Este documento describe un experimento sobre la estratificación de poblaciones microbianas en columnas de agua-sedimento tratadas con diferentes sustancias como CaSO4, sacarosa, detergente y oscuridad. Se observó la distribución de microorganismos como bacterias, algas, protozoos y hongos en las diferentes zonas de las columnas y su relación con factores como la disponibilidad de oxígeno, nutrientes y luz. El estudio demostró que cada tratamiento favoreció el desarrollo de comunidades microbianas distintas dependiendo

1. Enriquecimiento y estratificación
de poblaciones microbianas de
sistemas naturales
Integrantes
o Terán Herrera Daniel
o De la Fuente Castañeda Claudia Abril
o Juárez Hermenejildo Valeria Mayawy
o Mendieta Pérez Citlali Carolina
INSTITUTO POLITÉCNICO NACIONAL
ESCUELA NACIONAL DE CIENCIAS
BIOLÓGICAS

2. Factores bióticos
Comunidades Microbianas
expuestas a cambios continuos a:
Factores abióticos
Relaciones
entre
organismos
Vegetación
• Temperatura
• [oxígeno]
• Potencia
REDOX
• Actividad de
agua
• Luz
• pH
INTRODUCCIÓN

3. Es utilizada para el aislamiento de
bacterias fototróficas verdes y rojas, y
de otros anaerobios, así como para
lograr el enriquecimiento de una
variedad de procariotes aerobios y
anaerobios que están presentes en la
muestra (Madigan et al, 1998)
•Inexistentes (neutralismo o amensalismo)
•Positivas ( comensalismo, sinergismo, mutualismo)
•Negativas (competencia, parasitismo, predación)
Interacciones entre poblaciones
microbianas diversas

5. En la columna de Winogradsky (un microhábitat) se puede
observar:
 La presencia de microorganismos con diferente actividad
metabólica.
 La participación de los microorganismos en diferentes ciclos
biogeoquímicos.
 Asociaciones microbianas en donde un microorganismo permite
crecer o inhibir a otro.
La columna de Winogradsky es la representación “in vitro”
de un ecosistema.

6. Resazurina
 La Resazurina es un indicador azul que al
reducirse a Resofurina muestra un color
rosa y Dihidroresorufina al estar en un
estado de completa reducción. Se utilizó
como indicador de oxido-reducción para
poner en manifiesto la respiración aerobia
y anaerobia en la columna de
Winogradsky.

7. Objetivos
 Observar la distribución de los microorganismos en
la columna de agua-sedimento, en los 4
tratamientos, CaSO4, Sacarosa, Detergente, y
Oscuridad.
 Relacionar la presencia de los microorganismos
con las características del microhábitat.

8. Procedimiento
TRATAMIENTO
COLUMNAS
1 2 3 4
CaSO4 al 1% del peso del
sedimento + + + +
Sacarosa al 1% del peso del
sedimento - + - -
Detergente al 1% del
volumen final - - + -
Oscuridad (cubrir
completamente) - - - +

9. Imagen 1.1 Se muestran los 4 tratamientos utilizados, (1) Obscuridad
(2) Sacarosa, (3) CaSO4, (4) Obscuridad en un orden de Izquierda a
Derecha.

10. RESULTADOS

11. Testigo Sacarosa Detergente
Primer día 6 de Septiembre
Oscuridad

12. Testigo Sacarosa Detergente
Sexto día 11 de Septiembre
Oscuridad

13. Octavo día 13 de Septiembre
Testigo Sacarosa Detergente Oscuridad

14. Onceavo día 18 de Septiembre
Testigo Sacarosa Detergente Oscuridad

15. Oscuridad
Zona agua-sedimento
Amiba
Sacarosa
Zona superficial.
Bacilos

16. 7/09/17 Tercer dia
 Tratamiento testigo muestra
un poco reducción en la
parte cercana al sedimento
columna.
 Tratamiento con sacarosa
muestra ambiente anóxico
en toda la columna. Con el
gua bastante turbia.
 Tratamiento con detergente
alto contenido de oxígeno en
2/3 de la columna y el tercio
más cercano al sedimento
tiene un ambiente
ligeramente reducido. Se
observó presencia de
microorganismos
macroscópicos sobre el
sedimento y de color
legeramente negro .


17.  Tratamiento testigo muestra
una reducción en toda la
columna.
 Tratamiento en oscuridad
muestra ambiente anóxico
total en la parte más cercana
al sedimento y una reducción
en la parte intermedia.
 Tratamiento con sacarosa
muestra ambiente anóxico en
toda la columna. Acumulación
de burbujas.
 Tratamiento con detergente
alto contenido de oxígeno en
2/3 de la columna y el tercio
más cercano al sedimento
tiene un ambiente ligeramente
reducido y total al fondo. Se
observó presencia de
microorganismos
macroscópicos sobre el
sedimento.

12/09/17 Primera Semana

18.  17/10/17 Una mes y doce días
 Día de la observación de microorganismos
 Tratamiento testigo no
muestra una reducción
en toda la columna esto
indica la presencia de
oxigeno en la columna y
olor fétido.
 Tratamiento en oscuridad
muestra ambiente
anóxico total al estar de
color transparente, y el
agua se muestra poco
turbia.
 Tratamiento con sacarosa
muestra ambiente
anóxico en toda la
columna. Acumulación de
burbujas, agua bastante
turbia, sedimento negro
y olor fétido.

19. Microorganismos observados el las
columnas con su ubicación
Philodina S. cerevisiae Altenaria Helminthosporium Algas verdes no de
azufre
Paramecium sp. Euglena Peridinium Algas verdes de azufre

20. Testigo
Rotífero Nemátodo
Zona intermedia
Arcella (Amoeba testada) en
abundancia

21. Zona superficial
Filodina
Portaobjetos (sedimento)
Imagen 11. Arcella (Amoeba
testada) y algas.

22. Sacarosa
Zona superficial.
Algas doradas.
Zona intermedia
Arcella.

23. Detergente
Zona Superficial
Algas verdes
Navícula Conidio de Alternaria

24. Oscuridad
Zona intermedia
Stylionicha
Zona agua- sedimento
Onychodromas
(protozoario)
Nemátodo y Arcella (Amoeba
testada)

25. Conclusiones
 En la columna Testigo se encontraron una gran cantidad de bacterias en
todos los niveles de profundidad.
 En la columna con sacarosa fue favorable para los microorganismos
fermentadores de azúcar como este pero al agotarse se crea un ambiente
reducido anóxico y generaron condiciones de anaerobiosis para la mayor
parte de esta columna.
 Como podemos observar en la columna de oscuridad los microorganismos
fotosintéticos no pudieron desarrollarse adecuadamente al no tener la luz
como su principal de energía para realizar procesos metabólicos.
 En la columna que contenía detergentes se vio inhibido el desarrollo
microbiano en la superficie de esta (zona aeróbica) mientras que por el
contrario el fondo (anaeróbica) y la zona media (microaerofílica) se
encontró el crecimiento microorganismos

26.  Tanto la sacarosa como el detergente, a altas
concentraciones ya no son fuente de carbono para los
microorganismos, si no que por el contrario, causan que
estos ya no puedan llevar a cabo su metabolismo
satisfactoriamente, provocando su inhibición

27. CUESTIONARIO
1.- Describir qué es un indicador de óxido-reducción, dé dos
ejemplos mencionando los cambios que se observarán en los
distintos grados de oxidación.
R: Un indicador redox es una sustancia cuyo color es intenso, bien
definido, y distinto en sus estados oxidado y reducido. Ejemplos:
Rojo de metilo
Amarillo pH 6, verde pH neutro,
azul pH 7.5

28. 2.-De acuerdo a las características de óxido-
reducción (zona óxica, zona anóxica e interfase),
pH, materia orgánica disponible, presencia de
luz, obscuridad, temperatura, etc. Indique que
tipo de microorganismos tendrá en las siguientes
zonas de su columna:

29. BIBLIOGRAFÍA
o Alfaro Martínez Verónica Patricia. (2010).
Recopilación de mecanismos de reacción
de los indicadores químicos y su
aplicación en los diferentes métodos
clásicos de análisis. El Salvador:
Universidad de El Salvador.
o Atlas M. Ronald; Bartha Richard; (2008)
Ecología Microbiana, Cuarta edición;
Editorial Pearson Addison Wesley
o http://www.microinmuno.qb.fcen.uba.ar
/SeminarioBiodiversidad.htm. Consultado
el 25 de Octubre del 2017 a las 10:00 pm