Nuevas Tecnologías de Conservación de alimentos - FCIAL - UTA
Quantitative pcr monotoring_bockelmann_2009
1. Estancia de Postdoctorado:
Dra. Marianela Paredes Mendoza
Laboratorio de Inmunología Molecular Microbiana Facultad
de Medicina
Dra. Yolanda López Vidal
Dra. Antonia I. Castillo Rodal
Dr. Gonzalo Castillo Rojas
2. Quantitative PCR Monitoring of Antibiotic
Resistance Genes and
Bacterial Pathogens in Three European
Artificial Groundwater
Recharge Systems
Uta Böckelmann, Hans-Henno Do¨rries,Neus Ayuso-
Gabella,Miquel Salgot de Marc¸ay,Valter Tandoi, Caterina
Levantesi,Costantino Masciopinto, Emmanuel Van Houtte,
Ulrich Szewzyk,Thomas Wintgens, and Elisabeth Grohmann
APPLIED AND ENVIRONMENTAL MICROBIOLOGY, 2009,
75(1):154–163
3. Justificación
La recarga de acuíferos presenta ventajas para la
gestión integrada del ciclo del agua. Sin embargo
uno de los riesgos que se originan por la recarga
de acuíferos que más preocupa es la posible
contaminación con bacterias patógenas
resistentes a antibióticos.
Los antibióticos se emiten a diario en el medio
ambiente, se pueden detectar fácilmente en los
recursos hídricos lo que conduce a la creciente
preocupación con respecto a su contribución en
la abundancia y persistencia de la resistencia a
los antibióticos en poblaciones de
4. Justificación
Existe poca información
crítica con respecto a la
transferencia de genes
de resistencia dentro y
entre las poblaciones
de bacterias en el
ambiente.
11. Los términos
empleados para
describir los niveles de
respuesta a los
antibióticos son
tolerancia,
susceptibilidad y
resistencia.
La tolerancia, es la
habilidad de una
población de no ser
dañada en las dosis
normalmente utilizadas
para controlar otras
especies.
La susceptibilidad,
12. Furuya EY and Lowy F (2006) Antimicrobial-resistant bacteria in the community setting
Nat Rev Microbiol. 4: 36–45 doi:10.1038/nrmicro1325
Transferencia horizontal de genes
13.
14.
15. OBJETIVOS
Detectar y cuantificar la presencia de seis
diferentes genes de resistencia a los antibióticos
Detectar y cuantificar la presencia
de tres patógenos intracelulares humanos
Determinar indicadores de contaminación fecal
16. ¿ Porqué?
Los genes de resistencia
fueron seleccionados debido a su abundancia y
persistencia
ampC (resistencia a la ampicilina)
mecA (resistencia a la meticilina)
blaSHV-5 (resistencia extendida -lactámicos,
resistencia a las penicilinas y cefalosporinas)
ermB (eritromicina)
tetO (resistencia a la tetraciclina)
vanA (resistencia a la vancomicina).
17. ¿ Porqué?
Yersinia enterocolitica, Helicobacter pylori, y
Mycobacterium avium subsp. paratuberculosis
Sobreviven por largo tiempo en los
sistemas acuáticos y
causan enfermedades relacionadas
con el uso y consumo de agua
18. Metodología
Torreele, Bélgica, Sabadell, España y Nardo, Italia,
Concentración de la muestra
Ruptura celular y extracción de ADN total
qPCR en tiempo real (efecto Peltier, sondas y
fluorocromos ).
19. RESULTADOS
En el agua potable y de riego, ninguno de los
patógenos se detectaron.
tetO ermB y se encontraron con frecuencia en el
agua tratada de Sabadell nardo.
mecA se detectado una sola vez en el agua
tratada de Sabadell.