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FACULTAD DE CIENCIAS
DE LA SALUD
CARRERA:
Enfermería
DOCENTE:
Lcda. Mariela Patricia Sabando Saltos, Mg
ASIGNATURA:
INTERNADO HOSPITALARIO
 NIVEL: INTERNADO
TEMA: “TOMA DE MUESTRAS DE EXAMENES DE LABORATORIOS Y GASOMETRIA”
Universidad Técnica De Manabí
Facultad De Ciencias De La Salud
Escuela De Enfermería
AUTOR:
MOREIRA RAMÍREZ LISBETH GERALDINE
TUTORA:
LCDA. MARIELA SABANDO SALTOS
PERÍODO:
MAYO 2021-ABRIL 2022
TITULO:
MIASIS
La toma de muestra consiste en recolectar una muestra biológica del
paciente que posteriormente se enviará a un laboratorio para su análisis.
Existen diversas muestras biológicas que se pueden examinar, algunas
son la sangre, orina, heces, esputo, semen, sudor, líquido sinovial,
cefalorraquídeo, entre otros.
TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO
TEMA: “TOMA DE MUESTRAS
DE LABORATORIO”
TEMA: “TOMA DE MUESTRAS
DE LABORATORIO”
Muestra de esputo o desgarro.
Las muestras de secreciones, se realizan para buscar algún agente
patógeno que produzcan ciertas enfermedades. Estas deben ser
adecuadas en cantidad y calidad para su análisis en el laboratorio
clínico. Dentro de las cuales tenemos: Baciloscopía de desgarro: la
cual permite la determinación de presencia de bacilo de koch en la
secreción bronquial, con el cual podemos diagnosticar tuberculosis.
Materiales: Guantes de procedimientos, frasco esteril.
Procedimiento
1. Lávese las manos.
2. Explíquele el procedimiento al paciente.
3. Colóquese guantes de procedimientos.
4. El paciente debe estar en ayunas.
5. Se debe instar al paciente que tosa o provocar la tos con ejercicios respiratorios de inspiración y espiración profundos y al
momento de eliminar el aire inspirado forzar el reflejo tusivo para que elimine una muestra de expectoración adecuada en
cantidad y calidad.
6. Pedir al paciente que tosa y expectore en un frasco de boca ancha, limpio y seco; se debe echar desgarro y no saliva.
7. Registrar las características del desgarro, en hoja de enfermería.
8. Enviar examen al laboratorio clínico con su orden médica, con los datos del paciente y estipular si este está en tratamiento
antituberculosis.
9. Se debe repetir el procedimiento en días consecutivos hasta completar las indicadas, enviándolas cada día al laboratorio
clínico
- Deben tomarse 2 muestras en días consecutivos en caso de
diagnóstico y una en caso de control de tratamiento, junto a
una orden de examen especial que indique la sospecha clínica.
Muestra de secreción faríngea: En general, con esta muestra se
realizan cultivos, para determinar la presencia de gérmenes
patógenos (estreptococos beta hemolítico)
Materiales: guantes de procedimientos, baja lenguas, tubo
estéril con tapón de goma, medio de transporte, solo para
cultivo corriente.
1. Explicar el procedimiento al paciente. 2. Lavarse las manos.
3. Usar guantes para procedimientos. 4. Colocar al paciente en
posición cómoda y con buena iluminación hacia la zona
faríngea. 5. Solicitar al paciente que pronuncie la letra A. 6.
Desplazar la lengua hacia abajo (con baja lengua). 7. Frotar la
torunda (hisopo) con suavidad por ambas caras de las
amígdalas, y luego la parte posterior de la faringe. 8. Se coloca
el hisopo con la precaución de no tocar las paredes del frasco
estéril. 9. Retirarse los guantes. 10.Lavarse las manos.
11.Rotular la muestra. 12.Registrar el procedimiento.
13.Trasladar al laboratorio.
Hisopado nasofaríngeo: se introduce un hisopo en un
narina a una profundidad aproximada de 5 centímetros
hasta llegar a la faringe y se gira durante unos 10
segundos para recoger una muestra de mucosa que
pueda contener una partícula viral de ARN. Con el
mismo hisopo se repite el muestreo en la otra narina.
El hisopo se guarda en un tubo.
Los gases arteriales son la obtención de una muestra de sangre arterial,
adecuada en cantidad y calidad, para ser analizada en el laboratorio
clínico.
Los gases arteriales se utilizan para evaluar la función respiratoria y
metabólica, valoración del estado acido – base de la sangre.
GASOMETRIAARTERIAL
TEMA: “TOMA DE MUESTRAS
DE LABORATORIO”
Sitios de punción Las arterias
que se utilizan
frecuentemente para esta
muestra de sangre son las
radial, braquial, femoral.
- Se realiza presión con dedos pulgar e índice a las arterias radial
y cubital simultáneamente, por unos 30 segundos, con esta
presión la mano se observa pálida.
- Se suelta la presión de la arteria cubital, haciendo que el
paciente abra la mano, persistiendo la presión sobre la arteria
radial.
- Si la mano recupera su coloración rosada en 5 segundos, indica
buena capacidad de la arteria cubital para irrigar el territorio, en
caso de obstrucción por hematoma de la arteria radial.
Test de Allen
Antes de proceder a realizar la técnica de punción arterial radial, se debe comprobar el flujo de la arterial
cubital, para determinar sí esta es capaz de irrigar el brazo, en caso de oclusión de la arteria radial, que podría
deberse a una técnica de punción defectuosa.
Para lo cual se realiza la prueba de Allen, que consiste en:
- Se coloca la muñeca hacia arriba con la mano apoyada.
- Se le dice al paciente que empuñe la mano.
Arteria radial - Se punciona en ángulo de 45º, es más accesible
y presenta menos complicaciones. - Se coloca el brazo
extendido con la muñeca en hiperextensión. - Se debe realizar
una presión firme durante 5 minutos, después de realizar la
punción
Arteria braquial - Se punciona en ángulo de 60º, esta arteria
tiene mayor tensión que la radial. - Se coloca el brazo
extendido en abducción, con apoyo bajo el codo. - Se debe
realizar una presión firme durante 7-10 minutos después de
realizar la punción.
Arteria femoral - Se punciona en ángulo de 90º, esta arteria
tiene mayor tensión que las dos anteriores y la punción de ella
conlleva mayores complicaciones. - Se coloca al paciente
decúbito dorsal con la pierna en abducción. - Se debe realizar
una presión firme durante 10 o más minutos, después de
realizar la punción
Elección del sitio de punción -
Zona sin edemas ni hematomas.
- Evitar zonas excesivamente
puncionadas. - Zona que
presente menos complicaciones
para el paciente y de fácil
acceso. - Piel sana y limpia.
Materiales: Jeringa de 1 - 5 – 10 -20 ml, aguja 21 ½ G, alcohol
70º o sachet de alcohol, algodón, dispositivo para material
cortopunzante, dispositivo de desecho, pinza Kelly, bandeja
limpia, guantes de procedimientos, jeringa para gases,
almohadilla, unidad refrigerante, cinta para rotular.
Procedimiento
1. Explicar al paciente el procedimiento.
2. Verificar los exámenes con la orden médica.
3. Lavarse las manos.
4. Colocarse los guantes de procedimiento.
5. Colocarle a la jeringa heparina
6. Seleccionar el sitio de punción, de preferencia la
arteria radial.
7. Coloque la muñeca ligeramente extendida.
8. Realizar el test de Allen.
9. Aplicar el antiséptico (Alcohol 70º), con movimiento
rotatorio del centro
hacia fuera.
10. Palpar la arteria.
11.Una vez identificada, puncionar en ángulo de 30 a
45º, con el bisel hacia
arriba.
12.Observar si refluye sangre y el color de ésta (arterial = rojo
rutilante).
12.Retirar la aguja y ejercer presión en el sitio de punción, hasta
que deje
de salir sangre.
13.Indicar al paciente que mantenga la presión en el sitio de
punción.
14.Retirar la aguja con pinza Kelly, (manualmente), elimine las
burbujas de aire de la jeringa y coloque el tapón de goma en la
punta de la jeringa. Rodar suavemente
la jeringa para mezclar la sangre con la heparina (no agitar).
15.Dejar la jeringa en contacto con la unidad refrigerante.
16.Colocar algodón con cinta micropore ejerciendo firme presión
sobre la zona puncionada.
17.Rotular la jeringa con nombre completo de paciente
18.Envíe a laboratorio inmediatamente.
19.Lavarse las manos.
Referencias bibliográficas
 Sangrador, O., Valdivieso, M. B.(2007). Métodos para la recogida de muestras de orina para
urocultivo y perfil urinario. Anales de Pediatría
https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1695403307707117
 Navarro A., Carrillo M. (2005). Manual de Técnicas de toma de muestra para exámenes de
laboratorio. Universidad del Valparaiso
https://www.camjol.info/index.php/CREACIENCIA/article/view/2865
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Toma de muestras de laboratorio y gasometría

  • 1. FACULTAD DE CIENCIAS DE LA SALUD CARRERA: Enfermería DOCENTE: Lcda. Mariela Patricia Sabando Saltos, Mg ASIGNATURA: INTERNADO HOSPITALARIO  NIVEL: INTERNADO TEMA: “TOMA DE MUESTRAS DE EXAMENES DE LABORATORIOS Y GASOMETRIA”
  • 2. Universidad Técnica De Manabí Facultad De Ciencias De La Salud Escuela De Enfermería AUTOR: MOREIRA RAMÍREZ LISBETH GERALDINE TUTORA: LCDA. MARIELA SABANDO SALTOS PERÍODO: MAYO 2021-ABRIL 2022 TITULO: MIASIS
  • 3. La toma de muestra consiste en recolectar una muestra biológica del paciente que posteriormente se enviará a un laboratorio para su análisis. Existen diversas muestras biológicas que se pueden examinar, algunas son la sangre, orina, heces, esputo, semen, sudor, líquido sinovial, cefalorraquídeo, entre otros. TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO TEMA: “TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO”
  • 4. TEMA: “TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO”
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  • 6.
  • 7. Muestra de esputo o desgarro. Las muestras de secreciones, se realizan para buscar algún agente patógeno que produzcan ciertas enfermedades. Estas deben ser adecuadas en cantidad y calidad para su análisis en el laboratorio clínico. Dentro de las cuales tenemos: Baciloscopía de desgarro: la cual permite la determinación de presencia de bacilo de koch en la secreción bronquial, con el cual podemos diagnosticar tuberculosis. Materiales: Guantes de procedimientos, frasco esteril. Procedimiento 1. Lávese las manos. 2. Explíquele el procedimiento al paciente. 3. Colóquese guantes de procedimientos. 4. El paciente debe estar en ayunas. 5. Se debe instar al paciente que tosa o provocar la tos con ejercicios respiratorios de inspiración y espiración profundos y al momento de eliminar el aire inspirado forzar el reflejo tusivo para que elimine una muestra de expectoración adecuada en cantidad y calidad. 6. Pedir al paciente que tosa y expectore en un frasco de boca ancha, limpio y seco; se debe echar desgarro y no saliva. 7. Registrar las características del desgarro, en hoja de enfermería. 8. Enviar examen al laboratorio clínico con su orden médica, con los datos del paciente y estipular si este está en tratamiento antituberculosis. 9. Se debe repetir el procedimiento en días consecutivos hasta completar las indicadas, enviándolas cada día al laboratorio clínico
  • 8. - Deben tomarse 2 muestras en días consecutivos en caso de diagnóstico y una en caso de control de tratamiento, junto a una orden de examen especial que indique la sospecha clínica. Muestra de secreción faríngea: En general, con esta muestra se realizan cultivos, para determinar la presencia de gérmenes patógenos (estreptococos beta hemolítico) Materiales: guantes de procedimientos, baja lenguas, tubo estéril con tapón de goma, medio de transporte, solo para cultivo corriente. 1. Explicar el procedimiento al paciente. 2. Lavarse las manos. 3. Usar guantes para procedimientos. 4. Colocar al paciente en posición cómoda y con buena iluminación hacia la zona faríngea. 5. Solicitar al paciente que pronuncie la letra A. 6. Desplazar la lengua hacia abajo (con baja lengua). 7. Frotar la torunda (hisopo) con suavidad por ambas caras de las amígdalas, y luego la parte posterior de la faringe. 8. Se coloca el hisopo con la precaución de no tocar las paredes del frasco estéril. 9. Retirarse los guantes. 10.Lavarse las manos. 11.Rotular la muestra. 12.Registrar el procedimiento. 13.Trasladar al laboratorio. Hisopado nasofaríngeo: se introduce un hisopo en un narina a una profundidad aproximada de 5 centímetros hasta llegar a la faringe y se gira durante unos 10 segundos para recoger una muestra de mucosa que pueda contener una partícula viral de ARN. Con el mismo hisopo se repite el muestreo en la otra narina. El hisopo se guarda en un tubo.
  • 9. Los gases arteriales son la obtención de una muestra de sangre arterial, adecuada en cantidad y calidad, para ser analizada en el laboratorio clínico. Los gases arteriales se utilizan para evaluar la función respiratoria y metabólica, valoración del estado acido – base de la sangre. GASOMETRIAARTERIAL TEMA: “TOMA DE MUESTRAS DE LABORATORIO” Sitios de punción Las arterias que se utilizan frecuentemente para esta muestra de sangre son las radial, braquial, femoral.
  • 10. - Se realiza presión con dedos pulgar e índice a las arterias radial y cubital simultáneamente, por unos 30 segundos, con esta presión la mano se observa pálida. - Se suelta la presión de la arteria cubital, haciendo que el paciente abra la mano, persistiendo la presión sobre la arteria radial. - Si la mano recupera su coloración rosada en 5 segundos, indica buena capacidad de la arteria cubital para irrigar el territorio, en caso de obstrucción por hematoma de la arteria radial. Test de Allen Antes de proceder a realizar la técnica de punción arterial radial, se debe comprobar el flujo de la arterial cubital, para determinar sí esta es capaz de irrigar el brazo, en caso de oclusión de la arteria radial, que podría deberse a una técnica de punción defectuosa. Para lo cual se realiza la prueba de Allen, que consiste en: - Se coloca la muñeca hacia arriba con la mano apoyada. - Se le dice al paciente que empuñe la mano.
  • 11. Arteria radial - Se punciona en ángulo de 45º, es más accesible y presenta menos complicaciones. - Se coloca el brazo extendido con la muñeca en hiperextensión. - Se debe realizar una presión firme durante 5 minutos, después de realizar la punción Arteria braquial - Se punciona en ángulo de 60º, esta arteria tiene mayor tensión que la radial. - Se coloca el brazo extendido en abducción, con apoyo bajo el codo. - Se debe realizar una presión firme durante 7-10 minutos después de realizar la punción.
  • 12. Arteria femoral - Se punciona en ángulo de 90º, esta arteria tiene mayor tensión que las dos anteriores y la punción de ella conlleva mayores complicaciones. - Se coloca al paciente decúbito dorsal con la pierna en abducción. - Se debe realizar una presión firme durante 10 o más minutos, después de realizar la punción Elección del sitio de punción - Zona sin edemas ni hematomas. - Evitar zonas excesivamente puncionadas. - Zona que presente menos complicaciones para el paciente y de fácil acceso. - Piel sana y limpia.
  • 13. Materiales: Jeringa de 1 - 5 – 10 -20 ml, aguja 21 ½ G, alcohol 70º o sachet de alcohol, algodón, dispositivo para material cortopunzante, dispositivo de desecho, pinza Kelly, bandeja limpia, guantes de procedimientos, jeringa para gases, almohadilla, unidad refrigerante, cinta para rotular. Procedimiento 1. Explicar al paciente el procedimiento. 2. Verificar los exámenes con la orden médica. 3. Lavarse las manos. 4. Colocarse los guantes de procedimiento. 5. Colocarle a la jeringa heparina 6. Seleccionar el sitio de punción, de preferencia la arteria radial. 7. Coloque la muñeca ligeramente extendida. 8. Realizar el test de Allen. 9. Aplicar el antiséptico (Alcohol 70º), con movimiento rotatorio del centro hacia fuera. 10. Palpar la arteria. 11.Una vez identificada, puncionar en ángulo de 30 a 45º, con el bisel hacia arriba. 12.Observar si refluye sangre y el color de ésta (arterial = rojo rutilante). 12.Retirar la aguja y ejercer presión en el sitio de punción, hasta que deje de salir sangre. 13.Indicar al paciente que mantenga la presión en el sitio de punción. 14.Retirar la aguja con pinza Kelly, (manualmente), elimine las burbujas de aire de la jeringa y coloque el tapón de goma en la punta de la jeringa. Rodar suavemente la jeringa para mezclar la sangre con la heparina (no agitar). 15.Dejar la jeringa en contacto con la unidad refrigerante. 16.Colocar algodón con cinta micropore ejerciendo firme presión sobre la zona puncionada. 17.Rotular la jeringa con nombre completo de paciente 18.Envíe a laboratorio inmediatamente. 19.Lavarse las manos.
  • 14.
  • 15.
  • 16.
  • 17. Referencias bibliográficas  Sangrador, O., Valdivieso, M. B.(2007). Métodos para la recogida de muestras de orina para urocultivo y perfil urinario. Anales de Pediatría https://www.sciencedirect.com/science/article/abs/pii/S1695403307707117  Navarro A., Carrillo M. (2005). Manual de Técnicas de toma de muestra para exámenes de laboratorio. Universidad del Valparaiso https://www.camjol.info/index.php/CREACIENCIA/article/view/2865 TEMA: “MIASIS”