MODULO 3 TOMA DE MUESTRA.pptx

TÉCNICAS DE MANEJO DE MUESTRAS
VETERINARIAS, SANITARIAS
1
Modulo III–
CONSIDERACIONES PARA LAS TOMAS DE MUESTRAS VETERINARIAS
a. Identificación de las muestras
b. Empaque de las muestras
c. Transportes de las muestras
d. Cuidado en el manejo de las muestras veterinarias

En el momento que te digan que no eres
bueno en algo ,es momento de demostrar
que no eres bueno, sino el mejor.
2

Modulo III–
Consideraciones para las tomas de muestras
veterinarias
a,-Seleccionar el animal del cual se pretende
tomar la muestra, de preferencia que presente
signos clínico de la enfermedad,
En muestras de hatos ó lotes, estas deberán ser
tomadas de un numero representativo de
animales

4
Modulo III–
veterinarias
 Tener el cuidado de enviar muestras que
sean características de la enfermedad que
se sospecha y representativas de los signos
clínicos que se observan.

5
Modulo III–
veterinarias
 Enviar muestras de los animales que han muerto
recientemente (máximo 4 horas después);
es recomendable el envío de las muestras
de las diversas fases que puede presentar la
enfermedad.

Modulo III–
veterinarias
 Cuando se toma unas muestras, se debe
evitar la contaminación de las mismas,
utilizando un procedimiento lo más limpio
posible

Modulo III–
veterinarias.
A- Identificación de las muestras
Cada muestra debe estar acompañada con
formulario de toma de muestras , este formulario
debe contener datos como:
a. Ubicación de la propiedad
b. Nombre del propietario
c. Identificación del o los animales

8
Modulo III–
veterinarias
A, Identificación de las muestras
d. Signos presente al momento de la toma de
muestras
E, Tipo de muestra solicitada

9
Modulo III–
Consideraciones para las tomas de muestras veterinarias
1. Muestras de sangre
1.1 Sangre sin Anticoagulante
Para realizar exámenes serológicos como
a. Brucelosis, b. Leptospirosis,
c. Anemia infecciosa Equina ( AIE), d. Rinotraqueitis Infecciosa Bovina(IBR, )
e. Diarrea Viral Bovina (BVD) y otros),

10
Modulo III–
1.1 Sangre sin Anticoagulante
Se utilizan tubos con vacío sin aditivos para obtener,
la separación de los paquetes sanguíneos, el suero.
Se requieren mínimo de 5 ml de sangre sin anticoagulante
dejando el tubo a temperatura ambiente en plano inclinado
a la protección del sol por algunos minutos hasta que se
produzca la coagulación y luego se refrigera (2 – 8º C).

11
Modulo III–
A. Identificación de las muestras
1.2 Sangre con anticoagulante
a. Para realizar perfiles hemáticos (hemogramas,
recuento de glóbulos rojos y blancos, Hematocritos y otros),
b. investigación de hemoparásitos (Anaplasma, Babesia, Tripanosoma y
otros)
Para la obtención de esta muestra se utilizan tubos al vacío de tapa lila
(EDTA);

12
Modulo III–
 Para cuadro Hemático y Hemoparásitos, tubos tapa celeste
(Citrato de Sodio);
 Para la determinación de factores de
coagulación tubos tapa verde (Heparina)

13
Modulo III–
 Para determinación de antígenos, en algunos casos
también se pueden realizar frotis finos de sangre sobre
porta objetos de vidrio.

14
Modulo III–
2. Muestras para exámenes Parasitológicos
a. Materia fecal fresca
Con las muestras de materia fecal se pueden
diagnosticar infestaciones de parásitos:
 Parásitos gastrointestinales y coccidias,
 Parásitos hepáticos (pej. Fasciola hepática),
 Parásitos pulmonares y cultivos e identificación de larvas.

15
Modulo III–
a. Materia fecal fresca
Precauciones.
 Las muestras no preservadas pueden durar de 24 – 36
horas antes de llevar al laboratorio.
 No se debe congelar las muestras.
 No es recomendable realizar pool (mezcla de muestras
en un solo recipiente) en campo

Modulo III–
b. .Coprocultivos
Raspados ó hisopados de la mucosa rectal:
Esta muestra sirve para determinar enterobacterias
que se comportan como patógenas las que se encuentran
adheridas a la mucosa del intestino.

18
Modulo III–
b. .Coprocultivos
La forma correcta de tomar la muestra es realizando una limpieza del área
externa del recto del animal afectado con la ayuda de un hisopo estéril
realizar un hisopado sobre la mucosa rectal con movimientos rotatorios
luego introducirlo en un tubo de ensayo estéril,cierre, identifique y envíe a
laboratorio refrigerado

19
Modulo III–
A:Identificación de las muestras
b. .Coprocultivos
 Más de 12hr en llegar al laboratorio se debe adicionar
1 a 2ml de solución fisiológica estéril, enviar en refrigeración.
 Otra alternativa es tomar una muestra de materia fecal del
recto con guante nuevo e introducir en un recipiente estéril
5 a 10gr enviar en refrigeración.

TÉCNICAS DE MANEJO
DE MUESTRAS
VETERINARIAS,
SANITARIAS
20
Modulo III–
3. Muestras de órganos (Bacteriología)
Para la realización de exámenes microbiológicos con
muestras de órganos y tejidos se deben tomar todas las
precauciones de asepsia para evitar la contaminación de las
muestras,
Utilizar tijeras, pinzas, guantes, frascos o bolsas plásticas
nuevas (1Kg) limpios (as) y estériles

21
Modulo III–
3. Muestras de órganos (Bacteriología
 Las muestras se deben colocar en bolsas o frascos
individuales para cada órgano con la identificación correspondiente.
 Cuando se trate de abscesos o exudados purulentos se
debe recoger el material con torundas o hisopos estériles
en tubos o frascos estériles.

22
Modulo III–
3. Muestras de órganos (Bacteriología
Todas las muestras colectadas para los exámenes
microbiológicos (bacteriología) se deben transportar en
refrigeración de 2º a 8º C, teniendo el cuidado necesario
para evitar la fuga del material.

23
Modulo III–
3. Muestras de órganos (Histopatología)
Las muestras de tejidos que se obtienen durante la necropsia,
el éxito de los análisis dependerá de la prontitud con que
el MV haga la necropsia después de la muerte del animal.
Es importante reconocer que una vez se inician los procesos
de descomposición (autólisis) éstas muestras ya no son
aptas para los exámenes

24
Modulo III–
Se deben hacer cortes delgados máximo 1 cm. de grosor
desde la superficie hasta la mitad del espesor del órgano a examinar.
Seleccionar fragmentos de tejido lesionados y tejido normal.

25
Modulo III–
Coloque los tejidos seleccionados en un frasco boca ancha,
tapa rosca con cierre hermético (evitando fugas del liquido)
y en solución de formol al 10%.
La relación debe ser 1 parte de tejido por 10 de formol.

26
Modulo III–
Consideraciones para las tomas de
muestras veterinarias
Los tejidos huecos Como intestino,
vejiga, útero deben ser abiertos para
que se produzca una buena fijación.

27
Modulo III–
Los cortes de vísceras sólidas deben hacerse perpendicularmente
a la superficie para demostrar su estructura anatómica e incluir el
borde natural de la víscera.
Si hay lesiones focales o pequeñas remítalas, incluyendo en
el corte parte de tejido sano

28
Modulo III–
 Adjuntar el listado de los órganos remitidos, un resumen de la
historia clínica y todos los hallazgos de necropsia incluyendo
extensión, color, consistencia de los tejidos, etc.
 Escribir un diagnostico presuntivo de acuerdo con la
sintomatología clínica y de necropsia

29
Modulo III–
Las muestras conservadas en Formol al 10% no
requieren refrigeración por lo que se enviaran al laboratorio
a temperatura ambiente acompañado del protocolo de
necropsia y los datos de solicitud de diagnostico.

30
Modulo III–
4. Muestras para cultivo/aislamiento viral – Biología Molecular (PCR
El éxito de un aislamiento bacteriano o viral a partir de
una muestra de tejido depende fundamentalmente de la
toma de la muestra, las condiciones de asepsia y su
conservación durante el transporte.

31
Modulo III–
 Para el aislamiento de algunos virus se requieren muestras y
medios especiales de manejo.
 Es importante que se consulte al laboratorio donde se
enviarán y sobre la forma adecuada de hacerlo.

32
Modulo III–
Las muestras para diagnostico por Reacción en Cadena de la Polimerasa (PCR)
requiere que los materiales a utilizar sean de preferencia estériles
y desechables sin aditivos ni preservantes.
En algunos casos es necesario que personal del laboratorio
sea quien tome la muestra respectiva.

33
Modulo III–
4. ) Muestras para cultivo/aislamiento viral – Biología Molecular (PCR
Recomendaciones
 Tomar las muestras de la manera más aséptica posible.
 Los cortes de los órganos con lesiones, deben ser pequeños
trozos de más o menos 5cm de espesor
 Depositar en un recipiente estéril o en pequeñas bolsas plásticas
(polietileno) estériles o en su defecto frascos de vidrio estériles.

34
Modulo III–
Recomendaciones
 Todos los órganos que han sido separados para su
envío al laboratorio, deberán ser individuales,
para cada muestra una bolsa o frasco estéril.

35
Modulo III–
 Es indispensable el envío en refrigeración, independientemente del tiempo
que transcurra para llegar al laboratorio.
 Deben ser remitidas con un resumen de la historia clínica y datos de la
necropsia.

36
Modulo III–
5. ) Muestras de leche
La toma de muestra de leche se debe realizar teniendo el
cuidado de no contaminar la muestra con las manos y/o
material no esterilizado.
Precaución
No se debe tocar la punta del pezón.
La muestra debe ser enviada en refrigeración los más pronto
posibles al Laboratorio.

• Modulo III–
• Consideraciones para las tomas de
B. Empaque de las muestras
• Todo paquete debe ser etiquetado con
datos del remitente y del destinatario,
además de avisar telefónicamente al
laboratorio el número de guía, fecha,
hora de llegada y nombre de la línea de
transporte.

38
Modulo III–
veterinarias
Para el embalaje de las muestras se
deberá emplear en lo posible el sistema
de triple envase:

39
Modulo III–
Para el embalaje de las muestras se deberá emplear en lo
posible el sistema de triple envase:
Recipiente Primario:
Recipiente de plástico, impermeable, con tapa rosca
hermética, etiquetado, que contiene el espécimen y que se
envolverá en material absorbente (toallas, algodón
hidrófilo o celulosa) en cantidad suficiente.

Empáque
secundario
• Modulo III–
• Consideraciones para las tomas de
• Empaque de las muestras
• Para el embalaje de las muestras se deberá
emplear en lo posible el sistema de triple envase:
• -Recipiente secundario:
Recipiente resistente, impermeable, a prueba de
filtraciones, que encierra y protege el (los)
recipiente(s) primario(s).

41
Modulo III–
-Recipiente secundario:
Cuando se colocan varios recipientes primarios dentro de
uno secundario, los primarios deberán ser envueltos en
forma individual.
Se debe usar suficiente material absorbente para proteger
todos los recipientes primarios y evitar los choques entre ellos.
.

42
Modulo III–
Recipiente terciario o envoltura exterior de envío:
Envoltura de envío que protege el recipiente secundario
de elementos externos, tales como daños físicos, agua
y de posibles manipulaciones.
Debe ser de material suficientemente sólido como para
asegurar su protección
(Ejemplo: caja de Tecnopor forrada con cartón).
.

43
Modulo III–
Recipiente terciario o envoltura exterior de envío:
A él irán adheridas las señas del destinatario y del remitente,
así como los adhesivos que exija el transportista sobre su contenido:
Etiqueta de sustancia infecciosa o de sustancia biológica perecedera.
Además, irán adheridos los oficios y fichas que identifican remisión
de muestra al laboratorio.

44
Modulo III–
Las cabezas de animales, cadáveres, cerebros
o sus porciones deben ser colocadas en un recipiente
de tamaño adecuado y a prueba de agua con tapa
bien ajustada. ,
”.

45
Modulo III–
Este recipiente se coloca a su vez dentro de otro más grande
también hermético, colocándole hielo alrededor y rotulándolo así:
“Este recipiente contiene material que puede estar contaminado”.

46
Modulo III–
Si no se cuenta con un recipiente recomendado se puede utilizar bolsas de
plástico, envolviendo la muestra en suficiente papel, para evitar que las bolsas se
rompan y produzcan una lesión en las manos de quien transporta la muestra o
quien la recibe.
Una etiqueta, en forma de diamante (100 mm x 100 mm), que en la parte inferior
debe llevar escrito las palabras “SUSTANCIA INFECCIOSA”.

47
Modulo III–
c. -. Transportes de las muestras,
 Elegir el itinerario más directo, con el menor número de transbordos
y esperas de tránsito.
 Se procurará que el envío no llegue sábado, domingo o días feriados.
 Es conveniente que el personal de laboratorio y El que recepcionará las
muestras sepan con antelación la procedencia y el número de muestras que
recibirán, con la finalidad de evitar muestras perdidas o en paradero
desconocido.

48
Modulo III–
 Se recomienda que todas las muestras , se trasporten y conserven en
recipiente herméticos, no se congelen sino que se mantengan a temperatura
de refrigeración, se entreguen en el laboratorio lo antes posible.,

49
Modulo III–
 Se conserven en envase con acumuladores de frio ,
mas' que con hielo en el interior para mantenerlas frías,
los tejidos y órganos se colocan por separados en bolsas
plásticas y se etiquetan.

50
Modulo III–
 El exterior del envase debe ir etiquetado con la dirección del laboratorio
receptor con el siguiente rotulo(material patógeno animal, perecedero, frágil,
no abrir fuera del laboratorio)

51
Modulo III–
 El laboratorio receptor de las muestras debe ser informado
con antelación del la llegada dela muestra.
 Para el trasporte aéreo las muestras deben etiquetarse
de acuerdo a las normas internacionales

MODULO 3 TOMA DE MUESTRA.pptx

Recomendados

Recomendados

Más contenido relacionado

Similar a MODULO 3 TOMA DE MUESTRA.pptx

Similar a MODULO 3 TOMA DE MUESTRA.pptx (20)

Último

Último (20)

MODULO 3 TOMA DE MUESTRA.pptx