1. Análisis de Residuos en Bandejas de Nacedoras
Patrones de Mortalidad Embrionaria
Angel I. Salazar
Jamaica Broilers Group, Ltd.
Teléfono: 00-876-550-3836
E-mail(s): asalazar@jabgl.com & aisz.0760@gmail.com
La incubación artificial avícola persigue que un alto porcentaje de los
blastodermos contenidos en huevos fértiles permanezcan viables, logren
desarrollarse y transformarse en embriones vigorosos que finalmente eclosionen
con éxito al completar aproximadamente 21 días de incubación.
Indefectiblemente, durante el proceso de incubación hay un porcentaje
de embriones inviables que no logran eclosionar. Si el porcentaje de mortalidad
embrionaria rebasa los parámetros óptimos establecidos para la estirpe y edad
de las aves reproductoras. Mejor aún si nuestros resultados son inferiores a los
resultados o registros históricos de la planta incubadora, debemos disponer de
un método de diagnóstico rápido, veraz y oportuno del problema/falla.
Cuando observamos una caída en los nacimientos existen dos causas
fundamentales: 1) Mermas de fertilidad del huevo cargado en máquinas
incubadoras. 2) Un porcentaje de mortalidad embrionaria que supere los
rangos de tolerancia correspondientes a la edad y estirpe de las reproductoras
involucradas.
Sin lugar a dudas la falta de fertilidad es por mucho la causa más
importante en las mermas de incubabilidad.
La mortalidad embrionaria es causada por factores relacionados con el
proceso de incubación per se. O bien, con asuntos relacionados a las aves
reproductoras que produjeron los huevos y con las prácticas de manejo estos
huevos experimentan después de haber sido puestos en los nidales.
El horizonte de esta exposición se limita a los procesos relacionados a la
planta incubadora. En este sentido es que discutiremos el tema del exámen de
los residuos en bandejas de nacedoras como herramienta en la determinación
de fertilidad, de los patrones de mortalidad embrionaria temprana (1 – 7 días),
media (8 – 14 días) y tardía – (15 – 21 días).
Este análisis involucra examinar individualmente cada uno de los
embriones/pollitos que no lograron eclosionar. Las cifras resultantes del análisis
deben ser tabuladas y correlacionadas con manejos que las cargas de huevo
recibieron desde su postura hasta el término del proceso de incubación.
Lógicamente al final del ejercicio ser contrapuestas con los estándares
respectivos a la edad y estirpe de las aves reproductoras.

2. Embriodiagnosis - Conceptos básicos.
Es fundamental estar plenamente familiarizado con la cronología del
desarrollo morfológico característico/normal del embrión. Para determinar con
certeza un aspecto del desarrollo embrionario que se desvía de lo normal, hay
que tener el conocimiento necesario para identificar y determinar con
precisión el estadio del desarrollo en el que se presenta una alteración. En este
sentido, no es raro cometer errores al determinar la edad del embrión si
dependemos únicamente de un hito o descripción morfológica.
Hamburger y Hamilton (1951), categorizaron los 21 días de incubación en
45 diferentes estadios de desarrollo embrionario correspondientes a la aparición
de estructuras morfológicas específicas en coyunturas cronológicas bien
definidas desde el mismo inicio del proceso de incubación. Obviamente, que
en un contexto práctico, al llevar a cabo el análisis de residuos en canastillas
de nacedoras, se utiliza una metodología referencial mucho más sencilla.
La velocidad del desarrollo embrionario varía en función de muchos
factores, entre ellos el origen del huevo, edad de las reproductoras, su
almacén/conservación en granjas o en la planta incubadora, la temperatura
promedio de incubación, su uniformidad y constancia, tipo de sistema de
incubación utilizado - incubadoras de carga única o de etapa múltiple, tasa de
ventilación en salas y maquinas, frecuencia de volteo, etcétera.
Con la finalidad de utilizar un lenguaje común y establecer puntos de
referencia válidos para todo análisis es necesario segmentar/
estandarizar/subdividir la cronología de la mortalidad embrionaria en tres
períodos fundamentales.
Mortalidad temprana.
La primera fase es la mortalidad embrionaria temprana que ocurre entre
1 – 7 días de incubación. Este período es uno de los dos picos de mortalidad
típicamente observados en cualquier análisis. El otro pico sería el período de
mortalidad tardía de 15 – 21 días.
Algunas plantas subdividen la mortalidad temprana en dos categorías,
entre 1 - 2 días y de 3 - 7 días. Lo único que aporta este enfoque es establecer
una mejor demarcación entre la ausencia de sangre y la aparición de sangre
detectable a simple vista lo que usualmente sucede después de 48 horas de
incubación. Fotos 1, 2, 3 & 4.

3. Estadio de cuajo sin sangre visible / Hasta completar dos días ó 48 horas
de incubación.

4. Estadio de cuajo más avanzado pero aún sin sangre visible / Hasta
completar dos días ó 48 horas de incubación.

5. Aparición de sangre visible / Culminación del día 2 ó 48 horas de
incubación. Demarcación entre mortalidad temprana de 1 – 2 días y
mortalidad de 3 – 7 días.

6. Estadio de anillo de sangre / Mortalidad de 3 días ó 76 horas de
incubación.
Ahora, será válido utilizar esta demarcación para diferenciar los efectos
negativos generados en granja de aquellos originados en la planta de
incubación? Considero lógico y acertado asociar mortalidad embrionaria en
los primeros 2 días de incubación con manejos negativos relacionados al
manejo del huevo en granjas tales como patrones de recolección, métodos de
fumigación y/o desinfección del huevo incubable, constancia de temperatura
durante almacenamiento y condiciones de transporte.
Posteriormente, existe la opción de asociar la mortalidad embrionaria
que se presenta a partir del tercer día a manejos generados en planta tales
como nivel de selección del huevo al armar las cargas y embandejarlas,
temperatura y humedad relativa en el cuarto frío, duración del período de
guarda, temperatura de incubación, volteo y otros factores.

7. Lo más importante durante la primera semana del proceso de
incubación es que reactivemos rápida y uniformemente, en un ambiente muy
bien controlado, la división celular en blastodermos que previamente estuvieron
en estado de latencia. La tecnología de los sistemas de carga única permiten
lograr este propósito en condiciones operativas y ambientales óptimas y muy
controladas.
Los primeros 5 días del proceso de incubación son fundamentales en
cuanto a la diferenciación de celular y en la génesis o formación de órganos y
sistemas embrionarios. Es precisamente en esta coyuntura en que se forman las
(4) membranas extraembrionarias: 1) El amnios o saco amniótico que
encapsula y protege al embrión de daños físicos. 2) El corión, red de capilares
que se adhiere y pasa a recubrir la membrana interna del huevo. 3) El
alantoides o riñón embrionario. El corión y el alantoides se fusionan
posteriormente a los 6 – 7 días del proceso y pasan a formar la membrana
corioalantoidea. Esta se transforma en el pulmón embrionario y le permite
respirar por difusión pasiva hasta el punto de picaje de la cámara de aire en el
transcurso del día 19. Y, 4) El saco vitelino o área vasculosa que luego envuelve
toda la yema o vitelo y se transforma en el mecanismo fundamental de
obtención y transporte de nutrientes al embrión desde la yema y albúmina.
El enfoque que debemos aplicar en este período inicial del proceso es la
de ejercer un control exacto del sistema de volteo de la incubadora. Así como
de la uniformidad y constancia en la distribución de la temperatura promedio
en el gabinete de la incubadora, del nivel de CO2, y del (%) de humedad
relativa. En este sentido las ventajas concretas de las incubadoras de carga
única son incontrovertibles y evidentes. Es de sobra conocido que permiten las
condiciones ambientales óptimas en términos de un alto porcentaje de
humedad relativa – (75 – 80%) - y alta concentración de CO2 – 10,000 partes por
millón, que permiten maximizar el desarrollo inicial de las (4) membranas
extraembrionarias ya mencionadas.
Si el (%) de mortalidad embrionaria NO está dentro de los parámetros
“normales” esperados para la estirpe & edad de las reproductoras. O rebasa los
parámetros históricos de la granja y/o planta incubadora. Hay que
implementar un método practico, rápido, oportuno & confiable para
diagnosticar la situación/problema. Si observamos un (%) menor de eclosión
puede ser el resultado de dos factores muy comunes: 1) Baja de fertilidad de los
huevos incubados. 2) Excesivos (%) de mortalidad embrionaria. TABLA – 1.

8. TABLA – 1
Categoría Edad Edad Edad Edad Edad
25 Sem 35 Sem 45 Sem 55 Sem 65 Sem
(%) (%) (%) (%) (%)
Fertilidad 87 94 93.5 91 86
Incubabilidad 78 86 84 79.5 72
1 – 7 Días 3.5 2.1 2.1 2.8 3.3
Fuente: Dr. J. Mauldin / UGA.
La segunda fase es la mortalidad embrionaria de fase media que está
comprendida entre 8 – 14 días de incubación. Este período constituye la fase
de menor importancia en cuanto al porcentaje de mortalidad implicado. Se
considera que no debe rebasar 0.5% en lotes premio en un rango de 35 – 45
semanas de edad. Durante esta coyuntura del proceso el embrión
mayormente aumenta significativamente de tamaño una vez terminada la fase
de diferenciación celular. Foto – 5. / TABLA – 2.

9. Mortalidad media de 8 días / 8 – 14 días del procesode incubación.
TABLA – 2
Categoría Edad Edad Edad Edad Edad
25 Sem 35 Sem 45 Sem 55 Sem 65 Sem
(%) (%) (%) (%) (%)
8 – 14 Días 0.45 0.45 0.40 0.45 0.45
Fuente: Dr. J. Mauldin / UGA.

10. La tercera fase es la mortalidad embrionaria tardía y está comprendida
entre 15 – 21 días de incubación. Este período constituye la otra de mayor
importancia en cuanto al porcentaje de mortalidad implicado. TABLA – 3.
TABLA – 3
Categoría Edad Edad Edad Edad Edad
25 Sem 35 Sem 45 Sem 55 Sem 65 Sem
(%) (%) (%) (%) (%)
15 – 21 Días 3.3 2.4 2.6 3.4 3.8
H. Picado 1.2 1.2 1.1 1.1 1.2
Fuente: Dr. J. Mauldin / UGA.
Algunas plantas subdividen la mortalidad tardía en dos categorías,
entre los 15 - 18 días y de 19 - 21 días. Lo que permite este enfoque es
establecer una mejor puntualidad de problemas específicos de mortalidad y
establecer correctivos con un poco de mayor claridad. Ejemplos: 1) Mortalidad
de 18 días con embriones ahogados que no llegaron siquiera a picar la cámara
de aire y no lograron eclosionar por un gran exceso de albumina residual como
resultado de una pobre pérdida de peso desde la carga a la transferencia.
Correctivo: Mejorar el manejo y control de la humedad relativa en salas, en
incubadoras y en nacedoras. Si la planta practica vacunación en huevo a los
18 – 18.5 días y se detectan embriones inoculados en un sitio equivocado/
incorrecto, es aquí donde existe la oportunidad de puntualizar el proceso de
transferencia. 2) Pico de mortalidad a los 19, 20 & 21 días con embriones
“normales”, con vitelos parcial o completamente reabsorbidos, que llegaron a
término pero sin eclosionar exitosamente por diversas razones. Mortalidad de 19
días es particularmente importante en muchas plantas por la puntualidad de la
transferencia que se practica.
Frecuentemente también encontramos embriones muertos entre 20 y 21
días del proceso. A menudo estos embriones pican externamente el cascarón y
se encuentran muertos o vivos en huevos quedados en las canastillas. Muchas
veces al examinarlos con más detenimiento se les detecta un proceso
inflamatorio con o sin edema en la parte posterior del pescuezo. Pregunta(s): Si
los embriones están vivos al examinarlos, será que evacuamos el nacimiento
prematuramente o que estos embriones estaban rezagados y los íbamos a
perder de cualquier forma? Si al examinar el huevo picado encontramos que
estos mismos embriones estaban muertos. Será que murieron por exceso de
calor? Por falta de vitalidad? Por fallas nutricionales? Por daño físico durante la
transferencia? Todas estos escenarios son factibles.

11. El anterior es un problema multifactorial y complejo. Sin duda es uno de
los problemas que aún quedan por dilucidar a cabalidad en la incubación
moderna.
Los sistemas de carga única al disponer de mayor capacidad de
enfriamiento por agua fría, por sus mecanismos de monitoreo de la
temperatura de cascarón en tiempo real y la de reducir puntos de ajuste
operativo de bulbo seco en el perfil de las maquinas en cualquier coyuntura
del proceso, están en mejor posición de reducir excesos de calor estos
embriones de gran tamaño.
Dependiendo de la mezcla de edades utilizada en un determinado mes
o temporada del ciclo productivo de la planta incubadora, la mortalidad
temprana puede rebasar ligeramente a la mortalidad tardía o viceversa. El
porcentaje de mortalidad temprana es usualmente mayor en lotes jóvenes con
menos de 35 – 38 semanas de edad. La mortalidad tardía en la mayoría de los
casos se acentúa en lotes muy maduros con más de 50 – 55 semanas de edad.
En esta última instancia tanto un mayor porcentaje de huevos fisurados,
contaminados así como pérdidas de embriones normales y completamente
desarrollados, son dos factores muy significativos. Ver Fotos – 6 y 7.

12. En resumen la mortalidad embrionaria no se presenta de forma aleatoria.
Más bien se manifiesta con patrones bien definidos y en períodos bien
demarcados. Existen cinco coyunturas críticas de mayor susceptibilidad de
mortalidad embrionaria.
1. El primer día reactivación de la división celular o mitosis y una mayor
fragilidad del blastodermo.
2. Del segundo al tercer día / inicio de respiración alantoidea.
3. Del sexto al séptimo día proceso de fusión del corión y alantoides en
membrana corioalantoidea.
4. El décimo noveno día / picaje de la cámara de aire y transición de
respiración corioalantoidea por difusión pasiva a pulmonar.
5. Vigésimo primer día esfuerzo físico para picar y liberarse del cascarón
para eclosionar.
El trabajo de analizar los residuos quedados en canastillas de nacedoras
es un asunto arduo, laborioso que requiere de entrenamiento y de mucha
disciplina. La única manera de justificar este esfuerzo es utilizar la información
resultante en la aplicación de medidas lógicas y correctivas en la planta que
conlleven a resolver parcial o completamente los problemas o fallas
identificadas. De otra forma, si la información no es utilizada de forma oportuna
y simplemente se archiva, no vale la pena llevar a cabo esta tarea.