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Toma de Muestras de Sangre
Mss Inc.
Objetivo Terminal
 Al finalizar la educación el estudiante
comprenderá el procedimiento
adecuado al momento de extraer una
muestra de sangre.
Propósito
 Obtener una muestra de sangre, para
analizar sus componentes evaluar y
diagnosticar un problema en el
paciente.
Objetivos
 Obtener una muestra de sangre sin
contaminar.
 Sin complicaciones;
formación de hematoma o excesivo
sangrado.
 Muestra confiable para diagnosticar el
paciente.
 Evitar la destrucción de los glóbulos
rojos.
Objetivos;
 Asegurar los resultados precisos
asegurando que el paciente cumple
con todos los requisitos necesarios
para la prueba.
Toma de Muestra
 Se perfora una vena con una aguja y
coleccionar la sangre en un tubo al
vacío.
 Generalmente se hace utilizando la
fosa antecubital pero si fuese
necesario se pueden utilizar la venas
del dorso de la mano u otra
localización accesible.
Factores a considerar al seleccionar
el área de venopunción
 Estado mental y emocional del
paciente.
 Mastectomía previa.
 Presencia de edema
 Daño,quemaduras,traumas.
 Infusión de líquidos intravenosos.
 Areas con cicatrices.
 Brazos con fístulas.
Equipo:
 Guantes
 Torniquete
 “Vacutainer”
 “Alcohol Swabs”
 Gasas 2X2
 Aguja ó “butterfly”
Equipo:
 Tubo de muestra
Seguridad
 Bolsa “Biohazard”
 Caja para desechar la
aguja (“biohazard”)
 Requisición
Procedimiento;
 Verifique orden médica
 Lavado de manos
 Informe al paciente el propósito de tomarle
la muestra
 Reúna el equipo a utilizar
Procedimiento:
 Si el paciente está en descanso en
cama, pídale que se coloque en
posición supina, con su cabeza un
poco elevada y sus brazos a ambos
lados. Si el paciente es ambulatorio
acomódelo en una silla y dele soporte
al brazo sobre la mesa
Procedimiento;
 Verifique que tiene la iluminación
apropiada
 Ofrezca Privacidad
 Estime las venas del paciente para
determinar el mejor lugar para la
venopunción
Procedimiento;
 Colóquese los guantes desechables
 Coloque el torniquete 2” (5 cm) lo
más cerca al área donde ha
seleccionado la venopunción.
 Limpie el área de venopunción con la
esponja. Limpie en forma circular; de
adentro hacia fuera.
 Seque con gasa
Procedimiento;
 Remover la cubierta “tap” de la aguja
y posicionarla con el lumen hacia
arriba a un ángulo de 15-45 ̊
 Sin tocar el lugar que se limpió,
colocar el dedo pulgar no dominante
para retraer un poco la piel
Procedimiento;
 Introducir la aguja, estabilizar el
“Vacutainer” con la mano no
dominante y con la mano dominante
empuja el tubo hacia adentro,
coleccione la muestra.
Procedimiento;
 Una vez se llene el tubo remuévalo
del “vacutainer”. Use el mismo
procedimiento si se va a llenar otro
tubo (si los tubos contienen aditivo
asegúrese invertir el mismo varias
veces con suavidad).
Procedimiento;
 Una vez tomadas las muestras remueva el
torniquete
 Coloque una gasa estéril en el área de la
punción.
 Pídale al paciente que se aplique presión
con la gasa por 1 minuto aprox. Indiquele
que no flexione el brazo
Procedimiento;
 Descarte la aguja en caja “biohazard”
Procedimiento;
 Identifique la muestra y guarde en bolsa
“biohazard”
 Coloque curita en área de punción.
 Recoja el equipo y deseche material
utilizado con el paciente
 Remuevase los guantes y lavese las manos
Procedimiento;
 Evalúe la respuesta del paciente
 Documente en el expediente: Fecha,
hora, tipo de muestra, método usado,
manejo de muestras y otros datos
que usted considere relevantes .
Tubos de coagulación
 Color azul=(citrato de sodio)
substancia que elimina el calcio en la
muestra de sangre.
Se debe llenar un 90 %
para que el resultado
de la muestra sea
confiable.
Tubos sin separador de gel o
activador de glóbulos rojos
 Los tubos de tapón rojo sin
anticoagulante se utilizan para;
1. Pruebas de Banco de Sangre y
drogas terapéuticas (Dilantin,
Phenobalbital, Tegretol, Lidocaina,
antidepresivos.
Tubos de tapón rojo
A. Electrolitos
 Sodio
 Potacio
 Dióxido de
Carbono
 Cloruro
B. Glucosa en
Sangre
 FBS Fasting
Blood Sugar
 BS Blood Sugar
Tubos de tapón rojo
C.Lípidos
HDL= Lipoproteina de
alta densidad
LDL=Lipoproteina de
Baja densidad
D. Enzimas
E. Niveles de drogas
en sangre
F. Profiles
Tubos Amarillos
 Tubos con separador Gel (SST) o
activador de coágulos
Se utilizan para químicas y serología
Tubos Verdes
 Tubos con otros aditivos(Heparina)
Sirve para realizar estudios de
Cromosomas, Amonia o Trombina
Tubos Violeta= Hematología
 Contaje completo de sangre (CBC)
1. Contaje de células rojas (RBC)
2. Hemoglobina (Hb)
3. Hematocrito (Hct)
4. Contaje de células blancas en
sangre(WBC)
5. WBC diferencial
6. Contaje de plaquetas
7. Eritrocitos-Sedimentación rate(ESR)
Tubo Gris
 Fluoruro de Sodio=(Inhibe la glicólisis
o sea no permite que se degrade la
glucosa) se puede utilizar para FBS o
tolerancia de azucar sin químicas,
niveles de alcohol.
Potes de Cultivos
 Cultivos Aeróbicos, Anaeróbicos
 Desinfección
Limpiar la piel con alcohol por 1 minuto
Desinfectar el área con yodo por 1
minuto(o solución antiséptica según la
norma).Dejar secar por 30
segundos.Limpiar la tapa del frasco con
alcohol.
Referencias;
 Smeltzer S., B. Bare. 2004. Brunner
& Suddarth. Enfermería
Medicoquirúrgica. 10ma edic.
McGrawHill. Vol I
 Smith F.,D. Duel.2009.Técnicas de
enfermería clínica. 7ma edición.
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  • 1. Toma de Muestras de Sangre Mss Inc.
  • 2. Objetivo Terminal  Al finalizar la educación el estudiante comprenderá el procedimiento adecuado al momento de extraer una muestra de sangre.
  • 3. Propósito  Obtener una muestra de sangre, para analizar sus componentes evaluar y diagnosticar un problema en el paciente.
  • 4. Objetivos  Obtener una muestra de sangre sin contaminar.  Sin complicaciones; formación de hematoma o excesivo sangrado.  Muestra confiable para diagnosticar el paciente.  Evitar la destrucción de los glóbulos rojos.
  • 5. Objetivos;  Asegurar los resultados precisos asegurando que el paciente cumple con todos los requisitos necesarios para la prueba.
  • 6. Toma de Muestra  Se perfora una vena con una aguja y coleccionar la sangre en un tubo al vacío.  Generalmente se hace utilizando la fosa antecubital pero si fuese necesario se pueden utilizar la venas del dorso de la mano u otra localización accesible.
  • 7. Factores a considerar al seleccionar el área de venopunción  Estado mental y emocional del paciente.  Mastectomía previa.  Presencia de edema  Daño,quemaduras,traumas.  Infusión de líquidos intravenosos.  Areas con cicatrices.  Brazos con fístulas.
  • 8. Equipo:  Guantes  Torniquete  “Vacutainer”  “Alcohol Swabs”  Gasas 2X2  Aguja ó “butterfly”
  • 10. Seguridad  Bolsa “Biohazard”  Caja para desechar la aguja (“biohazard”)  Requisición
  • 11. Procedimiento;  Verifique orden médica  Lavado de manos  Informe al paciente el propósito de tomarle la muestra  Reúna el equipo a utilizar
  • 12. Procedimiento:  Si el paciente está en descanso en cama, pídale que se coloque en posición supina, con su cabeza un poco elevada y sus brazos a ambos lados. Si el paciente es ambulatorio acomódelo en una silla y dele soporte al brazo sobre la mesa
  • 13. Procedimiento;  Verifique que tiene la iluminación apropiada  Ofrezca Privacidad  Estime las venas del paciente para determinar el mejor lugar para la venopunción
  • 14. Procedimiento;  Colóquese los guantes desechables  Coloque el torniquete 2” (5 cm) lo más cerca al área donde ha seleccionado la venopunción.  Limpie el área de venopunción con la esponja. Limpie en forma circular; de adentro hacia fuera.  Seque con gasa
  • 15. Procedimiento;  Remover la cubierta “tap” de la aguja y posicionarla con el lumen hacia arriba a un ángulo de 15-45 ̊  Sin tocar el lugar que se limpió, colocar el dedo pulgar no dominante para retraer un poco la piel
  • 16. Procedimiento;  Introducir la aguja, estabilizar el “Vacutainer” con la mano no dominante y con la mano dominante empuja el tubo hacia adentro, coleccione la muestra.
  • 17. Procedimiento;  Una vez se llene el tubo remuévalo del “vacutainer”. Use el mismo procedimiento si se va a llenar otro tubo (si los tubos contienen aditivo asegúrese invertir el mismo varias veces con suavidad).
  • 18. Procedimiento;  Una vez tomadas las muestras remueva el torniquete  Coloque una gasa estéril en el área de la punción.  Pídale al paciente que se aplique presión con la gasa por 1 minuto aprox. Indiquele que no flexione el brazo
  • 19. Procedimiento;  Descarte la aguja en caja “biohazard”
  • 20. Procedimiento;  Identifique la muestra y guarde en bolsa “biohazard”  Coloque curita en área de punción.  Recoja el equipo y deseche material utilizado con el paciente  Remuevase los guantes y lavese las manos
  • 21. Procedimiento;  Evalúe la respuesta del paciente  Documente en el expediente: Fecha, hora, tipo de muestra, método usado, manejo de muestras y otros datos que usted considere relevantes .
  • 22. Tubos de coagulación  Color azul=(citrato de sodio) substancia que elimina el calcio en la muestra de sangre. Se debe llenar un 90 % para que el resultado de la muestra sea confiable.
  • 23. Tubos sin separador de gel o activador de glóbulos rojos  Los tubos de tapón rojo sin anticoagulante se utilizan para; 1. Pruebas de Banco de Sangre y drogas terapéuticas (Dilantin, Phenobalbital, Tegretol, Lidocaina, antidepresivos.
  • 24. Tubos de tapón rojo A. Electrolitos  Sodio  Potacio  Dióxido de Carbono  Cloruro B. Glucosa en Sangre  FBS Fasting Blood Sugar  BS Blood Sugar
  • 25. Tubos de tapón rojo C.Lípidos HDL= Lipoproteina de alta densidad LDL=Lipoproteina de Baja densidad D. Enzimas E. Niveles de drogas en sangre F. Profiles
  • 26. Tubos Amarillos  Tubos con separador Gel (SST) o activador de coágulos Se utilizan para químicas y serología
  • 27. Tubos Verdes  Tubos con otros aditivos(Heparina) Sirve para realizar estudios de Cromosomas, Amonia o Trombina
  • 28. Tubos Violeta= Hematología  Contaje completo de sangre (CBC) 1. Contaje de células rojas (RBC) 2. Hemoglobina (Hb) 3. Hematocrito (Hct) 4. Contaje de células blancas en sangre(WBC) 5. WBC diferencial 6. Contaje de plaquetas 7. Eritrocitos-Sedimentación rate(ESR)
  • 29. Tubo Gris  Fluoruro de Sodio=(Inhibe la glicólisis o sea no permite que se degrade la glucosa) se puede utilizar para FBS o tolerancia de azucar sin químicas, niveles de alcohol.
  • 30. Potes de Cultivos  Cultivos Aeróbicos, Anaeróbicos  Desinfección Limpiar la piel con alcohol por 1 minuto Desinfectar el área con yodo por 1 minuto(o solución antiséptica según la norma).Dejar secar por 30 segundos.Limpiar la tapa del frasco con alcohol.
  • 31. Referencias;  Smeltzer S., B. Bare. 2004. Brunner & Suddarth. Enfermería Medicoquirúrgica. 10ma edic. McGrawHill. Vol I  Smith F.,D. Duel.2009.Técnicas de enfermería clínica. 7ma edición. Pearson