3. IDENTIFICACIÓN AI
(POSTULADOS DE KOCH)
➢El agente infeccioso debe encontrarse
en todos los casos de enfermedad
➢Debe aislarse y obtenerse en cultivo puro a
partir de lesiones
➢Debe reproducir la enfermedad cuando se
inocula a partir de un cultivo puro, en un
animal de experimentación susceptible
4. TÉCNICAS DE IDENTIFICACIÓN
TÉCNICA MICROORGANISMO TIEMPO
OBSERVACIÓN DIRECTA BACT HONGOS
VIRUS (ME)
10 MINUTOS
TINCIONES BACTERIAS HONGOS 30 MINUTOS
CULTIVOS BACTERIA HONGO
VIRUS
48 HORAS A
2 MESES
DETECCIÓN DE
ANTÍGENOS
Virus 10 minutos
DETECCIÓN ÁCIDOS
NUCLÉICOS
Bacterias, virus 1 hora
5. OBTENCIÓN DE LA MUESTRA
➢Según examen solicitado
➢Precauciones universales
➢Manual toma de muestras
➢Rotulación del recipiente
➢Nombre
➢Procedencia
➢Tipo de muestra
➢Fecha
6. REQUISITOS DE UNA BUENA MUESTRA
➢Muestra antes de iniciar el tratamiento
antimicrobiano
➢Desde el sitio más representativo de la
infección
➢Toma aséptica
➢Identificada
➢Transporte seguro al laboratorio
13. GRAM
• Permite plantear hipótesis de agente causal
• Orientación comenzar terapia
• Debe ser solicitada en toda muestra para
estudio microbiológico
14. Para interpretación es necesario recordar
• Cantidad mínima de microorganismos que es
capaz de detectar 100.000 bacterias/ml de
muestra
• Sensibilidad clínica del test
• LCR 75%
• Líquido pleural 50 – 80%
• Líquido peritoneal 25 – 50%
• Líquido articular50%
• Líquido Correlación urocultivo (+)
18. Sensibilidad clínica según la muestra
• Sensibilidad clínica del test
• LCR 20 - 40%
• Líquido pleural 50 %
• Líquido peritoneal 25 %
• Líquido articular 20%
• Orina No es diagnóstica
19. CULTIVOS
• Técnica de referencia en el diagnóstico
• Identificación del agente etiológico
• Estudio de susceptibilidad
• Requiere microorganismos vivo
• Rendimiento depende de
• Muestra representativa en el sitio infección
• Momento toma de muestra
• Uso antibióticos
• Medios de cultivo
21. MEDIO DE CULTIVOS
• Aislamiento primario
• Medios selectivos
• Medios diferenciales
• Medios selectivos diferenciales
• Pruebas bioquímicas
22. SUSCEPTIBILIDAD
• In vitro
• Terapia apropiada par el clínico
• Correlación in vitro y clínica
• Factores
• Farmacocinético
• Unión proteínas plasmáticas
• Bacteriostático o bactericida
• Concentración en el sitio
27. FACTORES DEL HUÉSPED
• Virulencia
• Alta concentración de MO
• Infección mixta
• Desarrollo de resistencia durante el
tratamiento
28. Indicaciones del antibiograma
• Determinar la susceptibilidad del agente
infeccioso
• Precisar la susceptibilidad
• Permitir evaluar a nivel local la epidemiología
• Evaluar la nueva susceptibilidad a nuevos
antibióticos
29. A cuáles MO se les hace antibiograma?
• Susceptibilidad variable Gram negativos
• Susceptibilidad predecible
• S pyogenes, S pneumoniae
• Emergentes con patrón d eersistencia
• MRSA
• VRSA
• Esquemas nacionales
• M tuberculoso
33. RESISTENCIA NATURAL: inactivdiad del antibiótico. Ejemplos:
Resistencia natural del Proteus mirabilis a las tetraciclinas y a la
colistina. Resistencia natural de la Klebsiella pneumoniae a las
penicilinas (ampicilina, amoxicilina).
RESISTENCIA ADQUIRIDA: naturalmente sensible, cuyo patrimonio
genético ha sido modificado por mutación o adquisición de genes, son
evolutivas
RESISTENCIA CRUZADA: Resistencia a la oxacilina en los estafilococos
se cruza con todas los ß-lactámicos). Resistencia por impermeabilidad
a las ciclinas se cruza con la resistencia al cloranfenicol y al
trimetoprima).
RESISTENCI ASOCIADA: estafiolococos a la oxacilina va
frecuentemente asociada a las quinolonas, aminoglicósidos,
macrolidos y ciclinas.
36. DNA
Lawrence Livermore National Laboratory dispositivo de tres pulgadas que puede detectar
hasta 3.000 tipos diferentes de virus y bacterias en sólo 24 horas. El bio-detector,
llamado Lawrence Livermore Microbial Detection Array (LLMDA), escala deslizante de cristal
que podría pasar por un porta-muestras normal Pero más allá de ese pequeño objeto de
vidrio se asientan, en un patrón de tablero de ajedrez, 388.000 sondas para buscar más de
2.000 tipos de virus y 900 tipos de bacterias.
