Sindrome de distres respiratorio neonatal

1. Síndrome de distrés
respiratorio neonatal
Y
Neumoenteritis
UNIVERSIDAD DE CUENCA
Integrantes: Erika Bueno; Ana Julia Calle; Daniela Castro; Edgar Encalada (9no B)

2. Síndrome de distrés respiratorio o
enfermedad de membrana hialina
déficit de surfactante
variaciones
frecuencia
ritmo
carácter
hipoxia
(Wilson, Lofstedt, & Lakritz, 2015)
• Presente en neonatos
• Por dificultades respiratorias Prematuros
Esfuerzo respiratorio
intercambio gaseoso inadecuado

3. ETIOLOGÍA
• Aspiración de meconio
• Oxigenación inadecuada de la sangre
-Captación (altura, atelectasia, obstrucciones)
-Anemia
• Acidosis metabólica
(Wilson, Lofstedt, & Lakritz, 2015)
(Mair & Menzies, 2013)
Causa principal: Déficit de surfactante
Otras razones:
• Exceso de calor medioambiental
• Septicemias neonatales
• Desordenes en la médula, traumas, inflamación,
infecciones pleurales, neoplasias etc.
• Disfunción de los nervios motores o debilidad de los
músculos respiratorios (botulismo o la hipocalcemia)
En caballos: Infección EHV1 Herpesvirus equino o EVA Virus de
la arteritis viral equina (menos común)

4. Signos de distrés respiratorio neonatal
• Taquipnea
• Posición ortopneica
• Ruido respiratorio anormal (gruñido espiratorio)
• Esfuerzo intercostal
• Espiración acentuadas por una elevación abdominal
• Mucho esfuerzo para respirar de forma que todo el cuerpo
se balancea, el ano bombea hacia adentro y hacia afuera, y
el animal no se mueve ni come por la falta de oxigenación.

5.  Historia de la edad gestacional, distocias y signos clínicos.
 Radiografías para evaluar zonas atelectasicas del pulmón
 Gasometría: hipoxemia con normocapnia o hipocapnia, o hipoxemia con hipercapnia.
-La hipercapnia puede verse exacerbada por la fiebre o la administración de carbohidratos o bicarbonato.
DX Diferenciales: neumotórax, hernia
diafragmática, neumonía por aspiración o
insuficiencia cardíaca
Diagnóstico

6. • Se debe separar a los animales enfermos trasladarlos a un lugar seco y bien
ventilado, pero sin corrientes de aire.
• Evitar el consumo de alimento en polvo para que no se produzca aspiración de
agentes irritantes.
• Brindar agua para evitar la deshidratación.
• Restringir la cantidad de calostro o leche ofrecida a los terneros (mejora rápida)
enterocitos son especialmente propensos a la hipoxia en la parte superior de las
vellosidades intestinales y se agrava por la hipoxemia en los terneros con SDR.
Tratamiento
(Rollin & Guyot., 2015)

7. Tratamiento farmacológico
Antibióticos
• Tilmicosina 10mg/Kg SC
• Oxitetraciclina 10mg/Kg IM, VO
• Ceftiofur 1mg/Kg IM
AINES
• Flumixin meglumine
2.2mg/Kg IV
• ketoprofeno 3mg/Kg IM
Corticosteroides • (Betametasona 2-10 mg/Kg)
Broncodilatadores,
mucolíticos,
expectorantes
• Bromhexina Disminuye la viscosidad del moco en vías
respiratorias aumentando su eliminación mucociliar.
• Inyección de EPINEFRINA  adrenérgico miorelajane que actúa sobre los bronquios hace que mejore la
ventilación en pulmones y en vías respiratorias.
• Hidratantes orales

8. Aplicar 2 ml de la solución
reconstituida por cada 100 kg de
peso vivo, cada 24 horas durante
tres días consecutivos vía
intramuscular. El tratamiento puede
prolongarse hasta por 4 a 5 días
como máximo
La dosis recomendada es de 2.0
ml/45 kg de peso (2.2 mg/1 kg de
peso) para obtener un efecto
antiinflamatorio, antipirético y
analgésico.
Vía IV.

9. La dosis es 0.5 mg de
Bromhexina por cada kg de
peso corporal, equivalente a 1
mL por cada 6 kg de peso
corporal.
De 8 a 20 mL en terneros.
Bovinos: 4 a 8 mL.
Vía subcutánea i
intramuscular.

10. • Las medidas de control se deben aplicar desde el origen de los terneros, con unas
buenas medidas de higiene.
• Además, es fundamental tener en cuenta los animales jóvenes, terneros
lactantes o destetados recientemente, hacer un buen encalostrado, así como
facilitando un destete progresivo libre de estrés, controlar la nutrición que sea
equilibrada y permita el crecimiento óptimo y un buen desarrollo del sistema
inmunitario.
• Se debe evitar la acumulación de polvo y controlar la humedad y la temperatura
y un buen sistema de bebederos.
• La vacunación de los terneros es crucial ya que ayudan a prevenir gran parte de
las infecciones, aplicar antes de la entrada a los cebaderos o en el momento de la
entrada, dependiendo de cada caso y según el criterio del veterinario que
maneja las entradas.
Prevención y control
(Rollin & Guyot., 2015)

11. Métodos de tratamiento
Artículo científico 1

12. Asistencia ventilatoria
• Requieren de personal y equipos
• Evaluar periódicamente la terapia
elegida (evita tto prolongados)
>Oxigenoterapia en terneros
• La administración intranasal de oxigeno en 20 terneros con signos de SDR produjo
el aumento de la Pao2 un 17.8 mmHG en 3 horas
• El ternero que requiere insuflación de oxígeno por periodos prolongados la sonda
debe alternarse en las fosas cada 48h (eliminar secreciones)
• Recordar: Oxigenoterapia solo aumenta la dificultad de oxígeno, no soluciona el
pulmón atelectásico.

13. Terapia con surfactantes
• Los surfactantes están disponibles en medicina humana y son caros
• Tomar surfactantes de pulmones e vacas de los mataderos
• Analizar los fosfolípidos del surfactante, luego administraron 100 mg/kg de
surfactante en la tráquea de los terneros prematuros por un tubo
endotraqueal
• Proceder a tener al ternero en decúbito esternal, lateral izquierdo y
derecho (distribución del surfactante)
• El 40% de los terneros tratados con surfactante murieron a relación de los
que solo tuvieron ventilación intranasal,
• El costo y la baja efectividad hace que el surfactante en terneros sea
descartados en el tto del SDR.

14. NEUMOENTERITIS
• “Peste boba”
• Diarrea neonatal
• Disentería blanca
• Salmonelosis
• Diarrea colibacilar
Características: • Diarrea continuapérdida de líquidos y electrolitos
• Problemas respiratorios.
Afecta a animales de pocos días de nacidos
Asociada al inadecuado o ineficiente suministro de calostro y
a la mala curación del obligo (onfaloflebitis septicemia) (Benavídez, López, & Alayón, 2011)

15. ETIOLOGÍA
• Escherichia coli
• Salmonella dublin
• Salmonella enteritidis
• Salmonella typhimurium
• Pasteurella multocida
• Pateurella haemolytica
• Mannheimia haemolytica
(Farbio Pharma, 2021)

16. Factores predisponentes - Neumoenteritis
Transmisión: mediante aerosoles y por contacto directo y se
ven favorecidos por el hacinamiento en condiciones de escasa
ventilación e higiene.
• El mal manejo y factores estresantes como el transporte o
las condiciones ambientales adversas pueden contribuir en
la gravedad de la enfermedad
Está centrada en la perdida de líquidos y electrolitos a causa de
la diarrea secretora provocada por E. coli enterotóxica.
La inflamación de los pulmones puede producir interferencia
en el intercambio gaseoso como consecuencia de la exudación
y la infiltración de las células en el interior de los alveolos
Patogenia

17. Los signos y la epidemiología son clave para el diagnóstico.
• Cola y miembros sucios
• Heces de diferentes colores (debido por el agente causal),
• Falta de apetito
• Deshidratación
• Dolor abdominal
• Postración
• Cuadro respiratorio con secreción nasal
• Fiebre,
• Posición ortopneica
SIGNOS DE LA NEUMOENTERITIS

18. Tratamiento
• Debe comprender antibióticos o combinación de ellos para causar sinergia.
• Tetraciclinas con sulfas, protector de mucosas (en caso de diarrea).
• Mucolíticos (en problemas respiratorios)
• Flunixin de meglubina como antipirético, desinflamatorio y analgésico.
• Hidratar inmediatamente al ternero (en el caso de diarreas)
• Se debe ofrecer cloruros, como son; cloruro de calcio, magnesio y de sodio,
además de acetato de sodio y potasio.
• Estos cloruros y acetatos tienen una función primordial como es la de mantener
el balance electrolítico, así como también los niveles de energía y a la vez el
balance ácido-base en las becerras.
(Maldonado., 2022)

19. Oxitetraciclina:
Dosis de 1 mL/10 kg de p.v. en
infecciones muy graves y/o una
duración de actividad prolongada (6
a 7 días); para infecciones
moderadas a leves 1 mL/15 kg de p.v.
Vía IM.
Bromhexina:
Dosis en terneros: 6.0 a 7.5
mL/animal (1.5 por cada 10 kg de
p.v )

20. Prevención y control.
• Vacunación de los terneros según el calendario de vacunación
recomendado.
• Control de la higiene en las instalaciones y el equipo de trabajo,
y el aislamiento de los animales infectados es ideal para evitar
la propagación de la enfermedad a otros animales.
• También es importante asegurarse de que los terneros reciben
una alimentación adecuada y equilibrad.
• Una nutrición deficiente puede debilitar el sistema
inmunológico y aumentar el riesgo de infecciones.
• Proporcionar agua fresca y limpia en todo momento para
prevenir la deshidratación. (Maldonado., 2022)
Bacterina, controla la
neumoenteritis y crea
anticuerpos maternos
en vacas preñadas
antes de los 30 días.

21. Artículo científico 2

22. Propósito del estudio:
• El objetivo del presente trabajo fue determinar indicadores de
inmunidad pasiva en neonatos bovinos, nacidos de vacas vacunadas
con una bacterina comercial contra neumoenteritis en el último tercio
de la gestación.

23. Metodología
• Veintiún vacas gestantes mestizas fueron distribuidas en tres grupos:
-T1control
- T2 aplicación de una dosis del biológico 30 días preparto
- T3 aplicación de dos dosis a los 30 y 15 preparto
- T4 para evaluar inmunidad activa, fue conformado por neonatos
vacunados a las 24 horas de vida.
El período experimental para las vacas comprendió entre 30 días preparto
hasta el parto; para los terneros entre 24 y 72 horas posteriores al
nacimiento.
En las crías, se analizaron indicadores del metabolismo proteico e
inmunoglobulinas (Ig).

24. Resultados y conclusiones:
• En las vacas, se analizó la calidad del calostro, cinco indicadores del
metabolismo proteico y el cortisol como modulador inmune.
• Estos no presentaron diferencias estadísticas significativas entre
tratamientos, excepto AST en el T3.
• En los neonatos la IgA e IgG no presentaron diferencias significativas ni
para tratamientos ni para tiempo.
• Tanto la IgM como la albúmina presentaron significancia entre
tratamientos, mientras que globulinas y proteínas totales lo hicieron solo
para el efecto tiempo.
• No se evidenció efecto de la bacterina, ni se encontró falla en la
transferencia de inmunidad pasiva.

25. BIBLIOGRAFÍA
• Benavídez, E., López, M., & Alayón, L. (2011). Enfermedades del ganado en la región de La Macarena (Meta). La Salle.
• Farbio Pharma. (2021). Mal Bobo.
• Mair, T., & Menzies, N. (2013). Respiratory: neonatal respiratory distress syndrome. Vetlexicon.
• Wilson, D., Lofstedt, J., & Lakritz, J. (2015). Diestrés respiratorio. En S. Bradford, Medicina Interna de animales Mayores (págs. 56-
61). Elsevier.
• Farrell, P. M., & Avery, M. E. (1975). Hyaline membrane disease. DOI:
• 10.1164/arrd.1975.111.5.657.
• Ganadero, E. (07 de Agosto de 2020). Neumoenteritis en becerros, dos problemas en uno. Obtenido de
https://bmeditores.mx/ganaderia/neumoenteritis-en-becerras-dos-problemas-comunes-en-uno/
• Quinn, P. J., Markey, B. K., Carter, M. E., & Donnelly, W. (2018). Microbiologia y enfermedades infecciosas veterinarias. ACRIBIA, S.A
.
• Smith, B. P. (2015). Large Animal Internal Medicine. El Sevier.
• https://www.portalveterinaria.com/rumiantes/articulos/15049/sindrome-respiratorio-bovino.html
• Maldonado., J. L. (2022). NEUMOENERITIS EN BOVINOS. Obtenido de
https://es.slideshare.net/JoseLuisMaldonado32/neumoenteritis-en-bovinos
• Rollin, F., & Guyot., H. (2015). HACIAN UNA MEJOR COMPRENSIÓN DEL SÍNDROME DE DISTRÉS RESPIRATORIO EN TERNEROS RECIÉ
NAVIDOS A TÉRMINO. Obtenido de https://www.produccion-animal.com.ar/suplementacion_mineral/218-distres_respiratorio.pdf