El documento describe el síndrome diarreico agudo, incluyendo sus principales agentes etiológicos como rotavirus, E. coli, Shigella y Salmonella. Explica que es una causa importante de morbilidad y mortalidad en niños y que se transmite principalmente por ingestión de agua o alimentos contaminados. Además, detalla los procedimientos recomendados para el procesamiento de muestras de coprocultivo para identificar los patógenos causantes.

1. COPROCULTIVO
UNIVERSIDAD SANTO TOMÁS
CARRERA DE ENFERMERÍA
LABORATORIO DE
MICROBIOLOGÍA Y VIROLOGÍA

2. Síndrome diarreico agudo (SDA)
 Alteración en el contenido de agua, volumen o
frecuencia de las deposiciones:
 Disminución de la consistencia (blanda o líquida).
 Aumento de la frecuencia (igual o superior a 3
deposiciones al día).
 La diarrea infecciosa es aquella que posee una
etiología infecciosa y suele acompañarse de
náuseas, vómitos y dolor abdominal.

3. Epidemiología
 El SDA es causa importante de morbilidad y mortalidad en
pacientes pediátricos.
 En Chile, las muertes por diarrea aguda, en niños bajo 5 años de
edad, han disminuido desde 3,8/100.000habs en 1990 a
1,7/100.000habs en 1998.
 En los adultos la incidencia reportada en países desarrollados
varía de 0,75 a 1 episodio por persona al año.
 En la epidemiología del SDA se han involucrado como mecanismos
de transmisión:
 Ingestión de agua o alimentos contaminados.
 Transmisión directa persona a persona.

4.  La diarrea aguda es aquella que presenta menos de 14
días de evolución.
 Se entiende por diarrea secretora aquella acuosa de
alto volumen, en ausencia de sangre, pus, dolor
abdominal intenso y fiebre.
 Se entiende por diarrea disentérica aquella que:
 Presenta deposiciones mucosas y/o sanguinolentas
frecuentes.
 De volumen escaso a moderado.
 Puede estar acompañada de tenesmo, fiebre o dolor
abdominal intenso.

5. Principales agentes etiológicos de
diarrea aguda
Agentes etiológicos
Virales Bacterianos
Rotavirus
Adenovirus
Astrovirus
Calcivirus
Escherichia coli:
enteropatógena
enterohemorrágica
enteroinvasora
enterotoxigénica
enteroagregativa
adherencia difusa
Shigella
Salmonella
Yersinia
Campylobacter
Vibrio
Aeromonas
Clostridium difficile
Parasitarios
(enteroparásitos)
Entamoeba histolytica
Giardia lamblia
Isospora belli

6. Agentes etiológicos según
características clínicas
Tipo de paciente
Pediátrico Adulto Inmunosuprimido
Secretora Disentérico Secretora Disentérica Variable
Rotavirus,
Adenovirus,
ECEP –ET- EAgg
Campylobacter
Shigella,
Salmonella,
Campylobacter,
ECEH - EI
Vibrio,
Salmonella,
Campylobacter,
ECET
Salmonella,
Shigella,
Yersinia,
Campylobacter,
ECEH
Enteropatógenos
clásicos más
otros oportunistas

7. Agentes etiológicos según
características clínicas
Perfil
epidemiológico
Brote epidémico
Tipo de deposición variable
Clostridium difficile, ECEP, Rotavirus

8. Estudio bacteriológico del SDA:
Recomendaciones
 SDE en pacientes con factores de riesgo especiales:
diarrea con sangre, diarrea prolongada en
inmunosuprimidos o neonatos, antecedentes de viaje
reciente.
 Estudio de brotes de gastroenteritis asociados al
consumo de agua o alimentos o enfermedades
transmitidas por alimentos.
 Estudios epidemiológicos para actualizar la
importancia relativa de los agentes etiológicos o para
programas de vigilancia.

9. Estrategias para el
procesamiento del coprocultivo
 Gran valor en estudios epidemiológicos.
 El estudio etiológico del SDA en todo paciente es
cuestionable:
 Episodios autolimitados.
 Manejo clínico es independiente de la etiología.
 Prevención y manejo de la deshidratación.
 Se ha propuesto que la presencia de leucocitos
fecales en deposición podría definir los patógenos a
estudiar, sin embargo su valor predictivo es
insuficiente.

10. Impacto clínico: Bajo
Beneficio con tratamiento: Shigella
Beneficio sin tratamiento ECEH
Costo: alto
Medios de cultivo primario
Medios de cultivo especiales
Baterías (TSI, LIA, MIO)
Aglutinaciones.
Identificación de factores de patogenicidad
Rendimiento: Bajo
Positividad del coprocultivo 2 – 5%
Es muestras recibidas en laboratorios
de microbiología de rutina

11. Momento de obtención de la
muestra
 Obtener la muestra precozmente dentro de la evolución
del cuadro clínico.
 La muestra debe obtenerse en la etapa aguda de la
enfermedad.
 Las especies de Salmonella y Shigella están presentes en la
deposición en cantidad apreciable en los tres primeros días
de la enfermedad, predominando sobre la flora normal.
 La muestra debe tomarse antes de iniciar tratamiento
antibiótico.

12. Obtención de la muestra
 Deposición:
 Es una muestra representativa del sitio de la infección.
 Se debe seleccionar aquella que presente mucus, pus o
sangre.
 La desventaja es la flora comensal acompañante.
 Forma de obtención:
 Espontánea (recién emitida o pañal).
 Catéter rectal.
 Tórula rectal (en pacientes hospitalizados, especialmente
lactantes)
 Tejido colónico obtenido por endoscopía, en frasco estéril
con solución salina.

13. Transporte de la muestra
 El medio de transporte recomendado es Cary – Blair:
 Permite una adecuada sobrevida de Salmonella spp., Shigella
spp., Vibrio cholerae, Vibrio parahaemolyticus, Campylobacter
spp. y Yersinia spp.
 Tiene un bajo contenido de nutrientes para evitar la
multiplicación bacteriana.
 Tiene un bajo potencial de redox
 Tiene un pH elevado (8,0 – 8,5) que minimiza la destrucción
bacteriana.
 Es de bajo costo.

14.  La muestra recién emitida puede permanecer hasta una hora sin
medio de transporte.
 Más de una hora, requiere medio de transporte sin refrigerar, el
cual se puede mantener hasta 48 – 72 hrs.
 En muestras que no se siembran antes de una hora o sin medio de
transporte, el enteropatógeno más afectado es Shigella spp.
 Es posible recuperar en Cary – Blair los patógenos entéricos hasta
dos semanas después, sin embargo se recomienda realizar la siembra
antes de 72 horas.
 Se recomienda estudiar una sola muestra.

15. Criterios de rechazo
 Muestra de deposición formada, excepto
durante el estudio de portadores.
 Tórula rectal en ausencia de deposición
macroscópica.
 Muestra con más de una hora a temperatura
ambiente sin el medio de transporte.

16. Medios de cultivo
 Básicos:
 Mac – Conkey más un segundo medio selectivo diferencial
(Agar SS, Agar XLD).
 Agar Mac – Conkey Sorbitol para estudio de ECEH O157
(colonias incoloras sorbitol negativas).
 Complementarios:
 Caldo selenito.
 Medio selectivo para Yersinia spp. (Agar CNI).
 Medio no selectivo como agar sangre: Estudio dirigido para
Aeromonas spp.
 Medio selectivo para Campylobacter spp.

17. Incubación
 Para los patógenos entéricos habituales se
requiere atmósfera en aerobiosis durante 18 –
24 horas a 35 – 37°C.
 La búsqueda de Yersinia spp. requiere 48 hrs.
(el segundo día a temperatura ambiente).
 La búsqueda de Campylobacter spp. requiere
microaerofilia a 42°C durante 48 hrs.

18. Identificación bacteriana: Agentes
enteropatógenos frecuentemente aislados
 Shigella spp.
 Salmonella spp.
 Yersinia spp.
 ECEP, ECEH, ECHI, ECET, ECEAgg., ECAD
 Campylobacter spp.
 Vibrio spp.
 Aeromonas spp.
 Clostridium difficile.

19. Estudio de susceptibilidad in
vitro: Antibiograma (ATB)
 Como criterio general, la recomendación es no realizar
de rutina el ATB a las bacterias enteropatógenas
aisladas.
 El uso de antimicrobianos está indicado para un número
limitado de agentes y cuando la severidad del cuadro lo
amerita.
 El ATB debería realizarse a las cepas de Shigella spp.
(alta prevalencia de cepas multirresistentes).
 Los sensidiscos recomendados por el ISP son:
Ampicilina, Cotrimoxazol, Cefotaxima, Cloranfenicol,
Ácido nalidíxico y Ciprofloxacino

20.  En las cepas de Salmonella spp. sólo es útil
realizar el ATB cuando se plantea que la
infección es invasora y no se limita a una
infección intestinal.
 Cuando se realiza el ATB, al panel de
sensidiscos de Shigella spp., se debe agregar
Gentamicina y Amikacina (aminoglicósidos)

21. Plazo de entrega del informe
 Búsquede de Salmonella spp., Shigella spp., y ECEP (en
menores de 2 años):
 El informe se envía a las 48 – 72 horas.
 Búsqueda de Yersnia spp.:
 Se envía un informe preliminar a las 72 horas y un informe
definitivo a los 24 días.
 Búsqueda de Campylobacter spp.:
 El informe se envía a las 48 – 72 horas.
 Búsqueda de Vibrio spp.:
 El informe se envía a las 72 horas.