Este documento presenta los resultados de un estudio sobre la sensibilidad a antibióticos de cepas de Yersinia ruckeri aisladas de truchas arcoíris en diferentes regiones de Perú. Las cepas mostraron variabilidad fenotípica y sensibilidad diferente a los antibióticos evaluados, siendo más sensibles a florfenicol. Algunas cepas fueron resistentes a oxitetraciclina.
¿Qué hemos aprendido del fenómeno y que nos falta? #MareaRojaCOPASSurAustral
Leonardo Guzmán, jefe de la división de acuicultura del Instituto de Fomento Pesquero (IFOP), presenta la charla "¿Qué hemos aprendido del fenómeno y que nos falta?" durante el Simposio "Marea Roja en un Océano Cambiante", el cual se realiza en el marco del Austral Summer Institute XIX, ASI-XIX de la Universidad de Concepción
https://www.youtube.com/watch?v=knMPOmgtO5E
Compuestos tóxicos producidos por floraciones algalesCOPASSurAustral
La investigadora de COPAS Sur-Austral, Allisson Astuya presenta la charla "Compuestos tóxicos producidos por floraciones algales: desafíos y estrategias metodológicas para su detección" durante el Simposio "Marea Roja en un Océano Cambiante", el cual se realiza en el marco del Austral Summer Institute XIX, ASI-XIX de la Universidad de Concepción
https://www.youtube.com/watch?v=_zJC5JV5T4M
Ponencia ofrecida por Félix Gómez-Guillamón en el IV Congreso Andaluz de Caza, Hacia un modelo de calidad cinegética. Gómez-Guillamón es Coordinador Regional del PVE y Jefe de Departamento de Caza y Pesca Continental
Delegación Territorial de Medio Ambiente y Ordenación del Territorio Málaga.
Este libro trata sobre la pandemia del COVID-19 y está dividido en dos partes. En la primera parte se trata de determinar la naturaleza del virus y el papel que desempeña en la evolución y el control de las especies. En la segunda parte se da cuenta del desarrollo del virus en las distintas regiones y países del mundo y las consecuencias económicas, políticas y sociales que tuvo su desenvolvimiento.
¿Qué hemos aprendido del fenómeno y que nos falta? #MareaRojaCOPASSurAustral
Leonardo Guzmán, jefe de la división de acuicultura del Instituto de Fomento Pesquero (IFOP), presenta la charla "¿Qué hemos aprendido del fenómeno y que nos falta?" durante el Simposio "Marea Roja en un Océano Cambiante", el cual se realiza en el marco del Austral Summer Institute XIX, ASI-XIX de la Universidad de Concepción
https://www.youtube.com/watch?v=knMPOmgtO5E
Compuestos tóxicos producidos por floraciones algalesCOPASSurAustral
La investigadora de COPAS Sur-Austral, Allisson Astuya presenta la charla "Compuestos tóxicos producidos por floraciones algales: desafíos y estrategias metodológicas para su detección" durante el Simposio "Marea Roja en un Océano Cambiante", el cual se realiza en el marco del Austral Summer Institute XIX, ASI-XIX de la Universidad de Concepción
https://www.youtube.com/watch?v=_zJC5JV5T4M
Ponencia ofrecida por Félix Gómez-Guillamón en el IV Congreso Andaluz de Caza, Hacia un modelo de calidad cinegética. Gómez-Guillamón es Coordinador Regional del PVE y Jefe de Departamento de Caza y Pesca Continental
Delegación Territorial de Medio Ambiente y Ordenación del Territorio Málaga.
Este libro trata sobre la pandemia del COVID-19 y está dividido en dos partes. En la primera parte se trata de determinar la naturaleza del virus y el papel que desempeña en la evolución y el control de las especies. En la segunda parte se da cuenta del desarrollo del virus en las distintas regiones y países del mundo y las consecuencias económicas, políticas y sociales que tuvo su desenvolvimiento.
El examen de especímenes de la familia Coccinellidae, depositados en la Colección Entomológica de la Universidad Nacional San Antonio Abad del Cusco, Perú, permitió determinar la presencia de siete especies del género Cycloneda Crotch, 1871: Cycloneda marcapatae Bustamante, Oroz & Cosio 2009,
Cycloneda vandenbergae González, Bustamante & Oróz 2008, Cycloneda andresi Oróz, Bustamante & Cosio 2009, Cycloneda dieguezi González 2018, Cycloneda arcula (Erichson 1847), Cycloneda ecuadorica (Timberlake 1943), y Cycloneda sanguinea (Linnaeus 1763). Los taxones encontrados se hallan presentes en 35 localidades, de 24 distritos, en 10 provincias del departamento del Cusco, ocupando un rango altitudinal
que abarca desde los 800 msnm (Sahuayaco, Echarate, La Convención), hasta los 5,230 msnm (Pucacocha, Ausangate, Quispicanchi). Para cada especie se presenta una diagnosis, distribución, comentarios sobre su
biología, fotografías de su habitus, y microfotografías del aparato genital.
Diversidad y riqueza de especies de protistas y algas como indicadoras de sucesión y recuperación de un ecosistema ripario en la Cantera Oriente, Reserva Ecológica del Pedregal de San Ángel. UNAM. Ciudad Universitaria, D. F.
Fitosanidad ISSN: 1562-3009 nhernandez@inisav.cu Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal Cuba Carmenate, Hanoy; Botta, Eleazar Reseña de "VARROASIS: PELIGROSA ENFERMEDAD DE LA ABEJA MELÍFERA (II). DIAGNÓSTICO Y CONTROL" Fitosanidad, vol. 8, núm. 2, junio, 2004, pp. 47-55 Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal La Habana, Cuba Disponible en: http://www.redalyc.org/articulo.oa?id=209117836013 Cómo citar el artículo Número completo Más información del artículo Página de la revista en redalyc.org Sistema de Información Científica Red de Revistas Científicas de América Latina, el Caribe, España y Portugal Proyecto académico sin fines de lucro, desarrollado bajo la iniciativa de acceso abierto
2. fitosanidad/47 FITOSANIDAD vol. 8, no. 2, junio 2004 VARROASIS: PELIGROSA ENFERMEDAD DE LA ABEJA MELÍFERA (II). DIAGNÓSTICO Y CONTROL Hanoy Carmenate y Eleazar Botta Instituto de Investigaciones de Sanidad Vegetal. Calle 110 no. 514 e/ 5a. B y 5a. F, Playa, Ciudad de La Habana, CP 11600 1. Introducción La diseminación del ácaro ectoparásito Varroa jacobsoni Oud. en las abejas del mundo entero provocó el inicio de varios programas de investigación. La mayoría de ellos se enfocaron hacia aspectos de lucha donde ex- ploraron el uso de acaricidas sintéticos y de productos alternativos como los aceites esenciales. Dado que la varroasis es uno de los principales proble- mas en la apicultura a nivel mundial, que requiere de toda la atención para su control, se quieren reflejar en este trabajo varios aspectos que contribuirían a facili- tar su diagnóstico y control en el colmenar. 2. Monitoreo y detección La contaminación de la colmena fue dividida por Zajariev (1977) en tres etapas: a) Se caracteriza por la aparición de un número limita- do de ácaros, sin efecto evidente en el desarrollo de la colonia de abejas. b) Se produce el aumento del número de ácaros y la disminución de la colonia. c) La contaminación es ya muy intensa. En cada abeja se notan de seis a ocho ácaros y las abejas abandonan la colmena. Este autor es de la opinión que es posible luchar con éxito contra la enfermedad solo durante las dos prime- ras etapas. Por esta razón la obtención de un método de diagnóstico precoz sería un arma insustituible para el control y así limitar los daños causados por la pro- pagación, de ahí que se hayan realizado ensayos de diferentes métodos con los que se han recogido resul- tados más o menos satisfactorios.
Similar a CISIPA 2017: 02. Estudio de sensibilidad antibiótica de diferentes cepas de Yersinia ruckeri procedentes de diferentes regiones del país. (20)
TdR ingeniero Unidad de análisis VIH ColombiaTe Cuidamos
APOYAR AL MINISTERIO DE SALUD Y PROTECCIÓN SOCIAL EN LA GENERACIÓN DE SALIDAS DE INFORMACIÓN Y TABLEROS DE CONTROL REQUERIDOS EN LA UNIDAD DE GESTIÓN DE ANÁLISIS DE INFORMACIÓN, PARA EL SEGUIMIENTO A LAS METAS ESTABLECIDAS EN EL PLAN NACIONAL DE RESPUESTA ANTE LAS ITS, EL VIH, LA COINFECCIÓN TB-VIH, Y LAS HEPATITIS B Y C, EN EL MARCO DEL ACUERDO DE SUBVENCIÓN NO. COL-H- ENTERITORIO 3042 (CONVENIO NO. 222005), SUSCRITO CON EL FONDO MUNDIAL.
En el marco de la Sexta Cumbre Ministerial Mundial sobre Seguridad del Paciente celebrada en Santiago de Chile en el mes de abril de 2024 se ha dado a conocer la primera Carta de Derechos de Seguridad de Paciente, a nivel mundial, a iniciativa de la Organización Mundial de la Salud (OMS).
Los objetivos del nuevo documento pasan por los siguientes aspectos clave: afirmar la seguridad del paciente como un derecho fundamental del paciente, para todos, en todas partes; identificar los derechos clave de seguridad del paciente que los trabajadores de salud y los líderes sanitarios deben defender para planificar, diseñar y prestar servicios de salud seguros; promover una cultura de seguridad, equidad, transparencia y rendición de cuentas dentro de los sistemas de salud; empoderar a los pacientes para que participen activamente en su propia atención como socios y para hacer valer su derecho a una atención segura; apoyar el desarrollo e implementación de políticas, procedimientos y mejores prácticas que fortalezcan la seguridad del paciente; y reconocer la seguridad del paciente como un componente integral del derecho a la salud; proporcionar orientación sobre la interacción entre el paciente y el sistema de salud en todo el espectro de servicios de salud, incluidos los cuidados de promoción, protección, prevención, curación, rehabilitación y paliativos; reconocer la importancia de involucrar y empoderar a las familias y los cuidadores en los procesos de atención médica y los sistemas de salud a nivel nacional, subnacional y comunitario.
Y ello porque la seguridad del paciente responde al primer principio fundamental de la atención sanitaria: “No hacer daño” (Primum non nocere). Y esto enlaza con la importancia de la prevención cuaternaria, pues cabe no olvidar que uno de los principales agentes de daño somos los propios profesionales sanitarios, por lo que hay que prevenirse del exceso de diagnóstico, tratamiento y prevención sanitaria.
Compartimos el documento abajo, estos son los 10 derechos fundamentales de seguridad del paciente descritos en la Carta:
1. Atención oportuna, eficaz y adecuada
2. Procesos y prácticas seguras de atención de salud
3. Trabajadores de salud calificados y competentes
4. Productos médicos seguros y su uso seguro y racional
5. Instalaciones de atención médica seguras y protegidas
6. Dignidad, respeto, no discriminación, privacidad y confidencialidad
7. Información, educación y toma de decisiones apoyada
8. Acceder a registros médicos
9. Ser escuchado y resolución justa
10. Compromiso del paciente y la familia
Que así sea. Y el compromiso pase del escrito a la realidad.
La sociedad del cansancio Segunda edicion ampliada (Pensamiento Herder) (Byun...JosueReyes221724
La sociedad del casancio, narra desde la perspectiva de un Sociologo moderno, las dificultades que enfrentramos en las urbes modernas y como estas nos deshumanizan.
REALIZAR EL ACOMPAÑAMIENTO TECNICO A LA MODERNIZACIÓN DEL SISCOSSR, ENTREGA DEL SISTEMA AL MINISTERIO DE SALUD Y PROTECCIÓN SOCIAL PARA SU ADOPCIÓN NACIONAL Y ADMINISTRACIÓN DEL APLICATIVO, EN EL MARCO DEL ACUERDO DE SUBVENCIÓN NO. COL-H-ENTERRITORIO 3042 SUSCRITO CON EL FONDO MUNDIAL.
Módulo III, Tema 9: Parásitos Oportunistas y Parasitosis EmergentesDiana I. Graterol R.
Universidad de Carabobo - Facultad de Ciencias de la Salud sede Carabobo - Bioanálisis. Parasitología. Módulo III, Tema 9: Parásitos Oportunistas y Parasitosis Emergentes.
La microbiota produce inflamación y el desequilibrio conocido como disbiosis y la inflamación alteran no solo los procesos fisiopatológicos que producen ojo seco sino también otras enfermdades oculares
CISIPA 2017: 02. Estudio de sensibilidad antibiótica de diferentes cepas de Yersinia ruckeri procedentes de diferentes regiones del país.
1. “Estudio de sensibilidad
antibiótica de diferentes cepas
de Yersinia ruckeri procedentes
de diferentes regiones del país”
Luis Cerro Temoche1; Alberto Manchego Sayán2; Jeferson Nuñure
Ortega3; Juan Pihue Taipe3; Nieves Sandoval Chaupe1
1 Sección de Ictiopatología del
Laboratorio de Embriología,
Histología y Patología Veterinaria de
la Facultad de Medicina Veterinaria-
UNSMSM.
2 Laboratorio de Inmunología.
Facultad de Medicina Veterinaria-
UNSMSM.
3 Escuela de Pre-grado. Facultad de
Medicina Veterinaria- UNSMSM.
Noviembre 2017, Lima - Perú
2. Introducción
La Enfermedad Entérica de la Boca Roja es producida por
Yersinia ruckeri reportada por primera vez en los Estados
Unidos a principios del 1950 [9]. Desde entonces ha sido
identificada en diferentes continentes: Oceania [5], Asia [7],
Europa [1], Afríca [3] y América del sur. En Perú, Bravo y
Kojagura (2004), aislaron Y. ruckeri en 34 piscifactorías del
departamento de Junín, utilizando procedimientos
bioquímicos estándares. Por otro lado, Fernández en el 2011,
en la misma región además de determinar la presencia de
Yersinia ruckeri, demostró la similaridad bioquímica entre las
cepas de esta región con las reportadas en los Estados Unidos
[2].
Diversas especies de bacterias, principalmente Yersinia
ruckeri, se encuentra ampliamente distribuidas en ambientes
acuáticos, infectando especies de cultivo, produciendo pérdidas
económicas significativas. El presente estudio tuvo como
objetivo determinar la sensibilidad de diferentes cepas de Y.
ruckeri, caracterizadas bioquímicamente, procedentes de
diferentes regiones del país, a diferentes fármacos de uso
veterinario.
Figura 1. Lleve exoftlamia, nado en la superficie y erratico
3. Materiales y métodos
La obtención de las muestras fue realizada en cuatro
piscigranjas localizadas en diferentes regiones del Perú: (1)
una piscigranja localizada a lo largo del rio Rejo en el
departamento de Cajamarca, (2) una piscigranja localizada en
la laguna Punrun en el departamento de Pasco donde se realizó
un doble muestreo (abril y octubre), y (3) dos diferentes
piscigranjas ubicadas en el departamento de Áncash (Huaraz),
en las cuales además de observarse una mortalidad
significativa, se reportó signos clínicos y hallazgos de
necropsia, compatibles con infecciones causadas por Y.
ruckeri. En todos los muestreos fueron colectados entre 10 a
12 especímenes de truchas arcoíris (Oncorhynchus mykiss).
Después de realizada la necropsia de 10-12 especímenes por
muestreo, de aproximadamente 15 -20 cm de talla, fueron
colectadas y cultivadas muestras de riñón y bazo para el
aislamiento bacteriano. Las muestras de los órganos en
mención fueron cultivadas en medio Agar Tripticasa de Soya
(TSA) e incubadas a 25°C por 24-48 horas, posteriormente se
aislaron las colonias uniformes, caracterizadas por ser
pequeñas, color blanquecino, semitranslucidas, lisas (Figura 4).
Luego se procedió a realizar la identificación de cada colonia a
través de coloración de Gram y las pruebas bioquímicas como
oxidasa y catalasa.
Figura 2. Cuadro de enteritis hemorrágico producida por Y. ruckeri
4. Materiales y métodos
Para el antibiograma, se procedió a cultivar una colonia de
cada lote en medio Mueller Hinton, por el método de difusión
en ágar según la técnica de Kirby-Bauer, recomendado por la
National Comitee for Clinical Laboratory Standars. Los
antibióticos evaluados fueron: Trimetroprim sulfato (SXT),
Florfenicol (FLD), Fosfomicina estabilizada (FO), Clorhidrato
de oxitetraciclina (OXD), Enrofloxacina base (EBD). Cada
placa fue incubada a 25 ° C por 24 h, pasado el tiempo se
realizó la medición de los halos para su interpretación.
Interpretación Abreviatura Halo de Inhibición
Resistente R ≤ 7 mm
Sensibilidad Media M ≤ 8 mm ≤ 11 mm
Sensible S ≥ 12 mm ≤ 16 mm
Muy sensible MS ≥ 17 mm
Figura 3. Parámetros de lectura del halo de inhibición y su
interpretación.
*AVIMEX 2002
Basado en disposiciones internacionales del National Committee for Clinical Laboratory
Standards de USA (NCCLS)
5. Resultados
Los aislados de Yersinia ruckeri que infectan a truchas arco iris
en una piscigranja de tres regiones del país (Ancash, Pasco y
Cajamarca) muestran características fenotípicas diferentes a las
reportadas en otras regiones como Huancavelica y Junín.
Se encontró variación fenotípica en los aislados de Yersina
ruckeri en las pruebas de motilidad, degradación de citrato,
fermentación ácido mixta, producción de ornitina
descarboxilasa y arginina deshidrogenasa, reducción de
nitratos, producción de ácido a partir de manitol, producción
de ácido a partir de sucrosa y degradación de gelatina, siendo
de mayor presentación los resultados negativos a la prueba de
degradación de citrato.
Figura 4. Crecimiento de Y. ruckeri en medio Agar Tripticasa de Soya
(TSA) e incubadas a 25°C por 24-48 horas
6. Resultados
En relación a los resultados, Y. ruckeri demostró una mayor
sensibilidad frente a FLD. Sin embargo se encontró
diferencias de sensibilidad, siendo el orden de mayor a menor
sensibilidad antibiótica SXT, OXD, EBD y FO,
respectivamente (Cuadros 1,2,3,4 y 5). Además se encontraron
cepas resistentes a Oxitetraciclina en el Departamento de
Cajamarca y Pasco
Cuadro 2. Sensibilidad antimicrobiana de Yersinia ruckeri aislada de una
piscigranja localizada en el Departamento de Pasco, Junio 2017. Flecha
roja indica resistencia
Cuadro 1. Sensibilidad antimicrobiana de Yersinia ruckeri aislada de una
piscigranja localizada en el Departamento de Cajamarca, Junio 2017.
Flecha roja indica resistencia
Muestras FLD SXT EBD FO OXD
B1 MS S S S R
R4 MS S MS M S
R9 S S S M R
B8 MS S MS S R
B11 MS MS S M S
P9 MS MS S M M
P12 MS MS S R R
P14 MS S MS R S
MUESTRA FLD SXT EBD OXD FO
T-B1 MS MS MS S MS
T-B2 MS MS S MS M
T-B3 MS MS MS S M
G-B1 MS MS MS S MS
G-B11 MS MS S MS R
G-R14 MS MS MS MS R
G-P13 MS M R R S
7. Resultados II
Cuadro 3. Sensibilidad antimicrobiana de Yersinia ruckeri aislada de una
piscigranja localizada en el Departamento de Pasco, Octubre 2017.
Cuadro 4. Sensibilidad antimicrobiana de Yersinia ruckeri aislada de una
piscigranja localizada en el Departamento de Áncash (Piscigranja A),
Octubre 2017.
Cuadro 5. Sensibilidad antimicrobiana de Yersinia ruckeri aislada de
piscigranja localizada en el Departamento de Áncash (Piscigranja B),
Octubre 2017.
MUESTRA FLD SXT FO EBD OXD
T1 MS MS S S S
T5 MS MS MS S S
T8 MS MS MS S S
T9 MS MS MS S S
MUESTRA FLD SXT FO EBD OXD
T1 MS MS MS S S
T2 MS MS MS S S
T3 MS S S S M
T4 MS MS MS S S
MUESTRA FLD SXT FO EBD OXD
T3 MS S S S S
T4 MS MS MS S S
T5 MS MS MS S S
T6 MS MS MS MS S
8. Conclusiones
Agradecimientos
• Existe una variabilidad en la sensibilidad de Y. ruckeri
frente a los diferentes antibióticos estudiados.
• Y. ruckeri demostró se altamente sensible frente a FLD en
los Departamentos de Pasco, Áncash y Cajamarca.
• Existen cepas resistentes a Oxitetraciclina en el
Departamento de Cajamarca y Pasco.
Este trabajo ha sido realizado gracias al convenio N° 078 –
INNOVATEPERU-IAPIP-2017 entre la Facultad de Medicina
Veterinaria de la Universidad Nacional Mayor de San Marcos e
INNOVATE PERÚ.
9. Referencias bibliográficas
Datos de contacto
1. Austin D.A., P.A.W Robertson & B. Austin (2003) Recovery of a new biogroup of
Yersinia ruckeri from diseased rainbow trout (Oncorhynchus mykiss, Walbaum).
Systematic and Applied Microbiology 26: 127-131.
2. Austin, B., Austin, D.A (2007) Bacterial Fish Pathogens. Diseases of Farmed and
Wild Fish. Springer-Verlag, 2nd Edn, 188-226
3. Bragg R.R. (1991) Health status of salmonids in river systems in Natal (South
Africa). III. Isolation and identification of bacteria. Onderstepoort J. Vest. Res. 58:
67-70.
4. Bravo S., & V. Kojagura (2004). First isolation of Yersinia ruckeri from rainbow trout
(Oncorhynchus mykiss) in Peru. Bull. Eur. Ass. Fish Pathol. 24: 104-108.
5. Bullock G.L., H.M. Struckey & E.B.Jr. Shotts (1977) Early records of North American
and Australian outbreaks of enteric redmouth disease. Fish Health News 6(2): 96.
6. Fernandez, C (2011) Determinación de Yersinia ruckeri y sus características
lesiónales anatomo - histopatológicas en truchas Arco Iris (Oncorhynchus mykiss)
en etapa pre-comercial en una piscigranja de la región Junín. Tesis de Médico
Veterinario. Facultad de Medicina Veterinaria. Universidad Nacional Mayor de San
Marcos. Lima 57 p.
7. Raidal S., G. Cross, S. Fenwick, P. Nicholls, B. Nowak, K. Ellard & E. Stephens (2004)
Aquatic Animal Health: Exotic Disease Training Manual. FRDC Project 2002/645.
Pp: 40–42.
8. Ross A.J, R.R. Rucker & W.H. Ewing (1966) Description of a bacterium associated
with redmouth disease of rainbow trout (Salmo gairdneri). Canadian Journal of
Microbiology. 12: 763-770.
9. Rucker R (1966) Redmouth disease of rainbow trout (Salmo gairdneri). Bulletin de
L’Office International des Epizooties 65: 825-830.
Laboratorio de Histología, Embriología y Patología Veterinaria
Sección de Ictiopatología
Facultad de Medicina Veterinaria
Universidad Nacional Mayor de San Marcos
Responsable del Sector: Mg. MV Nieves Sandoval Chaupe
email: nieves.sandovalchaupe@gmail.com