Este documento describe una propuesta para el manejo biológico del cultivo de la stevia utilizando organismos benéficos como Trichoderma. Se identificaron varios patógenos asociados a la stevia como Fusarium, Alternaria y nematodos que causan disturbios. Se realizaron pruebas para evaluar el potencial de cepas de Trichoderma para controlar estos patógenos de manera antagonista a través de mecanismos como antibiosis y competencia. Los resultados preliminares mostraron que Trichoderma inhibió el crecimiento de

1. MANEJO BIOLOGICO DEL CULTIVO DE LA STEVIA
PROPUESTA ORGANICA
SANOPLANT
Carlos Anibal Montoya M
I.A. M.Sc Gerente Sanoplant

2. CAUSALES DE DISTURBIOS

3. MANEJO INTEGRADO DE PLAGAS
RESEÑA HISTORICA
Empresa que nace desde el año 2002
en el Valle del Cauca, en la ciudad de
Palmira, buscando producir hongos
entomopatogenos que contribuyeran a
implementar un sistema de agricultura
Biologica u Organica, permitiendo :
1.Capacitar a los Agricultores en el
conocimiento y aplicación de Hongos y
Bacterias beneficas para una agricultura
limpia.
2.Manejo, uso y evaluación en campo.
. Empresa que brinda los servicios de
producción, desarrollo, asistencia técnica y
transferencia de tecnología a partir del empleo
de hongos entomopatógenos y antagonistas
para el control biológico de artrópodos en
diferentes explotaciones Agricolas y Pecuarias.
Actualmente cuenta con una colección de cepas
de varios géneros de hongos y bacterias:
-Beauveria -Paecilomyces
-Metarhizium -Trichoderma
- Nomoraea - Gliocladium
-Lecanicillium - Bacillus
-Pseudomonas -Azotobacter
-Azospirillium

4. INVERNADEROS Y CASAS DE
MALLAS-CIAT

5. CASAS DE MALLA

6. Figura 2. Plantas de Stevia

7. AVANCE EN LA IDENTIFICACIÓN DE ORGANISMOS PATÓGENOS
ASOCIADOS A STEVIA (Muestra de mayo 06, 2013)
Figura 1. Lesiones en plántulas

8. Figura 4. Corte longitudinal en el tallo

9. Figura 7. Lesiones en las inflorescencias

10. Clorosis Enrojecimiento Necrosis
Figura 5. Lesiones foliares

11. Figura 3. Lesiones radicales

12. 3 4
2

13. 7
8
9
11
10

14. Figura 6. Chancros en las yemas terminales

15. Figura 17. Lesiones en hojas

16. DIAGNOSTICO FITOSANITARIO

17. a b c
d e
ANÁLISIS MICROBIOLÓGICO DE SUELO; A. ADICIÓN DE 90 ML DE ADE EN BEAKER
10 G DE SUELO; B. AGITACIÓN DURANTE 10 MIN; C. DILUCIÓN DE LA SUSPENSIÓN
DE SUELO; E. SIEMBRA

18. SELECCIÓN DEL TEJIDO VEGETAL PARA LA
SIEMBRA EN MEDIOS DE CULTIVOS

19. DESINFESTACIÓN Y SIEMBRA DE MUESTRAS DE STEVIA
COLONIAS CRECIDAS A PARTIR DE YEMAS TERMINALES EN PDA

20. ESTRUCTURAS EN HOJAS DE Stevia
5
6

21. 12
13
14
15
16

22. 17 18

23. Fusarium sp.
ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A YEMAS TERMINALES EN
PDA
Fusarium sp.
Posible
Alternaria sp. Nematodo
ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A YEMAS TERMINALES EN
CÁMARA HÚMEDA

24. Posible
Alternaria sp.
Posible
Alternaria sp. Fusarium sp.
ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A
INFLORESCENCIAS EN PDA

25. Posible
Alternaria sp.
Cladosporiumsp.
Fusarium sp.
ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A INFLORESCENCIAS EN
CÁMARA HÚMEDA
Fusarium sp.
Fusarium sp.
ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS ASOCIADOS A HOJAS EN

26. Cladosporium sp.
PosibleAlternariasp.
Curvulariasp.
Posible
Phaeophleospora
Figura 15. Estructuras de los microorganismos asociados a hojas en cámara
húmeda

27. Posible
Trichoderma sp.
Posible
Trichoderma sp.
Posible
Trichoderma sp.
ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS
ASOCIADOS A TALLOS Y RAICES EN PDA

28. Nematodo Fusarium sp. Cladosporium sp.
ESTRUCTURAS DE LOS MICROORGANISMOS
ASOCIADOS A TALLOS Y RAICES EN CÁMARA HÚMEDA

29. MUESTRAS DE STEVIA TRAÍDAS PARA
CLÍNICA Y DIAGNOSIS

30. MICROORGANISMOS ASOCIADOS A LAS HOJAS DE
LAS MUESTRAS DE STEVIA

31. MICROORGANISMO EN TALLO DE STEVIA

32. MICROORGANISMO EN PLANTAS DE MAYOR
AFECTACIÓN

33. a b
c d
e f
PROCEDIMIENTO PARA DETERMINAR LA PRESENCIA DE NEMATODOS EN
LA MUESTRA

34. NEMATODO LESIONADOR DE RAICES
a b
Figura 10. Nematodo asociado a raíces de Stevia. a. cabeza; b. cola
Pratylenchus spp

35. AÑUBLO SUREÑO
Sclerotium rofsi
Esclerocios en la base del tallo de las muestras

36. PROTOCOLO DE DESISFESTACION DE SCLEROCIOS DEL
ANUBLO SUREÑO

37. PRUEBA DE ANTAGONISMO
TRCHOPLANT vs Sclerotium rofsi

39. PRUEBAS DE ENFRENTAMIENTO ENTRE LOS
PATOGENOS VS LOS ORGANISMOS BENEFICOS

40. ANTOGONISMO BUSCANDO POTENCIALIZAR
LAS CEPAS

41. Día 0 Día 3 Día 4 Día 5 TestigoDía 6
Día 0 Día 3 Día 4 Día 5 Testigo
Día 6
PRUEBA DE ANTAGONISMO PARA POTENCIALIZAR CEPAS
ESPECIFICAS

43. MODOS DE ACCION DE
TRICHOPLANT
Parasitism
o

45. CONTROL DE ENFERMEDADES

46. Trichoderma harzianum, bioregulador del hongo patógeno
Fusarium oxysporum en STEVIA y otros cultivos

47. SISTEMA VASCULAR DE PLANTA ASINTOMÁTICA Y DE UNA
PLANTA ENFERMA

48. LESIONES EN RAMAS

49. Dilución 1x10-2 Dilución 1x10-3
COLONIAS DE HONGOS DEL SUELO DE
STEVIA

50. a b c d
Figura 13. Microorganismos de mayor presencia en el suelo. a. y b. Aspergillus sp.; c. y d. Cladosporium sp.
Figura 14. Penicillium sp.

51. Sclerotium sp.Fusarium sp.
Figura 15. Microorganismos asociados al suelo de Stevia

52. Figura 16. Bacterias en el suelo de Stevia
Figura 17. Microorganismos crecidos a partir de los
tejidos en medio de cultivo

53. b ca
Figura 18. Microorganismos asociados a las hojas de Stevia

54. Figura 19. Fusarium sp. crecido en los tallos de Stevia
b da c
Figura 20. Microorganismos asociados a la raíz

68. PLANTULACION BAJO CONDICIONES DE
INVERNADERO

71. PLANTULAS CON DISTURBIOS PATOLOGICOS

72. SIGNOS EN LAS PLANTULAS

73. PERDIDA DE SITIOS DENTRO DE LA BANDEJAS

74. PLANTULAS CON PROBLEMAS SANITARIOS

76. ESTRUCTURA DISEÑADA PARA INMERSION DE
BANDEJAS PARA LOS TRATAMIENTOS
BIOLOGICOS

81. SANIDAD EN LA PLANTULACION

86. BOMBEO DE AGUA PARA EL FERTIRIEGO

87. APLICACIÓN DE PRODUCTOS VIA FERTIRIEGO

107. AÑUBLO SUREÑO
Sclerothium rofsi

109. USO DE COBERTURA CON MATERIA ORGANICA

112. USO DE COBERTURA CON MATERIA ORGANICA

113. ENTUBADO CON PLASTICO

114. SISTEMA DE SIEMBRA CON PLASTICO

115. PLANTULACION CON BASE EN CONTROL
BIOLOGICO

116. Fusarium spp.
Phytium spp.
Colletotrichum sppPhytophthora sp.
Botrytis sp
Rhizoctonia solani
Armillaria spp.
Sclerotium rolfsii
Control de Patogenos
Trichoderma sp

117. T. koningii: 70-90% de control
Aguacate- Phytophthora parasitica 80%
Aguacate- Cilindrocladium sp- 80 %
Citricos- Rhizoctonia solani - 90%
 Guanabana-Pythium splendens: 85%
 Mango– Colletotrichum gloesporioides: 82%
Lulo - Sclerotinia sclerotiorum: 70%
Papaya - Rhizoctonia solani: 90%
Papaya – Fusarium oxysporum: 70%
Mora – Botrytis cinerea: 70%
Tomate de arbol– Oidium sp.: 90%
PATÓGENOS DEL SUELO

118. Trichoderma
Sclerotium

119. CONTROL BIOLOGICO
 Trichoderma harzianum
( Pythium, Rhizoctonia, Sclerothium)
 Trichoderma viridae
( Botritys, Sclerothinia, Gaemannomyces sp)
Trichoderma hamatum
( Rosellinia, Ceratocystis, Sclerotinia)
Trichoderma koningii
( Fusarium, Pythium, Verticillium)
Trichoderma lignorum
( Phytophthora parasitica , Phytophthora capsici)
Trichoderma polisporum
(Cylindrocladium, Sarocladium sp)

120. INTERACCIONES ANTAGONICAS
-Antibiosis
-Competencia
-Parasitismo
-Predación
-Hipovirulencia
-Inducción de defensas en el hospedero (IRS)

121. DESARROLLO BAJO CONDICIONES DE
CAMPO

122. SANIDAD Y ALTA PRODUCTIVIDAD

123. TRICHODERMA VS MAYOR CRECTO

124. TRICHODERMA PROMOTOR DE CRECTO

125. Día 5 a 8 (p< 0,0001)
Cepas 41-TSM-1, T. viride y Trichoplant® inhibieron completamente el crecimiento
de la bacteria, comparados con el testigo que presentó 6.820 UFC/mL
In vitro
Tratamientos efectivos
41-TSM-1
T. viride
Trichoplant ®
Esterilizados por
filtración o autoclavado
En las mismas
concentraciones
0
1000
2000
3000
4000
5000
6000
7000
8000
1 2 3 4 5 6 7 8
UFCRs7/mL
Días de evaluación
Testigo aboluto
19 TSM 3A
47 PDA 3A
41 TSM 1
Agroguard®
T. viride
Trichoplant®
Agroguard® autoclavado
41 TSM 1 autoclavado
Trichoplant® autoclavado
Testigo R. solanacearum 41-TSM-1 T. viride Trichoplant ®

126. Cepas 47-PDA-3A y 19-TSM-3A
no presentan ningún efecto de
inhibición de R. solanacearum,
ya que igualaron y superaron al
testigo (2.920 UFC/mL).
Tratamientos efectivos
T. viride
41-TSM-1
Agroguard ®
Trichoplant ®
Testigo R. solanacearum 47-PDA-3A
0
1000
2000
3000
4000
5000
6000
7000
8000
9000
10000
1 2 3 4 5 6 7 8
UFCRs78/mL
Días de evaluación
Testigo
19 TSM 3A
47 PDA 3A
41 TSM 1
Agroguard®
T. viride
Trichoplant®
Agroguard® autoclavado
41 TSM 1 autoclavado
Trichoplant® autoclavado
Día 5 a 8 (p< 0,0001)

127. CAMPOS CON ALTA SANIDAD Y
EXCELENTE COMPORTAMIENTO
PRODUCTIVO

128. Los microorganismos rizosféricos pueden afectar el crecimiento y la
salud de la planta de tres maneras:
1. 10-15% son negativos: las bacterias deletéreas
(rojo).
2. 70-80% son neutrales (negro).
3. 5-10% son positivos: las PGPRs (verde).

129. El significado de este principio:
El crecimiento “normal” y también la salud “normal” representan un balance entre bacterias
negativas y positivas
Crecimiento
normal con un
balance
favorable.
Crecimiento
poco con más
bacterias
negativas.
Crecimiento aumentado
con más bacterias
benéficas.
• Por eso, la hipótesis principal sobre PGPRs es que podemos aumentar la población de
bacterias positivas para cambiar el balance microbial y mejorar el crecimiento y/o la salud de
las plantas.
• Esta hipótesis asume que las PGPRs pueden vivir en la rizosfera después de ser aplicadas con
tratamientos a las semillas.

130. Raíz
Rizoplano
Rizosfera
Vello
radicular
Fermentación
Biorreactor
BACTERIAS PROMOTORAS DE CRECIMIENTO
RIZOBACTERIAS

131. Fundamentos teóricos:
D. Mecanismos de actividad
1. Aumento del crecimiento de la planta Mecanismos directos ocurren cuando metabolitos
bacterianos afectan la planta.
 Ácido giberélico
 Ácido indolacético
 ACC deaminasa (Pseudomonas spp.)
 Compuestos volátiles como acetidione (Bacillus spp.)
 Solubilización de fósforo
 Producción de fitasa (phytase) (Bacillus spp.)
 Fijación de nitrógeno (Azospirillum spp.)
 Mecanismos indirectos occuren cuando metabolitos
bacterianos afectan microorganismos deletéreos.
 Sideróforos: compuestos que quelatan hierro. Hay
competencia entre las PGPRs y las bacterias deletéreas.
Aumento del crecimiento
de Arabidopsis con
compuestos volátiles de
Bacillus. Arriba = testigo
sin PGPR.

132. Fundamentos teóricos:
D. Mecanismos de actividad
2. Control biológico de enfermedades
• El significado de resistencia inducida por PGPRs:
• PGPRs pueden “inmunizar” o “cebar” (“prime”) las plantas. Esto significa que
PGPRs pueden elicitar cambios en la fisiología de una planta que son
expresados solamente más tarde cuando la planta es estresada por el medio
ambiente o un patógeno.
• En este estado, la planta está cebada (primed).
Mancha de la hoja
de tomate
(Xanthomonas
axanopodis pv.
vesicatoria).
Tratamiento a las semillas con
PGPRs
Testigo

133. Usos actuales y potenciales de PGPRs:
A. ISR (resistencia sistémica inducida ).
Pruebas en campo e invernadero han demostrado ISR en pepino contra algunos
patógenos y enfermedades incluyendo:
• Enfermedad foliar fungosa: Antracnosis del pepino
(Colletotrichum orbiculare).
• Enfermedad sistémica viral: Mosaico del pepino (Cucumber
mosaic virus).
• Enfermedad causada por nemátodo: Nemátodo del nudo
radical (Meloidogyne incognita).
• Enfermedad foliar bacteriana: Mancha angular de la hoja
(Pseudomonas syringae pv. lachrymans).
• Enfermedad sistémica fungosa: Fusariosis del pepino
(Fusarium oxysporum).
• Enfermedad sistémica bacteriana: Marchitez de
cucurbitáceas (Erwinia tracheiphila).
• Insectos: Crisomélidos del pepino, vectores de Erwinia
tracheiphila.

135. BIOFERTILIZACION Y CONTROL DE LEPIDOPTEROS Y
ENFERMEDADES
PGRP

137. BIOMASA AEREA Y RADICULAR

141. MALFORMACIÓN DE LAS RAICES DE LAS PALNTAS DE
STEVIA EN LAS MUESTRAS

143. MICORRIZAS ARBUSCULARES
Definición: Mykos: Hongo
Rhiza: Raíz
Simbiosis mutualista entre algunos
hongos del suelo y la raíz de la
mayoría de las plantas.
 Beneficios de las MA para la planta y el suelo.
 Absorción y transporte de nutrimentos
 Bioconcotrolador de patógenos radicales y aéreos
 Mejoran las propiedades físicas del suelo

144. 3. CULTIVOS AGRICOLAS
Alfalfa Maní Caña Banano
Cereales Arroz secano Tabaco Soya
Trébol Plátano Pastos Palma de Aceite
Maíz Girasol Leguminosas Algodón
Trigo Café| STEVIA
4. PLANTAS ORNAMENTALES
Agapanthus Fern Holly Carrisa
Araucaria Forsythia Juniper Ceanothus
Barberry Gardenia Ligustrum tulip Poplar
Dogwood Green Ash Boxwood Mahonia
Mapples Cypress Palms Russian Olive
Photinia Sweet Gum Pittosporum Sycamore
Podocarpus Taxus Raphiolepsis Viburnum
Cedar Vinca Cotoneaster Xylosma

146. INOCULAR MICORRIZAS

148. DATOS DE CONTACTO:
Telefax: (092) 2752023 – (312) 866 5646
info@sanoplant.com.co
www.sanoplant.com.co