DESCRIPCIÓN DE EQUIPOS DE LABORATORIO - CUELA CAMACHO AGUSTÍN JUNIOR

1. UNIVERSIDAD NACIONAL DE MOQUEGUA
ESCUELA PROFESIONAL DE INGENIERÍAAMBIENTAL
‘’Año de la unidad, la paz y el desarrollo”
23 DE JUNIO DEL 2023
ILO – MOQUEGUA – PERÚ
DESCRIPCIÓN DE EQUIPOS DE LABORATORIO DE
BIOTECNOLOGÍA
CURSO:
BIOTECNOLOGÍA
DOCENTE
Dr. Hebert Hernán Soto Gonzáles
ESTUDIANTE:
CUELA CAMACHO, JUNIOR AGUSTIN

2. 1. INTRODUCCIÓN
La utilización de materiales de laboratorio, conllevan a establecer normas y criterios para el
manejo adecuado de las sustancias químicas y residuos producidos en el transcurso de las
actividades de enseñanza, investigación y extensión en el laboratorio.
En el presente trabajo se detallarán las características y funciones los diferentes equipos de
laboratorio establecidos en la visita al laboratorio de biotecnología, con el fin de tener en
conocimiento su uso y poder tener un amplio conocimiento en los equipos de laboratorio.
2. OBJETIVO
• Conceptualizar las características y funciones de los equipos de laboratorio
3. MARCO TEÓRICO
3.1. Incubadora con agitación
Una incubadora con agitación es un equipo con control de temperatura, que
además de realizar las labores de incubación de las muestras, también es capaz de
agitarlas durante el proceso. Está destinada para una variedad de aplicaciones, como el
cultivo de células, fermentación, hibridación, bioquímica y el estudio de enzimas y
tejido celular, todos los cuales necesitan de un control preciso de la temperatura, además
de agitación.
Este equipo resulta especialmente cómodo para el uso en laboratorio debido a
su tamaño compacto, uso amigable y pantalla touch.
La agitación se utiliza en el laboratorio ya que mejora el crecimiento celular, al
ayudar con la distribución de los nutrientes y aportar más oxígeno al cultivo. A pesar de
que el agitador es un equipo básico en los laboratorios, existe una variedad de equipos
que la incluyen, como es el caso de la incubadora.

3. 3.2. Mini centrífuga - Mini spin
Las microcentrífugas MiniSpin y MiniSpin plus, potentes y fáciles de usar, son
lo suficientemente pequeñas para poder equipar cualquier puesto de trabajo con una
centrífuga “personal” para la realización de un amplio espectro de separaciones
biomoleculares y centrifugaciones rápidas (quick spins). Dos modelos están
disponibles para satisfacer sus requisitos de funcionamiento.
CARACTERÍSTICAS
▪ Extremadamente compactas, ocupando un espacio excepcionalmente pequeño.
▪ Rotor con una capacidad de 12 x 1,5/2,0 mL.
▪ Centrifugado a 12.100 x g.
▪ Aceleración y desaceleración de <13 s.
▪ Pantalla digital clara y fácil de utilizar para indicación de tiempos y velocidades.
▪ Funcionamiento extraordinariamente silencioso.
▪ Carcasa de rotor metálica.
▪ Botón “Short Spin” separado para la rápida y cómoda realización de “quick
spins”.
La excelente circulación de aire minimiza el calentamiento y protege las muestras
termosensibles.

4. La tapa se abre automáticamente al final de la centrifugación para prevenir el
calentamiento de la muestra y reducir el tiempo de manejo.
o Motor libre de mantenimiento.
o El rotor es autoclavable a 121 °C, 20 min.
o Rotor y tapa de rotor resistentes a las sustancias químicas.
ESPECIFICACIONES
o Dimensiones (A x P x A en cm): 22,6 x 23,9 x 13,0 cm.
o Altura con tapa abierta: 25 cm.
o Peso (en kg): 4,3 kg (incl. rotor).
o Consumo: máx. 85 W.
o FCR máx: 100 x g.
o Velocidad (en incrementos de 100 rpm): 800-13.400 rpm.
o Indicador de velocidad en rpm o FCR: Sí.
o Capacidad del rotor: 2 rotores 12 x 1,5/2,0 Ml.
o Tiempo de aceleración hasta velocidad máx:13 s.
o Tiempo de frenado desde velocidad máx: 12 s.
o Temporizador: de 15 s a 30 min.
o Nivel de ruido: <49 dB(A).
o Fuente de alimentación: 120 V/50-60 Hz.
3.3. NanoDrop One C
Conectividad avanzada para compartir, imprimir y almacenar datos
Múltiples opciones de exportación de datos: transfiera los resultados con un
USB, o conexión Wi-Fi o Ethernet a su PC o guarde los datos directamente en Thermo
Fisher Cloud a través de la red Ethernet o Wi-Fi.
Visualice, organice y comparta datos en un PC: Una vez exportados, puede
visualizar los formatos de datos completos (p. ej., gráficos espectrales de análisis de
sustancias contaminantes) y organizar experimentos utilizando el software de
visualización para PC de NanoDrop One/OneC .

5. Opciones sencillas para enviar los datos a la impresora: Imprima sus
resultados directamente desde el instrumento NanoDrop One a través de la conexión a
la impresora mediante Wi-Fi, Ethernet o USB; imprima los datos exportados desde el
PC usando el software de visualización para PC de Nanodrop One/OneC .
Acceso a los datos 24 horas del día, 7 días de la semana: Visualice los datos
en cualquier momento y en cualquier lugar desde cualquier dispositivo (dispositivos
Android o iOS, ordenadores de sobremesa PC o Mac) cuando recopile, analice,
almacene y comparta sus datos de NanoDrop One en la aplicación NanoDrop que se
encuentra en Thermo Fisher
Características destacadas
• Incluye las posiciones de pedestal y cubeta que permiten aumentar la
flexibilidad en los experimentos y el intervalo dinámico.
• Mida muestras diluidas, lleve a cabo experimentos cinéticos y realice
mediciones de densidad óptica a partir de cultivos bacterianos.
• La posición de cubeta incluye control de la temperatura y agitación.
Capacidades
▪ Amplia gama espectral (190 - 850 nm) que permite medir una gran variedad de
tipos de muestras:
▪ Péptidos (205 nm)
▪ ADN y ARN (260 nm)
▪ Proteínas purificadas (280 nm)
▪ Ensayos de toxicología y colorantes industriales (490 nm)
▪ Nanopartículas de oro (520 nm)
▪ Ensayos colorimétricos de proteínas (BCA, 562 nm; Bradford, 595 nm; Lowry
modificado, 650 nm; Pierce, 660 nm)
▪ Mediciones de densidad óptica (600 nm)
▪ La combinación del sistema patentado** de retención de muestras con la cubeta
permite el uso de concentraciones bajas y altas (2,0 - 27.500 ng/ µl de ADNdc
y 0,06 - 820 mg/ml de BSA)
▪ Mediciones con pedestal que solo requieren 1 - 2 µl de muestra y no precisan
dilución de la muestra, incluso en el caso de muestras con concentraciones altas

6. ▪ Calcula las relaciones de pureza de la muestra (A260/A280 nm y A260/A230
nm)
▪ Métodos previamente configurados para ADN, proteínas A280, micromatriz,
proteínas y etiquetas, Pierce 660, Bradford, BCA, y Lowry
▪ Software sencillo que incluye métodos personalizados y capacidades de
exportación de datos
3.4. Micropipeta
La micropipeta es un instrumento de laboratorio empleado para absorber y
transferir pequeños volúmenes de líquidos y permitir su manejo en las distintas técnicas
científicas.
Los volúmenes captables por estos instrumentos varían según el modelo: los
más habituales, denominados p20, p200 y p1000, admiten un máximo de 20, 200 y
1000 μl, respectivamente.
Es de destacar que el uso de micropipetas permite emplear distintos líquidos sin
tener que lavar el aparato: para ello, se emplean puntas desechables, de plástico, que
habitualmente son estériles. Existen varios tipos de puntas: por ejemplo, las amarillas
para pipetear volúmenes pequeños (por ejemplo, 10 μl), y las azules para pipetear
volúmenes grandes (por ejemplo, 800 μl).

7. Tipos:
Existen micropipetas manuales, en las que el volumen a aspirar se fija girando un botón
en su parte superior que está conectado a un sistema analógico de confirmación de
volumen, y automáticas, en las cuales dicho sistema es digital.
Hay micropipetas simples, que sólo acogen una punta cada vez, y multicanales, que
permiten incorporar múltiples puntas (por ejemplo, ocho), absorbiendo el mismo
volumen en todas ellas.
3.5. Centrifugadora 5425 R
Para procesar muestras sensibles a la temperatura, la centrífuga refrigerada 5425 R
proporciona un control preciso de la temperatura con su sistema de refrigeración avanzado.
• Tapas Eppendorf QuickLock™ estancas a los aerosoles para una manipulación sencilla
y segura.
• Funciones de software excepcionales (p. ej., rampas de aceleración y frenado, 3 botones
de programación (solo centrífuga 5425), función corta sin pulsar continuamente la
tecla).
• Programa de rotor ampliado (p. ej Rotor de 5,0 ml, rotor de cestillo basculante para tiras
de PCR)
• Diseño OptiBowl™ para un funcionamiento silencioso, incluso sin tapa de rotor.
• Suave cierre de la tapa con un solo dedo para un funcionamiento ergonómico.
• Capacidad máx. del rotor: recipientes de 10 × 5,0 ml
• Vel. máx.: 21.300 × g (15.060 rpm)
3.6. Termociclador En tiempo real PCR
Un termociclador en tiempo real es un instrumento especializado que se emplea
en los laboratorios de biología molecular para llevar a cabo de forma eficiente y rápida
la reacción en cadena de la polimerasa en tiempo real (qPCR). Esto lo logra mediante
la realización automática y cíclica de cambios de temperatura que se requieren para la
amplificación de una cadena de ácido desoxirribonucleico (ADN); a partir de una
enzima termoestable.

8. Este tipo de termociclador posee un novedoso sistema óptico acoplado, que
monitoriza la señal de los fluoróforos usados para detectar el producto amplificado.
Debido a que la fluorescencia de estos aumenta conforme el producto se amplifica, se
combinan los procesos de amplificación y detección en una sola etapa. Actualmente
existen diferentes tipos de termocicladores en tiempo real, cuyas diferencias principales
son la fuente de energía, que utilizan para la excitación. Por lo general hay tres tipos de
fuentes: las lámparas de luz, diodos de emisión de luz (LED) y láseres.
Usos de un termociclador en tiempo real
Los termocicladores en tiempo real están diseñados para ofrecer temperatura
estable, rendimiento óptico excepcional, precisión y exactitud. Estos instrumentos se
utilizan ampliamente en diversos campos como la investigación científica, detección y
diagnósticos clínicos, aplicaciones forenses y pruebas de aseguramiento de la calidad.
3.7. Termociclador convencional T100 BioRad
El termociclador T100™ Thermal Cycler ofrece una interface para el despliegue
de información y de programación amigable con la confianza y el desempeño que
esperas de BIO-RAD. La tecnología de gradiente hace sencillo optimizar las reacciones

9. en una sola corrida. La placa para muestras de 96 pozos y la tapa térmica autoajustable
tiene la capacidad de acomodar tubos, tiras de tubos y placas.
Especificaciones
• Capacidad de muestras: 96 x tubos de 0.2 mL , hileras de tubos de 0.2 mL o 1 placa
de 96 pozos
• Velocidad máxima del aumento de temperatura: 4 °C/seg
• Velocidad promedio del aumento de temperatura: 2.5 °C/seg
• Rango de temperatura: 4–100 °C
• Precisión en la temperatura: ±0.5°C de la temperatura programada
• Uniformidad de la temperatura: ±0.5°C entre pozos dentro de los 30 seg de adquirir
la temperatura deseada.
• Poder de entrada: 100–150 VAC, 50–60 Hz; 220–240 VAC, 50–60 Hz; 670 W
máximo
• Fusibles: Dos 6.3 A, 250 V, 5 x 20 mm
• Pantalla: 5.7'' VGA a color y con tecnología touch screen
• Puertos: 1 USB A
• Memoria: 500 programas en el equipo; ilimitado con memoria externa (no incluida)
• Dimensiones: (W x D x H) 26 x 47 x 23 cm (10 x 18 x 9'')
• Peso: 9 kg (20 lb)

10. 3.8. Electroforesis
La electroforesis es una técnica de laboratorio que se usa para separar moléculas
de ADN, ARN o proteínas en función de su tamaño y carga eléctrica. Se usa una
corriente eléctrica para mover las moléculas a través de un gel o de otra matriz. Los
poros del gel o la matriz actúan como un tamiz, lo cual permite que las moléculas más
pequeñas se muevan más rápido que las moléculas más grandes. Para determinar el
tamaño de las moléculas de una muestra, se usan estándares de tamaños conocidos que
se separan en el mismo gel y luego se comparan con la muestra.

11. 4. CONCLUSIÓN
Podemos concluir que los equipos de laboratorio nos sirven de gran ayuda para poder
realizar diferentes experimentos los cuales sirven para analizar trabajos de investigación
con respecto al ADN, ARN, parte microbiológica, entre otros, recibiendo conceptos
teóricos básicos para el uso correcto de los equipos de laboratorio de biotecnología.

12. 5. BIBLIOGRAFÍA
• Atkins J. y Jones, L. (2012). Principios de Química. Los caminos del descubrimiento,
5ª Ed. Editorial Médica Panamericana, Madrid.
• Bawer JD. (1996). Análisis Clínicos, Métodos e Interpretación. Barcelona. Ed. Reverté.
• Castañeda, E.; Larios, E. (1995). Manual de Laboratorio de Química General. Limusa.
• Ophardt, C.E. (1995). Chemistry: Foundations and Applications. Green River
Community College.
• Patnaik, P. (2003). Dean's Handbook of Analytical Chemistry. Nueva York: McGraw-
Hill.