El documento detalla los requisitos y procedimientos para la toma y transporte de muestras para diagnóstico en salud animal, incluyendo la correcta identificación, almacenamiento y métodos de envío. Se abarcan diferentes tipos de muestras como sangre, heces y tejidos, especificando las condiciones necesarias para su preservación y análisis. Además, se enfatiza la importancia de la higiene y la utilización de materiales apropiados para asegurar la calidad de las muestras hasta su llegada al laboratorio.

1. SALUD ANIMALSALUD ANIMAL
ZOO 300ZOO 300
Módulo # 3Módulo # 3

2. Módulo 3.
MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO DE
LABORATORIO.
1. Requisitos de las muestras
2. Toma de muestras de sangre y leche para análisis
serológico
3. Toma de muestras para estudio coproparasitológico
4. Toma de muestras para prueba de mastitis
5. Técnicas de diagnóstico más comunes en el laboratorio
de salud animal

3.
Requisitos de una muestra para Laboratorio
1.Ante todo en la obtención de una muestra tenemos la
higiene con la que se colecta la misma.
2.Cantidad, hora y lugar de su obtención.
3.La identificación correcta del tipo de material y del
animal u otra fuente en cuestión.
4.Correcto almacenaje y transporte hasta el laboratorio.
5.Tipo de diagnóstico solicitado y diagnóstico presuntivo.
Nota: El material donde se toma la muestra en muchas
ocasiones se convierte en determinante para que esta se
altere. Hoy en el mercado se consiguen todos los
elementos necesarios que garantizan esterilidad,
conservación de la muestra, además de su fácil manejo en
el campo y comodidad para el transporte.

4. Tubos al vacío para toma de muestra de sangreTubos al vacío para toma de muestra de sangre
con anticoagulantecon anticoagulante
Los colores de los tapones son de convención internacional que aplica en
todas las marcas.
Tubos con EDTA, tapón lila, de capacidades 3.0 a 10.0 ml. Es el
anticoagulante que mejor conserva las células y de mayor uso en todos los
casos que se requieren exámenes de cuadro hemático y hemoparásitos.
Tubos con Citrato de Sodio, tapón azul claro, de capacidades de 3.0 a
10.0 ml. Se usan cuando se requieren pruebas de coagulación y no se
recomienda para cuadro hemático y hemoparásitos por la baja
capacidad que tienen de conservar la morfología celular.
Tubos con heparina, tapón verde. Se usan para realizar algunas pruebas
inmunológicas que detectan antígenos. No se recomiendan para cuadro
hemático por la baja capacidad conservadora.
Alternativa: Cuando por fuerza mayor no se dispone del tubo nuevo al
vacío adecuado, se puede recurrir a preparar tubos con EDTA, siempre y
cuando el tubo sea de vidrio neutro, especial para laboratorio, perfectamente
lavado con detergente neutro, enjuagado con agua destilada y seco al calor.
Se puede usar con dos gotas de EDTA al 10 % para 5 ml de sangre y 3
para 10 ml.

5. Tubos al vacío para toma de muestras de sangreTubos al vacío para toma de muestras de sangre
sin anticoagulantesin anticoagulante
Por convención tienen tapón rojo, y vienen en capacidades de
3.0, 5.0, 7.0 y 10.0 ml Estos tubos son de vidrio o plástico neutros
protegido con silicona para evitar la hemólisis y facilitar la
retracción del coágulo. Adicionalmente se pueden utilizar como
recipiente estéril para muestras de bacteriología.
Tubos de estas mismas características pueden venir adicionados de
un gel activador de coagulación o gel para separar el
coágulo del suero sin necesidad de usar otro tubo.
Alternativa: Cuando por fuerza mayor no se dispone de tubos al
vacío nuevos, se puede usar tubos de laboratorio tratados (lavados
con detergente neutro, enjuagados con agua destilada y secos al
calor) No se debe usar esta alternativa cuando se requieres
análisis de minerales.

6. AgujasAgujas
Agujas para toma de muestras con tubos al vacío Normalmente de calibre 20 G,
color amarillo, 21 G color verde, 22 G color negro con longitudes de 1 a 1 1/2 pulgada,
para animales mayores (seleccionar de acuerdo con el vaso sanguíneo a puncionar).
Tambien se pueden emplear agujas hipodérmicas estériles y desechables. En el
mercado hay un amplio surtido (longitud de 1/2 a 1 1/2 pulgadas y calibres 18 a 30 G).
Las mas usadas son 18, 19, 20 y 21 con longitudes de acuerdo con la práctica de
inyectología que se quiera manejar.
Escobillones o hisopos estériles
Son irreemplazables cuando se quiere tomar muestras para cultivo bacteriológico de
secreciones, abscesos, órganos afectados y frotis para citología exfoliativa.
Escobillones con medio de transporte (Culturette). Hay para bacterias aerobias,
anaerobias y uno modificado que permite el aislamiento de estos dos grupos de
microorganismos. Son indicados cuando la muestra demora más de 12 horas para llegar
al laboratorio, el transporte se puede hacer a temperatura ambiente, los
microorganismos se mantienen viables sin proliferación de carga microbiana
contaminante.
Escobillones o hisopos secos. Preparados en tubos de vidrio o plástico estériles,
pero por carecer de humedad y Medio de cultivo, tienen poca capacidad para conservar
la viabilidad de los microorganismos a pesar de que se mantengan refrigerados. Cuando
al tomar la muestra se observa que el algodón queda prácticamente seco, se
recomienda humedecerlo con solución salina fisiológica estéril para evitar la muerte
bacteriana por desecación.

8. Frascos de Boca Ancha y tapa herméticaFrascos de Boca Ancha y tapa hermética
Por seguridad se prefieren los de material plástico a los de
vidrio. Son útiles para la toma y manejo de muestras de
materia fecal, orina e histopatología. Algunas marcas
ofrecen material estéril que los hace útiles para estudios
bacteriológicos. Frascos de capacidad de 30 a 100 ml son
suficientes para manejar cualquier muestra.
Alternativa: Guantes o bolsas plásticas
Bolsas plásticas estériles con selle alambrado
Útiles para toma de muestras de leche, tejidos para
bacteriología y muestras de agua. Se consiguen en
diferentes capacidades de acuerdo con las necesidades,
por ejemplo las de dos onzas es la que más se utiliza para
muestras de leche.

9. Identificación de las muestrasIdentificación de las muestras
Siempre utilice un marcador resistente al agua o en su defecto un lápiz de
cera. Cuando se humedecen las muestras y se ha usado un marcador
soluble en aguase pierde la identificación y con ello el trabajo de haber
tomado varias muestras. Cuando se usan los recipientes adecuados estos
tienen espacios para identificar la muestra, normalmente muy bien
adheridos. Cuando tenga necesidad de usar cinta o esparadrapo
asegúrese que este rodee completamente el tubo o frasco.
Transporte de muestras
Por norma general lo ideal es que las muestras lleguen al laboratorio lo
antes posible y para cada tipo de muestra y análisis solicitado, en el capítulo
correspondiente se fijarán las condiciones de tiempo y temperatura
requeridas.
Transporte de muestras no refrigeradas
Cuando la muestra puede llegar al laboratorio en menos de 4 horas o
cuando la muestra enviada no requiere refrigeración, las muestras pueden
ser transportadas a temperatura ambiente en un lugar fresco protegidos de
los rayos directos de la luz y del sol, evitando las vibraciones.

10. Transporte de muestras refrigeradas
Al empacar muestras que deben ser enviadas refrigeradas tenga en
cuenta las siguientes recomendaciones:
•Esté seguro que las muestras estén identificadas con marcador
resistente al agua
•Utilice una caja o termo proporcional al tamaño o número de muestras a
enviar.
•Evite que los envases entren en contacto directo con el hielo. Para esto
cuando use bloques de hielo mézclelos con aserrín, o cascarilla o
coloque los tubos dentro de una bolsa plástica. Cuando utilice bolsas
refrigerantes envuelva los tubos en papel periódico, colóquelos en una
bolsa plástica y así envíelos en la caja termo.
•Prepare una historia clínica que incluya, nombre del propietario,
ubicación de la finca, raza, nombre o número de los animales, análisis
solicitados. Cuando se incluyen los síntomas clínicos se facilita la
interpretación de los resultados obtenidos.
Recuerde que el laboratorio trabaja de lunes a Viernes de 8 am a 4 pm,
por esto las muestras deben ser enviadas entre lunes a miércoles y evitar
problemas de almacenamiento y temperatura durante el fin de semana.

11. Tipos de muestrasTipos de muestras

12. Sangre sin anticoagulante
Sirve para obtener suero sanguíneo
Aplicaciones
Para realizar todos los ensayos inmunológicos como Brucelosis, Leptospirosis,
Diarrea Viral entre otros, determinaciones de Química sanguínea como Minerales,
enzimas etc.,
Se utilizan tubos al vacío tapa roja, para obtener suero se requieren mínimo 5 ml
de sangre sin anticoagulante. Se deja el tubo a temperatura ambiente en un
ángulo de 30° por unos treinta minutos.
Precauciones
La alteración es la hemólisis que se produce por la ruptura de los glóbulos rojos.
Las causas más frecuentes para esto son el uso de tubos o agujas húmedas,
envases de vidrio que no sea neutro, como frascos de alimentos y medicamentos,
presencia de residuos de detergente, exposición directa a los rayos solares,
almacenamiento a temperaturas no adecuadas. Cuando se ha utilizado jeringa y
aguja, el exceso de presión en el émbolo a la toma o al transvasar al tubo pueden
producir hemólisis por esto retire la aguja y permita que la sangre fluya por las
paredes del tubo suavemente.
Transporte
Si la muestra llega al laboratorio antes de 4 horas, se puede transportar a
temperatura ambiente de lo contrario envíelas refrigeradas.

13. Sangre con anticoagulante
Aplicaciones
Para Cuadro Hemático, Investigación de Hemoparásitos, Investigación de
factores de Coagulación, Determinación de algunos Antígenos.
Se utilizan tubos al vacío de tapón LILA (EDTA) para Cuadro Hemático y
Hemoparásitos, tubos tapón AZUL (Citrato de sodio) para determinación de
factores de coagulación y tubos tapón VERDE (Heparina) para
determinación de Antígenos.
Precauciones
No use agujas húmedas porque que se produce hemólisis. Permita que el
tubo se llene hasta las 2/3 partes. Una vez tomada la muestra homogenizar
invirtiendo el tubo suavemente 5-10 veces, esto con el fin de mezclar el
anticoagulante con la sangre para evitar la formación de coágulos los cuales
afectan el procesamiento de la muestra. Si hay coágulos se debe tomar la
muestra nuevamente.
Esta muestra debe llegar a laboratorio el mismo día de tomada para que no
haya alteración de la morfología celular. Envíe la muestra refrigerada si se
va a tardar más de dos horas antes de llegar al laboratorio. Para diagnóstico
de Filaria debe traerse la muestra en tubo con heparina.

14. Investigación de Hemoparásitos
Es necesario tener en cuenta que los glóbulos rojos infestados
con Babesia o Anaplasma son más pesados y tienen
tendencia a permanecer adherido a los pequeños vasos. Por
esto las muestras de sangre tomadas por punción capilar
periférica tienen mas y mejores posibilidades de diagnóstico.
De igual manera los glóbulos rojos parasitados se lisan mas
rápidamente y por esto una muestra con mas de tres horas de
tomada, a pesar de haber sido refrigerada puede dar falsos
negativos. No se justifica enviar sangre para investigación de
hemoparásitos cuando esta va a durar mas de 6 horas en
llegar al laboratorio, empaque y envíe refrigerado.

15. Preparación del frotis
Para mejorar la posibilidad de diagnóstico de Hemoparásitos se debe
practicar un frotis de sangre en el mismo momento de la toma de la
muestra preferiblemente utilizando sangre obtenida por punción capilar,
(oreja en bovinos, labio o pulpejos en caninos o al menos a partir de la
que se ha tomado en el tubo. Un frotis delgado y fijado al aire garantiza la
permanencia casi indefinida de los glóbulos rojos parasitados.
Identifique la lámina portaobjetos con el número de la muestra. Coloque
una pequeña gota en un extremo de la lámina. Coloque otra lámina
portaobjetos delante de la gota, manteniéndola en un ángulo de 25 a 35°
y deslícela suavemente hacia la gota hasta que se esparza la sangre
hacia los lados, llevar la lámina hacia delante con un movimiento
sostenido en el mismo ángulo para que el frotis quede delgado y largo,
dejarlo secar al aire. Prepare dos frotis por muestra. Empaque las
láminas en papel Bond separadas por palillos.
Cuando tenga que enviar las muestras refrigeradas no incluya las
láminas de los frotis dentro de la caja ya que la humedad los desprende.
Hágalo dentro del sobre remisorio protegidas entre dos cartones.

16. Estudio parasitológico en equinos, bovinos, ovinos y
caprinos
La materia fecal debe ser tomada directamente del recto usando un guante de
palpación nuevo. Coloque 20 a 30 gramos en un recipiente de boca ancha limpio
y seco, que permita su fácil transporte y manipulación en el laboratorio.
Identifique correctamente. Con esta cantidad es suficiente para parásitos
gastrointestinales y coccidias, así como para fasciola hepática y parásitos
broncopulmonares. En caso de no disponer del frasco plástico de boca ancha, al
sacar la mano enguantada, invierta el guante, desplace la materia fecal hacia los
dedos, anúdelo e identifíquelo correctamente.
Transporte
Si las muestras llegan el mismo día al laboratorio pueden ser transportadas a
temperatura ambiente, protegidas de la luz, en el sitio más fresco posible. Si la
muestra llega al laboratorio antes de 24 -36 horas, empaque y envíe en forma
refrigerada. Cuando el transporte demora mas de 36 horas, o no tenga forma de
enviar la muestra refrigerada, agregue formol puro a la dosis de 1 cc. por cada 10
gramos de materia fecal con el fin de preservar la muestra. Homogenice e
identifique la muestra. Estas muestras NO sirven para bacteriología, parásitos
broncopulmonares o protozoarios flagelados.
Precauciones
Las muestras no preservadas pueden durar hasta 24 - 36 horas antes de llevar al
laboratorio, siempre y cuando sean mantenidas en refrigeración. No las congele.

17. Muestras para Coprocultivo (todas las especies)
Las enterobacterias cuando se comportan como patógenas causando enteritis se
encuentran adheridas a la mucosa del intestino. Por esto el éxito de un coprocultivo
depende fundamentalmente de la calidad de la muestra durante la toma, envase y
transporte.
Procedimiento
La forma mas adecuada, es utilizando un escobillón con medio de transporte
(Culturette). Siguiendo las instrucciones de manejo del Culturette, introduzca el
hisopo en el recto, rótelo haciendo un frotis sobre la mucosa rectal, retírelo e
introdúzcalo nuevamente en el tubo del sistema. Cierre, identifique, y envíe al
laboratorio a temperatura ambiente.
Si la muestra no viene en medio de transporte, y se ha utilizado un escobillón de
algodón común, asegúrese de mantener la humedad del escobillón ya sea con la
adición de una pequeña cantidad de materia fecal del animal muestreado o en su
defecto con 1 o 2 mL. de solución salina fisiológica estéril. En estos casos si va a
demorar mas de 12 horas en llegar al laboratorio, envíela en refrigeración.
Otras alternativas: En grandes animales se puede tomar una muestra del recto
con un guante de inseminación, nuevo, e introducir en un recipiente estéril 5 a 10
gramos de heces. Envíe en refrigeración.
Para tener seguridad de aislamiento de enterobacterias patógenas se requieren
tres coprocultivos (seriado) con mínimo 24 horas de diferencia.

18. Tejidos
Las muestras de tejido se obtienen durante la necropsia ya sea para
estudio microbiológico o histopatológico. Para los dos tipos de
estudio, el éxito de los análisis dependerá de la prontitud con que se
haga la necropsia después de la muerte del animal. No es posible
fijar un tiempo máximo dentro del cual se practique la necropsia, ya
que los tiempos para que se presente la descomposición varían
mucho de acuerdo con la temperatura ambiente y más aún con la
enfermedad que haya afectado el animal.
Es importante recordar que una vez se inician los procesos
autolíticos las lesiones histopatológicas, de una parte, se hacen de
difícil determinación y bacteriológicamente el tejido autolisado es
invadido por microorganismos contaminantes. En este caso el envío
de la muestra será una perdida de tiempo y no se podrá realizar un
diagnóstico exitoso en el laboratorio.

19. Para Histopatología
Procedimiento
Haga cortes delgados de máximo 1 cm de grueso desde la superficie hasta la
mitad del espesor del órgano a examinar. Seleccione fragmentos de tejidos en las
zonas de interfase es decir, que tengan tejido lesionado y tejido normal. Coloque
los tejidos seleccionados en una solución de formol al 10 %. La relación debe ser
1 parte de tejido por 10 de formol. Los tejidos huecos como intestino, vejiga, útero,
deben ser abiertos para que se produzca una buena fijación. Los cortes de
vísceras sólidas deben hacerse perpendicularmente a la superficie para demostrar
su estructura anatómica e incluir el borde natural de la víscera. Si hay lesiones
focales o pequeñas remítalas, incluyendo en el corte parte de tejido sano.
Empaque y Transporte
Utilice frascos de boca ancha preferiblemente de plástico para evitar accidentes.
Identifique correctamente, las muestras pueden ser conservadas y enviadas a
temperatura ambiente sin existir restricciones de tiempo para llegar al laboratorio,
debido a que el material una vez fijado, no sufre alteraciones.
Adjunte un listado de los órganos remitidos, la historia clínica y todos los hallazgos
de necropsia incluyendo extensión, color, consistencia de los tejidos etc. Enuncie
un diagnóstico presuntivo de acuerdo con los hallazgos clínicos y de necropsia.
Esta información es muy útil para que el patólogo pueda hacer una correlación
clínica con los hallazgos histopatológicos.

20. Para cultivo bacteriológico o aislamiento viral
El éxito de un aislamiento bacteriano o viral a partir de una muestra de tejido
depende fundamentalmente de lo oportuno que haya sido la toma de la
muestra, las condiciones de asepsia de la toma y de la conservación durante
el transporte. Para aislamiento de algunos virus se requieren muestras y
medios especiales de manejo por esto, es importante que se consulte con el
laboratorio adonde se enviarán y sobre la forma adecuada de hacerlo.
Procedimiento
Tome las muestras de la manera más aséptica posible. Haga cortes de los
órganos con lesiones en trozos de mas o menos 5 cm de espesor y
deposítelos en un recipiente estéril. La primera opción es una bolsa de
polietileno estéril o en su defecto un frasco de vidrio estéril. Es posible
higienizar frascos o tubos de ensayo sometiéndolos a ebullición por 30
minutos y secado en aire caliente. Las muestras de intestino deben enviarse
con los extremos atados y en recipiente separado.
Transporte
Es indispensable el envío en refrigeración, independientemente del
tiempo que transcurra para llegar al laboratorio. Deben ser remitidas con
historia clínica y datos de necropsia.

21. Orina
En las muestras de orina se pueden realizar diferentes análisis como son, parcial
de orina, urocultivo, determinación de residuos de medicamentos Doping y
Leptospira. El éxito de cualquiera de estos exámenes dependerá de la técnica con
que se tome la muestra y muy especialmente del tiempo transcurrido entre la toma
y el análisis, puesto que el proceso de descomposición que se sucede en la orina
por acción de las bacterias allí presentes, modifica los parámetros de los
componentes y muy especialmente altera la carga microbiana. Una muestra de 5 a
10 mL es suficiente para los análisis.
Urocultivo
La muestra de orina debe tomarse preferiblemente por cistocentesis o durante la
micción a mitad de chorro. Colóquela en un recipiente estéril de cierre hermético.
Refrigere pero no congele. Envíe refrigerada al laboratorio lo más pronto posible.
Parcial de orina
Utilice un recipiente químicamente limpio, seco y provisto de tapa. La muestra se
toma durante la micción, con sonda o por punción vesical. Reporte al laboratorio el
método de toma. Enviar antes de 3 horas en forma refrigerada.
Observación en campo oscuro (para diagnóstico de Leptospira)
La muestra debe ser tomada como para urocultivo preferiblemente por
cistocentesis y no debe transcurrir más de una hora de tomada, para llegar al
laboratorio. Especifique el método de recolección (sonda, cistocentesis, directa,
etc.). Enviar refrigerada.

22. Exudados
Bajo esta denominación se incluyen muestras tomadas de
distintos órganos o cavidades como abdominocentesis,
artrocentesis, líquido cefaloraquídeo, abscesos, y secreciones
uterinas que se remiten para cultivo bacteriológico, citología
exfoliativa o determinación de algunos metabolitos como
proteínas y glucosa.
Por la especialidad y experiencia que demandan los
procedimientos para tomar estas muestras, en este manual no
se hace referencia a ellos y únicamente nos limitaremos a
hacer observaciones sobre las condiciones del material de
toma y de transporte que se deben aplicar para garantizar un
resultado confiable.

23. Para cultivo bacteriológico
Puestas en práctica todas las medidas de asepsia que se
requieren y usando material estéril apropiado, haga la
correspondiente punción del órgano afectado y extraiga la
cantidad de exudado posible (mayor de 0.5 mL).
Transporte
Dependiendo del tiempo que se demore en llegar la muestra al
laboratorio, puede aplicar los siguientes procedimientos:
Jeringa de toma: Cuando la muestra va a llegar al laboratorio en
menos de una hora, y transportada a temperatura ambiente,
simplemente identifique la muestra y envíela al laboratorio en la
jeringa asegurándose que la punta de la aguja esté introducida en
un tapón de caucho. Esto evita que la muestra se salga o se
contamine.

24. Tubo estéril: Cuando la muestra va a demorar mas de una
hora pero menos de 12 horas en llegar al laboratorio esta
debe ser enviada en forma refrigerada, para esto es
necesario transferir las muestras de la jeringa a un tubo
estéril, puede usar un tubo al vacío, nuevo, de tapa roja.
Identifique la muestra y empáquela para enviar en
refrigeración .
Sistema Culturette: Cuando la muestra va a demorar mas de
12 horas en llegar al laboratorio, para poder mantener la
viabilidad de los microorganismos, es necesario enviarla
usando el sistema Culturette, que se maneja de acuerdo con
las instrucciones del producto y en el caso de líquidos
simplemente humedezca el hisopo con el líquido obtenido o
permita que 0.5 ml del exudado vaya al fondo del tubo del
sistema. Seleccione el Culturette de acuerdo con las
necesidades de aislar bacteria aerobias o anaerobias y para
el manejo siga las instrucciones la manipulación de
escobillones con medio de transporte. En nuestro laboratorio
se proveen estos materiales.

25. Secreciones uterinas
Por la frecuencia con que estas muestras se envían al laboratorio y la
carencia en el mercado de sistemas tipos Culturette con longitud
apropiada para la toma de estas muestras, se sugiere el uso de catéteres
nuevos de inseminación obtenido de un paquete nuevo, aunque no se
garantizan esterilidad, son productos de muy baja contaminación siempre
y cuando el paquete no se haya abierto.
Procedimiento
Previa limpieza, desinfección y secado de la vulva, introduzca el catéter a
través del cuello uterino hasta el cuerpo del útero en la misma forma que
un proceso de inseminación artificial, y con la ayuda de un pequeño tubo
de caucho conecte el catéter a una jeringa nueva de 10cc y practique
succión para que la secreción uterina ingrese al catéter. Con la mano que
está fijando el cuello se puede hacer un masaje para facilitar el ingreso
del líquido al catéter. Retírelo, límpielo externamente con una gasa y selle
los extremos con cinta adhesiva o esparadrapo.
Transporte
Si la muestra puede llegar al laboratorio antes de 12 horas, se puede
transportar a temperatura ambiente, protegida de la luz y en sitio fresco.
De lo contrario debe ser manejada en refrigeración.

26. Semen
Los análisis de laboratorio sobre muestras
de semen se limitan a la evaluación de
semen fresco o congelado para determinar porcentaje de
motilidad, patologías, recuento de espermatozoides vivos por
dosis y/o estudio microbiológico. Los análisis de semen
fresco, son aconsejables de realizarse en campo, a no ser
los microbiológicos y en estos casos, la forma de colecta, la
higiene y conservación son de particular importancia.
Transporte
Por las características propias del semen congelado las
muestras deben venir en el termo con nitrógeno líquido para
tomar las pajillas directamente en el laboratorio. Cuando se
requiere estudio microbiológico como prueba única, la
muestra puede ser enviada ya descongelada pero mantenida
en refrigeración.

27. Lavado prepucial
Sobre las muestras de lavado prepucial se pueden investigar Campylobacteriosis,
Trichomoniasis y microorganismos piógenos que pueden comportarse como
enfermedades de transmisión venérea.
Procedimiento
Tomando las medidas de seguridad apropiadas, lavar el orificio prepucial con agua y
jabón exhaustivamente, estimule la micción par que el toro orine completamente y
seque muy bien el orificio prepucial. Con la ayuda de una banda elástica selle el orificio
prepucial después de introducir un tubo de caucho en una extensión aproximadamente
de 15 a 20 cm en la cavidad prepucial. Introduzca 100-150 mililitros de solución salina
fisiológica o Ringer lactato, selle el extremo con una pinza hemostática. Masajear
fuertemente de abajo hacia arriba para que haya el mayor desprendimiento posible del
epitelio. Terminado el masaje permita que el líquido regrese al recipiente original.
Transporte
Las condiciones de transporte varían de acuerdo con el tiempo que demore la muestra
en llegar al laboratorio y los exámenes a realizar. Menos de cuatro horas al laboratorio
(a temperatura ambiente, protegida de la luz solar y de altas temperaturas). Cuando
demora de 4 y 12 horas, para Trichomonas y de Campylobacter deben ser
transportados en un medio de Cultivo. Para esto coloque 2 o 3 mL de la muestra
obtenida en un tubo de Medio tioglicolato y el resto del recuperado, en el frasco donde
viene la solución salina. No refrigere la muestra si se desea un diagnóstico de
Trichomonas, de lo contrario si se puede refrigerar. Muestras que se demoren más de
12 horas en llegar al laboratorio, necesariamente tienen que ser manejadas en Medio de
transporte.

28. Raspado de piel
En estas muestras se investiga comúnmente presencia de
Ectoparásitos, hongos y bacterias, con fines de identificación y
Antibiograma.
Procedimiento básico: Limpie muy bien el área afectada y
área periférica sana con solución salina fisiológica estéril, no use
ningún antiséptico. Retire las costras y escamas que estén sobre
la lesión y seque con un paño de gasa estéril.
Ectoparásitos
Con una cuchilla de bisturí raspe la piel hasta lograr sangrado de
la zona. Coloque una pequeña cantidad de muestra en un
recipiente pequeño o en un recipiente de coprológico y
asegúrese que se mantenga húmedo. Puede agregar 2 o 3 gotas
de solución salina fisiológica estéril. Transporte inmediatamente
al laboratorio a temperatura ambiente.

29. Hongos
Con la ayuda de un bisturí raspe en la interfase de las zonas afectada y
sana levantando escamas y pelos. Asegúrese de que la muestra incluye
material sano y afectado. Coloque el material en un tubo seco y estéril y
envíe al laboratorio. Cuando se solicita los dos análisis en el mismo
animal, este seguro que ha raspado piel lesionada y sana y que no
tenga incluido pelo en la muestra.
Cultivo bacteriológico
Si la lesión es en forma aerata y plana, proceda en la misma forma que
con ectoparásitos y cuando tenga una superficie sangrante, impregne
un hisopo estéril con movimientos de rotación sobre la zona raspada. Si
la muestra va a demorar más de 6 horas en llegar al laboratorio utilice el
sistema Culturette para la toma y el envío.
Si la lesión es en forma de absceso, foliculitis por ejemplo, una vez
limpia la zona, puncione el absceso con una aguja o la punta del bisturí
y tome el material purulento con la ayuda del hisopo. Tenga en cuenta
las recomendaciones para envío y transporte de cultivo bacteriológico.

30. Leche
Sobre muestras de leche se pueden efectuar diagnóstico de mastitis, calidad
higiénica y exámenes fisicoquímicos.
Diagnóstico de mastitis,
Cultivo y Antibiograma
Materiales
Tubo estéril o tubo al vacío con tapa porque garantiza la esterilidad., algodón,
alcohol, papel para secar el pezón.
Procedimiento
Lave y seque muy bien el pezón haciendo especial énfasis en la punta. Con la
ayuda de algodón y alcohol desinfecte la punta del pezón. Elimine los dos o tres
primeros chorros y luego coloque entre 5 y 8 ml de leche en el tubo estéril
evitando que partículas extrañas entren a él. Idenfíquelo según las instrucciones
del numeral 2 señalando el nombre de la vaca y el pezón muestreado: AD, PD,
AI , PI . No mezcle leche de diferentes cuartos y mucho menos de diferentes
vacas para este análisis. Las muestras de leche para bacteriología deben
tomarse antes de instaurar tratamientos con antibióticos. De los contrario por
lo menos 5 días después de haber suministrado el último tratamiento.
Transporte
Si la muestra llega antes de 6 horas al laboratorio se puede transportar a
temperatura ambiente, de lo contrario empaque y envíe refrigerado.

31. Análisis para evaluar calidad higiénica
De una muestra representativa de la leche de la finca se puede evaluar
microbiológicamente para ubicar donde está la fuente de contaminación o para
conocer el número de Bacterias Aerobias o el Tiempo de Reducción de Azul de
Metileno.
Materiales
El sistema mas recomendado es usando una bolsa plástica estéril tipo que
permita selle hermético. En su defecto se puede usar un frasco de vidrio estéril
con tapa de rosca. Se requiere un frasco de acero inoxidable lavado y
desinfectado por ebullición durante 5 minutos.
Opcional, jeringa desechable Nueva, de 10 ml.
Toma de la muestra del tanque de leche
Para que la muestra sea representativa es necesario que esté el tanque esté
en agitación por lo menos durante 10 minutos. Con la ayuda del jarro
desinfectado o la jeringa estéril tome la muestra por la tapa de arriba del
tanque, no utilice la llave de salida, en una cantidad de 25 a 30 ml. Colóquela
en la bolsa plástica, ciérrela asegurándose que quede hermética, identifíquela
según numeral 2 y empáquela en un termo con agua con hielo, en la relación
1:1. Remítala al laboratorio en forma inmediata para que se mantenga siempre
a 3 C. Cuando la temperatura de almacenamiento o de transporte supera los 3
C se produce multiplicación bacteriana, que altera el resultado final.

32. Toma de muestras de cantinas
Para tomar muestras representativas la leche se puede obtener de la
cantina, se debe agitar cada cantina con un agitador previamente
desinfectado por ebullición, con un mínimo de 15 movimientos desde la
superficie al fondo. Con una jeringa y de acuerdo con el número de
cantinas, tome cantidades iguales de cada cantina colóquelas en un jarro
desinfectado, cuando haya terminado de muestrear todas las cantinas
agite bien la leche del jarro, tome la muestra y colóquela en la bolsa.
Transportar en un medio de Cultivo; para esto coloque 2 o 3 ml de la
muestra obtenida en un tubo de Medio tioglicolato y el resto del
recuperado, en el frasco donde viene la solución salina. No refrigere la
muestra si se desea un diagnóstico de Trichomonas, de lo contrario si se
puede refrigerar.
Muestra para recuento de células somáticas
La determinación de células es un análisis que permite evaluar el grado
de mastitis existente en el hato y estimar las perdidas por disminución de
producción.
Procedimiento
Las muestras se colocan 5 ml en un tubo que contiene 3 gotas de
fijador.. Cuando se ha enviado una muestra para evaluación
bacteriológica. en el laboratorio se puede tomar la muestra para recuento
de células somáticas. El transporte se hace en forma refrigerada.

33. Tiempo de Reducción de Azul de metileno -
TRAM
Tome y transporte la muestra de la misma manera que para
análisis bacteriológico.
Residuos de Antibióticos
Tome y transporte la muestra de la misma manera que para
análisis bacteriológico.
Nota: El volumen de muestra tomado es suficiente para realizar
Examen de Cultivo Microbiológico, Recuento de Células
Somáticas y Tiempo de Reducción de Azul de Metileno.
Muestra de leche para examen físico químico
Cuando se quiere evaluar las características físico químicas de
la leche como proteínas, grasa, sólido totales etc. se requiere
una muestra tomada igual que en 12.2 utilizando un recipiente
de vidrio o plástico con capacidad de 250 mL. Coloque en el
frasco aproximadamente 4/5 partes, tápelo y envíelo
refrigerado.

34. Fetos
El feto y la placenta son las muestras más importantes para llegar al
diagnóstico de las enfermedades infecciosas que afectan la reproducción,
porque en estos tejidos se encuentran lesiones histológicas o de ellos se
pueden aislar los agentes etiológicos.Con frecuencia su utilidad diagnóstica se
pierde por cambios autolíticos que se suceden por la muerte del feto
intrauterinamente varios días antes del aborto o por una recolección y
conservación no adecuada.
Recolección en el campo
Los fetos y placentas recogidos lo antes posible, se deben lavar con agua
limpia para retirar los residuos de pasto o tierra.
Estado de los fetos
Los fetos según su estado se pueden clasificar:
•Feto no autolisado: De color rosado pálido, olor a tejidos frescos, ojos llenos y el líquido
que recubre la piel es viscoso y sin mal olor.
•Fetos autolisados o descompuestos: Color rojo oscuro hasta casi negro, exudación de
color oscuro, deshidratación del globo ocular y olor de tejido putrefacto. Con estos fetos
es muy poco lo que se puede hacer.
•Fetos no descompuestos pero destrozados por animales: Se descarta su uso para
aislamientos pero son adecuados para estudio histopatológico.
•Momificados: Son de color oscuro casi negro, hay deshidratación, los ojos
prácticamente han desaparecido, no hay olor putrefacto y la placenta aparece como una
membrana seca adherida fuertemente al cuerpo. Es tan poco lo que se puede hacer con
estos fetos que no se justifica su envío al laboratorio.

35. Clasificación por tiempo de gestación
Los abortos con menos de 100 días de gestación se encuentran envueltos
en su placenta y de acuerdo con su estado se pueden manejar y enviar al
laboratorio como una muestra ya que se facilita su manejo refrigerado.
Los abortos de mayor edad generalmente no son expulsados con su
placenta, la cual puede permanecer como retenida o se encuentra en otro
sitio y el manejo estará de acuerdo con su estado y las condiciones de
transporte.
Empaque y Transporte de fetos frescos:
Si el feto es menor de tres (3) meses lávelo con agua limpia, colóquelo en
una bolsa plástica y empaque en una caja con hielo, ya sea en bloques o
bolsas refrigerantes (ver 3.1.). Si es posible incluya un trozo de placenta
que contenga 2 o 3 cotiledones. Recuerde que el hielo o las bolsas
garantizan una adecuada refrigeración por unas 12 horas como máximo.
Fetos mayores de tres (3) meses: No es fácil dar una adecuada refrigeración
debido al gran tamaño de la muestra. Si usted puede hacerlo y llega en menos
de 4 horas al laboratorio, lave muy bien el feto con agua y empáquelo en bolsa
de polietileno a prueba de fugas y reempaque en una caja con hielo. De lo
contrario proceda a tomar muestras para bacteriología e histopatología.

36. Toma de muestras para bacteriología
Coloque el feto boca arriba. Lave y seque muy bien toda el área, abra las cavidades
abdominal y torácica teniendo cuidado de no romper vísceras internas, con la ayuda
de una jeringa estéril pique el cuajar (en esta fase del desarrollo fetal representa más
del 70% de los 4 estómagos) y succione de 3 a 5 ml de líquido (también puede
colectar líquido pericardico en la misma forma). Coloque el protector de la aguja,
regrese la jeringa al empaque original cierre con una cinta y maneje la muestra en
condiciones de refrigeración.
Fragmento de hígado, pulmón y riñón de más o menos 25g, cada uno pueden ser
tomados y empacados en bolsas individuales estériles para estudios microbiológicos.
Empaque y transporte al laboratorio en refrigeración.
Toma de muestra para histopatología
Abra el feto como en el numeral anterior y tome muestras de hígado, riñón, pulmón,
corazón, bazo y cotiledón placentario del taño de cubos de azúcar. Colóquelos en un
frasco con formol al 10% en la relación de una parte de tejido por 10 de formol (ver
tejidos). El cerebro es muy importante para diagnóstico de varias enfermedades
reproductivas, por esto es importante que un trozo de este órgano sea incluido como
muestra y manejar como se describió anteriormente.
Fetos frescos pero destrozados: No sirven para aislamientos. Se pueden tomar
muestras para histopatología como el paso anterior. No olvide que la placenta puede
ser usada para el diagnóstico (ver tejidos).

37. Suero de vaca abortada
El diagnóstico por aislamiento o histopatología que se realiza
en fetos es totalmente específico pero de baja sensibilidad
(alrededor del 50% de los estudios en fetos no llegan a un
diagnóstico), por esto el estudio Serológico con sueros
pareados de la madre pueden ser de gran ayuda. Con las
muestras del feto tome y envíe una muestra de sangre sin
anticoagulante para determinar anticuerpos contra las
enfermedades a sospechar. Repita la muestra 4 semanas
después y el hecho de encontrar seroconversión (aumento de
títulos) para una enfermedad se convierte en un diagnóstico
bastante confiable.

38. Enfermedades enfisematosas producidas por bacterias del
genero Clostridium
En este grupo se encuentran carbón sintomático o pierna negra,
edema maligno y enfisema gaseosos, producidos por bacterias
anaerobias, por lo que requieren un manejo especial de toma y
transporte para sostener la viabilidad.
Tomadas lo antes posible después de la muerte porque una vez
iniciado el proceso de putrefacción muchas otras especies del genero
Clostridium invaden los tejidos dificultando el aislamiento e
identificación del verdadero patógeno.
Procedimiento
Previo lavado y desinfección de la zona afectada y con ayuda de un bisturí
estéril haga una incisión de la piel y el músculo. Bajo las mayores medidas
para evitar contaminación introduzca el hisopo del sistema y con movimientos
de rotación recoja el exudado sanguinolento. Introduzca el hisopo en el
contenedor. Se recomienda leer previamente las instrucciones de manejo del
sistema culturette para evitar perdida de los elementos inhibidores del oxígeno.
La muestra puede ser mantenida a temperatura ambiente por 48 horas o de lo
contrario refrigere y transporte. Es recomendable tomar tambien una muestra
de músculo para histopatología.

39. Toma de muestra con jeringa
Como alternativa se puede usar jeringa y aguja calibre 18 estériles para hacer
una punción en la zona afectada. Previa limpieza y desinfección introduzca la
aguja en el músculo y con movimiento en distintas direcciones succione líquido
exudativo hasta obtener algo mas de 3cc. Retire la jeringa y tomando todas las
medidas de precaución para no contaminarse con el líquido desplace todo el aire
existente en la jeringa e introduzca la punta en un tapón para evitar entrada de
oxígeno. Marque y transporte refrigerado.
Carbón Bacteridiano, Anthrax o Peste Rayo
Esta enfermedad es sospechada en los casos de muerte súbita con presencia de
sangre oscura por los orificios naturales y para la cual tradicionalmente se envían
muestras poco practicas como extremidades completas, orejas u órganos
internos. Como para esta enfermedad no es recomendable abrir los cadáveres en
el campo por el riesgo de difusión y persistencia de la bacteria productora y como
el animal muere en un estado de bacteremia una muestra de sangre tomada lo
más rápido posible después del deceso del animal es de gran utilidad para el
diagnóstico.
Para tomar la muestra puede utilizar un tubo al vacío (numeral 1.2) como la
opción más adecuada y de menor riesgo o una jeringa estéril para tomar 1 o 2
centimetros de sangre de la vena yugular. Este microorganismo es letal para los
humanaos pues causa el anthrax.
Si eligió la segunda opción, introduzca la punta de la aguja en un tapón de
caucho para evitar la pérdida de la muestra con los consecuentes riesgos de
contaminación para propios y extraños. Marque, empaque y envíe refrigerado.

40. Examen COPROLÓGICO
El análisis de materia fecal suele darnos muchos datos para
elaborar un diagnóstico.
Es un procedimiento sencillo, económico y rápido de realizar. Existen
variadas metodologías, como la sedimentación de huevos, flotación,
cultivo de larvas, cuantificación de las mismas, etc.
El método de flotación consiste en homogeneizar materia fecal en una
solución sobresaturada de cloruro de sodio. Debido al alto peso
específico de la solución, los huevos flotan y se pegan a un cubreobjetos
previamente dispuesto en el extremo de un tubo de ensayo (la solución
de cloruro de sodio+materia fecal debe llenar completamente el tubo y
producir en su extremo libre una convexidad llamada menisco pero sin
llegar a rebasar, de tal forma que el cubreobjetos tome contacto con el
líquido). Esperamos unos 20 minutos para que lleguen los huevos a la
superficie del cubreobjetos y se adhieran a él. Extraemos el
cubreobjetos, lo depositamos sobre un porta y procedemos a su
inspección microscópica intentando asociar las formas más
características que ilustramos a continuación.

41. La simple presencia de huevos no es diagnóstico de
enfermedad parasitaria. Solo confirma la presencia del
parásito. Para hablar de patología parasitaria debemos
asociar una carga parasitaria importante a una presencia
de signos clínicos (vómitos, diarreas, caquexia, pelo sin
brillo, diarrea, tenesmo, meteorismo, etc)
Ancilostoma spp Tenias
Dipilidium caninum
Toxocara canis

42. Los análisis de sangre se usan como rutina para ayudar al
diagnóstico de enfermedades o como control de salud.
Mediante los análisis se puede detectar la presencia de
muchas enfermedades habituales y frecuentes como
pueden ser la anemia, la diabetes, infecciones, pero también
pueden dar a conocer otras menos frecuentes y más graves
como la leucemia o otros tipos de cáncer.

43. ¿CUÁLES SON LOS MÁS FRECUENTES?
Los análisis de sangre más empleados, son los estudios
hematológicos (hematimetría ó hemograma) con VSG (Velocidad de
Sedimentación Globular), y un estudio de bioquímica en el que se
miden la glucemia (azúcar en la sangre), el ácido úrico, la urea las
transaminasas, la bilirrubina, electrolitos, etc, ...
La fórmula leucocitaria
El recuento de leucocitos se realiza habitualmente en un estudio de
hematimetría y recuento leucocitario completo. Los leucocitos o
glóbulos blancos son células que están principalmente en la sangre
y circulan por ella con la función de combatir las infecciones o
cuerpos extraños; pero en ocasiones pueden atacar los tejidos
normales del propio cuerpo. Es una parte de las defensas
inmunitarias del cuerpo.
Se llaman glóbulos blancos ya que éste color es el de su aspecto al
microscopio. Hay diferentes grupos de glóbulos blancos: los llamados
polimorfonucleares (neutrófilos, eosinófilos y los basófilos) y los
mononucleares (los linfocitos y los monocitos).

44. El origen de todas las formas de leucocitos es a
partir de células madres de la médula ósea. La
fórmula de leucocitos o leucocitaria mide el
porcentaje presente de cada tipo de leucocitos en el
total de glóbulos blancos. Al ser un porcentaje al
aumentar un grupo de leucocitos disminuye otro,
aunque en ocasiones solo existe un aumento o
disminución de un tipo concreto y por ello solo el
porcentaje ofrece una valoración orientativa pero se
debe contar el número total de cada grupo para
saber cuál es la variable a tomar en cuenta y
estudiar.

45. GRUPOS DE LEUCOCITOS
Hay diferentes grupos de glóbulos blancos, los llamados
polimorfonucleares (neutrófilos, eosinófilos y basófilos) y los
mononucleares (linfocitos y monocitos).
Los neutrófilos son los más numerosos y porcentualmente los más
significativos que se encuentran. Su función es la fagocitosis que se
entiende como si fuera una absorción y digestión de sustancias extrañas
(bacterias, cuerpos extraños, tejidos etc,). Las formas inmaduras que
aparecen cuando hay un estímulo intenso medular para su producción se
llaman cayados (por la forma del núcleo); suele indicar la existencia de
actividad intensa de las defensas contra infecciones por bacterias.
Los eosinófilos se llaman así por el color rojo en el que aparecen al
microscopio por una tinción con eosina. Suelen estar elevados en ciertas
enfermedades causadas por alergia o por infecciones parasitarias.
Los basófilos suelen tener un comportamiento similar.
Los mononucleados son los linfocitos y los monocitos. Tienen un
núcleo celular único y pequeño. Sus funciones son las combatir
infecciones virales y bacterianas crónicas.

46. Conteo de Hematies
Los glóbulos rojos son las células sanguíneas que contienen en su
interior la hemoglobina. Los glóbulos rojos son los principales
portadores de oxígeno a las células y tejidos del cuerpo. Tienen una
forma bicóncava para adaptarse a una mayor superficie de intercambio
de oxígeno por dióxido de carbono en los tejidos. Además su
membrana es flexible lo que permite a los glóbulos rojos atravesar los
más estrechos capilares.
La hemoglobina es una proteína que contiene hierro lo que le da el
color rojo a la sangre, por ello el nombre de glóbulos rojos o Eritrocitos:
eritro (rojo) + citos (células).
PRODUCCIÓN DE LOS GLÓBULOS ROJOS
Los glóbulos rojos se producen en la médula ósea, a partir de células
madre que se multiplican a gran velocidad. La producción de glóbulos
rojos esta regulada por la eritropoyetina, que es una hormona producida
por el riñón. Una disminución de la oxígenación de los tejidos aumenta la
producción de eritropoyetina, que actúa en la
médula ósea estimulando la producción de glóbulos
rojos.

47. FUNCIÓN DE LOS GLÓBULOS ROJOS
El oxígeno que es necesario para producir energía en los
diferentes tejidos entra en el cuerpo humano a través de los
pulmones. Atraviesa las membranas de los alvéolos
pulmonares y es captado por los glóbulos rojos unido a la
hemoglobina.
Luego es transportado por el sistema circulatorio a los tejidos.
El oxígeno se difunde a través de la pared de los capilares
para llegar a las células. Al mismo tiempo, el CO2
que
producen las células es recogido por la hemoglobina de los
glóbulos rojos y es transportado a los pulmones, en donde es
expulsado.

48. ¿Qué es el hematocrito?¿Qué es el hematocrito?

49. Hemoglobina Hematocrito
La hemoglobina es una proteína que contiene hierro y que le otorga el
color rojo a la sangre. Se encuentra en los glóbulos rojos y es la
encargada del transporte de oxígeno por la sangre desde los pulmones
a los tejidos.
La hemoglobina también transporta el dióxido de carbono, que es el
producto de desecho del proceso de producción de energía, lo lleva a
los pulmones desde donde es exhalado al aire.
El análisis de la hemoglobina se realiza normalmente en un estudio
completo de hematimetría, con el recuento de glóbulos rojos o hematíes.
Tras una centrifugación de la sangre total se pueden apreciar dos
niveles, uno con el depósito de los glóbulos rojos, principalmente, y otro
nivel del plasma total. La relación porcentual entre ambos es lo que
describe el hematocrito y describe el porcentaje de células
transportadoras de oxígeno con respecto al volumen total de sangre.
El análisis del hematocrito se realiza normalmente en un estudio
completo de hematimetría, con el recuento de glóbulos rojos o hematíes.

50. INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS DEL
HEMATOCRITO
En general, se deben de interpretar con otros parámetros de la forma,
aspectos y con los índices hemáticos (hemoglobina, hematocrito, VCM,
HCM, VMHC).
•El VCM (volumen corpuscular medio) es una forma de expresar el
tamaño de los eritrocitos .El valor normal es de 80-100 fl (femtolitros por
hematíe).
• La HCM (hemoglobina corpuscular media) corresponde al contenido
de la hemoglobina en cada eritrocito (Hemoglobina/número de
hematíes). Su valor normal es de 26 a 32 picogramos.
• La CHCM es la concentración de hemoglobina comparado con el
hematocrito . En los adultos sus valores normales son de 32 a 36 %.

51. ¿QUÉ INDICAN LOS RESULTADOS ANORMALES
EN EL HEMATOCRITO?
Un índice bajo de Hematocrito puede deberse a:
•Anemia
•Fallos en la médula ósea (Radiaciones, toxinas, fibrosis, tumores, etc...)
•Embarazo
•Hemorragias
•Hipertirodismo
•Hemolisis (destrucción de glóbulos rojos), por una transfusión
•Leucemia
•Problemas de alimentación
•Artritis reumatoide
Un índice alto de Hematocrito puede deberse a:
•Cardiopatías
•Deshidratación
•Eclampsia (en el embarazo)
•Enfermedades pulmonares crónicas
•Exceso de formación de hematíes (Eritrocitosis)
•Policitemia vera
•Choque (shock)

52. Parámetros
hemáticos
Unidades Valores normales
Hematocrito % 30.0 – 40.0
Hemoglobina g/dl 8.0 – 14.5
Eritrocitos 10^6/μl 5.40 – 9.00
MVC fl 40 - 60
MCH pg 11.0 -17.0
MCHC g/dl 30.0 – 36.0
Leucocitos 10^3μl 2.50 – 7.50
Neutrófilos % 15 - 45
Eosinófilos % 1 - 12
Linfocitos % 45 - 75
Monocitos % 3 - 15
Plaquetas 10^3/μl 300 - 800
Fibrinógeno g/dl 0.1 – 0.6
proteinas g/dl 6.7 - 8
Valores hemo-hematimétricos normales en el bovino

53. Proteínas totales: Los aumentos y disminuciones se deben a las
concentraciones de albúminas y globulinas. El valor de las proteínas
totales esta aumentado (hiperproteinemia) en la deshidratación,
inflamación, mieloma múltiple y en el cólico grave; y está disminuido
(hipoproteinemia) en trastornos digestivos, inanición, falla renal o
hepática, parasitosis, infecciones crónicas, paperas y tumores.
Albúminas: La hiperalbuminemia es indicativa de deshidratación. Por
otro lado, si tanto la albúmina como la globulina están disminuidas, las
principales consideraciones son hemorragias, exudación por lesiones
cutáneas graves y enteropatías. En casos de hipoalbuminemia y
globulinemia normal o alta sugiere una reducción en la producción de
albúmina debida a insuficiencia hepática crónica. Otro motivo puede ser
el aumento de pérdidas corporales debido de glomerulopatía.
Globulinas: La hiperglobulinemia es indicativa de enfermedades
inflamatorias crónicas, por ejemplo, bacteriosis crónica, virosis,
micosis, parasitosis, neoplasias o lesiones inmunomediadas.
La hipoglobulinemia indica hemorragias y enteropatías
perdedoras de proteínas. Con menor regularidad, las
nefropatías perdedoras de proteínas y la insuficiencia hepática.
QUÍMICA SANGUÍNEA

54. Bilirrubina: Es formada a partir del catabolismo de la
hemoglobina. Su aumento es indicativo de enfermedades
hemolíticas o hepáticas,incluyendola obstrucción
extrahepática.
Creatinina: La principal causa de su aumento son las
glomerulopatías. Otras causas como la miositis aguda y el
traumatismo muscular pueden aumentar la creatinina pero su
trascendencia es incierta. Su determinación es más útil que la
uremia para la vigilancia seriada de las patologías renales
porque experimenta menos influencias extrarrenales.
Glucemia: Se ve aumentada en casos de iatrogenia por
glucocorticoides, en la diabetes mellitus, en el
hiperadrenocorticismo y hiperpituitarismo. Disminuye en el
hipoadrenocorticismo, en la insuficiencia hepática, en la
septicemia grave y en la inanición.
Fibrinógeno: Aumenta su concentración en el plasma
con procesos inflamatorios y disminuye en coagulación
intravascular diseminada, fallo hepático o cirugías importantes.

55. LAS DIFERENTES PRUEBAS SEROLÓGICAS
En el momento de realizar pruebas diagnósticas de enfermedades
infectocontagiosas hay dos posibles vías principales: pruebas directas
encaminadas a la detección del agente etiológico o de parte de su ADN
en el animal afectado, o pruebas indirectas que demuestran que el
sistema inmune del individuo afectado ha estado en contacto con el
agente en cuestión.
Cualquiera de los tipos de prueba aporta una
información diferente y las pruebas aplicables varían en específidad y
sensibilidad. En lo presente nos centramos principalmente en las pruebas
que permiten la detección de anticuerpos aunque algunas técnicas son
parecidas para la detección de anticuerpos y antígeno.
Precipitación ELISA
Inmuno difusión RIA
Inmunoelectroforesis Inmunofluorescencia
Aglutinación Inmunoperoxidasa
Fijación de complemento Test de neutralización
Hemoaglutinación o inhibición de la misma Test de protección

56. 1- Precipitación: La adición de un antígeno soluble a una solución con
anticuerpos homólogos resulta en la formación de complejos inmunes
que precipitan de la solución. Cuando se aumenta la cantidad de
antígeno que se añade se forman cantidades variables de complejos y
con esto de precipitado, obteniendo la mayor cantidad de complejos
cuando la proporción de antígeno y anticuerpo en la solución es
equivalente o óptimo. Esto se aprovecha en los test serológicos de
inmunoprecipitación como por ejemplo para la identificación de diferentes
estreptococos.

57. 2- Inmunodifusión: Se utiliza en un medio semi solido como los geles de
agar, en los cuales los dos componentes el antígeno y el anticuerpo migran
a través del agar hasta que se encuentren y precipitan en el lugar donde su
proporción es óptima, se trata de inmunodifusión. Este método permite
identificar anticuerpos y antígenos desconocidos y comparar antígenos
parecidos entre si (método de Ouchterloney).También permite cuantificar el
antígeno presente en una solución determinada. Para ello se pueden
obtener resultados mas exactos mediante inmunodifusión radial (el antígeno
se encuentra en pequeñas indentaciones y difunde por un gel que contiene
una concentración conocida de antisuero, de modo que diámetro del anillo
de precipitación que se forma es proporcional a la cantidad de antígeno),
estas pruebas son las empleadas en la investigación de brucelosis.

58. 4- Aglutinación: Anticuerpos pueden reaccionar con un
antígeno determinado y luego interconectar entre ellos o
diferentes componentes antígenos presentes por
ejemplo en la superficie de una bacteria. Este proceso
resulta en la aglutinación que es visible
macroscópicamente y es un instrumento útil en la
identificación de bacterias, hongos e incluso protozoos
mediante antisueros específicos. Ejemplos son la
aglutinación en porta para la detección rápida de
anticuerpos frente a diferentes Mycoplasma spp. o
Salmonella spp. así como el test de rosa bengala para la
detección de anticuerpos frente a Brucella abortus. Para
determinar anticuerpos frente a Leptospira spp. se
utilizan cultivos vivos de Leptospira en una aglutinación
en porta bajo el microscopio en campo obscuro.
3- Inmunoelectroforesis: En líquidos que contienen
mezclas de antígeno se puede aplicar primero una
electroforesis para separar los antígenos presentes y
luego la inmunodifusión para su identificación.

59. 5- Fijación de complemento (CFT): El test de fijación de
complemente utiliza el hecho de que complejos de anticuerpo y
antígeno activan el sistema de complemento que, entre otras
actuaciones, causa la lisis de eritrocitos que muestran antígeno. la
prueba se desarrolla en dos pasos. Tras la inactivación de los
sueros (para eliminar la actuación del complemento propio del
suero), en una placa de microtitulación (pozos en V) se añade
antígeno y una cantidad conocida de complemento (de cobaya).
Tras 30 minutos de incubación se añaden eritrocitos de oveja
(sensibilizados mediante suero de conejo con hemolysina) y se
incuba otra media hora. En los sueros que contenían anticuerpos,
se han formado complejos que se han ligado al complemento y han
evitado la destrucción de los eritrocitos mientras que en las
muestras en las que no hay anticuerpos se lisan los glóbulos rojos.
Por ejemplo para detección de anticuerpos frente a Chlamydia
psittaci (mamíferos).

60. 6- Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA): El descubrimiento de
que una serie de encimas como por ejemplo la fosfatasa alcalina se
podían ligar a anticuerpos sin perder su actividad ni interferir con la acción
de los anticuerpos llevo al desarrollo de un gran grupo creciente de
pruebas diagnósticas que aprovechan la posibilidad de detectar los
anticuerpos mediante la actividad de la encima ligada. Los llamados
Enzyme-linkedimmunosorbent assays (ELISA) son seguros y faciles de
utilizar y permiten tanto la determinación y cuantificación de anticuerpos
(ELISA indirecto, competitivo, o blocking) como de antígeno (ELISA directo
o Sandwich) y por eso tienen una amplia aplicación en el diagnóstico tanto
de enfermedades víricas y bacterianas como las causadas por hongos o
parásitos.

61. El ELISA indirecto para la detección de anticuerpos utiliza antígeno
adherido a membranas o recipientes de poliestireno, al que se adiciona
el suero a analizar y sueros de control. Tras una incubación y el lavado
para eliminar los anticuerpos sobrantes se añade un suero anti-
inmunoglobulina conyugado con una encima y se incuba y lava de
nuevo. Añadiendo ahora un substrato para la encima que
esta transforma causando una reacción de color que se puede
determinar visualmente o mediante un espectrofotómetro.

62. 7- Radioinmunoassay (RIA): Este sistema utiliza una metodología
similar a la del ELISA o de la inmunofluorescencia, pero aplicando
moleculas marcados con radioisótopos. Esto hace el test
extremadamente sensitivo y permite detectar cantidades mínimas de
antígeno o anticuerpos.
8- Inmunofluorescencia: En la inmunofluorescencia se utilizan
inmunoglobulinas marcadas con sustancias fluorescentes como
isotiosyanato de fluorescina o rhodamina, parecido a las encimas
empleados en los ELISA. Se trata de un método muy sensible pero
que requiere el uso de un microscopio de fluorescencia con lámpara
de mercurio y experiencia en la interpretación
para evitar errores. Tiene un campo muy
amplio de aplicación y se utiliza con frecuencia
para la detección de antígeno en tejidos.

63. 9- Inmunoperoxidasa: Este método permite la detección de entígeno
en tejidos mediante el uso de inmunoglobulinas marcadas con una
encima (peroxidasa o fosfatasa alcalina) que generan una coloración
desde un substrato sin color. La ventaja ante las técnicas de
fluorescencia son el equipo necesario y que se puede aplicar en
material incluido en parafina. Hace falta mucha experiencia.

64. 10- Test de neutralización de virus: Este método utiliza la habilidad de los
anticuerpos de anular la acción biológica de un virus o de una toxina. Esto se
aplica en algunas pruebas para la neutralización de toxinas bacterianas (prueba
de Nagler para Clostridium perfringens) y para un gran número de virus. El
método consiste en la infección de un cultivo celular receptivo con un virus que
causa lesiones visibles en este cultivo. La concentración del virus es conocido
mientras que los sueros a analizarse diluyen en pasos de dos en dos. Si el suero
contiene anticuerpos estos inhiben la infección de las celulas por el virus en
cuestión y con ello la aparición de lesiones en el cultivo celular. Para muchos
virus de importancia para los animales domésticos el test de neutralización de
virus constituye el "gold standard" por su especifidad y sensibilidad. Sin embargo
también es el análisis mas costoso y que más tiempo requiere debido a la
necesidad de trabajar con cultivos celulares o huevos embrionados.

65. Pruebas para la determinación de mastitis:
Pruebas de Campo
Prueba de Mastitis California (CMT).
Toma de muestras para cultivo microbiológico.
Pruebas de Laboratorio
Recuento de células somáticas (RCS)
Cultivos microbiológicos
Caracterización del microorganismo
Pruebas de sensibilidad antimicrobiana
Monitoreo
Recuento de Células Somáticas del tanque ( RCS-T)

66. El CMT mide en forma indirecta el número de células somáticas / mL.
Normalmente la leche de una glándula mamaria sana tiene menos de
100.000 cel/mL donde el 80% de las células son macrófagos y el 20% ó
menos corresponden a Neutrófilos. Cuando hay inflamación originada en
un proceso infeccioso el número de células somáticas aumenta por
incremento de los Neutrófilos que acuden a cumplir su acción fagocítica
en el sitio de la infección llegando a representar hasta el 90% del recuento
de células somáticas.
En la literatura no hay coincidencia sobre el número de células a partir
del cual se considera que una glándula mamaria esta afectada de
mastitis, pero en términos generales recuentos superiores a 500.000
cel/mL con más del 50% de Neutrofilos se deben considerar como
cuadros de mastitis. Número que se verá incrementado hasta varios
millones según la intensidad y extensión de la lesión.
El CMT es una prueba que tiene una alta sensibilidad pero presenta
algunas deficiencias en especificidad, dando falsos positivos durante la
primera semana después del parto pero muy especialmente en vacas que
tienen más de 7 meses de producción y varios partos. En estos casos el
grado de viscosidad es similar en los 4 pezones.

67. Prueba de Mastitis California (CMT): Esta es una prueba de campo de
fácil manejo y buena sensibilidad que se fundamenta en la capacidad
que tiene el reactivo Lauril Sulfato de Sodio para reaccionar con el DNA
celular produciendo viscosidad directamente proporcional al número de
células somáticas presentes en la muestra de leche.
Una vez la vaca está lista para ser ordeñada con pezones limpios y
secos, se escurren los 3 ó 4 primeros chorros de leche de cada pezón
en los compartimentos de la bandeja apropiada. Se inclina la bandeja en
un ángulo de 60º para igualar la cantidad de leche en cada uno (deben
quedar entre 2 y 4 mL de leche). Se agrega una cantidad igual de
reactivo y se inicia un proceso suave de agitación por rotación durante
15 a 20 segundos. Leer e interpretar la prueba.
Los criterios básicos de la interpretación se resumen en la tabla
siguiente:
GradoTipo de RelaciónCelularidad / ml
NegativoMezcla se mantiene líquida< 200.000
TrazasLigera viscosidad200.000 - 500.000
1Mezcla viscosa no adherida al fondo400.000 -1.500.000
2Mezcla viscosa que se adhiere al fondo 800.000 -
5.000.000
3Mezcla muy viscosa fuertemente adherida que forma un
solo grumo.>5.000.000

68. Toma de Muestra de Leche
Las condiciones de toma de muestra de leche son determinantes para
el éxito del diagnóstico especialmente para el aislamiento e
identificación del agente infeccioso. Previo a la toma se debe lavar,
secar y desinfectar muy bien el pezón, escurrir 3 ó 4 chorros y en un
recipiente estéril, descargar +/- 5 ml de leche.Las muestras deben ser
transportadas al laboratorio en refrigeración teniendo cuidado que la
humedad no altere la identificación de cada tubo. Para un estudio
completo se recomienda tomar muestra a todos y cada uno de los
pezones que tengan una reacción de 1 ó más a CMT. A criterio del
profesional, dependiendo de la prevalencia de la enfermedad y del
conocimiento que se tenga del hato, se puede reducir el número de
muestras hasta en un 50% de los pezones positivos a CMT.
Recuento de Células Somáticas
Diferentes metodologías se aplican para el recuento de células
somáticas (RCS); las más utilizadas son el recuento microscópico
directo (RMD), el recuento electrónico como contadores de partículas y
el recuento automatizado soportado en epifluorescencia. Por
disponibilidad de equipos y posibilidades de aplicación se analizan los
pasos fundamentales del recuento microscópico directo:

69. Análisis Bacteriológicos
El objetivo del análisis microbiológico es hacer el aislamiento y
caracterización de los microorganismos causantes de la mastitis del
hato que permita su agrupación en causantes de:
Mastitis contagiosa: Streptococcus agalactiae, Staphylococcus
aureus, Corynebacterium bovis, Mycoplasma spp.
Mastitis originada en la piel de los pezones: Staphylococus no
aureus S. hyicus, S. chromogenes y otros, Streptococcus no agalactiae
S. dysgalactiae, S. bovis, S. uberis, entre otros.
Mastitis ambiental. Escherichia coli, Enterobacter spp, seudomonas
aeruginosa, Klebsiella spp, Serratia spp, Citrobacter freundii.
Mastitis iatrogénica. Asociada al uso inadecuado de cánulas
intramamarias con la etiología de Mohos ó Levaduras de los géneros:
Candida, Cryptococcus y Trichosporum. El aspecto remoso de la
secreción láctea, el largo periodo de evolución de la enfermedad, la no
respuesta clínica a antibióticos y el uso repetido de los mismos por vía
intramamaria son factores que se deben tener en cuenta para
sospechar de estos microorganismos.

70. Todas las bacterias causantes de mastitis se multiplican bien en
Agar Sangre convirtiéndose en el medio básico para el proceso de
aislamiento del agente etiológico. Con el fin de aumentar las
posibilidades de éxito del aislamiento y aprovechando las
propiedades de la leche como medio de cultivo, las muestras pueden
ser preincubadas a 37º C durante 6 a 8 horas y posteriormente
sembrar en Agar Sangre. Cuando se toma esta alternativa se debe
estar seguro que la muestra ha sido tomada en condiciones
asépticas, de lo contrario microorganismos contaminantes van a
enmascarar el diagnóstico.
Pruebas de Sensibilidad Antimicrobiana
Por facilidad de manejo y disponibilidad de reactivos la prueba de
sensibilidad antimicrobiana más usada es el método de difusión con
discos sobre Agar Mueller Hinton. La selección de principios activos a
probar dependerá de: la disponibilidad de productos comerciales en el
mercado local, la legislación del país sobre uso de
antibióticos, el tipo de microorganismo aislado, si
es para vaca en lactancia o en el periodo seco
y si se va a usar vía parentenal o vía intramamaria.
En una placa de Agar de 100 mm de diámetro se
pueden colocar 8 sensidiscos como máximo.

71. El recuento de células somáticas de la leche del tanque RCS - T ó una
muestra representativa de todos las cantinas que se producen en la finca
es el mejor indicador para monitorear la situación de mastitis en el hato y
estimar las pérdidas por producción. Hay una alta coincidencia en el
literatura mundial que un RCS - T de 200.000 células/ml es una cifra
apropiada para un hato que tiene una prevalencia inferior al 6% de cuartos
afectados de mastitis subclínica y que su producción no se ve afectada por
esta enfermedad.
Relación entre el RCS-T, el porcentaje de cuartos infectados y el
porcentaje de merma de producción (RCS - T)/ ml. Porcentaje cuartos
infectados = Porcentajes merma
Cantidad de células somáticas:
200.00060 Aceptable
500.000166 Problemas
1.000.0003218 Rechazo
1.500.0004829 Inaceptable

72. Otras pruebas:Otras pruebas:
Hemoparásitos (Hemoparásitos (babesia, anaplasma y otros))
Pruebas alérgicas (Pruebas alérgicas (tuberculina))

73. AUTOEVALUACIÓN:AUTOEVALUACIÓN:
1. ¿Cuales son los requisitos que debe tener una muestra
para ser enviada al laboratorio?
2. ¿Para que tipo de muestras se utilizan los tubos con y sin
anticoagulante?
3. ¿Como pueden de conservarse las muestras de sangre?
4. ¿Que procedimientos hay que seguir para obtener mayor
cantidad de suero sanguíneo y cuales para obtener
plasma?
5. ¿Que importancia tiene el uso de una aguja adecuada
(grosor G y longitud en pulgadas 1, 1 ½, 2, etc.) y por que
es necesario cambiar de aguja de animal en animal?
6. ¿Para que tipo de muestra se utilizan los escobillones?

74. 7. ¿Que otros tipos de envases pueden utilizarse para toma de
muestras y para cuales casos?
8. ¿Que tipos de muestras usted puede enviar al laboratorio de
salud animal y en que envase la enviaría?
9. ¿Que muestras pueden ser conservadas y hasta por cuanto
tiempo?
10. ¿Cuales son las muestras que con más frecuencia son
enviadas al laboratorio de salud y para que objetivo se
procesan?
11. ¿Cuales son las pruebas de laboratorio que usted conoce?
12. ¿En los análisis de sangre, la formula leucocitaria es de
gran importancia ya que nos diferencia el cuadro patológico
queenfrentamos. Explique esto?
13. ¿Otro análisis importante es el hematocrito. Como se
interpreta el mismo?

75. 14. ¿En que se basan las pruebas serológicas. Cite ejemplos
de enfermedades que se determinan con estas pruebas?
15. ¿Que pruebas pueden ser empleadas para la determinación
de mastitis y en que se basan las mismas?
16. ¿Que requerimientos deben tener las pruebas de
hemoparásitos?
17. ¿Para que se emplean las pruebas alérgicas? . Describa
una.
18. ¿Que es un antibiograma y para que nos sirve?
19. ¿Cuantos tipos de análisis de parásitos conoce y en que se
basan los mismos?
20. ¿En caso de determinaciones hormonales cual debe ser la
muestra enviada al laboratorio?