de las bacterias que producen se tiene el género Azospirillum; este se
caracteriza por ser un microorganismo promotor de crecimiento vegetal, que ha
sido ampliamente estudiado, a partir de sus capacidades para generar efectos
benéficos por su inoculación a distintas especies vegetales. Sin embargo aún falta
información a nivel genético y bioquímico, de la regulación y capacidad de cada
uno de sus componentes enzimáticos presentes en procesos como la producción
de Auxinas. (Carreño-López et al. 2000; Costacurta et al. 994; Ryu & Patten, 2008;
Sergeeva, et al. 2007; Pedraza et al. 2004; Contesto et al. 2010).

9. Azospirillum ha sido ampliamente estudiado como bacteria promotora de
crecimiento vegetal, ya que tiene la capacidad por un lado, de producir sustancias
como sideróforos, definidos como moléculas de bajo peso molecular que
presentan una alta afinidad por Fe generando un efecto quelante en éste,
igualmente tiene la capacidad de producir bacteriocinas como sustancias
antimicrobianas que generan un efecto de control contra patógenos que puedan
llegar a atacar a las plantas (revisado en Baca, 2009; Somers et al. 2005; Borisov
et al. 2007).
Las Giberilinas son un grupo de diterpenoides que se definen más por su
estructura que por su actividad biológica, contrario a lo que ocurre con las auxinas
y las citoquininas (Yamaguchi y Kamiya 2000).
Las Giberilinas biológicamente activas, actúan como reguladores esenciales del
desarrollo de las plantas, y cubren todos los aspectos de la historia de vida de las
plantas, modulando varias respuestas del crecimiento como la germinación de
semillas, el crecimiento del tallo, la partenocarpia, la expansión foliar, la
elongación de la raíz, la floración y la liberación de enzimas hidrolíticas en algunos
tejidos (Ueguchi-Tanaka et ál. 2007). Únicamente las Giberilinas biológicamente
activas pueden cumplir con estas funciones, las giberelinas no bioactivas existen
en el tejido vegetal como precursores de las formas bioactivas, o como
metabolitos desactivado (Castro-Guerrero, et al, 2011).
La necesidad de sustituir la agricultura convencional a base de agroquímicos por
una agricultura sostenible menos agresiva con el medio ambiente, ha llevado a la
Investigación y desarrollo de nuevos productos que sean biotecnológicamente
viables con un impacto mínimo para el ecosistema y para la salud humana,
permitiendo aumentar la calidad nutricional y rendimientos de los cultivos dentro
de tecnologías más amigables con el ambiente.
Es por esto, que se hace necesario adoptar una estrategia de manejo sustentable
a través de mecanismos que favorezcan la implementación de los inoculantes

10. biológicos, buscando opciones económicas las cuales promuevan la reducción de
los costos de su producción. Comprender esta situación, nos lleva a buscar y
desarrollar tecnologías limpias y menos costosas que permitan mejorar la calidad
de los cultivos supliendo los nutrimentos necesarios para su producción (Young,
2008).
Es por esto, que esta investigación se realizara para buscar una alternativa que
optimice los procesos para mejorar la producción y generar inoculantes biológicos
con la misma calidad y estabilidad que los fertilizantes nitrogenados en el
mercado, contribuyendo de esta forma al desarrollo de tecnologías integrales para
la conservación del suelo y la nutrición de los cultivos de pasto y pueda ser
rentable

11. OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL
 Evaluar la producción de ácido giberelíco a partir de bacterias nativas del
genero Azospirillum sp aisladas de suelos del departamento de Córdoba.
OBJETIVOS ESPECÍFICOS
 Multiplicar y cuantificar las bacterias nativas de genero Azospirillum sp;
Bacilos y Azotobacter, existentes en el banco de cepas del laboratorio de
Biotecnología GRUBIODEQ, teniendo en cuenta las condiciones
nutricionales de crecimiento.
 Evaluar la producción del ácido giberelíco por el método de reactivo ácido
fosfomolíbdico (folling-wu).
 Seleccionar las mejores bacterias teniendo en cuenta la producción de
ácido giberelíco.

12. MARCO TEÓRICO
BACTERIAS PROMOTORAS DE CRECIMIENTO
Definición
Las bacterias promotoras de crecimiento en vegetales (PGPRs) son un grupo de
diferentes especies de bacterias que pueden incrementar el crecimiento y
productividad vegetal (Bashan y Holguín, 1998). Dentro de los microorganismos
promotores de crecimiento vegetal se clasifican una gran variedad de géneros
dentro de los cuales se incluyen Azospirillum, Azotobacter, Pseudomonas,
Bacillus, Rhizobium (Baca, 2009; Klopper, 1993).
Son capaces de colonizar los diferentes sistemas radicales de las plantas y
promover el crecimiento de éstas, pueden alterar el crecimiento de los tejidos
vegetales directa o indirectamente; indirectamente las PGPR juegan un papel
importante en la disminución o prevención de otros fitopatógenos que puedan
atacar las plantas, mientras que las directamente las PGPR promueven el
crecimiento de la planta al sintetizar compuestos (por ejemplo reguladores del
crecimiento vegetal) que le facilita a la planta la toma de nutrientes del ambiente
(Gray & Smith, 2004).
Historia de Azospirillum Sp; Azotobacter y Bacilos: Spirillum lipoferum, ahora
llamado Azospirillum, fue descrito por primera vez en 1925 por Martinus Willem
Beijerinck, luego de lo cual la bacteria permaneció en el olvido por varias décadas.
Las observaciones de Juan José Peña-Cabriales y Johanna Döbereiner en 1973,
inician la época moderna de este microorganismo.
Hiltner en 1904, observó por primera vez la acumulación de microorganismos en la
zona radical y propuso el término rizósfera. Los exudados radiculares,

13. conformados por sustancias diversas crean alrededor de las raíces, un ambiente
nutricional enriquecido que favorece el crecimiento bacteriano.
El género Azotobacter pertenece a las familias Azotobacteraceae que agrupa
bacterias Gram negativas, quimioheterotrofas, aerobias estrictas, capaces por sí
solas, de fijar nitrógeno molecular. (Holt, et al, 1994; Ramos, 1992; Espín, 2000).
Fue descrito por primera vez por Beijerinck (1901) y en la actualidad incluye seis
especies: A. chroococcum, A. vinelandii, A. beijerinckii, A. nigricans, A. armeniacus
y A. paspali (Ramos, 1992).
El género Bacillus, es un grupo extenso y muy heterogéneo que abarcaba más de
80 especies de bacterias (Euzeby, 2008), permaneció intacto hasta el año 2004,
cuando fue dividido en varias familias y géneros en base a estudios del RNA de
cadena simple (Blackwood et al, 2004).
Generalidades Género Azospirillum sp; Azotobacter; Bacilos: El género
Azospirillum sp, es una bacteria Gram negativa, perteneciente a la subclase alfa
de las proteobacterias, en el orden de las Rhodospirillaceae, dentro de sus
principales características.
Las bacterias del género Azospirillum sp, tienen la capacidad de producir auxinas,
citoquininas y giberelinas en medios de cultivo. No obstante, el mecanismo
analizado con mayor amplitud ha sido la producción de auxinas, que puede
modificar el contenido de fitohormonas de las plantas conduciendo a la
estimulación del crecimiento de las mismas, como el caso del Ácido Indol Acético
(AIA), el cual induce al aumento de pelos radiculares, logrando una mayor
captación de nutrimentos.
Las bacterias del género Azotobacter forman un grupo especial de
microorganismos fijadores de nitrógeno, se multiplican rápidamente y
proporcionan muchas ventajas, como regular el crecimiento de las plantas,

14. producir hormonas vegetales y favorecer la solubilidad de la materia orgánica
agregada al suelo como abono (Mishustin & Shilnikova, 1969; Ramos, 1992).
Existe considerable evidencia que apoya el rol especifico de Bacillus sp. En la
solubilización del fosforo. Sin embargo, no todos los ensayos de laboratorio o de
campo han dado resultados positivos. La eficiencia de la inoculación variaría con
el tipo de suelo, el cultivar específico y otros numerosos parámetros. El contenido
de P en el suelo sería probablemente uno de los factores cruciales en determinar
la efectividad del inoculante (Rodríguez y Fraga, 1999).
Metabolismo de Azospirillum sp; Azotobacter; Bacilos: Las especies de
Azospirillum sp, difieren en su capacidad para utilizar diferentes compuestos como
fuentes de carbono y nitrógeno. Estas bacterias usan para su crecimiento unos
pocos monosacáridos y disacáridos así como alcoholes polihidroxilados, y
principalmente diversos ácidos orgánicos tales como málico y succínico y algunos
aminoácidos (Hartmann & Burris, 1988). Para el uso de diferentes fuentes de
carbono, tanto A. lipoferum como A. brasilense tienen todas las enzimas de la vía
de Embden-Meyerhof-Parnas y de la vía de Entner-Doudoroff (Westby et al, 1983),
así como todas las enzimas del ciclo de los ácidos tricarboxílicos (Martínez et al,
1984). Tanto A. lipoferum como A. brasilense tienen la capacidad de crecer
autotróficamente con H2 y CO2, proceso en el que participa la ribulosa-1,5-
difosfato carboxilasa (Tilak et al, 1986).
La capacidad de Azotobacter de estimular el crecimiento de las plantas ha sido
comprobada por numerosos investigadores. Además de la fijación de nitrógeno,
otras propiedades tales como la capacidad de solubilizar fosfatos, la producción de
reguladores del crecimiento, vitaminas, sideroforos y sustancias antifungicas son
considerados como responsables del efecto positivo sobre los vegetales.
Algunos autores postulan que la producción de auxinas y otros reguladores del
crecimiento vegetal podrían ser el mecanismo principal que explicaría los efectos
beneficiosos de Azotobacter (Zahir et al., 2005).

15. Efectos de factores fisicoquímicos sobre Azospirillum sp; Azotobacter, Bacilos:
Cuando las bacterias se siembran en un medio de cultivo óptimo y bajo
condiciones adecuadas de incubación, ocurre un incremento en el número de
células en períodos muy cortos. En algunas especies se alcanza la población
máxima en 24 horas, en cambio, en otras se necesita un período más prolongado
para alcanzar el máximo desarrollo; para determinar el desarrollo se necesita
medir cuantitativamente la población de células al tiempo de sembrar y
nuevamente después de la incubación. El ciclo de desarrollo de las poblaciones
bacterianas es el procedimiento más importante en la multiplicación de los
microorganismos (Peoples & Craswell, 1992).
pH: Azospirillum sp; el Azotobacter y los Bacilos, tiene un crecimiento óptimo en
un rango de pH de 6,5 -7,0. Si el microorganismo no cuenta con el pH
correspondiente, esto provocaría la inhibición de su crecimiento y desarrollo
(Sánchez, 1964
Temperatura: Muchas especies de Azospirillum sp; Azotobacter y Bacilos,
requieren una temperatura óptima de crecimiento cercana a los 30 ºC, excepto
para Azospirillum largimobile que presenta una temperatura de 28 ºC y
Azospirillum halopraeferens 41º C. La modificación de la temperatura, tiene un
efecto notable sobre un proceso. Si el valor utilizado no es adecuado puede
disminuir o aún impedir la formación de un metabolito determinado (Scragg, 2000).
Además, la temperatura puede modificar los requerimientos nutritivos de algún
microorganismo, lo que significa que al modificarse el valor de un factor puede
cambiar los requerimientos de otro.
LA GIBERELINA: Son reguladores del crecimiento de las plantas superiores que
regulan numerosos aspectos del desarrollo vegetal. Ellas promueven el
crecimiento celular debido a que incrementan la hidrólisis de almidón, fructanos y
sacarosa con lo que se originan moléculas de fructosa y glucosa.

16. Las respuestas que producen o modulan las Giberilinas afectan tanto la regulación
del crecimiento reproductivo de la planta (Azcon & Bieto, 2000). Ellas son
determinantes en el control de la elongación del tallo, también modifican
sustancialmente los procesos reproductivos de los vegetales, participando en el
control del inducción de la floración, en la producción, crecimiento, y desarrollo de
los frutos. Así mismo sustituyen los requerimientos de luz o frio que precisan
muchas de las semillas para germinar (Azcon & Bieto, 2000; Salisbury, 1994).
Para determinar las Giberilinas se usa el método Reactivo de folling-Wu (ácido
fosfomolíbdico); es un método utilizado en la detección de Giberilinas, como un
método sencillo y practico de detección, basado en la reacción de reducción que
presenta el ácido molíbdico frente a soluciones de ácido giberelíco a diferentes
concentraciones. La reacción de reducción ocasiona un cambio de color del
reactivo a azul mostrando la reducción ocasionada por la presencia de Giberilinas
en la solución (Graham & Henderson, 1960)
DETECCIÓN COLORIMETRICA DE GIBERELINAS: REACTIVO ÁCIDO
FOSFOMOLÍBDICO (FOLLING-WU) (Graham & Henderson, 1960)
La reacción colorimétrica a base del reactivo Folling Wu (ácido fosfomolíbdico),
es un método utilizado en la detección de Giberilinas, como un método sencillo y
practico de detección, basado en la reacción de reducción que presenta el ácido
mólibdico frente a soluciones de ácido giberélico a diferentes pH. La reacción de
reducción ocasiona un cambio de color del reactivo a azul mostrando la reducción
ocasionada por la presencia de Giberilinas en solución.

17. METODOLOGÍA
El trabajo se realizará en el laboratorio de Biotecnología del Departamento de
Química, (GRUPOBIODEQ) de la universidad de Córdoba.
Esta investigación se realizara siguiendo una serie de etapas; estas son:
1. PRIMERA ETAPA: Multiplicar las bacterias nativas de género Azospirillum
sp; Bacillus y Azotobacter sp, existentes en el banco de cepas del
laboratorio de Biotecnología GRUBIODEQ, teniendo en cuenta las
condiciones nutricionales de crecimiento para cada género.
 Obtención de las muestras:
Se utilizaran cepas aisladas pertenecientes al banco de muestras del laboratorio
de Biotecnología GRUBIODEQ de la Universidad de Córdoba. Los
microorganismos serán activados utilizándose como medio de cultivo: Nfb; de
acuerdo a lo anterior, se comenzará con la inoculación de los microorganismos y
seguidamente se hará una dilución de dicho inóculo (Solución madre), para así
determinar la cantidad de células de las que se partirá teniendo en cuenta sus
condiciones nutricionales para cada género.
 Aislamiento:

18. Para el aislamiento de bacterias de los género Azotobacter sp, Azospirillum sp, y
Bacillus. Se procederá de la siguiente manera: una vez colectadas las muestras,
se harán sucesivas diluciones y luego se sembraran pequeñas cantidades de
estas diluciones en cajas de petri con medio de cultivo (Nfb, selectivo para cada
género) descrito por (DÖBEREINER et al 1976). Posteriormente se realizara el
proceso de incubación de las muestras pasadas 72 horas se efectuara los conteos
de las colonias propias del género (Sánchez, 1990, Holt et al 1994).
 MEDIO DE CULTIVO NFB (Dobereiner et al, 1997)
El medio de cultivo que se utiliza para realizar los bioensayos de crecimiento, será
el NFB, que se usa en la multiplicación de bacterias del género Azospirillum sp,
Bacillus y Azotobacter sp. El cuál es preparado pesando 0.25g K2HPO4, 0.025g
FeSO4*7H2O, 0.005g MnSO4*H2O, 0.05g MgSO4*7H2O, 0.01g NaCl, 0.005g
CaCl2, 0.001g Na2M0O4, utilizando como fuente de carbono succinato; para un
volumen total de 500mL de agua destilada y ajustamos el pH entre 6.6 a 7.0.
Luego lo colocamos en autoclave por un tiempo de 20 minutos a una temperatura
de 121°C aproximadamente, dejamos enfriar a temperatura ambiente e
inoculamos los diferentes microorganismos
 SEGUNDA ETAPA: Evaluación de la producción del ácido Giberelíco
por el método de reactivo ácido fosfomolíbdico (folling-wu).
Para la identificación de los microorganismos aislados se realizará ensayos
utilizando patrones de Giberelina a diferentes concentraciones (2.5 ppm, 5.0 ppm,
25 ppm, 30 ppm, 50 ppm y 80 ppm).
DETECCIÓN COLORIMETRICA DE GIBERELINAS: REACTIVO ÁCIDO
FOSFOMOLÍBDICO (FOLLING-WU) (Graham & Henderson, 1960)

19. La determinación de ácido giberélico con el reactivo Folling-Wu, se realiza a partir
de soluciones stock de Giberilinas comercial Merck; a diferentes concentraciones,
buscando establecer una curva de calibración para la detección de GA3 en base al
reactivo.
Se separarán 500mL del reactivo Folling-Wu, a partir de 35g de ácido molibdico y
5g de Tugstanato de Sodio fueron agregados a un Becker de 1L, luego se agregó
200 cc de NaOH al 10% y después 200 cc de agua destilada. Calentar
vigorosamente el contenido del frasco por 40 minutos para remover cualquier
rastro de amonio presente en el ácido molibdico.
Dejar enfriar y diluir la mezcla hasta 350 cc con agua destilada y agregar 125 cc
de ácido fosfórico al 85%. Finalmente la mezcla fue transferida a un matraz de
500 cc y aforada con agua destilada.
Una vez preparadas las soluciones de reguladores de crecimiento se realizó la
evolución del reactivo, a una proporción de 3mL de la muestra por 1.8mL del
reactivo, el tiempo de relación será de 60 minutos, a baño en ebullición. El tiempo
cero será estimado luego de 2min de sumergidos los tubos, pasados los 60min se
retirarán del baño y se dejan enfriar en un baño de hielo por unos 5 minutos
aproximadamente.
De igual forma, tomaremos 10mL del inóculo a las diferentes concentraciones y se
procederá a medir en el espectrofotómetro Espectronic Thermo GENESYS 20 a
una longitud de onda de 770nm. Lo anterior se hará por triplicado.
 TERCERA ETAPA: Seleccionar las mejores bacterias teniendo en cuenta
la producción de ácido giberelíco.
Se evaluará que método es el más efectivo y preciso en la selección de las
mejores bacterias en la producción de ácido giberelíco, teniendo en cuenta
precisión, repetitividad, reproducibilidad.
Precisión: La precisión mide el grado de acuerdo entre los resultados analíticos
obtenidos de una serie de mediciones repetidas del mismo analito realizadas en

20. las condiciones previstas en el método. La precisión refleja los errores aleatorios
que se producen cuando se utiliza un método. (Validación de métodos analíticos
AEFI 2001)
Se analizarán parámetros como:
Repetibilidad: esta se evaluará haciendo mediciones sobre 4 muestras de igual
concentración, a las cuales se les aplicará el procedimiento analítico bajo las
mismas condiciones operativas (analista, equipo y reactivos).
Reproducibilidad: se realizará a diferentes tiempos y en días diferentes y con el
mismo analista
Esta se evaluará haciendo mediciones sobre cada muestra por triplicado.
La precisión del método analítico se expresará como el coeficiente de variación
(CV) de una serie de medidas y se calculará matemáticamente con la siguiente
ecuación:
CV (%) = S/X * 100 (Ec. 1)
Dónde:
S= desviación estándar.
X=media aritmética de los resultados.

21. RECURSOS
MATERIALES Y REACTIVOS
Horno Tugstanato de sodio NaCl
Caja de Petri Hidróxido de sodio MgSO4*7H2O
Pipeta Analítica Ácido fosfórico MnSO4*H2O
Vidrio de Reloj GA3 de grado analítico Frasco lavador
Espectrofotómetro
Génesis 20
FeCl3*6H2O Gradilla
Pipeta de vidrio HCl Agua destilada
Autoclave Agar Pera
Becker CaCl2 campana de
esterilización
Tubos de ensayo FeSO4*7H2O Balanza analítica

22. Espátula K2HPO4 Agitador de vidrio
RECURSO HUMANO: Ph.D Cecilia Lara Mantilla.
INFRAESTRUCTURA
Laboratorio de investigación en biotecnología GRUBIODEQ (Programa de
Química, Universidad de Córdoba).
RECURSOS ECONÓMICOS
GRUBIODEQ (Programa de química, Universidad de Córdoba).
PRESUPUESTO
RUBROS FUENTE DE
FINANCIACIÓN
VALOR TOTAL
REACTIVOS
Los recursos están
disponibles en el laboratorio
de investigación en
biotecnología GRUBIODEQ
(Programas de Química;
Universidad de Córdoba).
$7’000.000°°
VIDRIERÍA $4’000.000°°
EQUIPOS:
Autoclave,
espectrofotómetro,
horno, balanza
analítica, Campana de
$9’000.000°°

23. esterilización.
VALOR TOTAL $11’000.000°°
CRONOGRAMA
ACTIVIDAD
TIEMPO (MESES)
1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12
REVISIÓN
BIBLIOGRÁFICA
RECOLECCIÓN DE
LA MATERIA PRIMA
CULTIVO DE
MICROORGANISMOS
CUANTIFICACIÓN DE
GIBERELÍNAS CON
REACTIVO DE
FOLLING-WU
ANÁLISIS E
INTERPRETACIÓN

24. DE RESULTADOS
REDACCIÓN DEL
INFORME FINAL
REFERENCIAS
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