EDUCACION

1. Leptospira sp.
M.V. Lorena Mori Alvarez
Sección de Bacteriología y Micología
Laboratorio de Microbiología y Parasitología
UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE
SAN MARCOS
FACULTAD DE MEDICINA VETERINARIA

2. CLASIFICACION
16 genoma
especies
+ de 200 serovares
18 subgrupos
•L.
icterohaemorrhagiae,
•L. autumnalis
• L. canicola
•L. pomona
•L. georgia
• L. australis
• L. grippotyphosa

3. TAXONOMIA
 División: Procariotes.
 Clase: Schizomicetes.
 Orden: Spirochaetales.
 Familia: Leptospiraceae.
 Género: Leptospira.
 Especies: L. interrogans, L. biflexa.

4. CARACTERISTICAS GENERALES
• Son bacterias aeróbicas o
microaerofílicas .
• Oxidasa y catalasa positivas
• Forma espiral
• Finas.
• Crecimiento lento
• 5–25 μm largo y 0.1-0.3
μm de ancho.
 Moviles : 2 filamentos
axiales (flagelo
periplasmico con
inserciones polares ).
• Tienden a formar un
gancho que se ha
diferenciado de otras
espiroquetas patógenas.
• Movimiento :translación y
no translacional ( flexión y
rotación)

5. CARACTERISTICAS GENERALES
 Pueden elaborar hialuronidasas,
fibrinolisinas, hemolisinas y lipasas.
 Estructura de doble membrana tipica.
 Membrana externa o envoltura LPS y PME
de gran importancia antigénica.
 LPS: altamente inmunogeno y responsable de la
especificidad de serovar, baja actividad endotoxica.
 Estimula la adherencia de neutrofilos a las celulas
endoteliales y plaquetas.
 Un cilindro protoplasmático de forma
helicoidal con el contenido celular-material
nuclear, ribosomas, mesosomas y cuerpos
de inclusión celular

6. CARACTERISTICAS GENERALES
 Se puede cultivar en
medios artificiales.
 Leptospiras son endemicas
en animales salvajes y
domesticos.
 Ratas y otros roedores son
reconocidos como los
principales reservorios.
 No hay especificidad de
huésped ni de cuadro
clínico pero podemos
encontrar ciertos serovares
más frecuentemente en
algunos mamíferos
Scanning electron micrograph
of Leptospira interrogans bound to
a 0.2-μm filter. Size range is 5–25
μm (average 10 μm) in length and
0.1–0.3 μm in diameter.

7. RESERVORIOS
 Ambiente urbano : perros y ratas
 Campo : bovinos, porcinos y equinos
 "huéspedes reservorios primarios“
 "huéspedes reservorio incidentales o
accidentales"

8. RESERVORIOS PRIMARIOS
L. canicola
L. bataviae
L. Hardjo
L. pomona
L. bratislava
L.
icteohaemor
rhagiae
L. Ballum
L. hardjo
L. bratislava
RESERVORIOS ACCIDENTALES
L.
icterohaemorrha
giae y L. georgia
L.
grippotypho
sa
L. autumnalis L. pomona L. pomona L. pomona
RESERVORIOS

9. RESERVORIOS
 Animales silvestres , zorrillos, cabras, conejos
y murciélagos : Reservorios primarios por el
ph de su orina.
 1 ml de orina de vaca puede contener hasta
100 millones de microorganismos.
 Hombre : Mal reservorio, huesped accidental.
 La excreción de la leptospira en la orina de los
reservorios puede ocurrir por períodos
prolongados y contaminar el ambiente

10. TRANSMISION
 No se multiplica fuera del huésped y su
supervivencia depende de las condiciones
ambientales en las que se encuentren
(agua y suelo)
◦ pH<6 y pH>8 son inhibidores
◦ temperaturas <7-10ºC (44.6 - 50ºF) y
temperaturas >34-36ºC (93 - 96ºF) son
nocivas
 Sobreviven hasta 180 días en suelos
húmedos, varios meses en superficies
acuosas y sobreviven mejor en agua
estancada que en movimiento.

11. TRANSMISION
 La infección en humanos y animales es
por contacto directo con :
◦ orina infectada, material o fluidos fetales y
placentarios, descargas uterinas, o por contacto
indirecto con el ambiente contaminado.

12. PATOGENIA INGRES
O
(PIEL Y
MUCOSA
S)
BACTEREMIA
No fagocitada/no
destruida por no
y Mo.
No Ac especificos
Produccion de
Ac aglutinantes
y opsonizacion
(entre 5-7 d)
SI LA RESPUESTA NO ES SUFICIENTE
TEJIDOS
•LPS
•Formación
complejosinmunes
•Liberación
citoquinas
•Vasculitis
DAÑO
ORIN
A

13. INFECCION

14. DIAGNOSTICO
 Se basa en el cultivo del organismo o en
la demostración serológica.
◦ Cultivo
◦ Pruebas serológicas
◦ PCR

15. CULTIVO
 Las muestras para cultivo deben
ser múltiples y tomadas según el
estadío de la enfermedad:
◦ 1º semana: sangre y LCR
◦ 2º semana en adelante : orina.
 La bacteria puede permanecer en la
orina hasta 11 meses después de
iniciada la enfermedad.
 Medio de Fletcher enriquecido
con suero de conejo.
◦ Cultivo largo : 5-6 semanas.

16. CULTIVO
 El cultivo de fluidos antemortem : orina,
sangre, humor acuoso.
 Cultivo de tejidos posmortem (riñón,
hígado, feto, placenta)
◦ No son prácticos
◦ Pero si se logra se puede asociar a pruebas de
histopatología o inmunohistoquímica.

17. PRUEBAS SEROLOGICAS
 MAT
 ELISA
 IF

18. MAT
•Técnica que usa diluciones seriadas de suero en contacto con una
suspensión de leptospiras vivas, y llevadas a incubación a 28ºC por 2 horas o a
37ºC por 1 hora .
•Se lee al microscopio de campo oscuro considerando, 50% de aglutinación de
leptospiras vivas como el título de corte para la positividad de la reacción.
Requerimientos de la muestra para MAT
Sangre completa o suero recogido en tubo estéril en cantidad de
aproximadamente 5 ml. En base a muestra extraída lo más precozmente
posible frente a sospecha de la enfermedad.
Antígenos
Los antígenos que se utilizan en esta técnica son cultivos de leptospiras
vivas, de 10 días de crecimiento en medio líquido EMJH.
Es el estándar de oro para la serología en
el diagnóstico de la enfermedad de la
leptospirosis

19. MAT

20. MAT
 Debido a que los anticuerpos pueden persistir por
meses y aun por años, su presencia en una muestra
única no necesariamente refleja una enfermedad
aguda.
 En general se acepta que títulos de 1:1600 o más son
una prueba demostrativa de infección reciente.
 Un alza de 4 veces o más el valor inicial tiene
carácter confirmatorio para enfermedad aguda.
 Un título mayor de 1:100 es muestra positiva para
casos donde se quiera demostrar la exposición