Este documento describe experimentos para demostrar la curación y segregación de plásmidos en Escherichia coli. Los objetivos son demostrar la pérdida espontánea y inducida de plásmidos, comparar el comportamiento de un plásmido grande unicopia frente a uno pequeño multicopia, y comparar el efecto curante del ácido ascórbico y el anaranjado de acridina. Se utilizan dos cepas de E. coli portadoras de plásmidos y medios permisibles e impersibles para medir la curación.
3. Características
1. Capacidad de integrarse al cromosoma.
2. Su replicación puede ser con la del cromosoma.
3. Portan información génica que muchas veces confiere ventajas
adaptativas y sin embargo son dispensables.
8. Función fenotípica
Plásmido F (Fertilidad)
Plásmidos R (Resistencia a antibióticos)
Plásmidos Bac (Síntesis de bacteriocinas)
Plásmidos Tol (Degradación)
11. Después de la división, ambos plásmidos se
replican para llegar a su número de copias.
Curación de las células de uno de los
dos plásmidos cuando son miembros
del mismo grupo Inc.
12. Segregación del Plásmido
• Pérdida espontánea del DNA plasmídico.
• Resultado de la interferencia durante el
proceso de replicación del plásmido sin
producir una interferencia paralela de la
replicación cromosómica.
14. Agentes curantes
• Derivados de fenotiazinas
• Derivados de clorpromazinas
• Colorantes : Anaranjado de acridina , Bromuro de
etidio (Inhiben la replicación)
• Acido ascórbico y SDS ( inhiben la partición)
https://www.researchgate.net/publication/6943925_The_Mechanism_of_Plasmid_Curing_in_
Bacteria
15. Anaranjado de acridina
.
Ácido ascórbico.
Actúa sobre la partición de los plásmidos.
Produce lipoperoxidación y deformación
de la membrana.
Falla la replicación
http://sisbib.unmsm.edu.pe/bvrevistas/folia/vol10_n4/antioxidantes.htm
17. CMI10,000 µg/ mL de antibiótico 4 mL C/U
500µL 500µL 500µL 500µL 500µL
1:9 1:9 1:9 1:9 1:9
1:9 1:81 1:729 1:6561 1:59049
10000
729
= 13.71µg/ mL
18. Demostración de la presencia de los factores R de
Bordetella bronchiseptica aislada en cerdos.
Nobuyuki Terakado, Hayami Azechi, Kiyoji Ninomiya y Takeshi Shinmizu
Laboratorio nacional de esayos veterinarios, Kokobunji, Tokio, Japón y el
instituto nacional de salud animal, Kodaria, Tokio, Japón.
Recibido para su publicación 9 de febrero de 1973
19. OBJETIVO CENTRAL
• Evidenciar la existencia de los factores R en cepas de
Bordetella bronchiseptica aislada a partir de cerdos.
• Demostrar que la triple resistencia se puede encontrar en
un solo factor transferible y que se pueda eliminar por
curación.
20. Bordetella bronchiseptica
• Habitante frecuente de
vías respiratorias
• Causa bronquitis
infecciosa
• Bacilo corto (G -)
• Aislado*
• No forma cápsula ni
esporas
• 37 +/- 2°C
• Medios enriquecidos
INTRODUCCIÓN
21. Prueba de sensibilidad a los fármacos.
Transferencia de resistencia de los
fármacos.
Tratamiento con acriflavina.
Bordetella bronchiseptica
Escherichia coli
ML1410
22. MATERIALES Y MÉTODOS.
7 cepas de B. bronchiseptica como donantes de resistencia a los
medicamentos
• B. bronchiseptica ATCC 4617como control
• B bronchiseptica 114 mutante nal+, receptora
Escherichia coli K-12
Ml1410 F-, met- (requiere metionina), nal+ (resistente al acido
nalidíxico)
Ml1410-RFP F-, Met- nal+, RFP+ (resistente a rifampicina)
W3630 f-, mal- (No fermentadores de maltosa)
CEPAS
23. • Caldo Penassay
• Agar infusión de corazón
• Medio de Muller-Hinton
• Agar DHL (Medio sólido)
• Agar nutritivo (10 g de peptona, 5g NaCl, 15 g de lactosa, 40 mL
de azul de bromotimol 0.2% y 13 g de agar.
• Agar AL – medio sólido(Azul de bromotimol, 13 g de agar, 20 g
de lactosa en 1000 ml de medio A )
MEDIOS
26. PRUEBA DE SENSIBILIDAD
A LOS FÁRMACOS.
• Objetivo: Determinar la sensibilidad de los fármacos
mediante la concentración mínima inhibitoria de cada
una de las cepas aisladas.
27. • La placa contiene diluciones
seriadas de cada fármaco
10-1 10-2
37°C
18 horas
28. RESULTADOS
TABLA 1. SENSIBILIDAD A LOS FÁRMACOS DE LAS CEPAS
UTILIZADAS.
Sulfadimetóxina (SA), Estreptomicina (SM), Aminobencil penicilina (APC), Rifampicina (RFP),
Tetraciclina (TC), Cloranfenicol (CP), Kanamicina (KM), Gentamicina (GM)
Ml1410 F-, met-, nal+
Ml1410-RFP F-, Met- nal+, RFP+
W3630 F-, mal-
29. La trasferencia de resistencia a los
medicamentos.
Objetivo: Analizar la transferencia
conjugacional de la triple resistencia entre
géneros y especies.
30. 5 mL de cultivo
Bordetella bronchiseptica (7 cepas)
Cepas receptoras*
37°C s/ agitación
1 hora
24 y 48
Horas
32. RESULTADOS
TABLA 2. Transferencia de resistencia a los medicamentos de Bordetella
bronchiseptica a Escherichia coli ML1410 por cultivo mixto.
TABLA 3. Transferencia de resistencia a los medicamentos de Bordetella
bronchiseptica a B. bronchiseptica 114 por cultivo mixto.
33. Para asegurar la transferencia
de la resistencia…
Preparación de cultivos filtrados .
La dosis con una
lámpara UV fue la que
le dio 0.1% de
sobrevivencia
35. RESULTADOS
TABLA 4. Eliminación de la resistencia a los medicamentos mediante el tratamiento
con acriflavina.
• La luz ultravioleta ayuda a escindir el plásmido del
cromosoma
• ML1416 misma cepa
37. OBJETIVOS:
• Demostrar la perdida espontanea de DNA plasmidico en la cepa de E.coli
• Demostrar la perdida inducida de plásmidos en las cepas de E.coli
• Comparar el comportamiento de un plásmido grande unicopia con el de un
plásmido pequeño multicopia en relación a su curación.
• Comparar el efecto curante de dos agentes químicos de diferente naturaleza.
38. MEDIOS Y CEPAS
• Agar Luria (permisible)
• Caldo Luria
• Agar Luria con ampicilina (L-Ap) (no permisible)
• Medio mínimo (MM) (no permisible)
• Medio mínimo con histidina (MMH) (permisible)
Escherichia coli JC4046( F+ His+ / His -) (plásmido
unicopia) megaplásmido
Escherichia coli DH5αpBS (Amp R / Amp S) (plásmido
multicopia) pequeño
40. 1º día
Escherichia coli
DH5α
8 mL caldo L
Escherichia coli
JC4046
8 mL caldo L
37 ºC
18-24 h
Tratamiento con ácido
ascórbico
41. 2º día
1.5 mL
Completar caldo L
a 3 mL
P 0.3 mL ácido
ascórbico
0.2M
T 0.3 mL agua
estéril
37 ºC
90 min con agitación
10’-5
10’-6
x2 agar L
37 ºC
18 a 24 h
0.1 mL
42. 3º día
Calcula %
sobrevivencia
500 problema
300 testigo
37 ºC
18 a 24 h
4º día
MM Y
MMH –
JC4046
L Y L-Ap
DH5α
37ºC
MM Y MMH 48
h
L Y L-Ap 18-24
h
5º día
% curación y
segregación
43. 1º día
Escherichia coli
DH5α
8 mL caldo L
Escherichia coli
JC4046
8 mL caldo L
37 ºC
18-24 h
Tratamiento con anaranjado
de acridina
44. 2º día
0.1 mL
3 mL caldo L
pH 7.8
T 150 µL
etanol al 10%
P 150 µL
anaranjado de
acridina
1mg/mL 37 ºC
18 – 24 h
Agar L
37 ºC
18 h
3º día
T 10’-4 10’-5
P 10’-4 10’-5
0.1 mL
45. 4º día
500 problema
300 testigo
37 ºC
18 a 24 h
5º día
MM Y
MMH –
JC4046
L Y L-Ap
DH5α
37ºC
MM Y MMH 48
h
L Y L-Ap 18-24
h
6º día
% curación y
segregación
46. Bibliografía
Freibelder David “Microbial Genetics” Editorial Jones and Bartlett publishers,INC Portola Valley.PP 147-
280 Universitu of California, San diego
https://books.google.com.mx/books?id=CS1pyvGEwKoC&pg=PA24&dq=clasificaci%C3%B3n+de+un+plasm
ido&hl=es&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q=clasificaci%C3%B3n%20de%20un%20plasmido&f=false
https://books.google.com.mx/books?id=CPYe5mzw-
igC&pg=PA294&dq=definicion+de+un+plasmido&hl=es&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q=definicion%20d
e%20un%20plasmido&f=false
https://books.google.com.mx/books?id=Nlego0fDRUQC&pg=PA43&dq=clasificaci%C3%B3n+de+un+plasmi
do&hl=es&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q=clasificaci%C3%B3n%20de%20un%20plasmido&f=false
https://books.google.com.mx/books?id=CS1pyvGEwKoC&pg=PA24&dq=clasificaci%C3%B3n+de+un+plasm
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igC&pg=PA294&dq=definicion+de+un+plasmido&hl=es&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q=definicion%20d
e%20un%20plasmido&f=false
https://books.google.com.mx/books?id=Nlego0fDRUQC&pg=PA43&dq=clasificaci%C3%B3n+de+un+plasmi
do&hl=es&sa=X&redir_esc=y#v=onepage&q=clasificaci%C3%B3n%20de%20un%20plasmido&f=false
Notas del editor
Aseguran que al menos una copia del plásmido está presente en cada célula hija.
Las funciones que participan en estos sistemas se denominan funciones Par.
PAR M Y ATP LLEGAN Y POLIMERIZA HACIENDO FILAMENTOS Y ESTOS PLASMIDOS SE EMPUJEN A LOS POLOS E LA CELULA , ESTA POLIMERIZACION SE HIDROLISA , 5 SE DESESTABILIZA Y COMIENZA LA DESPOLARIZACION Y DEJA A LOS PLASMIDOS A LOS POLOS Y EN LA REPLICACION , ASEGURANDO QUE LA CELULA TENGAN UN PLASMIDO
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Con alguns plásmidos, la replicación es inhibida por varios agentes que pueden intercalarse entre las bases del DNA, particularmente las acridinas, sin la inhibición de la replicación cromosomal del DNA. Tal inhibición puede llevar a la perdida del plásmido ( curación por acridina). El fenómeno quien es detectado más fácilmente cuando el plásmido contiene genes del huésped , esta ilustrado en la imagen si un cultivo de una bacteria cuyo genotipo es F´lac+/lac- se cultiva en medio que contenga anaranjado de acridina las células continúan creciendo y dividiéndose. Sin embargo Después de una generación el número de células lac+ permanece constante y aumenta el número de células lac-. la explicación es la siguiente. En el momento de la adición de naranja acrdina, la mayoría de las células cotain 2 copias de F'lac. Después de una generación cada célula contiene sólo un F'lac porque la replicación del plasmido es inhibido , asi en la siguiente división celular sólo un plásmido está disponible para las 2 células hijas , como consecuencia, el plásmido libre bacteriano se producen. El curado de acridina es una ayuda conveniente en la identificación de marcadores genéticos que residen en el cromosoma.
El mecanismo de curación de acridina es elusivo , esto trabaja solo en un rango justamente estrecho de las concentraciones de acridina, Por qué la replicación del ADN plásmido es más sensible a las acridinas que la replicación del cromosoma. Adicionalmente, el curado tiene una dependencia extraordinaria en el pH del medio de crecimiento, siendo óptima a pH 7,6 y bastante ineficiente un pH 7 y 8. Por qué algunos plásmidos no son inhibidas por la acridinas y es desconocido
DEMOSTRAR QUE LA TRIPLE RESISTENCIA SE PUEDE ENCONTRAR EN UN SOLO FACTOR TRANSFERIBLE y que se pueda eliminar por curación ,
El método de dilución en agar se utilizó para la determinación de la sensibilidad al fármaco . Se ocupo una asada de siembra de una dilución de10-2 en una placa de infusión de corazón que contiene diluciones seriadas de cada fármaco. Para el ensayo de la resistencia SA se ocupo Mueller Hinton, La CMI DE cada fármaco se leyó desues de incubar a 37°/18 horas
Cepas receptoras* cuando se utilizó a ML1410 (R) Se sembro en Agar DHL con NA (50 microgramos/mL) y SM (12.5 microgramos / mL) Para seleccionar transconjugantes.
Cundo se ocupa a B. bronchiseptica 114 (control)se ocupa un agar nutritivo NA( 200 microgramos/mL ) y SA (400 microgramos/mL )
El número de células viables de E. coli y B. bronchiseptica se determino por el método de dilución en agar despues de 24 y 48 horas respectivamente
la resistencia SM-SA-APC fue transferida como un todo para ML1410 a una frecuencia de aproximadamente 1O-7 10-8 por célula donante.
Sulfadimetóxina (SA), Estreptomicina (SM), Aminobencil penicilina (APC), Rifampicina (RFP), Tetraciclina (TC), Cloranfenicol (CP), Kanamicina (KM), Gentamicina (GM)
tiene SU MAQUINARIA ENZIMATICA CON RESPECTO A Bb , primer , rna pol, sigma , secuencia promotora
Filtro de membrana de 0.45 micrómetros de poro, un filtadro de cultivo de B.bronchiseptica con y sin radiación UV
Para confirmar el hecho de que la resistencia a los medicamentos transmisible en B. bronchiseptica fue mediada por factores R, la exconjugante ML1410 resistente a la SM- SA- APC se trató con acriflavina. Las muestras a ser tratadas con acriflavina fueron divididos en dos grupos; uno fue irradiado con una lámpara de UV antes del tratamiento con acriflavina y el otro no se irradió. Como se muestra en la Tabla 4